SU1750690A1 - Способ получени конъюгированного энтеротоксина ЕSснеRIснIа coLI - Google Patents

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии и может быть использовано дл  получени  конъюгированного термостабильного энтеротоксина кишечной палочки. Сущность изобретени : культивирование токси- генных штаммов осуществл ют на среде следующего состава, г/л: перевар Хоттинге- ра 80-250; сернокислый магний 3,0-3.8: однозамещенный фосфорнокислый натрий 6,0-6,8; однозамещенный фосфорнокислый калий 3,0-3.8; глюкоза 5#-7,0; дистиллиро ванна  вода до 1 л, отдел ют токсиносодер- жащий супернатант, термолабильный и термостабильный токсины осаждают сульфатом аммони  при разной степени насыщени , выдерживают преципитаты 18-20 ч при 2-4°С, центрируют осадки термолабильного и термостабильного токсинов, раствор ют в дистиллированной воде и трис-HCI буфере соответственно и диализу- ют, после чего «х объедин ют в соотношении 100:1 и конъюгируют глутаровым альдегидом до конечной концентрации 2 г/л, конъюгат диализуют сначала против фосфатного буфера, а затем против трис- HCI буфера, конъюгат раствор ют в трис- HCI буфере, содержащем бычий сывороточный альбумин. 6 табл. Ън Ё

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии и касаетс  способа получени  конъюгированного термостабильного энтеротоксина кишечной палочки и может быть использовано в производстве вакцинных пре- паратов против колибактериоза и смешанной инфекции (колибактериоз, рота, коронавирусна  инфекци ).

Кишечна  палочка, котора  выдел етс  от больных и павших тел т, в основном продуцирует термостабильный энтеротоксин и в малой степени термолабильный. Термостабильный энтеротоксин не обладает им- муногенными свойствами. Он приобретает эти свойства лишь в сочетании с носителем с большей молекул рной массой.

Наиболее близким техническим решением  вл етс  способ получени  конъюгированного энтеротоксина из термостабильного и термолабильного энтеротоксинов E.coli с помощью 1 этил 3/3 диметиламинопропил/ кар- бодиимида Предварительно очищенный термостабильный и термолабильный энтеро- токсины с помощью хроматографии (амбер- лит НАД-2), ацетонного фракционировани , последовательной гельфильтрации на сефа- дексе G25, конъюгировали в 0,1 М фосфатном буфере (рН 7,0) в течение 96 часов при 4°С. с последующим диализом против НгО в течение 48 ч при 4 °С.

Однако известный способ имеет следующие недостатки: термостабильный и терХ|

СЛ О Ч) О

молабильный энтеротоксины подвергали длительной очистке с использованием дорогосто щего оборудовани  и реактивов: хроматографии (амберлит НАД-2), ацетонного фракционировани  последовательной гель- фильтрации на сефадексе G25 и ионнооб- менной хроматографии (ДАЕ сефацил), повторной хроматографии на сефадексе G25. Вследствие больших потерь токсинов на этапах очистки, особенно на этапах ион- нообменной и тонкослойной хроматографии не удаетс  собрать достаточного количества токсинов, необходимых дл  проведени  всего комплекса исследований по конъюгированию и дл  иммунизации боль- ших групп животных. Конъюгацию энтеро- токсинов осуществл ют с использованием дорогосто щего реактива 1 этил 3/3 диме- тиламинопропил/ карбодиимида, который в нашей стране не производитс . Метод тре- бует строгого соблюдени  оптимального соотношени  карбодиимида и энтеротокси- нов при конъюгации. Так при повышении этого соотношени  до 100:1 резко снижаетс  антигенность коныогата. Увеличение времени конъюгации существенно не вли ет на увеличение процента содержани  термостабильного энтеротоксина в конечном конъюгате. При сокращении времени конъюгации менее 18 ч резко снижаетс  анти- генность конъюгата. Нз весь процесс конъюгации энтеротоксинов затрачиваетс  более 260 ч.

Цель изобретени  - повышение имму- ногенности целевого продукта, ускорение и упрощение способа.

Поставленна  цель достигаетс  тем, что культивирование штаммов E.cotl, продуцирующих термостабильный и термолабильный энтеротоксины, осуществл етс  на среде, содержащей: перевар Хоттингера 80-250 мл (1000 мг% аминного азота), магний сернокислый 3,0-3,8 г, натрий фосфорнокислый однозамещенный 6,0-6,8, калий фосфорнокислый однозамещенный 3,0-3,8, глюкоза 5,0-7,0 (только дл  термостабильного энтеротоксина), вода дистиллированна  до 1 л.

18-24-часовые культуры центрифугируют при 6000-8000 об/мин, в течение 30-40 мин, удал ют биомассу, токсиносодержа- щий материал осаждают сульфатом аммони  из расчета 650 г/л, Осажденный токсиносодержащий материал центрифугируют при 6000-8000 об/мин, в течение 30- 40 мин на холоду, надосадок удал ют, а суммарные белковыэ фракции энтеротоксинов обрабатывают смесью этанол-эфир (1:1) дл  удалени  липидов. Центрифугируют при 6000-8000 об/мин в течение 10-20

мин при 2-4°С. Верхний слой отбрасывали, а осадок перераствор ли в 0,05 М трис-НС буфере из расчета 1/10 от начального объема .

Обессоливание и фракционирование суммарной белковой фракции термостабильного энтеротоксина провод т на хрома- тографических колонках с сефадексом G-25, а термолабильного - G-150. Элюцию проводили 0,15 н NaCI. В ходе фракционировани  выдел ют 5 белковых фракций термостабильного и термолабильного энтеротоксинов .

Концентрацию белка в выделенных фракци х определ ют с помощью спектрофотометра СФ-26 при 260 и 280 нм по методу Варбурга и Христиана.

Дл  электрофоретического контрол  гомогенности выделенных фракций их развод т в 50 мкл фосфатно-солевого буфера, содержащего 5% ДСП. Биологическую активность фракций термостабильного энтеротоксина определ ют с помощью теста анальной пробы на мышатах-сосунах, а термолабильного - с помощью теста отека лап белых мышей и Бикентеста.

Белковые фракции термостабильного и термолабильного энтеротоксинов, обладающие наибольшей биологической активностью , концентрируют против ПЭГ и используют дл  конъюгации.

Готов т смесь термостабильного и термолабильного энтеротоксинов в соотношении 1001 в фосфатно-солевом буфере (рН 7,0-7,2). К смеси добавл ют 25%-ный раствор глутарового альдегида до конечной концентрации 1-3 г/л, полученную смесь выдерживают 1-2 ч при 18-20°С, и получают конъюгат. Конъюгат диализируют против фосфатно-солевого буфера (рН 7,0-7,2) в течение ч при 2-4°С. Провод т повторный диализ против 0,05 М трис-HCI буфера (рН 8,0-8,2) в течение 20-24 ч при 2-4°С,

С помощью диализных мешочков происходит задержка всего конъюгированного энтеротоксина и выдел етс  непрореагировавший термостабильный энтеротоксин и глутара/ ьдегид.

Количество св занного термостабильного энтеротоксина в конъюгате определ ют посредством суммировани  возрастани  количества белка (по Лоури), присутствующего в диализате сверх количества термолабильного токсина, первоначально добавленного в конъюгат. Дл  увеличени  имму- ногенной активности полученного конъюгата к нему добавл ют раствор трис-HCI буфера, содержащий бычий сывороточный альбумин из расчета 10 г/л, рН 8,0-8,2.

Полученный конъюгат при необходимости концентрируют до 1/10 объема прошв ПЭГ.

Термостабильный и термолзбильный энтеротоксины концентрируют и очищают с 5 помощью более м гкого способа сульфатом аммони , в отличие от более грубого ацетон- ного фракционировани  в прототипе, что зачастую приводит к значительным потер м активности токсиносодержащего материа- 10 лэ, вследствие денатурации белковых молекул .

Дл  конъюгации термостабильного и термолабильного энтеротоксинов в предлагаемом способе используют глутаральде- 15 гид, который  вл етс  не только хорошим сдваивающим агентом, но и веществом, значительно снижающим токсические свойства конъюгата, при полном сохранении антигенных детерминант его составл ющих. 20 Использование глутаральдегида дл  конъюгации энтеротоксинов E.coli позвол ет сократить врем  конъюгации почти в 30 раз, по сравнению с прототипом.

Предлагаемый способ позвол ет пол- 25 учать конъюгированный энтеротоксин E.coli в количествах, достаточных дл  иммунизации больших групп животных, а также добитьс  увеличени  на 10-20% выхода конечного продукта,30

Добавление к новому молекул рному образованию, конъюгированному энтеро- токсину E.coli, бычьего сывороточного альбумина позвол ет значительно увеличить его иммуногенную активность.35

Использование в за вл емом решении легкодоступных реактивов и оборудовани  позвол ет ускорить способ получени  конъ- югированного энтеротоксина E.coli более чем в 2 раза.40

Способ осуществл ют следующим образом .

Пример. Культуры кишечной палочки , выделенные от павших животных, продуцирующие термостабильный и 45 термолабильный энтеротоксины, высевают раздельно на питательную среду, содержащую следующие компоненты: перевар Хот- тингера 200 мл (содержание аминного азота 1000 мг%); калий фосфорнокислый одноза- 50 мещенный 3,5 г; натрий фосфорнокислый однозамещенный 6,5; сульфат магни  3,5; глюкоза 6,0 (только дл  культивировани  термолабильного штамма E.coli), вода дистиллированна  до 1 л, рН 7,14 и культивиру- 55 ют в течение 20 ч при 37°С в услови х аэрации. Бульонные культуры центрифугируют при 8000 об/мин при 4°С в течение 40 мин и получают надосадочную жидкость, содержащую энтеротоксины.

Токсиносочержащий материал осаждают медленным добавлением сульфата аммони  из расчета 650 г/л и оставл ют на 20 ч при непрерывном встр хивании при 4°С. Через 2 ч токсиносодержащий материал осаждают центрифугированием при 8000 об/мин в течение 30 мин на холоду. Осадки суммарных белковых фракций знтеротокси- нов обрабатывают смесью этанол-эфир (1:1) с целью удалени  липидов. Центрифугируют при 8000 об/мин в течение 20 мин, верхнюю эфирсодержащую фазу удал ют, а осадок перераствор ют в 0-.05 М трис-HCI буфере (рН 8,0) из расчета 1/10 от начального объема .

Материал, содержащий термостабильный энтеротоксин, обессоливают и фракционируют на хроматографической колонке с сефадексом G-25, а термолабильный энтеротоксин - на колонке с сефадексом G-150. Элюцию провод т 0,15 н NaCI (рН 7,0), скорость удалени  жидкости из колонки 2-3 капли в минуту. Элюатсобираютфракци ми по 5 мл. Количество белка в каждой фракции определ ют на спектрофотометре СФ-26 при 260 и 280 нм по методу Варбурга и Христиана.

Дл  электрофоретического контрол  гомогенности выделенных фракций их развод т в 50 мкл фосфатно-солевого буфера, содержащего 5% ДСН.

Биологическую активность выделенных фракций термостабильного энтеротоксина определ ют с помощью теста анальной пробы на мышатах-сосунах, а термолабильного - с помощью отека лап белых мышей и Бик- кентеста.

Белковые фракции, обладающие наибольшей биологической активностью, концентрируют против ПЭГ до 1/10 объема и используют дл  конъюгации.

Готов т смесь термостабильного и термолабильного энтеротоксинов в фосфатно- солевом буфере рН 7,0 в соотношении 100:1. К смеси добавл ют 25%-ный раствор глутарового альдегида до конечной концентрации 2 г/л, полученную смесь выдерживают в течение 2 ч при 20°С и получают крнъюгат. Конъюгат диализируют против фосфатно-солевого буфера рН 7,0 в течение 20 ч при 4°С. Провод т повторный диализ против 0,05 М трис-HCI буфера рН 8,0 в течение 20 ч при 4°С.

Количество св занного термостабильного энтеротоксина в конъюгате определ ют посредством суммировани  возрастани  количества белка (по Лоури), присутствующего в диализате сверх количества термолабильного энтеротоксина, первоначально добавленного в конъюгат. Дл  увеличени 

иммуногенной активности полученного конъюгата к нему добавл ют раствор трис- HCI буфера, содержащего бычий сывороточный альбумин из расчета 10 г/л, рН 8,0.

Полученный конъюгат при необходимости концентрируют до 1/10 объема против ПЭГ.

Контроль стерильности и безвредности полученного препарата осуществл ют по общеприн той методике.

Иммуногенность препарата вместе с адъювантом (раствор гидроокиси алюмини ) провер ют на белых мышах массой 16 г. Вакцинирующий материал ввод т двукратно , подкожно в дозе 0,3 и 0,5 мл с интервалом в 7 дней. Через 20 дней после второй прививки животных заражают летальными дозами термостабильного и термолабильного энтеротоксинов и культурами гомологических и гетерологических штаммов E.coli.

Вакцинированные животные в 95% случаев про вл ют устойчивость против 2 ДЛМ токсинов и ЛДбО культур гомблогичного и в 80% случаев защита оставила против 2 ДЛМ токсинов и ЛДбо культур гетерологичных штаммов Е.соП.

В контрольных группах мыши, которых заражают 2 ДЛМ токсинов и ЛДво культур, пали в 90% случаев.

Сенсибилизирующую активность пр ё- пйрата исследуют в тесте активной системной анафилаксии на морских свинках по методу Немова.

Пример 2. Культивирование токси- генных штаммов Е.со, получение нативных токсинов, их концентрирование и очистку, контроль гомогенности и определение биологической активности провод т аналогично примеру 1.

Готов т смесь термостабилъното и термолабильного энтеротоксинов в фосфатно- солевом буфере в соотношении 50:1 (рН 7,0). К смеси добавл ют 25%-ный раствор глутарового альдегида до конечной концентрации 2 г/л, полученную смесь выдерживают при 20°С в течение 2 ч. Полученный конъюгат диализируют против фосфатно-солевого буфера (рН 7,0) в течение 20 ч при 4°С. Повторно диализируют против 0,05 М трис- HCI буфера (рН 8-0) в течение 20 ч при 4°С. В конъюгат добавл ют трис-HCI буфер, содержащий БСА.

Пример 3. Культивирование кишечной палочки продуцирующей термостабильный и термолабильный энтеротоксины, получение и очистку, определение гомогенности и биологической активности осуществл ли как в примере 1. В данном примере готов т смесь термостабильного и термолабильного энтеротоксинов в соотношении 150:1 в фосфатно-солевом буфере рН 7,0 Конъюгацию провод т аналогично примеру 1.

5Пример 4. В примере 4 изменена

концентраци  глутарового альдегида с 2 г/л до 1,5 г/л. Смесь термостабильного и термолабильного энтеротоксинов готов т в соотношении 100:1 в фосфатно-солевом буфере

0 рН 7,0. В дальнейшем конъюгацию провод т аналогично примерам 1-3.

Пример 5. В этом примере концентраци  глутарового альдегида вз та 2,5 г/л. Термостабильный и термолабильный энте5 ротоксины берут в соотношении 100:1. Режим конъюгации тот же, что и в примере 1. Данные, иллюстрирующие выше изложенные примеры, приведены в табл. 1-6. Изменение соотношени  компонентов

0 питательной среды, времени культивировани  бакмассы и изменение температуры культивировани  оказывают существенное значение на содержание энтеротоксинов в культуральной жидкости.

5 П.р и м е р 6. Культуры кишечной палочки , выделенные от павших животных, продуцирующие термостабильный и термолабильный энтеротоксины, высевают раздельно на питательную среду, содержащую сле0 дующие компоненты: перевар Хоттингера - 80 мл (содержание аминного азота 1000 мг%), калий фосфорнокислый однозаме- щенный 3,0 г; натрий фосфорнокислый од- нозамещенный 6,0 г; сульфат магни  3,0 г;

5 глюкоза 5,0 г; вода дистиллированна  до литра, рН 7,14 и культивируют в течение 18 ч при 36°С в услови х аэрации. Бульонные культуры центрифугируют при 6000 об/мин при 2°С в течение 40 мин и получают над0 осадочную жидкость, содержащую энтеротоксины .

Количество белка в на досад очной жидкости , содержащей энтеротоксины, составл ет 9000 мкг/мл.

5

Пример 7, Культуры кишечной палочки высевают раздельно на питательную среду , содержащую следующие компоненты: перевар Хоттингера 250 мл (содержание

0 аминного азота 1000 мг%), калий фосфорнокислый однозамещенный 3,8 г; натрий фосфорнокислый однозамещенный 6,8 г; магний сернокислый 3,8 г; глюкоза 7,0 г: вода дистиллированна  - до литра, рН сре5 ды 7,14 и культивируют в течение 24 ч при 38°С, в услови х аэрации, Бульонные культуры центрифугируют при 6000 об/мин при 3°С, в течение 40 мин и получают надосадоч- ную жидкость, содержащую энтеротоксины. Количество белка в надосадочной жидкости,

содержащей энтеротоксины, составл ет 7000 мкг/мл.

Максимальное содержание белка в над- осадочной жидкости (11000 мкг/мл) отмечаетс  при оптимальном соотношении компонентов питательной среды, времени и температуре культивировани , как в приме- ре 1, а наименьшее содержание белка - при соотношении компонентов, как в примере 7.

Изменение режима центрифугировани  бульонных культур с 6000 до 8000 об/мин, позвол ет добитьс  более полного осаждени  бактериальных частиц. Увеличение скорости центрифугировани  более 8000 об/мин не оказывает существенного вли ни  на полноту осаждени . Поэтому-оптимальным режимом центрифугировани  выбрана скорость 8000 об/мин.

Пример 8. После центрифугировани  и определени  биоактивности термостабильного и термолабильного энтеротокси- нов, в надосадочной жидкости по методике Романенковой Н.И. и в Биккен-тесте, токси- носодержащий материал осаждают медленным добавлением сульфата аммони  до 65% насыщени  дл  термолабильного и до 90% насыщени  дл  термостабильного зн - теротоксинов и оставл ют на 18 ч при 2аС. Осадок, содержащий термостабильный эн- теротоксин, перераствор ют в 0,05 М трис- НС1 буфере (рН 8,0), а термолабильный - в дистиллированной воде из расчета 1/10 от начального объема. Растворенные осадки диалиэируют против дистиллированной воды в течение 48 ч.

После определени  гомогенности полученных энтеротоксинов с помощью диск- электрофореза в полнакриламидном геле готов  смесь термостабильного и термолабильного энтеротокеинов в соотношении 100:1 в фосфатно-солевом буфере (рН 7,0). К смеси добавл ют 25%-ный раствор глутаро- вого альдегида до конечной концентрации 2 г/ , реакционную смесь выдерживают 1 ч при 25°С. Конъюгационную смесь подвергают диализу против фосфатно-солевого буфера (рН 7) в течение 18ч при 4°С.

Уменьшение времени высаливани  с 20 до 18 ч привадит, в некоторых случа х, к недоосаждению части энтеротоксинов. Диализ перерастворенных осадков токсинов, в течение 48 ч позвол ет добитьс  полного освобождени  материала от сернокислого аммони . Полноту освобождени  от следов сульфат-ионов контролируют в реакции с 10%-ным BaCla.

Выдерживание реакционной смеси, энтеротоксинов и глутарового альдегида, в течение 1 ч, достаточно дл  получени  конъюгата, однако инкубаци  смеси в течение 2 ч позвол ет добитьс  более полного соединени  термостабипьного и термолабильного энтеротоксинов.

Увеличение температуры при реакции 5 конъюгации с 20 до 25°С существенно не вли ет на скорость св зывани  термостэ- бильного и термолабильного энтеротоксинов , однако, увеличение или уменьшение данного режима температур ведет к задер10 жке конъюгации и требует увеличени  времени реакции.

Конъюгат термостабильного и термолабильного энтеротоксинов представл ет собой прозрачную жидкость бурого цвета (рН

5 8,0) без запаха, он не токсичен и безвреден дл  животных, не обладает анафилактоген- ными свойствами. Контроль стерильности и безвредности полученного конъюгата осуществл ют по общеприн той методике.

0 Полученный конъюгат по своей биологической активности значительно превосходит прототип. Предлагаемый способ ускор ет получение препарата в 3 раза (вместо 260 ч, около 70). Он существенно сокра5 щает рабочее врем , зан тое соответствующими операци ми. Число процедур минимально , они лишены трудоемкости. Упрощена и ускорена процедура получени  и очистки энтеротоксинов, а также самой

0 конъюгации.

Предлагаемый способ не нуждаетс  в дорогосто щем и мало доступном оборудовании и реактивах: амберлит НАД-2, сефа- декс G-25. ДАН сефацил, 1 этил 3 /3 диметил5 аминопропил/ карбодиимид и др. Привитые конъюгатом лабораторные животные про в- « л ют высокую активность (95%) против ле- f тальных доз термолабильного и термостабильного энтеротоксинов и культур гомоло0 гичных и гетерологических штаммов кишечной палочки.

Claims (1)

1. Формула изобретени  Способ получени  конъюгированного

   5 энтеротоксина Eschertchla colt, включающий культивирование штамма-продуцента в жидкой питательной среде, отделение ток- синосодержащего супернатанта центрифугированием с последующим осаждением,

   0 очисткой и конъюгацией энтеротоксина сшивающим агентом, отличающийс  тем, что, с целью повышени  иммуногенно- сти целевого продукта, ускорени  и упрощени  способа культивирование осущест5 вл ют в течение 18-24 ч в жидкой питательной среде следующего состава, г/л: перевар Хоттингера 80-250; сернокислый магний 3,0-3,8; однозамещенный фосфорнокислый натрий 6,0-6,8, однозэмещенный фосфорнокислый калий 3,0-3,Р. глюкоза 5 0-7,0;

   дистиллированна  вода до 1 л, токсиносо- держащий супернатант дел т на две части, из одной осаждают термолабильный токсин раствором сульфата аммони  при 60-65% насыщени , из другой - термостабильный токсин при 85-90% насыщени , каждый из полученных преципитатов выдерживают 18-20 ч при 2-4°С в режиме встр хивани , центрифугируют при 6000-8000 об/мин в течение 30-40 мин при 2-4°С, далее осадок термостабильного токсина раствор ют в дистиллированной воде, а осадок термолабильного токсина - в 0,05 М трис-НС буфере из расчета 1/10 от начального объе

   5

   ма, очистку токсинов провод т диализом, затем их объедин ют в объемном соотношении 100:1 соответственно в фисфатном буфере рН 7,0-7,2, конъюгацию провод т 25%-ным раствором глутарового альдегида при конечной концентрации 2 г/л при 20- 25°С в течение 1-2 ч, далее конъюгат двукратно диализуют против фосфатного буфера рН 7,0-7,2 в течение 18-20 ч при 2-4°С, а затем против 0,05 М трис-HCI буфера в течение 18-20 ч при 2-4 С, в полученный конъюгат добавл ют раствор трис-HCI буфера, содержащий бычий сывороточный альбумин в концентрации 10 г/л.

   Таблица 1

   Вли ние соотношени  термостабильный/термола- бильный энтеротоксины на % содержаний термостабильного знтеротоксина в конечном конъюгате.

   Вли ние соотношени  глутаральдегид/общий белок

   на % термостабильного энтеротоксина в конечном

   конъюгате

   Таблица 2

   Иммуногенна  активность конъюгированного энтеро- токсина E.coll в сравнении с энтеротоксинами гомологичных штаммов E.coll и прототипом

   Сравнение токсинообразовани  на предлагаемой

   среде и известных в литературе средах: Финкельштейна , бульоне Хоттингера и среде Альдерете

   Вли ние режимов центрифугировани  на полноту осаждени  бактериальных клеток

   Вли ние времени конъюгации на % термостабильного энтеротоксина E.coli в конечном конъюгате

   Таблица 3

   Таблица 4

   Таблица 5

   Таблица 6

   Продолжение табл.6.