SU1613490A1 - Способ получени эндонуклеазы рестрикции Н @ а I - Google Patents
Способ получени эндонуклеазы рестрикции Н @ а I Download PDFInfo
- Publication number
- SU1613490A1 SU1613490A1 SU884471816A SU4471816A SU1613490A1 SU 1613490 A1 SU1613490 A1 SU 1613490A1 SU 884471816 A SU884471816 A SU 884471816A SU 4471816 A SU4471816 A SU 4471816A SU 1613490 A1 SU1613490 A1 SU 1613490A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- enzyme
- hha
- nacl
- biomass
- restriction
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биохимии и биотехнологии, в частности к производству ферментов из микробных клеток, а именно к способам получени эндонуклеазы рестрикции HHA 1 из биомассы HAEMOPHILUS HAEMOLUTICUS, и может быть использовано в генной инженерии. С целью упрощени процесса и повышени качества целевого фермента исходную биомассу HACMOPHILUS HAEMOLUTICUS ВКПМ В-4070 разрушают ультразвуком. Полученный клеточный гомогенат фракционируют в двухфазной системе, содержащей 7%-ный полиэтиленгликоль и 2%-ный декстран в присутствии 38-45 мМ NACL при PH 7,6, верхнюю полиэтиленгликолевую фазу, содержащую целевой фермент, нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой Р11, а элюцию белков провод т линейным градиентом концентрации NACL от 0,2 до 1,0 М в буфере. Выход рестриктазы HHA 1 составл ет 4-6 тыс. ед. акт/г биомассы с концентрацией 25 тыс. ед. акт/мл. В готовом продукте примесей нуклеаз не обнаруживаетс при обработке ДНК 15-кратным избытком фермента в течение 20 ч.
Description
Изобретение относитс -к технической биохимии и биотехнологии, в частности к производству ферментов из микробных клеток, и может быть использовано дл различных молекул рно- био огических и генноинженерных работ .
1елью изобретени нч етс упрощение процесса и повышени качества целевого продукта.
Способ осуществл ют следующим образом .
Биомассу Haemophilu;; haemolyticus (ВКГГМ В-4070) разрушают с помощью ультразвука, затем к кле14)чному гомо- генатудобавл ют концентрированную;
смесь полиэтиленгликол и декстрана в калийфосфатном буфере рН 7,6, до конечной концентрации в смеси поли- этиленгликол 7,0%, декстрана 2,0% и NaCl до концентрации 38 - 45 мМ. После тщательного перемещ11вани смесь центрифугируют при 5 - 10000 g в течение 10 - 20 мин, верхнюю полиэти- ленгликолевую фазу, содержащую целевой продукт, собирают, разбавл ют буфером и нанос т на колонку с фосфо- целлюлозои Р11. Провод т элюц}1ю. белков линейным градиентом концентрации NaCl от 0,2 до 1,0 М в буфере. Фрак- 1ЩИ, содержащие энцонуклеазу Шла I, собирают и концентрируют диализом
О5
ОО 4
;о
против 50%-ного раствора глицерина в буфере. Выход фермента из 10 г клеток 40 - 60 тыс.ед.акт. Хранитс препарат при температуре минус (20+2) С в течение 12 мес без снижени активности . Свободен от значительных примесей неспецифических нуклеаз: обработка ДИК фага Д не менее чем 15- кратным избытком фермента в течение длительного времени (17 - 20 ч) при 37°С не измен ет спе11}{фической картины гидролиза .
Пример 1. Все операции по очистке Фермента провод т при (414) С AKTUiiH- CTb рестриктазы Hha 1 тестируют методом гидролиза ДНК фага в типичных услови х с последую1 и1м разделением полученных фрагментов электрофорезом в 1,8%-ной агарозе. За единицу активности принимают мини- мпльиое количество фермента, необходимое дл полного специфического гидролиза 1 мкг ДНК фага Д в течение 1 ч при (37±1)°С.
10 г замороженной биомассы Наето- philus haemolyticus ВКПМ В-4070 суспендируют в 20 МП 10 мМ калийфосфат- ного буфера рН 7,6, содержащего 7 i 2-меркаптоэтанол, О, 1 кФ1 ЭДТА (буфер А), добавл ют тритон Х-100 до конечной концентрации 0,1% и обрабатывают ультразвуком при 20 кГц и амплитуде (17±2) мкм в течение 45 с 10 раз с интервалом 45 с дл охлаждени смеси. К клеточному гомогенату при посто нном перемешивании на магнитной мешалке приливают 30 мл смеси содержащей 21% полиэтиленгликол и 67, декстран, 3,45 мп 1 м раствора NaCl (до конечной концентрации 38 ь и 26,55 мл деионизованной воды. Смес продолжают перемешивать в течение 15 мин, затем .центрифугируют при 5000 об/мин в течение 20 мин. Верхнюю фазу отбирают, разбавл ют в 2,5 раза буфером А и нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой Р11 (1,5x30) см, уравновешенную буфером А. Колонку промывают 50 МП 0,2 М NaCl в буфере А, фермент элюируют линейным градиентом концентрации NaCl от 0,2 до 1,0 II в буфере А. Общий объем градиента 200 МП. Скорость нанесени на колонку, промывки и элюции 20 мл/ч. Собирают фракции по 5 мп и анализируют на активность рестриктазы Hha I отбирают аликвоты дл испытани 5 мкл. Фракции, содержащие
0
5
0
5
0
5
0
5
целевой продукт, которые злюируютс в диапазоне концентра1Ц1Й NaCl 0,52 - 0,62 М, об1,елии:.-1от (V 25 мп), перенос т в диализный мешок и диализу- ют против 300 - 350 мп 50%-ного раствора Глицерина в буфере А. Врем диализа 14 - 17 ч. Выход фермента с операции 60000 ед.акт. Концентраци фермента 15 тыс .ед .акт ./мп . Полученный препарат э}щонуклеазы рестрикции Hha I хран т при (-20)°С в течение 12 мес без снижени активности. Содержание примесей неспецифических нуклеаз в нрепарате оценивают двум методами: обработкой ДНК фага избытками фермента в течение длительного времени и ме годом рестрик1щ -лиги- рование-повторна рестрикци . Установлено , что при обработке 1 мкг ДНК фага Д 15 ед.акт. препарата рестриктазы Hha I (15-кратным избытком) в течение 20 ч при не измен етс четка специфическа картина гидролиза . Фрагменты, получаемые при обработке . 1 мкг ДНК фага 3 ед.акт. препарата Hha Т в течение 17 ч при , линируютс ДНК-лигазой Т4 не менее чем на 90% и полностью cneiiji- сЬически гидролизуютс при обработке препаратом Hha I.
Пример 2. Эндонукпеазу рестрикции Hha I вьщел ют из 10 г клеток аналогично примеру 1 за искпючением того, что к клеточному гомогенату приливают 4,5 мл 0,9 М NaCl (до конечной концентрации 45 мМ) и 25,5мл деионизованной воды. Выход препарата фермента из 10 г 48- тыс. ед.акт.
Четка специфическа картина гидролиза наблюдаетс при обработке 1 мкг ДНК фага 15 ед.акт. препарата в течение 17 ч при 37 С.
Фрагменты, полученные при обработке 1 мкг ДНК (Ъага 6 ед.акт. препарата в течение 17 ч при 37°С лигируют- с ДИК-лигазой Т4 на 90% и полностью специфически гидролизуютс при обработке препаратом рестриктазы Hha I.
Пример 3. Эндонукпеазу рестрикции Hha I вьдел ют из 10 г клеток аналогично примеру 1 за исключением того, что к клеточному гомогенату приливают 4,5 мп 1 М NaCl (до конечной концентрации 50 М) и 25,5 мп деионизованной воды. Вьгход препарата фермента из 10 г клеток 48 тыс.ед.акт. с концентрацией 9,5 тыс.ед.акт./мп.
516
При обработке 1 мкг ДИК фага
10 - 13 ед.акт. препарата в течение 17 ч при четкой картины рестрикции не наблюдаетс , полосы фрагментов размыты, что указывает на наличие заметных примесей эндонуклеаз.
Пример 4. Эндонуклеазу рест- рики11И Hha I вьиел ют из, 10 г клеток аналогично примеру 1 за исключением того, что к клеточному гомогенату приливают 3,5 мл 0,9 М NaCl (до конечной концентрации 35 мМ) и 26,5 мл деионизованной воды. Выход препарата фермента из 10 г клеток 30 тыс.ед.акт. с концентрацией 8000 ед/мл. Примеси неспе151фических эндонуклеаз, зкзо- нукпеаз и фосфатаз в препарате не обнаруживаютс .
06
Claims (1)
- Формула изобретени Способ получени знпонуклеазы рестрикции Hha I, предусматривающий разрушение биомассы продуцента Нае- mophilus haemolyticus ультразвуком, фракционирование полученного клеточного гомогената, хроматографию на фосфоцеллипозе Р11 и диализ, о т личающийс тем, что, с целью упрощени процесса и повышени качества целевого фермента, в качестве продуцента используют пггамм Haenophilus haemolyticus ВКПМ ВА070 , фракционирование клеточного гомогената провод т при рН 7,6. двухфазной системе, содержащей полиэтиленгликоль и 2%-ный декстран D присутствии 38 - А5 мМ NaCl.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884471816A SU1613490A1 (ru) | 1988-06-06 | 1988-06-06 | Способ получени эндонуклеазы рестрикции Н @ а I |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884471816A SU1613490A1 (ru) | 1988-06-06 | 1988-06-06 | Способ получени эндонуклеазы рестрикции Н @ а I |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1613490A1 true SU1613490A1 (ru) | 1990-12-15 |
Family
ID=21394601
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884471816A SU1613490A1 (ru) | 1988-06-06 | 1988-06-06 | Способ получени эндонуклеазы рестрикции Н @ а I |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1613490A1 (ru) |
-
1988
- 1988-06-06 SU SU884471816A patent/SU1613490A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Внотсхнологи , 1986, Р 1, с. 26- 30. J. Мо1 . Biol., 1976, V, 103, р. 199-208. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR0139209B1 (ko) | 단백질 정제방법 | |
Taipa et al. | Purification of lipases | |
Pirrotta et al. | [11] General purification schemes for restriction endonucleases | |
US5006472A (en) | Enzymatic purification process | |
SU1613490A1 (ru) | Способ получени эндонуклеазы рестрикции Н @ а I | |
Bode et al. | Crude aminoacylase from Aspergillus sp. is a mixture of hydrolases | |
RU2412996C2 (ru) | Бутинол i эстераза | |
SU1634713A1 (ru) | Способ получени эндонуклеазы рестрикции @ | |
JP2000509980A (ja) | アミンアシラーゼ活性を有するバイオ触媒 | |
US4581332A (en) | Novel alkaline protease | |
KR0180103B1 (ko) | 바실러스 서브틸리스 속 균주 유래의 혈전용해효소 | |
DK157036B (da) | Endo-deoxyribonuklease a samt fremgangsmaade til fremstilling af samme | |
JPH03505815A (ja) | 高純度ヘパリナーゼの大規模精製法 | |
RU2136749C1 (ru) | Способ получения эндонуклеазы рестрикции hinf i | |
RU2233877C2 (ru) | Способ получения эндонуклеазы рестрикции sst 12 i | |
RU2773954C1 (ru) | Способ получения рекомбинантного белка нуклеазы бактерий Serratia marcescens для гидролиза нуклеиновых кислот | |
EP0059182B1 (en) | A process for isolating aminoacylase enzyme from a mammal kidney extract | |
JPS6140789A (ja) | 新規制限酵素及びその製造方法 | |
SU1487817A3 (ru) | Способ выделения карбоксипепти|дазы в из поджелудочной железы млекопитающих животных | |
RU2184777C2 (ru) | Способ получения эндонуклеазы рестрикции bse 21 i | |
JPS5838149B2 (ja) | コレステロ−ル定量用酵素の精製方法 | |
SU1655986A1 (ru) | Способ выделени эндонуклеазы рестрикции Ара 1 | |
Schär et al. | Purification and properties of an acetyl specific carboxylesterase from Nocardia mediterranei | |
RU1796676C (ru) | Способ получени рестриктирующей эндонуклеазы SaU 6782 | |
KR0180570B1 (ko) | 신규한 플라스미드 pKLE와 이를 이용한 리파제의 대량생산방법 |