SU1578192A1 - Способ выращивани клеток печени - Google Patents
Способ выращивани клеток печени Download PDFInfo
- Publication number
- SU1578192A1 SU1578192A1 SU884416107A SU4416107A SU1578192A1 SU 1578192 A1 SU1578192 A1 SU 1578192A1 SU 884416107 A SU884416107 A SU 884416107A SU 4416107 A SU4416107 A SU 4416107A SU 1578192 A1 SU1578192 A1 SU 1578192A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cells
- liver
- hepatocytes
- matrix
- carbon sorbent
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии и может быть использовано дл выращивани культур клеток печени, пригодных дл трансплантации в цел х коррекции печеночной недостаточности. Цель изобретени - повышение эффективности прикреплени , роста и функционировани клеток. Дл культивировани изолированных клеток печени используют носитель из нетканного распущенного углеродного сорбента, покрытого коллагеном или полилизином. Толщина носител в пределах 3-10 мм, а объем сорбционных пор углеродного сорбента по бензолу 0,5-0,8 см 3/г. Выращивают клетки в глубинных услови х. Использование способа увеличивает в 6-10 раз количество культивируемых гепатоцитов, а выращиваемые на матрице гепатоциты функционируют как дифференцированные клетки печени.
Description
Изобретение относитс к биотехнологии и может быть использовано дл выращивани культур клеток печени , пригодных дл трансплантации в цел х коррекции печеночной недостаточности .
Цель изобретени - повышение эффективности прикреплени , роста и функционировани клеток.
Носитель представл ет собой углеродный сорбент низкой емкости (объем сорбционных пор по бензолу 0,5- 0,8 см5/г), структурированный в виде войлока толщиной 3-10 мм. Носитель стерилизуют кип чением в дистиллированной воде, пропитывают 0,02% раствором коллагена или полилизина , высушивают в вакуумном сушильном шкафу стерильно, хран т при 4°С з среде дл культивировани .
Клетки выделенные из печени млекопитающих энзиматическим методом, суспендируют в питательной среде в концентрации 10 млн/мл, нанос т капл ми на предварительно увлажненный питательной средой носитель.
Подготовленную таким образом матрицу с клетками перенос т на чашки Петри, выдерживают 15-20 мин СОд,- инкубаторе, добавл ют питательную среду в избытке и продолжают культивирование в атмосфере с 5-7% СО с ежедневной сменой среды.Неприкре- пившкес клетки удал ют с первой сменой среды. Увеличение площади поверхности за счет применени объСП
-vl
00
со
емных волокнистых материалов позвол ет повысить полезную площадь культивировани без увеличени обще.го объема аппаратуры, а также улучшить кооперативное взаимодействие культивируемых клеток печени. При этом особое значение имеет покрытие волокнистых материалов коллагеном или полилизином, улучшающим адгезию ге- патоцитов, а также емкость углеродного сорбента и толщина структурированной матрицы.
Способ иллюстрируетс следующими примерами.
Пример 1. Клетки печени выдел ют в стерильных услови х из ткани печени крысы последовательно проточной перфузией раствором: 0,027 М цитрат натри , 0,9%-ный хлористый натрий , 0,05%-на глюкоза, 5 мг/л гепарин (рН 7,35), затем рециркул цией 0,05%-ной коллагеназы на растворе Хенкса. Из суспензии изолированных клеток печени гепатоциты осаждают центрифугированием 50g 3 мин, суспендируют в среде дл культивировани в концентрации 10 млн/мл. Среда дл культивировани имеет следующий состав: среда Игла 10%-ный гид- ролизат лактальбумина, 20%-на сыворотка крупного рогатого скота, антибиотики (по 100 мкг/мл среды пенициллина и стрептомицина).
Матрицу готов т следующим образом
Углеродный сорбент с объемом сорб- ционных пор по бензолу 0,5 см3/г, структурированный в виде войлока, толщиной 3 мм стерилизуют кип чением в дистиллированной воде, пропитывают 0,02%.-ным раствором коллагена , высушивают в стерильных услови х в вакуумном сушильном шкафу при 37 С. Перед нанесением клеток матрицы перенос т в сосуды дл культивировани (чашки Петри), увлажн ют средой дл культивировани , избыток которой удал ют с помощью фильтровальной бумаги .
Суспензию гепацитов нанос т на марицу с помощью пипетки капл ми из расчета 100 мкл на 10 мг сорбента, выдерживают 15-20 мин при 37°С в С0Ј-инкубаторе, после чего в сосуды дл культивировани добавл ют избыток среды и продолжают инкубацию в подход щих услови х. Среду мен ют обычным способом ежедневно. Об эффективности прикреплени гепатоцитов су
0
5
0
5
0
5
40
45
50
55
д т по количеству открепившихс клеток, вы вл емых в среде на 2-3-тьи сутки после нанесени .
Количество неприкрепившихс клеток в % от числа нанесенных составл ет соответственно на 2-е и 3-й сутки культивировани 10,5 и 0,9%. В данном варианте на 1 мг матрицы культивируют 6,5-7,5x10 гепатоцитов. Микроскопирование разъединенных на отдельные волокна матриц показывает, что гепатоциты растут хорошо, часть из них прикреплена непосредственно к волокнам, а основна масса клеток растет в виде агрегатов различных размеров в межволоконном пространстве .
Пример 2. Услови проведени эксперимента такие же, как и в примере 1, но матрицу готов т следующим образом: стерилизованный кип чением войлочный сорбент с объемом сорбционных пор по бензолу 0,5 см3/г, толщиной 3 мм пропитывают 0,02%-ным раствором полилизина и высушивают стерильно в вакуумном сушильном щка- фу при 37°С. Количество клеток, не прикрепившихс при нанесении и вы вленных в среде дл культивировани на 2-е и 3-й сут, составл ет соответственно 8,5 и 1% от числа нанесенных .
В данном варианте на 1 мг матрицы , покрытой полилизином, культивируют 7-8 х 10 гепатоцитов.
Пример 3. Услови проведени эксперимента соответствуют примеру 1, а в качестве матрицы используют углеродный сорбент с объемом сорбционных пор по бензолу 0,5 см3/г, (структурированный в виде войлока толщиной 3 мм, но без предварительного покрыти Коллагеном или полилизином.
При этом количество клеток, вы вленных в среде дл культивировани на 2-е и 3-й сут после нанесени , составл ют соответственно 32 и 35% от числа нанесенных. Следовательно , данный вариант матрицы , не покрытой коллагеном или полилизином, непригоден дл культивировани гепатоцитов.
Пример 4. Услови проведени эксперимента соответствуют примеру 1 за исключением толщины матрицы, составл ющей 5 мм и объемом сорбционных пор по бензолу 0,5 см3/г. Количество гепатоцитов, не прикрепившихс при
515
нанесении и вы вленных в среде дл культивировани , составл ет соответственно 8 и 3% от числа нанесенных . В данном варианте на 1 мг матрицы , представл ющей собой структурированный в виде войлока толщиной 5 мм углеродный сорбент, культивируют 7,5- 8,5 х 10 гепатоцитов.
Пример 5. Услови проведени эксперимента соответствуют примеру 1 за исключением толщины матрицы , составл ющей 8-10 мм, из углеродного сорбента с объемом сорбционных пор по бензолу 0,5 см3/г. При этом количество гепатоцитов, не прикрепившихс при нанесении и вы вленных в среде дл культивировани на 2-е и 3-й сут культивировани , составл ет соответственно 12 и 19% от числа нанесенных, а количество культивируемых гепатоцитов 5,5-6,0 х 10 на 1 кг матрицы.
Пример 6. Услови проведени эксперимента, как в примере 1, за исключением того, что углеродный сорбент , используемый в качестве матрицы , обладает объемом сорбционных пор по бензолу 0,8 см3/г и толщиной 3 мм. Количество неприкрепившихс при нанесении и вы вленных в среде дл культивировани гепатоцитов составл ет на 2-е и 3-й сут культивировани . 5,5 и 0% от числа нанесенных. В дан- ном варианте на 1 мг матрицы культивируют 9-10 х 10 гепатоцитов.
Пример 7. Услови проведени эксперимента соответствуют примеру 1 за исключением того, что углеродный сорбент, используемый в качестве матрицы, обладает объемом сорбционных пор по бензолу 1,2 см3/г и толщиной 3 мм. Количество не прикрепившихс при нанесении и вы вленных в среде дл культивировани ге
0
5
0
1
5
0
5
0
926
патоцитов составл ет 23,5, в последующем также отмечаетс открепление значительного числа клеток.
Таким образом, использование углеродных сорбентов низкой емкости,структурированных в виде войлока толщиной 3-10 мм, покрытого предварительно коллагеном или полилиэином, позвол ет осуществить прикрепление и глубинное культивирование значительного количества изолированных клеток печени в малом объеме носител . Количество клеток печени, культивируемых по предлагаемому способу, в 6-10 раз выше, чем в известных способах, основанных на выращивании клеток на плоских или сферической формы подложках . Культивируемые на матрицах гепатоциты могут быть трансплантированы в брюшную полость сингенным животным с экспериментальной желтухой , что позвол ет также оценить жизнеспособность и функциональную активность высокодифференцированных клеток печени, растущих на матрицах , по коррекции печеночной недостаточности у животных-рецепиентов.
Claims (1)
- Формула изобретениСпособ выращивани клеток печени путем глубинного культивировани в питательной среде, отличающийс тем, что, с целью повышени эффективности прикреплени , роста и функционировани клеток, культивирование ведут на матрицах толщиной в 3-10 мм, выполненных из не- тканого распушенного углеродного сорбента с объемом сорбционных пор по бензолу 0,5-0,8 см3/г, предварительно покрытого коллагеном или полилизином.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884416107A SU1578192A1 (ru) | 1988-04-26 | 1988-04-26 | Способ выращивани клеток печени |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884416107A SU1578192A1 (ru) | 1988-04-26 | 1988-04-26 | Способ выращивани клеток печени |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1578192A1 true SU1578192A1 (ru) | 1990-07-15 |
Family
ID=21371140
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884416107A SU1578192A1 (ru) | 1988-04-26 | 1988-04-26 | Способ выращивани клеток печени |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1578192A1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2563806C2 (ru) * | 2010-08-14 | 2015-09-20 | Цитонет Гмбх Унд Ко. Кг | Способ получения дезинфицированных суспензий клеток человека |
MD1171Z (ru) * | 2016-12-23 | 2018-02-28 | Государственный Медицинский И Фармацевтический Университет "Nicolae Testemitanu" Республики Молдова | Метод обработки внеклеточного матрикса печени для повышения клеточной адгезии |
-
1988
- 1988-04-26 SU SU884416107A patent/SU1578192A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Литвин Д.Ж. Способ культивировани диплоидных клеток на целлюлозных волокнах (За вка РСТ№ 85/05375, 05.12.1 985,№ 26) - Изобретени мира,1 1986, в 62, 7. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2563806C2 (ru) * | 2010-08-14 | 2015-09-20 | Цитонет Гмбх Унд Ко. Кг | Способ получения дезинфицированных суспензий клеток человека |
US10017742B2 (en) | 2010-08-14 | 2018-07-10 | Cytonet Gmbh & Co. Kg | Process for the preparation of disinfected human cell suspensions |
MD1171Z (ru) * | 2016-12-23 | 2018-02-28 | Государственный Медицинский И Фармацевтический Университет "Nicolae Testemitanu" Республики Молдова | Метод обработки внеклеточного матрикса печени для повышения клеточной адгезии |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5108923A (en) | Bioadhesives for cell and tissue adhesion | |
Gerlach et al. | Bioreactor for a larger scale hepatocyte in vitro perfusion | |
US4024020A (en) | Method of cell culture on polyacrylonitrile surface | |
KR20000057136A (ko) | 연골세포에 전단류 응력의 인가 | |
DE3751843T2 (de) | Herstellung von körperorganen durch kontroliertes zellwachstum auf künstlicher matrix | |
Yanagi et al. | A packed-bed reactor utilizing porous resin enables high density culture of hepatocytes | |
Ohshima et al. | Packed‐bed type reactor to attain high density culture of hepatocytes for use as a bioartificial liver | |
US4149936A (en) | High surface low volume fungal biomass composite | |
Yagi et al. | Rapid formation of multicellular spheroids of adult rat hepatocytes by rotation culture and their immobilization within calcium alginate | |
Nilsson | Microcarrier cell culture | |
Gerlach et al. | Comparison of hollow fibre membranes for hepatocyte immobilisation in bioreactors | |
Ogawa et al. | Production of kojic acid by membrane-surface liquid culture of Aspergillus oryzae NRRL484 | |
US4656130A (en) | Collagen coated cell growth plates | |
SU1578192A1 (ru) | Способ выращивани клеток печени | |
CN101538552A (zh) | 一种大鼠肝细胞分离培养方法 | |
US8592203B2 (en) | Selective siliceous bioreactor | |
CN1321175C (zh) | 一种用于大规模培养细胞的微载体 | |
CN116042516A (zh) | 一种从人诱导性多能干细胞分化的心肌细胞球及其制备方法和应用 | |
JPH11505120A (ja) | 多孔性基質に固定化された植物生細胞において二次代謝産物を生産する方法、および、物品 | |
JP3219305B2 (ja) | 動物細胞固定化用担体及びそれを用いる細胞培養方法 | |
JPH0833475A (ja) | 付着性動物細胞の培養基体 | |
SU1751200A1 (ru) | Способ фиксации первичных гепатоцитов дл экстракорпорального контура искусственной печени | |
CN116574671B (zh) | 一种hek293细胞培养基及其应用 | |
JPS6131085A (ja) | 固定化微生物菌体の製造法 | |
KR100231279B1 (ko) | 치주조직을 복원하기 위한 골아세포 이식용 조직성장인자를 함유한 생분해성 폴리사카라이드 스폰지제제 |