SE430753B - COMBINED HAEMOPHILUS INFLUENZAE-BORDETELLA PERTUSSIS-VACCIN - Google Patents
COMBINED HAEMOPHILUS INFLUENZAE-BORDETELLA PERTUSSIS-VACCINInfo
- Publication number
- SE430753B SE430753B SE7811192A SE7811192A SE430753B SE 430753 B SE430753 B SE 430753B SE 7811192 A SE7811192 A SE 7811192A SE 7811192 A SE7811192 A SE 7811192A SE 430753 B SE430753 B SE 430753B
- Authority
- SE
- Sweden
- Prior art keywords
- prp
- bordetella pertussis
- phosphate
- vaccine
- strain
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/715—Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/099—Bordetella
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/102—Pasteurellales, e.g. Actinobacillus, Pasteurella; Haemophilus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/70—Multivalent vaccine
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Description
7811192-9 Eliminering av föroreningar (proteiner, nukleinsyror och endo- toxiner) i polysackariden PRP utföres genom behandling av den partiellt renade polysackariden med en fosfathaltig adsorbent, som icke absorberar polysackariden under de an- givna betingelserna. Elimination of impurities (proteins, nucleic acids and endotoxins) in the polysaccharide PRP is carried out by treating the partially purified polysaccharide with a phosphate-containing adsorbent which does not absorb the polysaccharide under the specified conditions.
(I) Isolering och rening av polyribosylribitol-fosfat, den kapsulära polysackariden av Haemophilus influenzae typ b Organismer, odlingsmedium och kultur Två stammar av Haemophilus influenzae typ b användes. Rab- stammen erhålles från Grace Leidy, Babies Hospital, Columbia University, New York City, New York. CK-stammen isolerades från en patient vid Waterbury Hospital Waterbury, Conn. Orga- nismerna får passera genom möss flera gånger för att tillför- säkra deras virulens. Organismerna isoleras genom autopsi från hjärnvävnad hos möss, subkultiverade på antingen 3,7%-ígt hjärn-hjärt-infusionsmedium (BHI) (Difco Lab., Detroit, Mich.) eller på 5%-ig BHI-agar kompletterad med 0,01 % nikotinamid- adenin-dinukleotid (NAD) (P-L Biochemicals, Milwaukee, Wis.) och l % (volym/volym) defibrinerat hästblod (Animal Blood Center, Syracuse, N.Y.) och fördelades sedan i portioner om l ml på ampuller, lyofiliserades och förvarades vid -70°C.(I) Isolation and purification of polyribosyl ribitol phosphate, the capsular polysaccharide of Haemophilus influenzae type b Organisms, culture medium and culture Two strains of Haemophilus influenzae type b were used. The rhubarb strain is obtained from Grace Leidy, Babies Hospital, Columbia University, New York City, New York. The CK strain was isolated from a patient at Waterbury Hospital Waterbury, Conn. The organisms are allowed to pass through mice several times to ensure their virulence. The organisms are isolated by autopsy from brain tissue in mice, subcultured on either 3.7% brain-heart infusion medium (BHI) (Difco Lab., Detroit, Mich.) Or on 5% BHI agar supplemented with 0.01 % nicotinamide adenine dinucleotide (NAD) (PL Biochemicals, Milwaukee, Wis.) and 1% (v / v) defibrinated horse blood (Animal Blood Center, Syracuse, NY) and then aliquoted into 1 ml aliquots on ampoules, lyophilized and stored at -70 ° C.
Grundmedium använt för odling av organismerna utgöres av 3,7%-ig BHI. Grundmediet kompletteras med 10 mg NAD och 20 mg hemin (Eastman Kodak, Rochester, N.Y.) per liter. l % (volym/ volym) defibrinerat hästblod tillsättes per 50 ml ympkultur.The basic medium used for culturing the organisms consists of 3.7% BHI. The base medium is supplemented with 10 mg NAD and 20 mg hemin (Eastman Kodak, Rochester, N.Y.) per liter. 1% (v / v) defibrinated horse blood is added per 50 ml of seed culture.
Komplementen nyframställes och filtreras genom en O,45u Nalgene- 7811192-9 filterenhet (Nalge Sybron Corp., Rochester, N.Y.) före använd- ning. För odling av organismen i en 14-liters fermentor komplette- ras mediet ytterligare med 0,5 % glukos.The complements are freshly prepared and filtered through a 0.45u Nalgene filter unit (Nalge Sybron Corp., Rochester, N.Y.) prior to use. For culturing the organism in a 14-liter fermentor, the medium is further supplemented with 0.5% glucose.
För att bereda en kolv av ymporganismer upptinas 1 ml fryst förrådskultur och överföres till 50 ml av det anrikade BHI-mediet kompletterat med defibrinerat hästblod och NAD. Kulturen odlas 8 timmar vid 37°C på en gyroskakanordning med en hastighet av 150 varv/minut. Organismerna sättes i form av ett 1%-igt ymp- ämne till 500 ml-portioner av anrikad BHI-odlingsvätska i 2-liters kolvar, vilka sedan inkuberas vid 37°C med måttlig skakning på en gyroskakanordning under 8 timmar (för isolering av PRP) eller l4 timmar (såsom ympkulturer).To prepare a flask of inoculum, 1 ml of frozen stock culture is thawed and transferred to 50 ml of the enriched BHI medium supplemented with defibrinated horse blood and NAD. The culture is grown for 8 hours at 37 ° C on a gyro shaker at a speed of 150 rpm. The organisms are added in the form of a 1% inoculum to 500 ml portions of enriched BHI culture broth in 2-liter flasks, which are then incubated at 37 ° C with moderate shaking on a gyro shaker for 8 hours (to isolate PRP ) or 14 hours (such as inoculum cultures).
Fermentationen av varje sats i en 14-liters fermentor initieras genom aseptisk överföring av 700 ml av ympkulturen till 7 liter av den anrikade BHI-odlingsvätskan kompletterad med hemin i stället för defibrinerat hästblod. Kulturen upprätthålles kontinuerligt vid 37OiloC. Tanken omröres med en hastighet av 150 varv/minut och ett luftflöde av 0,25 liter luft per liter odlingsvätska per minut upprätthålles. Under odlingen tillsättes 0,001 % av ett silikonantiskummedel (FD-82, Hodag Chemical Corp.) efter behov. Kulturer odlas till den sena logaritmtillväxten (8-10 x 109 odlingen avslutas genom att man tillsätter 0,4 % formaldehyd livsdugliga celler/ml), vanligen ungefär 8 timmar, varefter och förvarar kulturerna över natten vid 4°C.The fermentation of each batch in a 14-liter fermentor is initiated by aseptic transfer of 700 ml of the inoculum to 7 liters of the enriched BHI culture broth supplemented with hemin instead of defibrinated horse blood. The culture is maintained continuously at 37 ° C. The tank is stirred at a speed of 150 rpm and an air flow of 0.25 liters of air per liter of culture fluid per minute is maintained. During culture, 0.001% of a silicone antifoam (FD-82, Hodag Chemical Corp.) is added as needed. Cultures are grown to the late logarithmic growth (8-10 x 109 culture is terminated by adding 0.4% formaldehyde viable cells / ml), usually about 8 hours, after which the cultures are stored overnight at 4 ° C.
Isolering av polyribosylribitol~fosfat (PRP) Odlingsvätska framställd enligt ovan centrifugeras vid 27.000 x g under 30 minuter vid 4oC. Den cellfria överstående vätskan tillvaratages och behandlas på följande sätt: Steg l, etanolütfällning Den överstående vätskan i kulturen försättes med natriumacetat (slutlig koncentration 4 %). Lösningen inställes på pH 6,0-6,2 och 44 liter 3A-etanol tillsättes långsamt under kraftig om- röring vid 4OC. Blandningen inställes på pH 6,8 med isättika och förvaras sedan 12 timmar vid 3°c. Den bildade fäiiningen tillvaratages genom dekantering och centrifugeras sedan för bild- 71811192-9 ning av orent PRP.Isolation of polyribosylribitol phosphate (PRP) Culture fluid prepared as above is centrifuged at 27,000 x g for 30 minutes at 4 ° C. The cell-free supernatant is collected and treated as follows: Step 1, ethanol precipitation The supernatant in the culture is added with sodium acetate (final concentration 4%). The solution is adjusted to pH 6.0-6.2 and 44 liters of 3A-ethanol are added slowly with vigorous stirring at 4 ° C. The mixture is adjusted to pH 6.8 with glacial acetic acid and then stored for 12 hours at 3 ° C. The resulting precipitate is recovered by decantation and then centrifuged to form crude PRP.
Steg 2, Cetavlon (hexadecyltrimetylammoniumbromid)-behandling Fällningen från steg l löses i pyrogenfritt destillerat vatten och centrifugeras för eliminering av återstodenf Den klarbruna lösningen sättes därefter långsamt till 100 ml 10%-ig vatten- lösning av Cetavlon under omblandning (slutlig koncentration 0,5 %). Blandningen omröres en timme och centrifugeras sedan.Step 2, Cetavlon (hexadecyltrimethylammonium bromide) treatment The precipitate from step 1 is dissolved in pyrogen-free distilled water and centrifuged to eliminate the residue. The clear brown solution is then slowly added to 100 ml of 10% aqueous solution of Cetavlon with mixing (final concentration 0.5 %). The mixture is stirred for one hour and then centrifuged.
Fällningen av nukleinsyror och PRP-Cetavlon-komplex blandas med 2 liter 0,3M natriumklorid. Den grumliga lösningen centri- fugeras för eliminering av olösliga material, såsom nuklein- Cetavlon-salt.The precipitate of nucleic acids and PRP-Cetavlon complex is mixed with 2 liters of 0.3M sodium chloride. The cloudy solution is centrifuged to eliminate insoluble materials, such as nucleic Cetavlon salt.
Den överstående vätskan utspädes med en lika stor volymmängd (vatten, varigenom PRP-Cetavlon-saltet utfaller. Blandningen om- röres en timme, fällningen tillvaratages genom centrifugering och löses sedan i 2 liter O,3M natriumkloridlösning. h Steg 3, etanolutfällning Cetavlon och föroreningarna av nukleinsyror och proteiner avlägsnas ytterligare genom etanolutfällning (minst två gånger).The supernatant is diluted with an equal amount of volume (water, whereby the PRP-Cetavlon salt precipitates. The mixture is stirred for one hour, the precipitate is collected by centrifugation and then dissolved in 2 liters of 0.3 M sodium chloride solution. H Step 3, ethanol precipitation Cetavlon and precipitation of nucleic acids and proteins are further removed by ethanol precipitation (at least twice).
PRP utfälles enligt steg l, medan Cetavlon löses i alkohollös- ningen. PRP tillvaratages genom centrifugering, löses i 2 liter pyrogenfritt destillerat vatten och utfälles därefter åter enligt ovan. Den slutliga PRP-fällningen solubiliseras i 20 mM natrium- fosfat, pH 6,8.PRP is precipitated according to step 1, while Cetavlon is dissolved in the alcohol solution. PRP is collected by centrifugation, dissolved in 2 liters of pyrogen-free distilled water and then precipitated again as above. The final PRP precipitate is solubilized in 20 mM sodium phosphate, pH 6.8.
Steg 4, hydroxylapatitbehandling Föroreningar (såsom nukleinsyror, proteiner och endotoxiner) i de partiellt renade PRP-preparaten avlägsnas selektivt genom adsorption på en kalciumfosfathaltig adsorbent, såsom hydroxyl- apatit [3.Ca3(PO4)2.Ca(OH)2].Step 4, hydroxylapatite treatment Contaminants (such as nucleic acids, proteins and endotoxins) in the partially purified PRP preparations are selectively removed by adsorption on a calcium phosphate-containing adsorbent, such as hydroxyl apatite [3.Ca3 (PO4) 2.Ca (OH) 2].
Uppfinningen bygger på upptäckten att polysackariden PRP icke adsorberas av den kalciumfosfatadsorbenthaltiga fosfatbufferten (20mM) med ett pH av ungefär 6,7-6,9; eller en fosfatbuffert (50mM) med ett pH av ungefär 5,8; föroreningarna (såsom nuklein- syror, proteiner och endotoxiner) adsorberas emellertid under dessa betingelser. Förfarandet enligt uppfinningen kan även ut- 7811192-9 föras satsvis eller i kolonndrift. Vid det satsvisa arbets- förfarandet sättes hydroxylapatiten till det partiellt renade PRP-preparatet (i 20mM fosfat; pH 6,9). Blandningen blandas om- sorgsfullt och centrifugeras för eliminering av icke önskvärda fasta substanser (adsorbent och de föroreningar som adsorberats av adsorbenten). Den överstående vätskan underkastas nämnda pro- cedur minst ytterligare två gånger. Den bildade lösningen filt- reras genom millipor-filter, dialyseras mot pyrogenfritt destille- rat vatten och lyofiliseras.The invention is based on the discovery that the polysaccharide PRP is not adsorbed by the calcium phosphate adsorbent-containing phosphate buffer (20 mM) with a pH of approximately 6.7-6.9; or a phosphate buffer (50 mM) having a pH of about 5.8; however, the impurities (such as nucleic acids, proteins and endotoxins) are adsorbed under these conditions. The process according to the invention can also be carried out batchwise or in column operation. In the batch process, the hydroxylapatite is added to the partially purified PRP preparation (in 20 mM phosphate; pH 6.9). The mixture is mixed thoroughly and centrifuged to eliminate unwanted solids (adsorbent and the impurities adsorbed by the adsorbent). The supernatant is subjected to the said procedure at least two more times. The resulting solution is filtered through a Millipor filter, dialyzed against pyrogen-free distilled water and lyophilized.
Vid kolonndrift påföres partiellt renat PRP i 20mM fosfatbuffert (pH lägst 5,8) i en kolonn, innehållande adsorbenthydroxylapa- titen, som jämviktsinställts med 20mM fosfatbuffert, pH 5,8, och eluerats med en stegvis gradient av natriumfosfatbuffert, pH 5,8, från 20mM till lOOmM. Fraktioner tillvaratages och ana- lyseras med avseende på pentos (och därmed med avseende på polyribosylribitolfosfat). De fraktioner som är positiva med avseende på pentos dialyseras mot pyrogenfritt destillerat vatten och lyofiliseras.During column operation, partially purified PRP is applied in 20 mM phosphate buffer (pH at least 5.8) in a column containing adsorbent hydroxylapatite, which is equilibrated with 20 mM phosphate buffer, pH 5.8, and eluted with a step gradient of sodium phosphate buffer, pH 5.8 from 20mM to 100mM. Fractions are collected and analyzed for pentose (and thus for polyribosyl ribitol phosphate). The pentose-positive fractions are dialyzed against pyrogen-free distilled water and lyophilized.
(II) Förfarande för framställning av ett kombinationsvaccin, bestående av PRP från H. influenzae typ b- och B. pertussis- antigener För framställning av ett PRP-vaccin löses lyofiliserat PRP (framställt enligt ovan) i en koncentration av 20 g/ml i fos- fatbuffrad natriumkloridlösning (PBS) (O,ll3 g kaliumdifosfat, 0,83 g dinatriumfosfat och 8,5 g natriumklorid per liter, pH 7,0, innehållande 0,0l % timerosal). Vaccinet sterilfilt- reras genom 0,45 millipor-filterenheter, fördelas i glasvialer och förvaras vid 4oC.(II) Process for the preparation of a combination vaccine, consisting of PRP from H. influenzae type b and B. pertussis antigens For the preparation of a PRP vaccine, lyophilized PRP (prepared as above) is dissolved in a concentration of 20 g / ml in phosphate buffered sodium chloride solution (PBS) (0.13 g of potassium diphosphate, 0.83 g of disodium phosphate and 8.5 g of sodium chloride per liter, pH 7.0, containing 0,01% thimerosal). The vaccine is sterile filtered through 0.45 millipore filter units, distributed in glass vials and stored at 4oC.
En koncentrerad lösning av PRP framställes genom att man upp- väger förutbestämda mängder av polysackariden och löser denna i fosfatbuffrad natriumkloridlösning (O,ll3 g kaliumdifosfat, 0,83 g dinatriumfosfat och 8,5 g natriumklorid per liter, pH 7,0, innehållande 0,0l % timerosal). Denna koncentrerade lös- ning av PRP blandas sedan med en lämplig volym färska B. per- tussis-cellsuspensioner för framställning av förrådslösningen. 1a11192-9 6 Éaraktäristika för B. pertussis, stam 138 beskrivas i Bergeys Manual of Determinative Bacteriology, Eight Ed., Buchanan och Gibbons Editors, Williams & Wilkins Co., Maryland, USA. Denna stam är tillgänglig från the American Type Culture Collection, -Maryland, USA, depositionsnummer 10380. Det kombinerade vaccinet i denna förrådslösning innehåller 200 ng PRP och ungefär 70 opacitetsenheter (op) celler per ml. Förrådslösningen upprätt- hålles 90 dagar vid 400 för att möjliggöra avgiftning av per- tussisantigener innan den slutliga produkten (vaccinet) fram- ställes (som innehåller 10 ug PRP och 3,5 op-enheter av per- tussisceller/0,5 ml dos).A concentrated solution of PRP is prepared by weighing predetermined amounts of the polysaccharide and dissolving it in phosphate buffered sodium chloride solution (0.13 g of potassium diphosphate, 0.83 g of disodium phosphate and 8.5 g of sodium chloride per liter, pH 7.0, containing 0 .0l% timerosal). This concentrated solution of PRP is then mixed with an appropriate volume of fresh B. pertussis cell suspensions to prepare the stock solution. 1a11192-9 6 Characteristics of B. pertussis, strain 138 are described in Bergeys Manual of Determinative Bacteriology, Eight Ed., Buchanan and Gibbons Editors, Williams & Wilkins Co., Maryland, USA. This strain is available from the American Type Culture Collection, -Maryland, USA, Deposit No. 10380. The combined vaccine in this stock solution contains 200 ng PRP and approximately 70 opacity units (op) cells per ml. The stock solution is maintained for 90 days at 400 to allow detoxification of pertussis antigens before the final product (vaccine) is prepared (containing 10 μg PRP and 3.5 op units of pertussis cells / 0.5 ml dose). .
Uppfinningen åskådliggöres närmare medelst följande exempel, vari de angivna temperaturerna avser Celsius-grader.The invention is further illustrated by the following examples, in which the temperatures indicated refer to degrees Celsius.
Exempel l. 2,5 g hydroxylapatit (såsom Bio. gel HTP, Bio~Rad Laboratories, Richmond, California) sättes till 250 ml partiellt renade PRP- preparat (efter Cetavlon- och etanolbehandlingar) (innehållande ungefär l,0 mg PRP/ml) i 20mM natriumfosfatbuffert, pH 6,9, och blandas i ett iskallt vattenbad (1-400) under en timme. _Blandningen centrifugeras i en Sorvall RC2-B under 30 minuter vid 16.000 x g. Den överstâende vätskan föres därefter genom ett 0,65 u millipore-filter och underkastas nämnda procedur (varje gång behandlad med 2,5 g hydroxylapatit) ytterligare två gånger. Den erhållna lösningen filtreras genom 0,65 u och 0,45 u millipore-filter, dialyseras mot pyrogenfritt destillerat vatten och lyofiliseras. Den lyofiliserade produkten uppvisar kraftig immunogen aktivitet (se följande beträffande djurförsök med kombinerat vaccin) och innehåller en mycket ringa mängd förore- ningar (såsom nukleinsyror, proteiner och endotoxiner) (se Tabell I nedan). Ungefär 170 mg lyofiliserat PRP erhålles. Åter- vinningen av PRP enligt detta förfarande är ungefär 70 %, räk- nat på utgångspolysackariden. PRP bör förvaras under lämpliga betingelser, såsom vid 40 i en exsickator över fosforpentoxid och silikgel. 7811192-9 Exempel 2.Example 1. 2.5 g of hydroxylapatite (such as Bio. Gel HTP, Bio-Rad Laboratories, Richmond, California) is added to 250 ml of partially purified PRP preparations (after Cetavlon and ethanol treatments) (containing approximately 1.0 mg PRP / ml ) in 20 mM sodium phosphate buffer, pH 6.9, and mix in an ice-cold water bath (1-400) for one hour. The mixture is centrifuged in a Sorvall RC2-B for 30 minutes at 16,000 x g. The supernatant is then passed through a 0.65 μ millipore filter and subjected to the said procedure (each time treated with 2.5 g of hydroxylapatite) twice more. The resulting solution is filtered through 0.65 μl and 0.45 μm millipore filters, dialyzed against pyrogen-free distilled water and lyophilized. The lyophilized product shows strong immunogenic activity (see the following for animal experiments with a combined vaccine) and contains a very small amount of impurities (such as nucleic acids, proteins and endotoxins) (see Table I below). Approximately 170 mg of lyophilized PRP is obtained. The recovery of PRP according to this procedure is about 70%, calculated on the starting polysaccharide. PRP should be stored under appropriate conditions, such as at 40 in a desiccator over phosphorus pentoxide and silica gel. 7811192-9 Example 2.
Partiellt renat PRP (300 mg PRP) löses i 100 ml 20mM natrium- fosfatbuffert, pH 5,8 (dvs. 3 mg PRP/ml). Denna lösningen pä- föres en kolonn vid rumstemperatur (5,0 x 45 cm) av hydroxyl- apatit (ungefär 250 ml bäddvolym), som jämviktsinställts med 20mM natriumfosfatbuffert, pH 5,8, och eluerats med en stegvis gradient av 20mM, 50mM, lOOmM natriumfosfatbuffert, pH 5,8.Partially purified PRP (300 mg PRP) is dissolved in 100 ml of 20 mM sodium phosphate buffer, pH 5.8 (ie 3 mg PRP / ml). This solution is applied to a column at room temperature (5.0 x 45 cm) of hydroxyl apatite (approximately 250 ml bed volume), equilibrated with 20 mM sodium phosphate buffer, pH 5.8, and eluted with a step gradient of 20 mM, 50 mM. 100mM sodium phosphate buffer, pH 5.8.
De individuella fraktionerna (200 ml), eluerade med 20mM och 50 mM natriumfosfatbuffert (pH 5,8), som är positiva med av- seende på pentos (pentosbestämning enligt orcinalmetoden) till- varatages, dialyseras mot pyrogenfritt destillerat vatten och lyofiliseras. Ungefär 206 mg av den lyofiliserade produkten, PRP, erhålles.The individual fractions (200 ml), eluted with 20 mM and 50 mM sodium phosphate buffer (pH 5.8), which are positive for pentose (pentose determination according to the original method) are collected, dialyzed against pyrogen-free distilled water and lyophilized. Approximately 206 mg of the lyophilized product, PRP, is obtained.
Renheten av polysackariden, PRP, analyseras genom att man upp- skattar i vilken mån de är förorenade med nukleinsyror, pro- teiner och endotoxiner. Proteinkoncentrationen bestämmes enligt Lowry, et al. i J. Biol. Chem. l93¿265 (1951) med bovinserumalbumin såsom standard. Nukleinsyran bestämmes genom absorptionen av PRP-lösningen vid 260 nm. Absorbansen av 50 ng nukleinsyra i l ml vatten i en cell med en ljusväg av 1 cm antages vara lika med 1,0. Molekylstorleken uppskattas med hjälp av Sepharose ÉD4B- eller 2B-gelfiltrering på pelare I 1,5 x 90 cm (Pharmacia-Fine Chemicals, Piscataway, N.J.).The purity of the polysaccharide, PRP, is analyzed by estimating the extent to which they are contaminated with nucleic acids, proteins and endotoxins. The protein concentration is determined according to Lowry, et al. and J. Biol. Chem. l93¿265 (1951) with bovine serum albumin as standard. The nucleic acid is determined by the absorption of the PRP solution at 260 nm. The absorbance of 50 ng of nucleic acid in 1 ml of water in a cell with a light path of 1 cm is assumed to be equal to 1.0. Molecular size is estimated by Sepharose ÉD4B or 2B gel filtration on columns 1.5 x 90 cm (Pharmacia-Fine Chemicals, Piscataway, N.J.).
Fördelningskoefficienten (Kd) bestämmas ur elueringsmönstret framkallat genom orcinalreaktionen (Herbert, et al., Methods in MicrobiolO9Yo Vol. 5B, 285-291). 7811192-9 ..4mD .xnow Bwz .>uHmHm>H:D mflnäflfiou _fimuflmmom wwfinmm cmum mflamcmmfiflflu mmñšmumxnmm Q wmuømfiflmcfl møfifismoëmmm Hmm mxflvwflumuxmnmx uw>finMmwn N Hwmâwxm .flmmfim Hmššøsmcofluflwomwø . :mmm mflfimfimmflflflu cwEEmum|Mo Q wmucwdflmflfl møaflnmoëwmw >m mxflvmfinmwxmumx nm>flHxmmQ H ammëmxm Aønmwcmuwnfixouoøcwv Hm muflmofloflm mo Dmwnøm wwñ mmflwnmwëmfi Ufl> ^HE\mmm mi OOHV mmm >m wcflcømmmuø xonmflomm Av Hwnmw Hmm wxofl Eow wxH>mmmOnxGflcmM mM\mmm mi Ao m* Üwnvhmßnmwm Nwfl .mflHflUQW>.-.~M UÜÉ AR ßOH X N uxfl>HmxwaoE .mw soc mm wmoumsmwm wøwn >m mflflGø:m>cm Uwå Am ooo-QH oöfl Éo m6 män 33.0 Nflšemxm ooïfi _ 0.3 ïo mio oém :mo Hfiwmswxm ¶ AUMV 8 B S: få S; xwfföfi.. vmmuumm>H|m5HøEfiA wmmvnwmouæmnflcmm nflmßonm mnmmcflmflxøz woucwm xaæxmfloz nøøwuonm nflxovoflcm mwflmfiá mmm wflflmflamwmmßmnmaafln Hmm mxflumflumuxmnmx ßxmflšwxlxmfiflmxflmæh H aflwfimfi 7811192-9 Exempel 3.The partition coefficient (Kd) is determined from the elution pattern elicited by the original reaction (Herbert, et al., Methods in MicrobiolO9Yo Vol. 5B, 285-291). 7811192-9 ..4mD .xnow Bwz.> UHmHm> H: D m fl nä flfi ou _fi mu fl mmom ww fi nmm cmum m fl amcmm fiflfl u mmñšmumxnmm Q wmuøm fifl mc fl mø fifi smoëmmm Hmm mx fl vw mmw m nmm. : Mmm m flfi m fi mm flflfl u cwEEmum | Mo Q wmucwd fl m flfl MOA al nmoëwmw> m MX al VM access nmwxmumx nm> al HxmmQ H ammëmxm Aønmwcmuwn fi xouoøcwv Hm mu al mo f O fl m mo Dmwnøm WWN mm al wnmwëm f U f> ^ HE \ mmm ml OOHV mmm> m toilet al cømmmuø xonm al iff Of Hwnmw Hmm wxo al EOW WxH> mmmOnxG al cm² mM \ mmm mi Ao m * Üwnvhmßnmwm Nw fl .m fl H fl UQW> .-. ~ M UÜÉ AR ßOH XN ux fl> HmxwaoE .mw soc mm wmoumsmwm wøwn> m m flfl Gø: m> cm Uwå Am ooo-QH oö fl No ò m ò m 33 o Oo fl m män 33 o o o mo H fi wmswxm ¶ AUMV 8 BS: get S; xwffö f .. vmmuumm> H | m5HøE FI A wmmvnwmouæmn al CMM n al mßonm mnmmc al etc. XOZ woucwm xaæxm fl oz nøøwuonm n al xovo al cm mw fl m FI A mmm w flfl et al amwmmßmnmaa fl n Hmm mx al microns al umuxmnmx ßxm al šwxlxm fifl mx al mæh H a fl w f m f 7811192-9 example 3.
Ett kombinationsvaccin innehållande PRP från H. influenzae typ b och B. pertussis-antigener framställes enligt följande: 140 mg PRP (framställt enligt exempel 2) löses i 350 ml steril fosfatbuffrad natriumkloridlösning (PBS) (O,ll3 g kaliumfos- fat, 0,83 g dinatriumfosfat och 8,5 g natriumklorid per liter, pH 7,0, innehållande 0,01 % timerosal) och filtreras genom ett 0,45 u millipore-filter. Denna koncentrerade PRP-lösning (400 ug/ml) användes för framställning av ett kombinations- vaccin, som består av PRP och B. pertussis-antigener. l50 ml av den koncentrerade PRP-lösningen (400 ug/ml) försättes med 150 ml färsk B. pertussis (stam 138)-cellsuspension i PBS, pH 7,0 (uppvisande opacitet 149; op, enhetsceller/ml) för fram- ställning av förrådslösningen av det kombinerade vaccinet.A combination vaccine containing PRP from H. influenzae type b and B. pertussis antigens is prepared as follows: 140 mg PRP (prepared according to Example 2) is dissolved in 350 ml sterile phosphate buffered sodium chloride solution (PBS) (0.113 g potassium phosphate, 0, 83 g disodium phosphate and 8.5 g sodium chloride per liter, pH 7.0, containing 0.01% thimerosal) and filtered through a 0.45 μ millipore filter. This concentrated PRP solution (400 ug / ml) was used to prepare a combination vaccine consisting of PRP and B. pertussis antigens. 150 ml of the concentrated PRP solution (400 μg / ml) is added to 150 ml of fresh B. pertussis (strain 138) cell suspension in PBS, pH 7.0 (showing opacity 149; op, unit cells / ml) for preparation of the stock solution of the combined vaccine.
Denna förrådslösning (300 ml) upprätthålles vid 40, tills endo~ toxinnivån av pertussis har sjunkit (lägst 90 dagar). Sterili- teten av förrådslösningen testas med tioglykolatmedier (vid 32-330). pH i förrådslösningen efter 90 dagars inkubering kontrolleras och inställes på pH 7,0: 1. Slutprodukten (vaccin) använt för djurförsök framställes genom utspädning av den kombinerade förrådslösningen med PBS och den innehåller 10 ug PRP och 3,5 op-enheter av pertussisceller/0,5 ml (dos).This stock solution (300 ml) is maintained at 40 until the endotoxin level of pertussis has dropped (minimum 90 days). The sterility of the stock solution is tested with thioglycolate media (at 32-330). The pH of the stock solution after 90 days of incubation is checked and adjusted to pH 7.0: 1. The final product (vaccine) used for animal experiments is prepared by diluting the combined stock solution with PBS and it contains 10 μg PRP and 3.5 op units of pertussis cells / 0.5 ml (dose).
Resultaten från antikroppssvaret på detta kombinerade vaccin hos unga råttor visas i Fig. 1 och 2.The results of the antibody response to this combined vaccine in young rats are shown in Figs. 1 and 2.
Exempel 4.Example 4.
Förrådslösningen av PRP (400 ng/ml) framställes genom att man löser 30 mg PRP (framställt enligt exempel l) i 75 ml steril fosfatbuffrad natriumkloridlösning (PBS) och filtreras genom ett 0,45 u millipore-filter. 25 ml av detta koncentrerade PRP försättes med en lika stor volymmängd (dvs. 25 ml) färsk B. pertussis (stam 138)-cellsuspension i PBS, pH 7,0 (innehållande 149 op-enheter celler/ml) för framställning av förrådslösningen av det kombinerade vaccinet. Denna förrådslösning (50 ml) upp- rätthålles minst 90 dagar vid 40. Steriliteten av förråde- lösningen testas på ovan angivet sätt med tioglykolatmedier. 7811192-9 10 pH i förrådslösningen är 7,0: l. Den slutliga produkten (vaccin) använd för djurförsök framställes genom utspädning av den kombinerade förrådslösningen med PBS och den innehåller 10 ug PRP och 3,7 op-enheter av pertussisceller/0,5 ml (dos).The stock solution of PRP (400 ng / ml) is prepared by dissolving 30 mg of PRP (prepared according to Example 1) in 75 ml of sterile phosphate buffered sodium chloride solution (PBS) and filtering through a 0.45 μ millipore filter. 25 ml of this concentrated PRP is added with an equal volume (ie 25 ml) of fresh B. pertussis (strain 138) cell suspension in PBS, pH 7.0 (containing 149 op units of cells / ml) to prepare the stock solution of the combined vaccine. This stock solution (50 ml) is maintained for at least 90 days at 40. The sterility of the stock solution is tested as above with thioglycolate media. The pH of the stock solution is 7.0: 1. The final product (vaccine) used for animal experiments is prepared by diluting the combined stock solution with PBS and it contains 10 μg PRP and 3.7 op units of pertussis cells / 0. 5 ml (dose).
Exempel 5.Example 5.
PRP-förrådslösningen (200 ug/ml) i PBS (pH 7,0) framställes enligt exempel 4. Pertussis-förrådslösningen (innehållande 75 op-enheter/ml) framställes genom utspädning av 25 ml färsk B. pertussis-cellsuspension (149 op-enheter/ml) med en lika stor volym PBS. Båda förrådslösningarna inkuberas separat vid 40 under 90 dagar eller något längre. Det kombinerade vaccinet framställes genom att man tar 14 ml PRP-förrådslös- ning (200 ng/ml) och l4 ml (avgiftad) förrådslösning av per- tussis-antigener (75 op-enheter/ml) och utspäder den med 112 ml PBS (slutlig volym 140 ml). Det färdiga vaccinet för djurförsök innehåller l0 ng PRP och 3,7 op-enheter pertussis/0,5 ml (dos).The PRP stock solution (200 μg / ml) in PBS (pH 7.0) is prepared according to Example 4. The pertussis stock solution (containing 75 op units / ml) is prepared by diluting 25 ml of fresh B. pertussis cell suspension (149 op units / ml) with an equal volume of PBS. Both storage solutions are incubated separately at 40 for 90 days or slightly longer. The combined vaccine is prepared by taking 14 ml of PRP stock solution (200 ng / ml) and 14 ml (detoxified) stock solution of pertussis antigens (75 op units / ml) and diluting it with 112 ml of PBS ( final volume 140 ml). The finished animal test vaccine contains 10 ng PRP and 3.7 op units of pertussis / 0.5 ml (dose).
Resultaten beträffande antikroppssvaret på detta kombinerade vaccin hos unga råttor anges i Fig, 3 och i tabell II. 7811192-*9 ll cofluxwwcfiwmcmmcm AU Houumn OH Hmm Hmßfimwwä A0 Aøøfluxmncfiawmflufißåv :mx0w> wfim .mwmn MHN 1 umumoøm An AHE m.Ov mow\wfimw5unwm uwpwsnmxmo m.m Hwfifim mmm mn OH Am w.HH ofiwfl fimß vmfl mflfl Azv ^« Hwmawxwv ^oa mv m_H o«H mmfl wwfi mm Amy wfimwøwuwm + ^Mv mmm ^m HwmEmNmv m.»H Hßßfl Noofi mmfi Hofl ^zv Aoa mv mflwwspnwm + «.H ßwfl Nmfi wmfl wofi @^mv Aoa mv ^mv mmm m~H Nqfi wwfl wmfl oflfl Azv AH flwmswxwv Amy mmm m_H mvfl »HH wofi maa Azv mfimmspuwm mcflflwßfi IUHHOHMEDHHUMC @_H wmfi ßofl wflfl omm n^zv wmuwwønpmwwom Amcfluwwflcfiñëfl m N A O ^fimmavH5E xkmw :www =mmmw»u:H øHo«=v GOHMMWWCH Hwwww GMMO0> wum GOHUMGWGH HOMMO MMOw> mmQfl¶%%% Asswww H: om\pwu:sn mmmlm amov uw»fl>fl»Mmwmmo»xfiu:m|mmm«Hpø4 0 mom =Huu«> m ^ß HH Aflmflmü MOQUWH NÜGÜ NOS NÜHWEOMIMHWWÜUMÜQINMW >fl HÜQHUHCÜUÛCÜEEHThe results regarding the antibody response to this combined vaccine in young rats are given in Fig. 3 and in Table II. 7811192- * 9 ll co al uxwwc fi wmcmmcm AU Houumn OH Hmm HMSS fi mwwä A0 AOO al uxmnc fi awm fl u fi ssaV: mx0w> w f m .mwmn MHN 1 umumoøm An AHE m.Ov mow \ w fi mw5unwm uwpwsnmxmo mm Hw fifi m mmm mn OH Am w.HH o f w f f MSS vm fl m flfl AZV ^ «Hwmawxwv ^ oa mv m_H o «H mm fl ww fi mm Amy w fi mwøwuwm + ^ Mv mmm ^ m HwmEmNmv m.» H Hßß fl Noo fi mm fi Ho fl ^ zv Aoa mv m fl wwspnwm + «.H ßw fl Nm fi wm mv fl Mm v mm mv ^ nm mv ^ nm v ww al wm fl o flfl AZV AH al wmswxwv Amy mmm m_H mv al »HH wo fi MAA AZV m f mmspuwm mc flfl WSS fi IUHHOHMEDHHUMC @_H wm access SSO al w flfl iff n zv wmuwwønpmwwom AMC al uww fl c fi ne fl m NAO ^ fi mmavH5E xkmw: www = mmmw» u H OHO «= v GOHMMWWCH Hwwww GMMO0> wum GOHUMGWGH HOMMO MMOw> mmQ fl¶ %%% Asswww H: om \ pwu: sn mmmlm amov uw »fl> fl» Mmwmmo »x fi u: m | mmm« Hpø4 0 mom = Huu «> m ^ ß HH A fl m fl mü MOQUWIM NWG NH > fl HÜQHUHCÜUÛCÜEEH
Claims (4)
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US05/846,466 US4196192A (en) | 1977-10-28 | 1977-10-28 | Combined Haemophilus influenzae type b and pertussis vaccine |
US05/846,488 US4220717A (en) | 1977-12-22 | 1977-12-22 | Isolation and purification of polyribosyl ribitol phosphate from Haemophilus influenzae type b. |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SE7811192L SE7811192L (en) | 1979-04-29 |
SE430753B true SE430753B (en) | 1983-12-12 |
Family
ID=27126641
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SE7811192A SE430753B (en) | 1977-10-28 | 1978-10-27 | COMBINED HAEMOPHILUS INFLUENZAE-BORDETELLA PERTUSSIS-VACCIN |
Country Status (25)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5480408A (en) |
AR (1) | AR218932A1 (en) |
AU (1) | AU520902B2 (en) |
BE (1) | BE871586A (en) |
CA (1) | CA1117866A (en) |
CH (1) | CH649781A5 (en) |
DD (1) | DD140701A5 (en) |
DE (1) | DE2845745A1 (en) |
DK (1) | DK154327C (en) |
ES (1) | ES474611A1 (en) |
FI (1) | FI63674C (en) |
FR (1) | FR2407000B1 (en) |
GB (1) | GB2007244B (en) |
GR (1) | GR73991B (en) |
HU (1) | HU178166B (en) |
IE (1) | IE47474B1 (en) |
IL (1) | IL55433A (en) |
IT (1) | IT1107570B (en) |
NL (1) | NL7810753A (en) |
NO (1) | NO149611C (en) |
NZ (1) | NZ188211A (en) |
PH (1) | PH15882A (en) |
PL (1) | PL210545A1 (en) |
SE (1) | SE430753B (en) |
YU (1) | YU250878A (en) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
BE889979A (en) * | 1981-08-14 | 1982-02-15 | Smith Kline Rit | PROCESS FOR THE PREPARATION OF PURIFIED ANTIGENIC CAPSULAR BACTERIAL POLYSACCHARIDES, PRODUCTS OBTAINED AND THEIR USE |
CA1209036A (en) * | 1982-08-20 | 1986-08-05 | Joseph S.C. Kuo | Combined haemophilus influenzae and diphtheria, pertussis, tetanus vaccine |
US4744982A (en) * | 1982-08-24 | 1988-05-17 | Hunter Kenneth W | Human monoclonal antibody reactive with polyribosylribitol phosphate |
EP0471177B1 (en) * | 1990-08-13 | 1995-10-04 | American Cyanamid Company | Filamentous hemagglutinin of bordetella pertussis as a carrier molecule for conjugate vaccines |
SK18594A3 (en) * | 1991-08-16 | 1994-08-10 | Merck & Co Inc | Method of production of capsular polysacharide without lipid and endotoxine |
Family Cites Families (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3395219A (en) * | 1964-12-11 | 1968-07-30 | Merck & Co Inc | Process for production of pertussis antigen |
IL24946A (en) * | 1965-01-19 | 1969-05-28 | Merck & Co Inc | Process for preparing b. pertussis antigens |
US3465078A (en) * | 1965-10-21 | 1969-09-02 | Sydney Z Spiesel | Method of recovering antigens from bordetella pertussis cells |
NL174267B (en) * | 1969-05-20 | Roussel Uclaf | IMPROVEMENT OF THE PROCESS FOR THE PREPARATION OF A SOMATIC ANTIGEN ACCORDING TO DUTCH PATENT 169754 AND PROCESS FOR PREPARING A PHARMACEUTICAL PREPARATION. | |
US3636192A (en) * | 1970-01-13 | 1972-01-18 | Us Army | Meningococcal polysaccharide vaccines |
FR2253499B1 (en) * | 1973-12-10 | 1977-11-04 | Fabre Sa Pierre | |
DE2461439C3 (en) * | 1974-12-24 | 1980-03-20 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Process for the preparation of a protective antigen from Bordetella pertussis and agent containing the same |
US3978209A (en) * | 1975-03-24 | 1976-08-31 | Merck & Co., Inc. | Endotoxin free meningococcus polysaccharides |
-
1978
- 1978-08-22 NZ NZ188211A patent/NZ188211A/en unknown
- 1978-08-25 IL IL55433A patent/IL55433A/en unknown
- 1978-08-29 CA CA000310218A patent/CA1117866A/en not_active Expired
- 1978-08-30 AR AR273492A patent/AR218932A1/en active
- 1978-08-30 GR GR57127A patent/GR73991B/el unknown
- 1978-10-20 DE DE19782845745 patent/DE2845745A1/en active Granted
- 1978-10-24 IT IT51621/78A patent/IT1107570B/en active
- 1978-10-25 PH PH21738A patent/PH15882A/en unknown
- 1978-10-26 FI FI783269A patent/FI63674C/en not_active IP Right Cessation
- 1978-10-26 AU AU41081/78A patent/AU520902B2/en not_active Expired
- 1978-10-26 FR FR7830517A patent/FR2407000B1/fr not_active Expired
- 1978-10-27 CH CH11125/78A patent/CH649781A5/en not_active IP Right Cessation
- 1978-10-27 DD DD78208715A patent/DD140701A5/en unknown
- 1978-10-27 ES ES474611A patent/ES474611A1/en not_active Expired
- 1978-10-27 HU HU78AE546A patent/HU178166B/en not_active IP Right Cessation
- 1978-10-27 SE SE7811192A patent/SE430753B/en not_active IP Right Cessation
- 1978-10-27 PL PL21054578A patent/PL210545A1/xx unknown
- 1978-10-27 YU YU02508/78A patent/YU250878A/en unknown
- 1978-10-27 DK DK479578A patent/DK154327C/en not_active IP Right Cessation
- 1978-10-27 NL NL7810753A patent/NL7810753A/en not_active Application Discontinuation
- 1978-10-27 NO NO783635A patent/NO149611C/en unknown
- 1978-10-27 IE IE2146/78A patent/IE47474B1/en unknown
- 1978-10-27 BE BE191385A patent/BE871586A/en not_active IP Right Cessation
- 1978-10-27 GB GB7842230A patent/GB2007244B/en not_active Expired
- 1978-10-28 JP JP13310978A patent/JPS5480408A/en active Granted
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4220717A (en) | Isolation and purification of polyribosyl ribitol phosphate from Haemophilus influenzae type b. | |
JP2506060B2 (en) | Red blood cells and their conversion method | |
Frommhagen et al. | The role of aggregated γ-globulins in the anticomplementary activity of human and animal sera | |
US4196192A (en) | Combined Haemophilus influenzae type b and pertussis vaccine | |
Burke | The purification of interferon | |
JPS61186328A (en) | Improved composite bodies, manufacture and drug containing them | |
Holland | The purification and properties of megacin, a bacteriocin from Bacillus megaterium | |
Barwell | Some observations on the antigenic structure of psittacosis and lymphogranuloma venereum viruses. II. Treatment of virus suspensions by various reagents and the specific activity of acid extracts | |
EP0407037A1 (en) | Process for removing bacterial endotoxin from gram-negative polysaccharides | |
JPS638340A (en) | Manufacture of retrovirus-free immunogloblin | |
Kuwabara | Purification and properties of tuberculin-active protein from Mycobacterium tuberculosis. | |
SE430753B (en) | COMBINED HAEMOPHILUS INFLUENZAE-BORDETELLA PERTUSSIS-VACCIN | |
JP2563797B2 (en) | Method for purifying protein antigen of Bordetella bacterium | |
JPS6176422A (en) | Component vaccine for pertussis and preparation of mixed vaccine for pertussis, diphthelia and tetanus | |
US3843444A (en) | Membrane separation process | |
US3745155A (en) | Purifying a gamma globulin by contacting a solution of gamma globulin with solid plasma protein free of gamma globulin | |
US5039610A (en) | Process for removing bacterial endotoxin from gram-negative polysaccharides | |
US3616211A (en) | Process for producing deoxyribonucleic acid | |
CA1137901A (en) | Isolation of capsular polysaccharide of haemophilus influenzae | |
KR810001317B1 (en) | Process for preparing combined vaccine | |
US3627874A (en) | Vaccine preparation | |
Malchow et al. | Solubilization and partial purification of lymphocyte specific antigens in the chicken | |
CA1239104A (en) | Method for the purification of lpf-ha | |
GRAHAM et al. | Separation and partial characterization of erythropoietin from human urine | |
Auer et al. | Studies on thermostable liver-specific antigens |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
NUG | Patent has lapsed |
Ref document number: 7811192-9 Effective date: 19920510 Format of ref document f/p: F |