RU2721604C1 - Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани - Google Patents

Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани Download PDF

Info

Publication number
RU2721604C1
RU2721604C1 RU2019117828A RU2019117828A RU2721604C1 RU 2721604 C1 RU2721604 C1 RU 2721604C1 RU 2019117828 A RU2019117828 A RU 2019117828A RU 2019117828 A RU2019117828 A RU 2019117828A RU 2721604 C1 RU2721604 C1 RU 2721604C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bone
hours
washing
solution
degreasing
Prior art date
Application number
RU2019117828A
Other languages
English (en)
Original Assignee
Юрасова Юлия Борисовна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Юрасова Юлия Борисовна filed Critical Юрасова Юлия Борисовна
Priority to RU2019117828A priority Critical patent/RU2721604C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2721604C1 publication Critical patent/RU2721604C1/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/02Prostheses implantable into the body
    • A61F2/28Bones
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/32Bones; Osteocytes; Osteoblasts; Tendons; Tenocytes; Teeth; Odontoblasts; Cartilage; Chondrocytes; Synovial membrane
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3604Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
    • A61L27/3608Bone, e.g. demineralised bone matrix [DBM], bone powder

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине. Раскрыт способ получения биоматериалов из костной ткани, включающий ее механическую очистку и фрагментацию, отмывку, обработку ферментом и его удаление, обработку раствором щелочи, обезжиривание, частичную или полную декальцинацию в кислотной среде, высушивание, упаковку и стерилизацию. При этом после очистки кости природного происхождения осуществляют распиливание на блоки заданного размера, причем в костных фрагментах выполняются отверстия диаметром; отмывку осуществляют в потоке дистиллированной воды в течение 2 ч с дальнейшим проведением 2 или 3 циклов погружения фрагментов кости в 3% раствор перекиси водорода в ультразвуковой установке; начальное обезжиривание осуществляется при постоянном перемешивании последовательным помещением в раствор липазы в карбонатном буфере рН 9,0 при содержании липазы в количестве 0,05 г на 1 г нативной кости в течение 5-10 ч при температуре 37-38°С с дальнейшей инактивацией фермента и промывкой карбонатным буфером, и для губчатой кости раствор коллагеназы в буфере TESCA, при содержании коллагеназы в растворе 0,1 мг на 1 г нативной кости в течение 5 ч при температуре 35-38°С с дальнейшей инактивацией фермента и промывкой буфером TESCA, при этом для кортикальной кости обезжиривание раствором коллагеназы в буфере TESCA не используется, а также проводится заключительная промывка фрагментов кости дистиллированной водой и обработка 3,25% раствором гипохлорита натрия в течение 10 мин с последующей промывкой деионизированной водой, дальнейшее обезжиривание осуществляется двухкратным погружением в смесь гексана/этилового спирта 96% 1:1 из расчета 10 мл смеси на 1 г нативной кости на 12 ч, далее, после удаления смеси, костные фрагменты помещают в ультразвуковую установку с дистиллированной водой и проводят циклы обработки в течение 5-6 ч до достижения нейтрального рН. Изобретение обеспечивает повышение приживляемости, биосовместимости и остеокондуктивности биоматериалов. 1 пр.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к способам изготовления остеопластических биоматериалов из костной ткани для оперативного замещения костных дефектов при деструкции костной ткани, удалении кист, злокачественных и доброкачественных костных опухолей, исправления врожденных костных аномалии, изменений, вызванные посттравматическими и ортопедическими осложнениями, а также стимуляции регенеративных процессов при восстановлении объема костной ткани человека.
Способы получения костно-пластических материалов должны соответствовать современным требованиям безопасности: получение костного материала от сельскохозяйственных животных, прошедших ветеринарный контроль, в течение 24 ч после забоя или от трупов-доноров в течение 24 ч после смерти, а также исключение заражения донорским материалом. Рост числа инфекционных заболеваний, в том числе ВИЧ человека неуклонно повышают вероятность инфекционного заражения костными алломатериалами. Животные же с момента своего рождения и до забоя помещены в условия, где за ними обеспечивается строгий ветеринарный контроль. Возможность инфицирования пациента через имплантируемый материал минимизируется. Потребность в костнопластических материалах, при тенденции увеличения количества операций с использованием костнопластического материала, с каждым годом возрастает. Ксеногенные костные имплантаты высокого качества можно производить в значительно больших объемах, чем аллогенные, что позволяет полностью удовлетворять потребности клиник и снижать коммерческую стоимость ксеноимплантов. Все это, а также учет этических соображений, обуславливают предпочтительность использования ксеноимплантов.
В костной ткани происходит постоянный процесс обновления, при котором происходит замещение старой ткани на новую, т.е. одновременное разрушение и восстановление костного материала. При имплантации донорского материала ремоделируется старая ткань, на ее месте образуется новая ткань. Этот процесс облегчается, когда имплантированный материал по своей структуре более близок к замещаемой кости. Известно, что успешному вживлению костного трансплантанта в разной степени способствуют депротенизация и деминерализация костной ткани. Получение ксеногенных биоматериалов близких по структуре как к губчатой, так и к кортикальной костной ткани, при исполнении их как в виде как пластин, так и крошки, обеспечивает широкий спектр их использования.
Известен способ получения деминерализованного костного матрикса в виде крошки RU 2456003, опубл. 20.07.2012, в котором после механической очистки и фрагментации костной ткани проводят ее обработку водным раствором 2% неионного детергента Tween-80 в течение 12-24 ч, затем материал обрабатывают 24-48 ч смесью изопропанол-хлороформ 1:1 в ультразвуковой ванне, отмывают водой, выполняют деминерализацию раствором 0,6 М соляной кислоты, в течение 30-90 мин, и далее материал промывают дистиллированной водой, этиловым спиртом, высушивают и дополнительно измельчают до необходимых размеров.
Недостатком этого способа является то, что удаление жировой компоненты костной ткани путем обработки смесью изопропанол-хлороформ сопровождается удалением воды из матрикса, при этом его избыточное высушивание, проводит к его хрупкости, а изменение его межмолекулярной структуры усиливает реакцию организма на имплантат, ускоряет его резорбцию, нарушает остеокондуктивные свойства материала.
Известен способ получения остеопластического материала RU 2609201, опубл. 30.01.2017, согласно которому губчатую костную ткань после механической обработки и фрагментации обрабатывают гипертоническим раствором хлористого натрия 1-10% в течение 1-8 суток, затем выполняют глубокую очистку и делипидизацию методом сверхкритической флюидной экстракции, с последующими деминерализацией раствором соляной кислоты 0,5-4,0 М в течение 15-300 минут и лиофилизацией в течение 1-48 ч.
Недостатком этого способа является то, что обработка в сверхкритической жидкости двуокиси углерода при обеспечении глубокой очистке материала, вызывает значительное повреждение структуры коллагенового матрикса.
Наиболее близким, принятым за прототип, является способ получения биоматериалов из костной ткани и полученный этим способом материал для остеопластики и тканевой инженерии RU 2342162, опубл. 27.12.2008, в котором костную ткань после механической очистки и фрагментации отмывают нагретым до 65°С 0,1 М фосфатным буфером с рН 5,8-6,0, затем обрабатывают в растворе 0,1-0,4% папаина при 65°С в течение 24 часов, затем промывают водой при 40-80°С, обрабатывают раствором 0,4 М щелочи в течение 10-24 часов, отмывают в проточной воде, высушивают и обезжиривают в смесях этанол-хлороформ, проводят частичную или полную декальцинацию в кислотной среде, обрабатывают раствором пероксида водорода, отмывают водой, высушивают, упаковывают и стерилизуют.
Недостатком известного способа, принятого за прототип, является то, что обработка в растворе 0,1-0,4% папаина при 65°С в течение 24 часов вызывает повреждение коллагенового матрикса материала, переваривает его, нарушая тем самым его структуру и усиливая реакцию организма на материал, снижая тем самым его остеопластический потенциал. Еще одним недостатком является длительная обработка в растворе 0,4 М щелочи, способная вызывать повреждение коллагенового матрикса. Также обработка в смесях этанол-хлороформ вызывает удаление воды из матрикса, высушивает его, делает более хрупким и более чувствительным к повреждающему действию кислотных растворов в последующем процессе деминерализации и в целом усиливает реакцию организма на материал, ускоряет резорбцию материала и снижает его остеопластические свойства.
Задачей изобретения является расширение ассортимента и повышение качества получаемого из костной ткани биоматериала, за счет сохранения структуры костной ткани (структуры костного матрикса и нативных морфогенетических белков), повышение приживляемости таких биоматериалов за счет снижения их антигенных характеристик, повышения биосовместимости и остеоиндуктивности.
Способы получения биоматериалов из костной ткани включают стадии: механическая очистка для удаления мягких тканей, фрагментация, отмывка, обработка ферментом и его удаление, обработка раствором щелочи, обезжиривание, частичная или полная декальцинация в кислотной среде, высушивание, упаковка и стерилизация.
Согласно заявляемому способу получения биоматериалов костный материал преимущественно получают от сельскохозяйственных животных, прошедших ветеринарный контроль, или донорскую кость человека, прошедшую необходимые анализы, механически очищают от мышц и сухожилий, надкостницы и костного мозга. Фрагментацию проводят для губчатой кости распиливанием на блоки длиной от 1,0 см до 10,0 см, шириной от 0,1 см до 3,0 см, толщиной от 0,1 до 1,0 см или подвергают дроблению для получения частиц размером от 0,5 мм до 3,0 мм; а для кортикальной кости распиливанием на блоки длиной от 5 см до 25 см, шириной от 1 см до 3 см, толщиной от 0,1 см до 1,0 см, причем в костных фрагментах выполняются отверстия диаметром 0,6-0,8 мм при плотности их расположения на поверхности имплантатов - 1 отверстие на 1,0-1,5 см2. Геометрические размеры пластин определены опытным путем. Их увеличение по сравнению с заявляемыми приводит к трудностям как с обеспечением полноты ферментной обработкой, так и с полнотой отмывки таких пластин от применяемых по технологии растворов. Уменьшении этих размеров приводит к серьезным проблемам с сохранением их целостности в процессе обработки. Выполнение перфорации фрагментов создает дополнительные центры остеоиндукции для интенсификации процесса регенерации. Заявляемый диаметр сквозных отверстий является оптимальным с точки зрения интенсивности остеоиндуктивности, а заявляемая плотность отверстий позволяет сохранить механическую прочность фрагментов из костной ткани. Определенные опытным путем, продолжительность отмывки фрагментов в дистиллированной воде в течение 2 ч позволяет механически удалить значительную часть миелоидного компонента, а дальнейшее проведение 2 или 3 циклов погружения фрагментов кости в 3% раствор перекиси водорода в соотношении 10 мл к 1 г нативной кости в ультразвуковой установке на 12-16 часов позволяет удалить остатки миелоидного компонента, провести частичное обезжиривание (легкоплавкие жиры) поверхностных областей материала и провести его первичную стерилизацию. Опытным путем была определены параметры проведения при постоянном перемешивании начального обезжиривания последовательным помещением костных фрагментов в растворы липазы и коллагеназы в соответствующих буферах, и определена температура инактивации ферментов. Ферментное обезжиривание необходимо для обеспечения полноты освобождения костных фрагментов от антигенов. Применение буферов создает оптимальные условия воздействия ферментов, сохраняя нативную структуру костного коллагена. Установлено, что применение растворов ферментов в соответствующих буферах при заявляемых параметрах позволяет расщепить жиры на глицерин и высшие жирные кислоты, тем самым достичь ускорения их выхода из толщи костной ткани и эмульгирования в буфере с сохранением структуры коллагенового матрикса, а также эффективно разрушать неколлагеновые белки, протеогликаны и гликопртеины. Обработка коллагеназой значительно сокращает продолжительность частичной или полной декальцинации в кислотной среде. При этом параметры обработки раствором коллагеназы позволят регулировать структуру и механические свойства получаемого материала, так при осуществлении обработки раствором колллагеназы получаем биоматериал - имплантат с высокими механическими свойствами, а при получении матрикса обработка коллагеназой не проводится.
Опытным путем были установлены параметры обработки костных фрагментов раствором гипохлорита натрия и обезжиривания смесью гексан-этиловый спирт позволяющие достичь требуемой иммуногенности. При этом замена хлороформа на гексан позволяет преодолеть недостаток известной системы, так обработка в смесях этанол-хлороформ вызывает удаление воды из матрикса, высушивает его, делает более хрупким и более чувствительным к повреждающему действию кислотных растворов в последующем процессе деминерализации и в целом усиливает реакцию организма на материал, ускоряет резорбцию материала и снижает его остеопластические свойства. Обработка костных фрагментов в ультразвуковую установку с дистиллированной водой до достижения нейтрального РН важна для успешного проведения частичной или полной декальцинации в кислотной среде.
Техническим результатом изобретения является получение спектра биоматериалов из костной, повышение приживляемости таких биоматериалов, повышения биосовместимости и остеоиндуктивности.
Технический результат достигается за счет проведения механической очистки и фрагментации костной ткани, отмывки, обработки ферментом и его удалением, обработки раствором щелочи, обезжиривания, частичной или полной декальцинации в кислотной среде, высушивания, упаковки и стерилизацию. При этом губчатую кость природного происхождения распиливают на блоки длиной от 1,0 см до 10,0 см, шириной от 0,1 см до 3,0 см, толщиной от 0,1 до 1,0 см или подвергают дроблению для получения частиц размером от 0,5 мм до 3,0 мм; отмывку осуществляют в потоке (проточной) дистиллированной воды в течение 2 ч с дальнейшим проведением 2 или 3 циклов погружения фрагментов кости в 3% раствор перекиси водорода в соотношении 10 мл к 1 г нативной кости в ультразвуковой установке на 12-16 часов; начальное обезжиривание осуществляется при постоянном перемешивании последовательным помещением в раствор липазы в карбонатном буфере рН=9,0 при содержании липазы в количестве 0,05 г на 1 гр. нативной кости в течение 5-10 часов при температуре 37-38°С с дальнейшей инактивацией фермента и промывкой карбонатным буфером, и раствор коллагеназы в буфере TESCA, при содержании коллагеназы в растворе 0,1 мг на 1 г нативной кости в течение 5 часов при температуре 35-38°С с дальнейшей инактивацией фермента и промывкой буфером TESCA, причем инактивация ферментов осуществляется нагревом до 70°С на 15-30 мин., а также проводится заключительная промывка фрагментов кости дистиллированной водой и обработка 3,25% раствором гипохлорита натрия в течение 10 мин с последующей промывкой деионизированной водой, дальнейшее обезжиривание осуществляется двухкратным погружением в смесь гексана/этилового спирта 96% 1:1 из расчета 10 мл смеси на 1 г нативной кости на 12 часов, далее, после удаления смеси, костные фрагменты помещают в ультразвуковую установку с дистиллированной водой и проводят циклы обработки в течение 5-6 часов до достижения нейтрального РН. В случае кортикальной кости обработка костной ткани выполняется аналогично вышеописанному способу, но фрагментация осуществляется распиливанием на блоки длиной от 5 см до 25 см, шириной от 1 см до 3 см, толщиной от 0,1 см до 1,0 см, причем в костных фрагментах выполняются отверстия диаметром 0,6-0,8 мм при плотности их расположения на поверхности имплантатов - 1 отверстие на 1,0-1,5 см2, а также не используются дробление кости и обезжиривание раствором коллагеназы в буфере TESCA.
Способ осуществляется следующим образом.
Получение матрикса.
Костный материал получают от сельскохозяйственных животных, прошедших ветеринарный контроль по существующим правилам в течение 24 ч после забоя или от трупов-доноров по существующим правилам в течение 24 ч после смерти. После этого кость подвергают механической обработке для удаления мягких тканей и распиливают на блоки длиной от 1,0 см до 10,0 см, шириной от 0,1 см до 3,0 см, толщиной от 0,1 до 1,0 см или подвергают дроблению для получения частиц размером от 0,5 мм до 3,0 мм. Полученные фрагменты промывают в дистиллированной воде в течение 2 ч. Затем для удаления элементов крови фрагменты погружают в 3% раствор перекиси водорода в соотношении 10 мл к 1 г нативной кости в ультразвуковой установке на 48 ч. Смена раствора производится каждые 12 ч. Фрагменты центрифугируют для удаления раствора перекиси водорода. Обезжиривание проводится липазой в карбонатном буфере рН 9,0 при содержании липазы в растворе 0,05 г на 1 г нативной кости течение 5-10 часов, в зависимости от размера костного фрагмента, при температуре 37-38°С при постоянном перемешивании, затем систему нагревают до 70°С на 15-30 мин. для инактивации фермента. Материал промывают карбонатным буфером с целью полного удаления фермента. Далее материал помещают в буфер TESCA, содержащим коллагеназу при содержание коллагеназы в растворе 0,1 мг на 1 г нативной кости в течение 5 часов при постоянном перемешивании и температуре 35-38°С, затем систему нагревают до 70°С на 15-30 мин. для инактивации фермента. Далее материал промывают буфером TESCA и дистиллированной водой. Для удаления неколлагеновых белков кости обрабатывали 100 мл 3.25% раствора гипохлорита натрия в течение 10 мин при комнатная температура с последующей промывкой деионизированной водой. Для дальнейшего обезжиривания костные фрагменты погружают в смесь гексана/этилового спирта 96% 1:1 на 24 часа. Количество смеси составляет 10 мл на 1 г нативной кости. Смесь меняют каждые 12 ч. Костные фрагменты центрифугируют для удаления смеси и помещают в ультразвуковую установку с дистиллированной водой. Проводится несколько циклов промывки со сменой дистиллированной воды. Проветривают на воздухе в течение 1 суток. Затем костные фрагменты замораживают при температуре -70°С в течение 24 ч. После этого костные фрагменты подвергают лиофилизации в течение 48 ч на установке LZ-9.2, чем достигается остаточная их влажность 5%. Костные фрагменты упаковывают, стерилизуют потоком быстрых электронов дозой 18-25 кГр на ускорителе ЛУЭ-8-5М, У003 MB и маркируют.
Получение трансплантата.
Способ осуществляется согласно вышеописанному, но сос следующими изменениями: фрагментация осуществляется распиливанием на блоки длиной от 5 см до 25 см, шириной от 1 см до 3 см, толщиной от 0,1 см до 1,0 см, причем в костных фрагментах выполняются отверстия диаметром 0,6-0,8 мм при плотности их расположения на поверхности имплантатов - 1 отверстие на 1,0-1,5 см2, а дробление кости и обезжиривание раствором коллагеназы в буфере TESCA не используются.
Полная или частичная деминерализация костных фрагментов производится растворами 0,6-1,2 Н соляной кислоты при комнатной температуре, в течение 18-20 часов в зависимости от объема костных фрагментов и от необходимости получения имплантатов с поверхностной или глубокой степенью деминерализации. Соотношение веса костного материала к объему раствора соляной кислоты составляет 1 г нативной кости к 15 мл растворов 0,6 или 1,2 Н соляной кислоты. После завершения процесса деминерализации имплантат помещается в раствор тиосульфата натрия для нейтрализации кислоты на 30-40 мин., 4 раза, со сменой раствора тиосульфата. Затем имплантаты помещаются в дистиллированную воду температурой 16-19°С на 5 часов под контролем РН среды, доводя ее до нейтральной.
Пример выполнения заявляемого способа.
Больной X., 7 лет, диагноз: Перелом головочки мыщелка плечевой кости (ГМПК), формирование ложного сустава ГМПК.
Травма получена в результате падения на плечо бревна. По месту жительства проведена закрытая репозиция, конечность фиксирована гипсовой повязкой. В дальнейшем по результатам рентгенологического наблюдения в течение 1 месяца, диагностировано формирование посттравматического ложного сустава головочки мыщелка левой плечевой кости. Жалобы на боль в области перелома. Было проведено оперативное лечение: экономная резекция ложного сустава, открытая репозиция костных отломков, костная пластика костная аллотрансплантатом изготовленным по способу, представленным в заявке и металлоостеосинтез в аппарате Илизарова. Рана зажила первичным натяжением. На 11-е сутки после операции швы сняты. В ходе динамического контроля явные признаки инкорпорации имплантатов наблюдались через 6 мес. после хирургического вмешательства, больной полностью пользуется конечностью, жалоб нет.
Клиническая тактика подтверждает заявляемые качества биоматериала из костной ткани, изготовленного по заявленному способу: высокая остеоиндуктивная активность при пересадке и низкая антигенность. Это также позволяет в клинической практике сократить сроки лечения больных и резко снизить процент отторжения, что избавит пациентов от неоднократных оперативных вмешательств и психических травм.

Claims (1)

  1. Способ получения биоматериалов из костной ткани, включающий ее механическую очистку и фрагментацию, отмывку, обработку ферментом и его удаление, обработку раствором щелочи, обезжиривание, частичную или полную декальцинацию в кислотной среде, высушивание, упаковку и стерилизацию, отличающийся тем, что после очистки кости природного происхождения для губчатой кости осуществляют распиливание на блоки длиной от 1,0 см до 10,0 см, шириной от 0,1 см до 3,0 см, толщиной от 0,1 до 1,0 см или подвергают дроблению для получения частиц размером от 0,5 мм до 3,0 мм, а для кортикальной кости осуществляют распиливание на блоки длиной от 5 см до 25 см, шириной от 1 см до 3 см, толщиной от 0,1 см до 1,0 см, причем в костных фрагментах выполняются отверстия диаметром 0,6-0,8 мм при плотности их расположения на поверхности имплантатов - 1 отверстие на 1,0-1,5 см2; отмывку осуществляют в потоке дистиллированной воды в течение 2 ч с дальнейшим проведением 2 или 3 циклов погружения фрагментов кости в 3% раствор перекиси водорода в соотношении 10 мл к 1 г нативной кости в ультразвуковой установке на 12-16 ч; начальное обезжиривание осуществляется при постоянном перемешивании последовательным помещением в раствор липазы в карбонатном буфере рН 9,0 при содержании липазы в количестве 0,05 г на 1 г нативной кости в течение 5-10 ч при температуре 37-38°С с дальнейшей инактивацией фермента и промывкой карбонатным буфером, и для губчатой кости раствор коллагеназы в буфере TESCA, при содержании коллагеназы в растворе 0,1 мг на 1 г нативной кости в течение 5 ч при температуре 35-38°С с дальнейшей инактивацией фермента и промывкой буфером TESCA, при этом для кортикальной кости обезжиривание раствором коллагеназы в буфере TESCA не используется, причем инактивация ферментов осуществляется нагревом до 70°С на 15-30 мин, а также проводится заключительная промывка фрагментов кости дистиллированной водой и обработка 3,25% раствором гипохлорита натрия в течение 10 мин с последующей промывкой деионизированной водой, дальнейшее обезжиривание осуществляется двухкратным погружением в смесь гексана/этилового спирта 96% 1:1 из расчета 10 мл смеси на 1 г нативной кости на 12 ч, далее, после удаления смеси, костные фрагменты помещают в ультразвуковую установку с дистиллированной водой и проводят циклы обработки в течение 5-6 ч до достижения нейтрального рН.
RU2019117828A 2019-06-07 2019-06-07 Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани RU2721604C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019117828A RU2721604C1 (ru) 2019-06-07 2019-06-07 Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019117828A RU2721604C1 (ru) 2019-06-07 2019-06-07 Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2721604C1 true RU2721604C1 (ru) 2020-05-21

Family

ID=70803399

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019117828A RU2721604C1 (ru) 2019-06-07 2019-06-07 Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2721604C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN117205368A (zh) * 2023-08-30 2023-12-12 烟台正海生物科技股份有限公司 一种改善脱细胞骨材料成骨效应制备方法及材料

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2172104C1 (ru) * 2000-06-15 2001-08-20 ГУН Центральный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова Способ изготовления имплантатов из губчатой костной ткани
RU2342162C1 (ru) * 2005-10-27 2008-12-27 Саващук Дмитрий Алексеевич Способ получения биоматериалов из костной ткани и полученный этим способом материал для остеопластики и тканевой инженерии
GB2469205A (en) * 2009-04-04 2010-10-06 Common Services Agency Bone washing process
RU2665962C1 (ru) * 2017-03-17 2018-09-05 Общество с ограниченной ответственностью "Матрифлекс" Биорезорбируемый биологический матрикс для замещения дефектов костной ткани и способ его получения
RU2686309C1 (ru) * 2018-11-07 2019-04-25 Владимир Семенович Акатов Способ изготовления остеопластического материала из костной ткани

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2172104C1 (ru) * 2000-06-15 2001-08-20 ГУН Центральный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова Способ изготовления имплантатов из губчатой костной ткани
RU2342162C1 (ru) * 2005-10-27 2008-12-27 Саващук Дмитрий Алексеевич Способ получения биоматериалов из костной ткани и полученный этим способом материал для остеопластики и тканевой инженерии
GB2469205A (en) * 2009-04-04 2010-10-06 Common Services Agency Bone washing process
RU2665962C1 (ru) * 2017-03-17 2018-09-05 Общество с ограниченной ответственностью "Матрифлекс" Биорезорбируемый биологический матрикс для замещения дефектов костной ткани и способ его получения
RU2686309C1 (ru) * 2018-11-07 2019-04-25 Владимир Семенович Акатов Способ изготовления остеопластического материала из костной ткани

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN117205368A (zh) * 2023-08-30 2023-12-12 烟台正海生物科技股份有限公司 一种改善脱细胞骨材料成骨效应制备方法及材料

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5940095B2 (ja) ウォートン・ジェリーで構成されている積層組織移植片ならびにそれを作成および使用する方法
JP5053470B2 (ja) グラフト・プロテーゼとその材料及び方法
JP6681872B2 (ja) 細胞外マトリクス由来最終滅菌ヒドロゲルの調製方法
JPH0553506B2 (ru)
US20090162452A1 (en) EB Matrix Production From Animal Tissue And Its Use For Tissue Repair
RU2609201C1 (ru) Способ получения остеопластического материала
KR20110013419A (ko) 가공된 양막 조직을 포함하는 유착 방지 배리어 상처 드레싱 및 이를 사용하는 방법
EP2641622B1 (en) Method for producing a bone transplant material
WO2018169442A1 (ru) Биорезорбируемый биологический матрикс для замещения дефектов костной ткани и способ его получения
KR20100040427A (ko) 자기 치아를 이용한 치료방법 및 치아 처리방법
JP2022017214A (ja) 生体材料インプラントおよびそれを作製する方法
RU2342162C1 (ru) Способ получения биоматериалов из костной ткани и полученный этим способом материал для остеопластики и тканевой инженерии
JP2006230749A (ja) 軟骨組織に補綴材を固定するための材料
KR101229436B1 (ko) 골재생재 및 그 제조방법
RU2721604C1 (ru) Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани
JPH08276003A (ja) 硬組織修復材料および埋入型医療用具
RU2691983C1 (ru) Способ очистки, модификации и стерилизации производных костной ткани и кожного матрикса с использованием сверхкритического флюида
CN114796615B (zh) 一种软骨脱细胞基质及其制备方法
KR100393469B1 (ko) 동물 뼈를 이용한 골 대체물 제조방법
CN114904055B (zh) 一种生物型巩膜修复材料及其制备方法
WO1996012509A1 (en) Process for inactivating and eliminating the organic matrix from animal bone for heterotopic xenografts
RU2663283C1 (ru) Способ получения материала для биопластических операций и материал для биопластических операций
RU2456003C1 (ru) Способ получения деминерализованного костного матрикса в виде крошки
RU2758556C1 (ru) Способ моделирования дефекта костной ткани для изучения остеоинтеграции костнопластического материала и регенерации губчатой костной ткани в эксперименте на кроликах
KR100519199B1 (ko) 흡수지연성 골절고정물의 제조방법