RU2707289C1 - Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals - Google Patents

Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals Download PDF

Info

Publication number
RU2707289C1
RU2707289C1 RU2018121179A RU2018121179A RU2707289C1 RU 2707289 C1 RU2707289 C1 RU 2707289C1 RU 2018121179 A RU2018121179 A RU 2018121179A RU 2018121179 A RU2018121179 A RU 2018121179A RU 2707289 C1 RU2707289 C1 RU 2707289C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
streptococcus
pseudomonosis
cells
streptococcosis
cattle
Prior art date
Application number
RU2018121179A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Александр Алексеевич Шевченко
Людмила Васильевна Шевченко
Олег Юрьевич Черных
Анастасия Руслановна Литвинова
Анастасия Викторовна Торопыно
Екатерина Романовна Украина
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина"
Priority to RU2018121179A priority Critical patent/RU2707289C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2707289C1 publication Critical patent/RU2707289C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/09Lactobacillales, e.g. aerococcus, enterococcus, lactobacillus, lactococcus, streptococcus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/104Pseudomonadales, e.g. Pseudomonas
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/116Polyvalent bacterial antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: medicine; veterinary.
SUBSTANCE: invention refers to veterinary medicine, namely to a method for producing a vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of cattle. Method involves selection of affected organs from diseased and dead animals from local epizootic focus, from which a suspension is prepared and seeding on differential diagnostic media, after which pure cultures of pathogens are isolated. Separately, E. coli, Str. galloliticus and Ps. aeruginosa are grown in meat-and-peptone broth with addition of glucose to 0.2 % concentration with titre of 4–5 billion microbial cells per 1 cm3. Thereafter, cultures of the disease pathogens are inactivated with formalin to a final concentration of not more than 0.4 % final concentration at temperature of 37 °C for 72–96 hours. Adjuvant is then added to the mixture of inactivated crops, in the form of an aluminium hydroxide gel in amount of 20 % by volume, before the end product is thoroughly mixed.
EFFECT: present method enables producing a vaccine associated with cattle stable in storage, associated with colibacillosis, streptococcus and cattle pseudomonosis.
1 cl, 1 tbl

Description

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности, к микробиологии и может быть использовано в научно-исследовательских и производственных учреждениях, занимающихся разработкой и конструированием вакцинных препаратов, а также на предприятиях биологической промышленности.The invention relates to the field of veterinary medicine, in particular to microbiology and can be used in research and production institutions involved in the development and construction of vaccines, as well as in enterprises of the biological industry.

Известен аналоговый способ изготовления вакцины, ассоциированной против эшерихиоза, стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота (патент РФ на изобретение №2538158 от 30.12.2013, МКИ А61/К 39/116, 39/108), включающем раздельное получение антигенов с последующим их смешиванием, внесение адъюванта, согласно изобретению проводят отбор патологического материала от больного и павшего крупного рогатого скота из местного эпизоотического очага, затем из отобранного патологического материала приготавливают суспензию и далее делают посев на дифференциально-диагностические среды, после чего выделяют клетки чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, стрептококкоза Streptococcus pneumoniae и стафилококкоза Staphylococcus aureus, затем раздельно выращивают клетки чистых культур возбудителей эшерихиоза, стрептококкоза и стафилококкоза в мясо - пептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, после этого раздельно инактивируют клетки чистых культур возбудителей эшерихиоза, стрептококкоза и стафилококкоза формалином до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании, потом смешивают клетки чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, стрептококкоза Streptococcus pneumoniae и стафилококкоза Staphylococcus aureus в равных соотношениях, затем в смесь инактивированных клеток чистых культур вносят адъювант, качестве которого используют гидроокись алюминия в количестве 20% к объему, а перед фасовкой тщательно перемешивают конечный продукт.A known analogue method of manufacturing a vaccine associated against escherichiosis, streptococcosis and staphylococcosis in cattle (RF patent for the invention No. 2538158 dated 12/30/2013, MKI A61 / K 39/116, 39/108), including the separate production of antigens with their subsequent mixing, introduction of an adjuvant, according to the invention, pathological material is taken from the sick and fallen cattle from the local epizootic focus, then a suspension is prepared from the selected pathological material and then the diffusion is inoculated potential diagnostic medium, after which cells of pure cultures of Escherichia coli Escherichia coli, Streptococcus pneumoniae streptococcosis and Staphylococcus aureus staphylococcosis pathogens are isolated, then pure culture cells of Escherichiosis pathogens, streptococcosis and glucose staphylococcosis are added separately to meat - 0.2% concentration with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , then cells of pure cultures of causative agents of Escherichiosis, streptococcosis and staphylococcosis with formalin are separately inactivated to 0.4-0.5% of the final concentration at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring, then cells of pure cultures of Escherichia coli, Escherichia coli, streptococcosis Streptococcus pneumoniae and Staphylococcus aureus staphylococcosis in equal proportions are mixed, then the adjuvant is used in the mixture of inactivated cells of pure cultures, which is used as an adjuvant aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume, and before packing, the final product is thoroughly mixed.

Техническим результатом изобретения является получение безвредной, специфичной, высокоиммуногенной ассоциированной вакцины для защиты крупного рогатого скота против эшерихиоза, стрептококкоза и псевдомоноза, путем введения новых возбудителей, компонентов, исключая отрицательное и побочное влияние.The technical result of the invention is to obtain a harmless, specific, highly immunogenic associated vaccine for the protection of cattle against Escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis by introducing new pathogens, components, eliminating the negative and side effects.

Способ изготовления вакцины, ассоциированной против эшерихиоза, стрептококкоза и псевмоноза крупного рогатого скота, включающий получение антигенов в виде суспензий приготовленных из проб патологического материала взятых от больного и павшего крупного рогатого скота из местного эпизоотического очага, посев на дифференциально-диагностические среды, выделение клеток чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, стрептококкоза Streptococcus, с раздельным их выращиванием в мясо-пептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, раздельную инактивацию клеток чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, стрептококкоза Streptococcus формалином до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании, смешивание их в равных соотношениях, внесение в смесь инактивированных клеток чистых культур адъюванта, в качестве которого используют гидроокись алюминия в количестве 20% к объему, тщательное смешивание и повторное тщательное смешивание, перед фасовкой конечного продукта отличающийся тем, что дополнительно выделяют клетки чистой культуры возбудителей псевдомоноза Pseudomonas aeruginosa и стрептококкоза Streptococcus gallolyicus, которые раздельно выращивают в мясо-пептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, проводят их раздельную инактивацию формалином до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании и смешивают клетки чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, псевдомоноза Pseudomonas aeruginosa и стрептококкоза Streptococcus gallolyicus в равных соотношениях.A method of manufacturing a vaccine associated against Escherichiosis, streptococcosis and pseudonomy in cattle, comprising obtaining antigens in the form of suspensions prepared from samples of pathological material taken from a sick and fallen cattle from a local epizootic focus, plating on differential diagnostic media, isolation of pure culture cells pathogens of Escherichia coli Escherichiosis, Streptococcus streptococcosis, with their separate cultivation in meat-peptone broth with the addition of glucose up to 0.2% concentration uu 4-5 billion a titer of microbial cells per 1 cm 3, the separate inactivation of pure cultures of cells ehsherihioza pathogens Escherichia coli, Streptococcus streptococcosis 0.4-0.5% formalin to a final concentration of strength at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring, mixing them in equal proportions, introducing into the mixture of inactivated cells pure cultures of adjuvant, which is used aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume, thorough mixing and repeated thorough mixing, before packing the final product from characterized by the fact that cells of a pure culture of pathogens of pseudomonosis Pseudomonas aeruginosa and streptococcosis Streptococcus gallolyicus are additionally isolated, which are separately grown in meat-peptone broth with glucose added to 0.2% concentration with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , they are separately inactivated by formalin to a 0.4-0.5% final concentration at 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring and cells of pure cultures of Escherichia coli, Escherichia coli, pseudomonas Pseudomonas aeruginosa and streptococcus pathogens are mixed and Streptococcus gallolyicus in equal proportions.

Новизна заявляемого предложения обусловлена тем, что в отличие от известных способов, проводят отбор патологического материала от больного и павшего крупного рогатого скота из местного эпизоотического при эшерихиозе, стрептококкозе и псевдомоноза, из которого приготавливают суспензию, выделяют клетки чистых культур возбудителей посевом на дифференциально-диагностические среды, раздельно выращивают клетки чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, стрептококкоза Streptococcus pneumoniae и псевдомоны Pseudomonas aeruginosa и получают концентрацию микробных клеток не менее 4-5 млрд в 1 см3, инактивируют формалином и смешивают инактивированные клетки чистых культур в равных соотношениях, что позволяет полностью подавить патогенность и сохранить высокую иммуногенность против эшерихиоза, стрептококкоза и псевдомоноза.The novelty of the proposed proposal is due to the fact that, in contrast to the known methods, pathological material is selected from a sick and fallen cattle from a local epizootic in case of Escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis, from which a suspension is prepared, cells of pure cultures of pathogens are sown on differential diagnostic media , cells of pure cultures of Escherichia coli Escherichiosis causative agents, Streptococcus pneumoniae streptococcosis and Pseudomonas aeruginosa pseudomon are separately grown and a concentration is obtained microbial cells of at least 4-5 billion in 1 cm3, inactivate formalin and mix inactivated cells of pure cultures in equal proportions, which allows to completely suppress pathogenicity and maintain high immunogenicity against escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis.

По данным патентной и научно - технической литературы не обнаружена аналогичная заявляемой совокупность признаков, что позволяет судить об изобретательском уровне заявленного технического решения.According to the patent and scientific and technical literature, no similar set of features has been found that allows judging the inventive step of the claimed technical solution.

Что касается критерия «промышленная применимость», то компоненты входящие в состав вакцины известны и широко применяются в ветеринарной практике при изготовлении инактивированных вакцин: инструкция по изготовлению и контролю формолвакцины поливалентной гидроокисьалюминиевой против колибактериоза (эшерихиоза) поросят, телят и ягнят, утвержденная ГУВ МСХ СССР 26.04.1984 г.; ассоциированная вакцина против сальмонеллеза, пастереллеза и энтерококковой инфекции поросят ТУ 10.09-62-90, утверждено 01.08.90 г., инструкция по изготовлению и контролю данной вакцины утверждена Главным управлением ветеринарии 16.07.90 г. представлены все необходимые сведения о микроорганизмах.As for the criterion of “industrial applicability”, the components included in the vaccine composition are known and widely used in veterinary practice in the manufacture of inactivated vaccines: instructions for the manufacture and control of polyvalent aluminum hydroxide aluminum formol vaccine against colibacteriosis (Escherichiosis) of piglets, calves and lambs, approved by the GUV Ministry of Agriculture of the USSR on 26.04 .1984; associated vaccine against salmonellosis, pasteurellosis and enterococcal infection of piglets TU 10.09-62-90, approved 01.08.90, instructions for the manufacture and control of this vaccine approved by the General Directorate of Veterinary Medicine on July 16, 90 provide all the necessary information about microorganisms.

Методы выделения чистой культуры возбудителя эшерихиоза и характеристика описаны в «Методических указаниях по бактериологической диагностике колибактериоза (эшерихиоза) животных», утвержденных 27.07.2000 г. №13-7-2/2117, Департаментом ветеринарии МСХ РФ, описана характеристика эшерихий в справочнике «Определитель зоопатогенных микроорганизмов» под редакцией профессора Сидорова М.А., Москва- Колос, 1995, стр. 196-201, а также в «Практикуме по ветеринарной микробиологии и иммунологии» авторы: Костенко Т.С., Родионова В.Б., Скородумов Д.И., М.: «Колос», 2001, на стр. 219-222.The methods for isolating the pure culture of the causative agent of Escherichiosis and the characteristics are described in the "Methodological guidelines for the bacteriological diagnosis of colibacteriosis (Escherichiosis) of animals", approved on July 27, 2000 No. 13-7-2 / 2117, by the Department of Veterinary Medicine of the Ministry of Agriculture of the Russian Federation, describes the characteristics of Escherichia in the guide "Key of zoopathogenic microorganisms ”edited by Professor Sidorov MA, Moscow-Kolos, 1995, pp. 196-201, as well as in the“ Workshop on Veterinary Microbiology and Immunology ”authors: Kostenko TS, Rodionova VB, Skorodumov D.I., M .: "Ear", 2001, on pages 219-222.

Методы выделения и характеристика стрептококков представлены в «Методических указаниях по лабораторной диагностике стрептококкоза животных», утвержденных 25.09.1990 г., Главным управлением ветеринарии с государственной инспекцией при Государственной комиссии СМ СССР по продовольствию и закупкам, а также в справочнике «Определитель зоопатогенных микроорганизмов» под редакцией профессора Сидорова М.А., Москва. - Колос, 1995, стр. 90-95; в справочнике «Микробиологическая диагностика бактериальных болезней животных» авторы: Скородумов Д.И., Субботин В.В., Сидоров М.А., Костенко Т.С., М.: «ИзограФъ», 2005, на стр. 249-257.Methods of isolation and characterization of streptococci are presented in the Methodological Instructions for the Laboratory Diagnosis of Animal Streptococcosis, approved on September 25, 1990, by the General Directorate of Veterinary Medicine with the State Inspectorate under the State Commission of the USSR Council of Ministers for Food and Procurement, and also in the reference book “Identifier of zoopathogenic microorganisms” Edited by Professor Sidorov M.A., Moscow. - Kolos, 1995, pp. 90-95; in the reference book “Microbiological diagnosis of animal bacterial diseases” authors: Skorodumov DI, Subbotin VV, Sidorov MA, Kostenko TS, M .: “IzograF”, 2005, on pages 249-257 .

Методы выделения и характеристика микроорганизмов рода Pseudomonas описаны в «Практикуме по ветеринарной микробиологии и иммунологии» авторы: Костенко Т.С., Родионова В.Б., Скородумов Д.И., М.: «Колос», 2001, на стр. 259-261; в справочнике «Микробиологическая диагностика бактериальных болезней животных» авторы: Скородумов Д.И., Субботин В.В., Сидоров М.А., Костенко Т.С., М.: «ИзограФъ», 2005, на стр. 522-525.Methods of isolation and characterization of microorganisms of the genus Pseudomonas are described in the "Workshop on Veterinary Microbiology and Immunology" authors: Kostenko TS, Rodionova VB, Skorodumov DI, M .: Kolos, 2001, p. 259 -261; in the reference book “Microbiological diagnosis of animal bacterial diseases” authors: Skorodumov DI, Subbotin VV, Sidorov MA, Kostenko TS, M .: “IzograF”, 2005, on pages 522-525 .

Пример конкретного осуществления способа изготовления вакцины.An example of a specific implementation of the method of manufacturing a vaccine.

Для изготовления вакцины ассоциированной против эшерихиоза, стрептококкоза и псевдомоноза крупного рогатого скота проводят отбор пораженных органов от больных и павших животных в период заболевания их эшерихиозом, стрептококкозом и псевдомонозом, из которых приготавливают суспензию и проводят лабораторные исследования с целью выделения чистых культур возбудителей.For the manufacture of a vaccine associated against Escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis in cattle, the selection of affected organs from sick and dead animals during the period of their illness with Escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis is carried out, from which a suspension is prepared and laboratory studies are performed to isolate pure cultures of pathogens.

Для определения морфологии и тинкториальных свойств возбудителя эшерихиоза готовят мазки - отпечатки из пораженных органов павших нутрий, путем прикосновения обезжиренным стеклом к свежему разрезу пораженной ткани и последующей фиксацией над пламенем спиртовки, окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании препаратов под иммерсионной системой микроскопа наблюдают толстые палочки с закругленными концами красного цвета, расположенные одиночно, что характерно для E.coli.To determine the morphology and tinctorial properties of the causative agent of Escherichiosis, smears are prepared - fingerprints from the affected organs of the fallen nutria, by touching fat-free glass to a fresh section of the affected tissue and subsequent fixation over the flame of an alcohol lamp, they are stained using the Gram method. When microscopying the preparations under the immersion system of the microscope, thick sticks with rounded red ends, located singly, are observed, which is typical for E. coli.

Для определения культуральных свойств возбудителя эшерихиоза Е. coli делают посевы выделенной культуры из патологического материала в мясо - пептонный бульон (МПБ), на среду Эндо, на мясо - пептонный агар (МПА) и инкубируют в термостате при 37°С в течение 16-24 часов. На чашках Петри с МПА выростают влажные колонии с ровными краями и гладкой поверхностью серого цвета. В пробирках с МПБ наблюдали равномерное помутнение питательной среды с небольшим осадком, разбивающимся при встряхивании. В чашках Петри, на среде Эндо наблюдают рост колоний малиново-красного цвета с розовым ободкам диаметром 2-3 мм, характерные для Е. coli.To determine the cultural properties of the causative agent of Escherichiosis E. coli, the selected culture is inoculated from pathological material into meat - peptone broth (MPB), on Endo medium, on meat - peptone agar (MPA) and incubated in an incubator at 37 ° C for 16-24 hours. Wet colonies with smooth edges and a smooth gray surface grow on Petri dishes with MPA. In test tubes with BCH, a uniform turbidity of the nutrient medium was observed with a small precipitate breaking upon shaking. In Petri dishes on Endo medium, raspberry-red colonies with pink rims 2-3 mm in diameter, characteristic of E. coli, are observed.

При определении биохимической активности чистых баккультур проводят посевы на дифференциально - диагностические среды с различным набором компонентов. Для Е. coli характерно расщепление глюкозы и лактозы с образованием кислоты и газа, выделение индола, отсутствие уреазы.When determining the biochemical activity of pure bacultures, crops are sown on differential diagnostic media with a different set of components. E. coli is characterized by the breakdown of glucose and lactose with the formation of acid and gas, the release of indole, and the absence of urease.

Патогенность чистых выделенных культур определяют путем внутрибрюшинного заражения белых мышей массой 14-18 г. Через 2-4 суток наблюдения все зараженные лабораторные животные погибают при 100% сохранности в контроле. Для подтверждения специфичности гибели мышей из паренхиматозных органов павших мышей приготавливают мазки - отпечатки, окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании под иммерсионной системой микроскопа в препаратах видны толстые палочки с закругленными концами красного цвета, расположенные одиночно, характерные для Е. coli. Серологическую типизацию кишечной палочки проводят в реакции агглютинации с набором типоспецифических сывороток по общепринятой методике в пробирках.The pathogenicity of pure isolated cultures is determined by intraperitoneal infection of white mice weighing 14-18 g. After 2-4 days of observation, all infected laboratory animals die at 100% safety in the control. To confirm the specificity of the death of mice from the parenchymal organs of fallen mice, smears — fingerprints — are prepared and stained using the Gram method. When microscoping under the immersion system of the microscope, thick sticks with rounded red ends, located singly, characteristic of E. coli, are visible in the preparations. Serological typification of Escherichia coli is carried out in an agglutination reaction with a set of type-specific sera according to the standard technique in test tubes.

В реакции агглютинации исследуемая культура кишечной палочки реагирует с колисывороткой и виден хлопьевидный осадок (положительный результат) при отрицательном контроле.In the agglutination reaction, the test culture of Escherichia coli reacts with colic serum and a flocculent precipitate (positive result) is visible with a negative control.

Для определения морфологии и тинкториальных свойств возбудителя стрептококкоза готовят мазки - отпечатки из пораженных органов павших нутрий, путем прикосновения обезжиренным стеклом к свежему разрезу пораженной ткани и последующей фиксацией над пламенем спиртовки, окрашивают их по методу Грама. При микроскопии препаратов под иммерсионной системой микроскопа наблюдают мелкие кокки в виде цепочек, окрашенные в фиолетовый цвет, характерные для рода Streptococcus. Для определения культуральных свойств возбудителя делают посевы выделенной культуры из патматериала в мясо-пептонный бульон с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации и 10% инактивированной сыворотки лошади (МПБ), в чашки Петри с мясо-пептонным агаром (МПА) с добавлением с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации и 5% дефибринированной крови кролика. Через 18-20 часов инкубирования в термостате при температуре 37°С наблюдают в МПБ рост в виде диффузного помутнения среды. В чашках Петри с кровяным МПА наблюдают рост мелких росинчатых, слегка мутноватых с ровными краями колоний, окруженных зеленоватой зоной гемолиза, что характерно для Streptococcus galloliticus.To determine the morphology and tinctorial properties of the causative agent of streptococcosis, smears are prepared - fingerprints from the affected organs of the fallen nutria, by touching fat-free glass to a fresh section of the affected tissue and subsequent fixation over the flame of an alcohol lamp, they are stained using the Gram method. Microscopy of preparations under the immersion microscope system observed small cocci in the form of chains, colored in purple, characteristic of the genus Streptococcus. To determine the cultural properties of the pathogen, crops of the isolated culture are made from the material in the meat-peptone broth with glucose up to 0.2% final concentration and 10% inactivated horse serum (MPB), in Petri dishes with meat-peptone agar (MPA) with by adding glucose to 0.2% final concentration and 5% defibrinated rabbit blood. After 18-20 hours of incubation in a thermostat at a temperature of 37 ° C, growth in the form of diffuse turbidity of the medium is observed in the BCH. In petri dishes with blood MPA, growth of small dewy, slightly turbid with flat edges of colonies surrounded by a greenish hemolysis zone is observed, which is typical for Streptococcus galloliticus.

Для дифференциации стрептококков от стафилококков используют каталазную пробу. При постановке каталазной пробы на предметное стекло наносят каплю свежеприготовленного 3%-ного раствора перекиси водорода. Бактериологической петлей снимают одну колонию исследуемой культуры и растирают ее в капле перекиси водорода. Стафилококки, в отличие от стрептококков, образуют каталазу и вызывают пенообразование. Для предварительной идентификации стрептококков и энтерококков баккультуру высевают в пробирки с 10%, 40% желчи, с 6,5% хлористого натрия, с углеводами (раффинозой, сорбитом, маннитом), учитывают рост в жидкой среде и гемолиз на МПА с кровью.To differentiate streptococci from staphylococci, a catalase test is used. When staging a catalase sample, a drop of a freshly prepared 3% hydrogen peroxide solution is applied to a glass slide. Bacteriological loop remove one colony of the studied culture and rub it in a drop of hydrogen peroxide. Staphylococci, unlike streptococci, form catalase and cause foaming. For preliminary identification of streptococci and enterococci, the culture is seeded in test tubes with 10%, 40% bile, with 6.5% sodium chloride, with carbohydrates (raffinose, sorbitol, mannitol), growth in a liquid medium and hemolysis on MPA with blood are taken into account.

В результате в пробирках с желчью наблюдают диффузный рост баккультры, отмечают ферментацию маннита. На МПА с кровью наблюдают неполный гемолиз эритроцитов с образованием вокруг колоний зеленоватой зоны, что характерно для стрептококков группы D.As a result, diffuse growth of baculture is observed in test tubes with bile, fermentation of mannitol is noted. On blood MPA, incomplete hemolysis of red blood cells is observed with the formation of a greenish zone around the colonies, which is typical for group D streptococci.

Для установления серогрупповой принадлежности стрептококков используют стрептококковые групповые преципитирующие сыворотки. Серо-групповую принадлежность стрептококков определяют в реакции преципитации (РП) в капиллярах. Патогенность подтверждают биопробой на молодых белых мышках.To establish the serogroup affiliation of streptococci, streptococcal group precipitating serums are used. The gray-group affiliation of streptococci is determined in the precipitation reaction (RP) in the capillaries. Pathogenicity is confirmed by bioassay on young white mice.

Выращивание чистой культуры возбудителя проводят в мясопептонном бульоне. Для заражения берут 1-2 см3 культуру Streptococcus galloliticus и засевают 80-100 мл жидкой питательной среды и выращивают при 37°С в течение 12-14 часов. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяют по стандарту мутности и разводят стерильной дистиллированной водой до концентрации 4-5 млрд. в 1 см3.The cultivation of a pure culture of the pathogen is carried out in meat and peptone broth. For infection, take 1-2 cm 3 culture of Streptococcus galloliticus and inoculate 80-100 ml of liquid nutrient medium and grow at 37 ° C for 12-14 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass is determined according to the turbidity standard and diluted with sterile distilled water to a concentration of 4-5 billion in 1 cm 3 .

Для определения хморфологии и тинкториальных свойств возбудителя псевдомоноза готовят мазки-отпечатки из пораженных органов павших животных, окрашивают их по методу Грама. При микроскопии препаратов под иммерсионной системой микроскопа видны прямые или изогнутые палочки размером 1,5-3,0 мкм, располагающиеся одиночно, парами, в виде цепочек, окрашенные в розовый цвет, характерные для Ps. aeruginosa.To determine the morphology and tinctorial properties of the causative agent of pseudomonosis, fingerprints are prepared from the affected organs of the fallen animals, and they are stained using the Gram method. During microscopy of the preparations, under the immersion system of the microscope, straight or curved sticks 1.5–3.0 μm in size are visible, located singly, in pairs, in the form of chains, colored pink, characteristic of Ps. aeruginosa.

Для определения культуральных свойств возбудителя псевдомоноза делают посевы выделенной культуры из патматериала в мясо - пептонный бульон, в чашки Петри с мясо - пептонным агаром (МПА), кровяной МПА и селективную среду, содержащую цетилтриметил аммония бромид, на которой другие псевдомонады не растут.To determine the cultural properties of the causative agent of pseudomonosis, the selected culture is inoculated with meat - peptone broth, Petri dishes with meat - peptone agar (MPA), blood MPA and selective medium containing cetyltrimethyl ammonium bromide, on which other pseudomonads do not grow.

Через 24 часа инкубирования в термостате при температуре 37°С наблюдают поверхностную серебристо-белую пленку в МПБ, характерный признак и помутнение среды. В чашках Петри с кровяным МПА наблюдают рост сероватых, полупрозрачных колоний, окруженных зеленоватой зоной гемолиза, что характерно для Pseudomonas aeruginosa.After 24 hours of incubation in a thermostat at a temperature of 37 ° C, a surface silver-white film in BCH is observed, a characteristic sign and turbidity of the medium. In Petri dishes with blood MPA, growth of grayish, translucent colonies surrounded by a greenish hemolysis zone is observed, which is typical for Pseudomonas aeruginosa.

Выделенные таким образом чистые культуры возбудителей колибактериоза Е. coli, стрептококкоза Streptococcus galloliticus и псевдомоноза Ps. aeruginosa используют для получения вакцины.Pure cultures of E. coli colibacteriosis, streptococcosis Streptococcus galloliticus and pseudomonosis Ps. aeruginosa is used to produce the vaccine.

Выращивание чистых культур возбудителей проводят раздельно в мясо - пептонном бульоне. Для заражения берут 5 см3 свежей чистой культуры возбудителей колибактериоза Е. coli, стрептококкоза Streptococcus galloliticus и псевдомоноза Ps. aeruginosa на 1000 см3 мясо - пептонной питательной среды с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации и выращивают при 37°С в течение 12-14 часов. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяют по стандарту мутности и разводят стерильной дистиллированной водой до концентрации 4-5 млрд. в 1 см3. Инактивацию полученного баксырья проводят внесением формалина 0,4-0,5%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании.The cultivation of pure cultures of pathogens is carried out separately in meat - peptone broth. For infection, take 5 cm 3 fresh clean culture of the causative agents of colibacteriosis E. coli, streptococcosis Streptococcus galloliticus and pseudomonosis Ps. aeruginosa per 1000 cm 3 meat - peptone culture medium with the addition of glucose to 0.2% concentration and grown at 37 ° C for 12-14 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass is determined according to the turbidity standard and diluted with sterile distilled water to a concentration of 4-5 billion in 1 cm 3 . The inactivation of the obtained raw materials is carried out by introducing formalin of 0.4-0.5% final concentration, kept at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring.

Таким образом, использование для изготовления вакцины ассоциированной против эшерихиоза, стрептококкоза и псевдомоноза чистых культур возбудителей Е. coli, Str. galloliticus и Ps. aeruginosa, выделенных из местного эпизоотического очага, позволяет получать специфичную, высокоиммуногенную ассоциированную вакцину для защиты от этих трех опасных инфекционных болезней эшерихиоза, стрептококкоза и псевдомоноза крупного рогатого скота. Раздельное выращивание возбудителей позволяет получать концентрацию Е. coli, Str. galloliticus и Ps. aeruginosa не менее 4 млрд. в 1 см3 в течение 12-14 часов инкубирования. Использование формалина для инактивации в 0,1-0,4% ной конечной концентрации позволяет в течение 48-96 часов при температуре 37°С подавить патогенность и сохранить высокую иммуногенность в течение 12 месяцев хранения. Вакцина, полученная заявляемым способом, прошла апробацию. Кроликам вводили однократно в дозе 1 см3 полученную ассоциированную вакцину, и через 12-15 суток у привитых животных обеспечивается формирование напряженного иммунитета против эшерихиоза, стрептококкоза и псевдомоноза крупного рогатого скота, продолжительностью не менее 9 месяцев (срок наблюдения). После однократного введения животным внутримышечно не вызывает у них поствакцинальных осложнений.Thus, the use for the manufacture of a vaccine associated against Escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis of pure cultures of pathogens E. coli, Str. galloliticus and Ps. aeruginosa, isolated from a local epizootic focus, provides a specific, highly immunogenic, associated vaccine to protect against these three dangerous infectious diseases of Escherichiosis, streptococcosis and cattle pseudomonosis. Separate growth of pathogens allows to obtain a concentration of E. coli, Str. galloliticus and Ps. aeruginosa at least 4 billion in 1 cm 3 for 12-14 hours of incubation. The use of formalin for inactivation in 0.1–0.4% final concentration makes it possible to suppress pathogenicity for 48–96 hours at a temperature of 37 ° С and maintain high immunogenicity during 12 months of storage. The vaccine obtained by the claimed method, has been tested. The rabbits were injected once with the received associated vaccine at a dose of 1 cm 3 , and after 12-15 days in vaccinated animals the formation of intense immunity against Escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis of cattle, lasting at least 9 months (observation period) is provided. After a single injection, the animals do not intramuscularly cause post-vaccination complications.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Предложенный способ прост в исполнении, доступен и является промышленно применимым.The proposed method is simple to implement, affordable and is industrially applicable.

Claims (1)

Способ изготовления вакцины, ассоциированной против эшерихиоза, стрептококкоза и псевдомоноза крупного рогатого скота, включающий получение антигенов в виде суспензий, приготовленных из проб патологического материала, взятых от больного и павшего крупного рогатого скота из местного эпизоотического очага, посев на дифференциально-диагностические среды, выделение клеток чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, стрептококкоза Streptococcus, с раздельным их выращиванием в мясопептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, раздельную инактивацию клеток чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, стрептококкоза Streptococcus формалином до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании, смешивание их в равных соотношениях, внесение в смесь инактивированных клеток чистых культур адъюванта, в качестве которого используют гидроокись алюминия в количестве 20% к объему, тщательное смешивание и повторное тщательное смешивание перед фасовкой конечного продукта, отличающийся тем, что дополнительно выделяют клетки чистой культуры возбудителей псевдомоноза Pseudomonas aeruginosa и стрептококкоза Streptococcus gallolyticus, которые раздельно выращивают в мясопептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, проводят их раздельную инактивацию формалином до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании и смешивают клетки чистых культур возбудителей эшерихиоза Escherichia coli, псевдомоноза Pseudomonas aeruginosa и стрептококкоза Streptococcus gallolyticus в равных соотношениях.A method of manufacturing a vaccine associated against Escherichiosis, streptococcosis and pseudomonosis in cattle, comprising obtaining antigens in the form of suspensions prepared from samples of pathological material taken from a patient and fallen cattle from a local epizootic focus, plating on differential diagnostic media, isolation of cells pure cultures of Escherichia coli Escherichiosis causative agents, Streptococcus streptococcosis, with their separate cultivation in meat and peptone broth with glucose added to 0.2% radios with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , separate inactivation of cells of pure cultures of Escherichia coli causative agents of Escherichiosis, streptococcosis Streptococcus formalin to a 0.4-0.5% final concentration at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring, mixing them in equal proportions, introducing into the mixture of inactivated cells pure cultures of adjuvant, which is used aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume, thorough mixing and repeated thorough mixing before packing the final product, characterized in that cells of a pure culture of pathogens of pseudomonosis Pseudomonas aeruginosa and streptococcosis Streptococcus gallolyticus, which are separately grown in meat and peptone broth with the addition of glucose to 0.2% concentration with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , are additionally isolated separate formalin inactivation to 0.4-0.5% final concentration at 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring and cells of pure cultures of Escherichia coli, Escherichia coli pathogens, Pseudomonas aeruginosa pseudomonosis and streptococcus are mixed goat Streptococcus gallolyticus in equal proportions.
RU2018121179A 2018-06-07 2018-06-07 Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals RU2707289C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018121179A RU2707289C1 (en) 2018-06-07 2018-06-07 Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018121179A RU2707289C1 (en) 2018-06-07 2018-06-07 Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2707289C1 true RU2707289C1 (en) 2019-11-26

Family

ID=68653007

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018121179A RU2707289C1 (en) 2018-06-07 2018-06-07 Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2707289C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2308288C1 (en) * 2006-03-20 2007-10-20 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" Polyvalent vaccine against pseudomonasis in farm animals
WO2010051210A1 (en) * 2008-10-31 2010-05-06 Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. Use of various antigens including antigens from mycoplasma bovis in multivalent vaccine composition
RU2538158C1 (en) * 2013-12-30 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2308288C1 (en) * 2006-03-20 2007-10-20 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" Polyvalent vaccine against pseudomonasis in farm animals
WO2010051210A1 (en) * 2008-10-31 2010-05-06 Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. Use of various antigens including antigens from mycoplasma bovis in multivalent vaccine composition
RU2538158C1 (en) * 2013-12-30 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
De Herdt P. et al. Efficacy of inactivated whole-cell vaccines against streptococcosis in pigeons // Avian Pathol. 1999 Aug;28(4):355-61. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2429012C1 (en) Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets
Rahman et al. Development of experimental oil based inactivated HS vaccine from field Isolates of Pasteurella multocida from Cattle in Bangladesh
RU2687488C1 (en) Poly-strain formolated vaccine against calves pneumonia streptococcal etiology
RU2538158C1 (en) Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle
RU2388489C1 (en) Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias
RU2707289C1 (en) Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals
Adegoke Characteristics of staphylococci isolated from man, poultry and some other animals
RU2553556C1 (en) Vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle
RU2649754C2 (en) Method of manufacture of formolvaccine of hydrooxyaluminum polystammal against streptococcal diseases of large cattle
RU2316345C1 (en) Method for manufacturing associated vaccione against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias
RU2432174C1 (en) Method for producing colibacillosis anatoxin
RU2288002C1 (en) Method for preparing vaccine against enterococcus infection in nutrias
RU2406532C1 (en) Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle
RU2301077C1 (en) Method for preparing mixed vaccine against coli-bacteriosis, salmonellosis and streptococcosis in nutria
RU2429880C1 (en) Method to manufacture vaccine associated against streptococcosis and virus haemorrhagic disease of rabbits
RU2406530C1 (en) Method of manufacturing associated vaccine against streptococcosis, pseudomonosis and enterococcal infection of nutrias
RU2338554C2 (en) Method of manufacturing of vaccine associated against colibacillosis, salmonellosis and enterococcus infections of nutrias
RU2443774C1 (en) Method for producing associated colibacillosis, streptococcosis and rabbit viral hemorrhagic disease vaccine
RU2404801C1 (en) Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits
RU2722668C1 (en) Method of producing inactivated vaccine against pulmonary diseases of young animals of productive animals
RU2288005C1 (en) Method for preparing vaccine against colibacteriosis in nutrias
RU2292911C1 (en) Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and streptococcosis in nutrias
RU2292914C1 (en) Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias
RU2695137C1 (en) Vaccine associated with escherichiosis, streptococcus and pseudomonosis of cattle
RU2301076C1 (en) Method for preparing mixed vaccine against streptococcosis and enterococcus infection in nutria

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20200608