RU2406532C1 - Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle - Google Patents
Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle Download PDFInfo
- Publication number
- RU2406532C1 RU2406532C1 RU2009121389/13A RU2009121389A RU2406532C1 RU 2406532 C1 RU2406532 C1 RU 2406532C1 RU 2009121389/13 A RU2009121389/13 A RU 2009121389/13A RU 2009121389 A RU2009121389 A RU 2009121389A RU 2406532 C1 RU2406532 C1 RU 2406532C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- staphylococcosis
- cultures
- streptococcosis
- cattle
- concentration
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной медицине, в частности к способу изготовления вакцин, и может быть использовано в научно-исследовательских и производственных учреждениях, занимающихся конструированием биопрепаратов, а также на предприятиях биологической промышленности.The invention relates to veterinary medicine, in particular to a method for manufacturing vaccines, and can be used in research and production institutions involved in the design of biological products, as well as in enterprises of the biological industry.
Известен способ получения ассоциированной вакцины для профилактики инфекций, вызываемых условно-патогенными бактериями (патент РФ на изобретение №2035189 от 02.01.86, МКИ А61К 39/125, 39/135). Данный способ включает раздельное выделение протективных антигенов, из штамма Staphylococcus aureus №Б - 243 выделяют цитоплазматический антиген, из токсинопродуцирующего штамма Pseudomonas aeruginosa НИИЭМ №PA - 7 получают анатоксин синегнойной палочки, из клинических штаммов Proteus mirabilis №6, 8, 40, 508, 1115, 4641 выделяют растворимые антигены путем контролируемого протеолиза, полученные антигены смешивают в физрастворе из расчета содержания их в 1 мл вакцины 0,15-0,2 мг белка, 15-30 мкг белка, 10-20 мкг белка соответственно и в смесь дополнительно добавляют коммерческий стафилококковый анатоксин и гидроокись алюминия в количестве 5-10 ЕС и 1-2 мг соответственно. Технология получения вакцины очень сложная.A known method of producing an associated vaccine for the prevention of infections caused by opportunistic bacteria (RF patent for the invention No. 2035189 from 02.01.86, MKI A61K 39/125, 39/135). This method involves the separate isolation of protective antigens, the cytoplasmic antigen is isolated from the Staphylococcus aureus strain No. B - 243, the Pseudomonas aeruginosa strain NIIEM No. PA - 7 is obtained from the toxin producing strain, Pseudomonas aeruginosa toxoid, from clinical strains Proteus mirabilis No. 6, 8, 15, 15, 8, 40 4641 isolate soluble antigens by controlled proteolysis, the resulting antigens are mixed in saline based on their content in 1 ml of the vaccine 0.15-0.2 mg of protein, 15-30 μg of protein, 10-20 μg of protein, respectively, and commercial stafil coccal toxoid and aluminum hydroxide in an amount of 5-10 EU and 1-2 mg, respectively. The technology for producing the vaccine is very complex.
Известен способ получения поликомпонентной вакцины для иммунотерапии заболеваний, вызываемых условно-патогенными микроорганизмами (патент РФ на изобретение №2083223 от 27.05.94, МКИ A61K 39/116, 39/02, 39/085, 39/108). Данный способ предусматривает раздельное культивирование штаммов Klebsiella pneumoniae ГИСК №204 на среде Ворфель-Фергрюссона, Proteus vulgaris ГИСК №177, Escherichia coli К-100 №147 с последующим экстрагированием антигенов гидроксиламином, а из клеток Staphylococcus aureus №5 и №9 водной экстракцией и полученные антигены смешивают в соотношении 0,6, 0,6, 0,6 и 0,8 мг соответственно на 1 мл дистиллированной воды. Технология получения вакцины очень сложная.A known method for producing a multicomponent vaccine for immunotherapy of diseases caused by opportunistic microorganisms (RF patent for the invention No. 2083223 from 05/27/94, MKI A61K 39/116, 39/02, 39/085, 39/108). This method involves the separate cultivation of strains of Klebsiella pneumoniae GISC No. 204 on Worfel-Fergrusson medium, Proteus vulgaris GISC No. 177, Escherichia coli K-100 No. 147, followed by extraction of antigens with hydroxylamine, and from cells Staphylococcus aureus No. 5 and No. 9 and aqueous extraction antigens are mixed in a ratio of 0.6, 0.6, 0.6 and 0.8 mg, respectively, per 1 ml of distilled water. The technology for producing the vaccine is very complex.
Известен способ изготовления ассоциированной вакцины против стрептококкоза и энтерококковой инфекции нутрий (патент РФ на изобретение №2301076 от 20.06.07, МКИ А61К 39/116, А61К 39/09). Данный способ предусматривает отбор пораженных органов от павших нутрий из местного эпизоотического очага, из которых приготавливают суспензию, делают посев на дифференциально-диагностические среды, выделяют чистые культуры возбудителей, раздельно выращивают культуры Streptococcus pneumoniae и Streptococcus faecalis в мясо-пептонном бульоне с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, инактивируют путем внесения формалина до 0,4-0,6%-ной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 72-96 часов, смешивают культуры в равных соотношениях, затем вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 15% к объему, тщательно смешивают, фасуют и укупоривают. Данная вакцина применяется для профилактики стрептококкоза и энтерококковой инфекции нутрий, крупному рогатому скоту не применяют.A known method of manufacturing an associated vaccine against streptococcosis and enterococcal nutria infection (RF patent for the invention No. 2301076 from 06/20/07, MKI A61K 39/116, A61K 39/09). This method involves the selection of the affected organs from fallen nutria from the local epizootic focus, from which the suspension is prepared, inoculated on differential diagnostic media, pure cultures of pathogens are isolated, cultures of Streptococcus pneumoniae and Streptococcus faecalis are separately grown in meat-peptone broth with a titer of 4-5-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , inactivate by adding formalin to 0.4-0.6% concentration, incubate at 37 ° C for 72-96 hours, mix the cultures in equal proportions, then add the solution OR aluminum hydroxide in an amount of 15% by volume, thoroughly mixed, packaged and sealed. This vaccine is used to prevent streptococcosis and enterococcal nutria infection; cattle are not used.
Техническим решением задачи изобретения является устранение перечисленных недостатков, в частности повышение специфичности, эффективности способа изготовления вакцины против стрептококкоза и стафилококкоза у крупного рогатого скота путем введения новых чистых культур возбудителей, компонентов, исключая отрицательного и побочного влияния.The technical solution of the problem of the invention is to remedy these shortcomings, in particular, to increase the specificity, efficiency of the method of manufacturing a vaccine against streptococcosis and staphylococcosis in cattle by introducing new pure cultures of pathogens, components, excluding negative and side effects.
Решение задачи достигается тем, что способ изготовления вакцины ассоциированной против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота, включающий получение антигенов, инактивацию, внесение адъюванта, отличающийся тем, что проводят отбор пораженных органов от павшего крупного рогатого скота из местного эпизоотического очага, из которых приготавливают суспензию, делают посев на дифференциально-диагностические среды, выделяют чистые культуры и раздельно выращивают возбудителей стрептококкоза Streptococcus bovis и стафилококкоза Staphylococcus aureus в мясо-пептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, инактивируют путем внесения формалина до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 72-96 часов, смешивают культуры в равных соотношениях, затем вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему, тщательно смешивают, фасуют и укупоривают.The solution is achieved in that a method of manufacturing a vaccine associated against streptococcosis and staphylococcosis of cattle, including obtaining antigens, inactivation, the introduction of adjuvant, characterized in that the selection of affected organs from fallen cattle from the local epizootic focus, from which the suspension is prepared, sow on differential diagnostic media, isolate pure cultures and separately grow causative agents of streptococcosis Streptococcus bovis and staphylococcosis Staphyl ococcus aureus in meat-peptone broth with glucose added to 0.2% concentration with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , inactivated by adding formalin to 0.4-0.5% final concentration, maintained at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours, mix the cultures in equal proportions, then add a solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume, mix thoroughly, pack and seal.
Новизна заявляемого предложения обусловлена тем, что в отличие от известных способов проводят отбор пораженных органов от павшего крупного рогатого скота в период их заболевания и гибели от стрептококкоза и стафилококкоза, приготавливают суспензию из патологического материала, выделяют чистые культуры возбудителей посевом на дифференциально-диагностические среды. Используют при раздельном выращивании чистых культур Str. bovis и Staph. aureus мясо-пептонный бульон с добавлением глюкозы до 0,2% и получают концентрацию микробных клеток не менее 4-5 млрд в 1 см3. Инактивируют формалином до 0,4-0,6%-ной конечной концентрации при температуре 37°C в течение 72-96 часов и смешивают чистые культуры в равных соотношениях, что позволяет полностью подавить патогенность и сохранить высокую иммуногенность против стрептококкоза и стафилококкоза. Добавление гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему культуры позволяет через 12-15 суток после внутримышечно или подкожно двукратного введения с интервалом 7-14 дней в дозе коровам по 5,0 см3, телятам в возрасте 1,0-1,5 месяца - в дозе 1,5-2,0 см3 у привитых животных обеспечить формирование напряженного иммунитета против двух инфекционных болезней. Способ обеспечивает получение безвредной, высокоиммуногенной, специфичной вакцины для защиты крупного рогатого скота от стрептококкоза и стафилококкоза.The novelty of the proposed proposal is due to the fact that, unlike the known methods, the selection of affected organs from fallen cattle during their illness and death from streptococcosis and staphylococcosis is carried out, a suspension is prepared from pathological material, pure cultures of pathogens are sown on differential diagnostic media. Used for separate cultivation of pure crops Str. bovis and staph. aureus meat-peptone broth with the addition of glucose up to 0.2% and receive a concentration of microbial cells of at least 4-5 billion in 1 cm 3 . Formalin is inactivated to a 0.4-0.6% final concentration at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours and pure cultures are mixed in equal proportions, which allows to completely suppress pathogenicity and maintain high immunogenicity against streptococcosis and staphylococcosis. The addition of aluminum hydroxide in an amount of 20% to the culture volume allows 12-15 days after intramuscular or subcutaneous administration twice with an interval of 7-14 days in a dose of 5.0 cm 3 for cows, for calves aged 1.0-1.5 months - in a dose of 1.5-2.0 cm 3 in vaccinated animals to ensure the formation of intense immunity against two infectious diseases. The method provides a harmless, highly immunogenic, specific vaccine for protecting cattle from streptococcosis and staphylococcosis.
По данным патентной и научно-технической литературы не обнаружена аналогичная заявляемой совокупность признаков, что позволяет судить об изобретательском уровне заявленного технического решения.According to the patent and scientific and technical literature, no similar set of features has been found that allows us to judge the inventive step of the claimed technical solution.
Что касается критерия «промышленная применимость», то компоненты, входящие в состав вакцины, известны и широко применяются в ветеринарной практике при изготовлении инактивированных вакцин: ассоциированная вакцина против сальмонеллеза, пастереллеза и энтерококковой инфекции поросят ТУ 10.09-62-90, утверждено 01.08.90 г., инструкция по изготовлению и контролю данной вакцины утверждена Главным управлением ветеринарии 16.07.90 г.; вакцина против энтерококковой инфекции телят, ягнят и поросят ТУ 10.09-91-90, утверждено 15.12.90 г.Regarding the criterion of "industrial applicability", the components that make up the vaccine are known and widely used in veterinary practice in the manufacture of inactivated vaccines: the associated vaccine against salmonellosis, pasteurellosis and enterococcal infection of piglets TU 10.09-62-90, approved 01.08.90 g ., instructions for the manufacture and control of this vaccine approved by the General Directorate of Veterinary Medicine 07/16/90; vaccine against enterococcal infection of calves, lambs and piglets TU 10.09-91-90, approved 15.12.90,
Методы выделения и характеристика стрептококков и стафилококков описаны в справочнике «Определитель зоопатогенных микроорганизмов» под редакцией профессора Сидорова М.А., Москва. - Колос, 1995, стр.90-95; в «Практикуме по ветеринарной микробиологии и иммунологии» авторы: Костенко Т.С., Родионова В.Б., Скородумов Д.И., М.: «Колос», 2001, на стр.165-171; в справочнике «Микробиологическая диагностика бактериальных болезней животных» авторы: Скородумов Д.И., Субботин В.В., Сидоров М.А., Костенко Т.С., М.: «ИзограФъ», 2005, на стр.246-257; в «Методических указаниях по лабораторной диагностике стрептококкоза животных», утвержденных 25.09.1990 г., Главным управлением ветеринарии с государственной инспекцией при Государственной комиссии СМ СССР по продовольствию и закупкам.Methods of isolation and characterization of streptococci and staphylococci are described in the reference book “Determinant of zoopathogenic microorganisms” edited by Professor Sidorov MA, Moscow. - Kolos, 1995, pp. 90-95; in the "Workshop on Veterinary Microbiology and Immunology" authors: Kostenko TS, Rodionova VB, Skorodumov DI, M .: Kolos, 2001, on pages 165-171; in the reference book “Microbiological diagnosis of animal bacterial diseases” authors: Skorodumov DI, Subbotin VV, Sidorov MA, Kostenko TS, M .: “IzograF”, 2005, on pages 266-257 ; in the "Guidelines for the laboratory diagnosis of animal streptococcosis", approved on September 25, 1990, by the General Directorate of Veterinary Medicine with the State Inspectorate under the State Commission of the USSR Council of Ministers for Food and Procurement.
Сущность предлагаемого способа заключается в том, что проводят отбор пораженных органов от павшего крупного рогатого скота из местного эпизоотического очага, из которых приготавливают суспензию, делают посев на дифференциально-диагностические среды, выделяют чистые культуры и раздельно выращивают культуры возбудителей стрептококкоза Str. bovis и стафилококкоза Staph. aureus в мясо-пептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, инактивируют путем внесения формалина до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 72-96 часов, смешивают культуры в равных соотношениях, затем вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему, тщательно смешивают, фасуют и укупоривают.The essence of the proposed method lies in the fact that they carry out the selection of affected organs from fallen cattle from the local epizootic focus, from which a suspension is prepared, inoculum is made on differential diagnostic media, pure cultures are isolated and cultures of Str. Streptococcosis pathogens are separately grown. bovis and staphylococcosis Staph. aureus in meat-peptone broth with the addition of glucose to 0.2% concentration with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , inactivate by adding formalin to 0.4-0.5% final concentration, incubated at temperature of 37 ° C for 72-96 hours, mix the cultures in equal proportions, then add a solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume, mix thoroughly, pack and seal.
Пример конкретного осуществления способа изготовления вакцины.An example of a specific implementation of the method of manufacturing a vaccine.
Для изготовления вакцины ассоциированной против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота проводят отбор пораженных органов от павшего в период заболевания их стрептококкозом и стафилококкозом, из которых приготавливают суспензию и проводят бактериологические исследования с целью выделения чистых культур возбудителей.To produce a vaccine associated against streptococcosis and staphylococcosis in cattle, the affected organs are selected from streptococcosis and staphylococcosis that died during the period of the disease, from which a suspension is prepared and bacteriological studies are carried out in order to isolate pure cultures of pathogens.
Для определения морфологии и тинкториальных свойств возбудителя стафилококкоза готовят мазки-отпечатки из пораженных органов павших животных, окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании препаратов под иммерсионной системой микроскопа наблюдают шаровидной формы синего цвета, расположенные группами кокки, характерные для рода Staphylococcus.To determine the morphology and tinctorial properties of the causative agent of staphylococcosis, fingerprints are prepared from the affected organs of the fallen animals, and they are stained using the Gram method. When microscopying the preparations under an immersion microscope system, a spherical blue shape, located by cocci groups, characteristic of the genus Staphylococcus, is observed.
Для определения культуральных свойств возбудителя стафилококкоза делают посевы выделенной культуры из патологического материала в мясо-пептонный бульон (МПБ), на дифференциально-диагностические среды (солевой МПА, МПБ с 8-10% хлорида натрия, желточно-солевой агар с добавлением 0,1%-ного кристаллвиолета - на этой среде колонии оранжевого цвета), на мясо-пептонный агар (МПА) и инкубируют в термостате при 37°C в течение 18-24 часов. На чашках Петри с МПА вырастают гладкие, прозрачные, бесцветные колонии с ровными краями. В пробирках с МПБ наблюдают интенсивное помутнение питательной среды с образованием осадка. В чашках Петри вырастают колонии с гладкой поверхностью, ровными краями золотистого цвета, что характерно для рода Staphylococcus.To determine the cultural properties of the causative agent of staphylococcosis, cultures of the selected culture are made from pathological material into meat-peptone broth (MPB), on differential diagnostic media (salt MPA, MPB with 8-10% sodium chloride, yolk-salt agar with the addition of 0.1% crystal violet — in this medium, orange colony), on meat-peptone agar (MPA) and incubated in an incubator at 37 ° C for 18-24 hours. Smooth, transparent, colorless colonies with smooth edges grow on Petri dishes with MPA. In test tubes with BCH, intense turbidity of the nutrient medium with the formation of sediment is observed. Colonies with a smooth surface, even edges of golden color grow in Petri dishes, which is typical for the genus Staphylococcus.
Выделенная чистая культура возбудителя стафилококкоза Staph. aureus образует капсулы, выделяет гемолизин, фибринолизин, желатиназу, лецитиназу.Isolated pure culture of the pathogen Staphylococcosis Staph. aureus forms capsules, secretes hemolysin, fibrinolysin, gelatinase, lecithinase.
Патогенность и специфичность чистой выделенной культуры определяют путем внутрибрюшинного заражения белых мышей массой 14-18 г. Через 2-4 суток наблюдения все зараженные лабораторные животные погибают при 100% сохранности в контроле. Для подтверждения специфичности гибели белых мышей из паренхиматозных органов павших мышей готовят мазки-отпечатки, окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании под иммерсионной системой микроскопа наблюдают тонкие палочки красного цвета, расположенные одиночно, характерные для Staph. aureus.The pathogenicity and specificity of the pure isolated culture is determined by intraperitoneal infection of white mice weighing 14-18 g. After 2-4 days of observation, all infected laboratory animals die at 100% safety in the control. To confirm the specificity of the death of white mice from the parenchymal organs of fallen mice, fingerprints are prepared and stained using the Gram method. When microscoping under the immersion system of the microscope, thin red rods are observed, located singly, characteristic of Staph. aureus.
Для определения морфологии и тинкториальных свойств возбудителя стрептококкоза готовят мазки-отпечатки из пораженных органов павших нутрий, окрашивают их по методу Грама. При микроскопии препаратов под иммерсионной системой микроскопа наблюдают мелкие кокки в виде цепочек, окрашенные в фиолетовый цвет, характерные для рода Streptococcus. Для определения культуральных свойств возбудителя делают посевы выделенной культуры из патматериала в мясо-пептонный бульон с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации и 10% инактивированной сыворотки лошади (МПБ), в чашки Петри с мясо-пептонным агаром (МПА) с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации и 5% дефибринированной крови кролика. Через 18-20 часов инкубирования в термостате при температуре 37°C наблюдают в МПБ рост с равномерным помутнением среды. В чашках Петри на глюкозо-кровяном МПА наблюдают рост круглых, полупрозрачных, плоских, с приподнятым центром и краями колонии, с зоной гемолиза типа «альфа», что характерно для Str. bovis.To determine the morphology and tinctorial properties of the causative agent of streptococcosis, fingerprint smears are prepared from the affected organs of the fallen nutria, and they are stained using the Gram method. Microscopy of preparations under the immersion microscope system observed small cocci in the form of chains, colored in purple, characteristic of the genus Streptococcus. To determine the cultural properties of the pathogen, crops of the isolated culture are made from the material in the meat-peptone broth with glucose up to 0.2% final concentration and 10% inactivated horse serum (MPB), in Petri dishes with meat-peptone agar (MPA) with the addition of glucose to a 0.2% final concentration and 5% defibrinated rabbit blood. After 18-20 hours of incubation in a thermostat at a temperature of 37 ° C, growth is observed in the BCH with a uniform turbidity of the medium. In Petri dishes on glucose-blood MPA, growth of round, translucent, flat, with a raised center and the edges of the colony, with an alpha-type hemolysis zone, which is typical for Str. bovis.
Для дифференциации стрептококков от стафилококков используют каталазную пробу. При постановке каталазной пробы на предметное стекло наносят каплю свежеприготовленного 3%-ного раствора перекиси водорода. Бактериологической петлей снимают одну колонию исследуемой культуры и растирают ее в капле перекиси водорода. Стафилококки в отличие от стрептококков образуют каталазу и вызывают пенообразование. Для предварительной идентификации стрептококков и энтерококков баккультуру высевают в пробирки с 10%, 40% желчи, с 6,5% хлористого натрия, с углеводами (раффинозой, сорбитом, маннитом), учитывают рост в жидкой среде и гемолиз на МПА с кровью.To differentiate streptococci from staphylococci, a catalase test is used. When staging a catalase sample, a drop of a freshly prepared 3% hydrogen peroxide solution is applied to a glass slide. Bacteriological loop remove one colony of the studied culture and rub it in a drop of hydrogen peroxide. Staphylococci, in contrast to streptococci, form catalase and cause foaming. For preliminary identification of streptococci and enterococci, the culture is seeded in test tubes with 10%, 40% bile, with 6.5% sodium chloride, with carbohydrates (raffinose, sorbitol, mannitol), growth in a liquid medium and hemolysis on MPA with blood are taken into account.
В результате в пробирках с желчью наблюдают диффузный рост баккультуры, отмечают ферментацию маннита. На МПА с кровью наблюдают неполный гемолиз эритроцитов с образованием вокруг колоний зеленоватой зоны, что характерно для стрептококков.As a result, diffuse growth of baculture is observed in test tubes with bile, fermentation of mannitol is noted. On blood MPA, incomplete hemolysis of red blood cells is observed with the formation of a greenish zone around the colonies, which is typical for streptococci.
Для установления серогрупповой принадлежности стрептококков используют стрептококковые групповые преципитирующие сыворотки. Серогрупповую принадлежность стрептококков определяют в реакции преципитации (РП) в капиллярах. Патогенность подтверждают биопробой на молодых белых мышках.To establish the serogroup affiliation of streptococci, streptococcal group precipitating serums are used. The serogroup affiliation of streptococci is determined in the precipitation reaction (RP) in the capillaries. Pathogenicity is confirmed by bioassay on young white mice.
Выделенные таким образом чистые культуры возбудителей стафилококкоза Staph. aureus и стрептококкоза Str. bovis используют для получения вакцины.Pure cultures of Staph pathogens Staph. aureus and streptococcosis Str. bovis is used to obtain the vaccine.
Выращивание чистых культур проводят раздельно в мясо-пептонном бульоне. Для заражения берут 5 см3 свежей чистой культуры возбудителя стафилококкоза Staph. aureus на 1000 см3 мясо-пептонной питательной среды и выращивают при 37°C в течение 18-24 часов. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяют по стандарту мутности и разводят стерильной дистиллированной водой до концентрации 4-5 млрд в 1 см3. Инактивацию полученного баксырья проводят внесением формалина 0,4-0,5%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании.The cultivation of pure cultures is carried out separately in meat-peptone broth. For infection take 5 cm 3 fresh clean culture of the pathogen Staphylococcosis Staph. aureus per 1000 cm 3 meat-peptone culture medium and grown at 37 ° C for 18-24 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass is determined according to the turbidity standard and diluted with sterile distilled water to a concentration of 4-5 billion in 1 cm 3 . The inactivation of the obtained raw materials is carried out by introducing formalin of 0.4-0.5% final concentration, kept at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring.
Для заражения берут 5 см3 чистой культуры возбудителя стрептококкоза Str. bovis на 1000 см3 жидкой питательной среды с добавлением 0,2% глюкозы и выращивают при 37°C в течение 12-14 часов. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяют по стандарту и разводят стерильной дистиллированной водой до концентрации 4-5 млрд в 1 см3. Инактивацию баксырья проводят раздельно внесением формалина 0,4-0,5% -ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании, смешивают инактивированные баккультуры в равных соотношениях. Затем к смеси баккультур добавляют раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему и тщательно перемешивают, фасуют и укупоривают.For infection take 5 cm 3 pure culture of the causative agent of streptococcosis Str. bovis per 1000 cm 3 of liquid nutrient medium with the addition of 0.2% glucose and grown at 37 ° C for 12-14 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass is determined according to the standard and diluted with sterile distilled water to a concentration of 4-5 billion in 1 cm 3 . Inactivation of bakery is carried out separately by adding formalin of 0.4-0.5% final concentration, kept at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring, inactivated baculture is mixed in equal proportions. Then, a solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume is added to the baculture mixture and thoroughly mixed, packaged and corked.
Таким образом, использование для изготовления вакцины, ассоциированной против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота чистых культур возбудителей стрептококкоза Str. bovis и стафилококкоза Staph. aureus, выделенных из местного эпизоотического очага, позволяет получать специфичную, высокоиммуногенную ассоциированную вакцину для защиты от этих двух инфекционных болезней: стрептококкоза и стафилококкоза Staphylococcus aureus крупного рогатого скота. Раздельное выращивание позволяет получать концентрацию бактериальных клеток не менее 4 млрд в 1 см3 в течение 12-14 часов инкубирования. Использование формалина для инактивации в 0,4-0,5%-ной конечной концентрации позволяет в течение 72-96 часов при температуре 37°C подавить патогенность и сохранить высокую иммуногенность в течение 12 месяцев хранения. Адсорбирование двух антигенов на гидроокиси алюминия позволяет через 12-15 суток после внутримышечно или подкожно двукратного введения с интервалом 7-14 дней в дозе коровам по 5,0 см3, телятам в возрасте 1,0-1,5 месяца - в дозе 1,5-2,0 см3 у привитых животных обеспечить формирование напряженного иммунитета против двух инфекционных болезней продолжительностью не менее 12 месяцев (таблица).Thus, the use for the manufacture of a vaccine associated with streptococcosis and staphylococcosis in cattle pure cultures of causative agents of streptococcosis Str. bovis and staphylococcosis Staph. aureus, isolated from a local epizootic focus, provides a specific, highly immunogenic associated vaccine to protect against these two infectious diseases: streptococcosis and staphylococcosis of cattle aureus Staphylococcus aureus. Separate growth allows to obtain a concentration of bacterial cells of at least 4 billion in 1 cm 3 during 12-14 hours of incubation. The use of formalin for inactivation in a 0.4-0.5% final concentration makes it possible to suppress pathogenicity for 72-96 hours at a temperature of 37 ° C and maintain high immunogenicity for 12 months of storage. Adsorption of two antigens on aluminum hydroxide allows 12-15 days after intramuscular or subcutaneous administration twice with an interval of 7-14 days in a dose of cows of 5.0 cm 3 , calves aged 1.0-1.5 months in a dose of 1, 5-2.0 cm 3 in vaccinated animals to ensure the formation of intense immunity against two infectious diseases lasting at least 12 months (table).
Предложенный способ прост в исполнении, доступен и является промышленно применимым.The proposed method is simple to implement, affordable and is industrially applicable.
Таким образом, данные таблицы показывают преимущества предлагаемого способа изготовления вакцины, ассоциированной против стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота по сравнению с имеющимся прототипом.Thus, these tables show the advantages of the proposed method for the manufacture of a vaccine associated against streptococcosis and staphylococcosis of cattle in comparison with the existing prototype.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009121389/13A RU2406532C1 (en) | 2009-06-04 | 2009-06-04 | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009121389/13A RU2406532C1 (en) | 2009-06-04 | 2009-06-04 | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2406532C1 true RU2406532C1 (en) | 2010-12-20 |
Family
ID=44056548
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2009121389/13A RU2406532C1 (en) | 2009-06-04 | 2009-06-04 | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2406532C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2538158C1 (en) * | 2013-12-30 | 2015-01-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
-
2009
- 2009-06-04 RU RU2009121389/13A patent/RU2406532C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2538158C1 (en) * | 2013-12-30 | 2015-01-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2429012C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
RU2388489C1 (en) | Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias | |
RU2538158C1 (en) | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2687488C1 (en) | Poly-strain formolated vaccine against calves pneumonia streptococcal etiology | |
RU2553556C1 (en) | Vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2406532C1 (en) | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2432174C1 (en) | Method for producing colibacillosis anatoxin | |
RU2316345C1 (en) | Method for manufacturing associated vaccione against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias | |
RU2288002C1 (en) | Method for preparing vaccine against enterococcus infection in nutrias | |
RU2650628C1 (en) | Method of obtaining vaccine associated with colibacillosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
RU2429880C1 (en) | Method to manufacture vaccine associated against streptococcosis and virus haemorrhagic disease of rabbits | |
RU2301077C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against coli-bacteriosis, salmonellosis and streptococcosis in nutria | |
RU2406530C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against streptococcosis, pseudomonosis and enterococcal infection of nutrias | |
RU2799603C1 (en) | Sa-21 strain of bacteria of streptococcus genus of streptococcus agalactiae species for the manufacture of biological products for the specific prevention of mastitis in cows | |
RU2707289C1 (en) | Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals | |
RU2301076C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against streptococcosis and enterococcus infection in nutria | |
RU2292911C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and streptococcosis in nutrias | |
RU2292914C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias | |
RU2338554C2 (en) | Method of manufacturing of vaccine associated against colibacillosis, salmonellosis and enterococcus infections of nutrias | |
RU2761379C1 (en) | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use | |
RU2443774C1 (en) | Method for producing associated colibacillosis, streptococcosis and rabbit viral hemorrhagic disease vaccine | |
RU2404801C1 (en) | Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits | |
RU2406533C1 (en) | Associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2288005C1 (en) | Method for preparing vaccine against colibacteriosis in nutrias | |
RU2531054C1 (en) | Associated pseudomonosis and rabbit viral haemorrhagic disease vaccine |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20110605 |