RU2404801C1 - Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits - Google Patents
Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits Download PDFInfo
- Publication number
- RU2404801C1 RU2404801C1 RU2009111964/13A RU2009111964A RU2404801C1 RU 2404801 C1 RU2404801 C1 RU 2404801C1 RU 2009111964/13 A RU2009111964/13 A RU 2009111964/13A RU 2009111964 A RU2009111964 A RU 2009111964A RU 2404801 C1 RU2404801 C1 RU 2404801C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- rabbits
- escherichia coli
- colibacteriosis
- hours
- formalin
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной медицине, в частности к вакцинам, и может быть использовано в учреждениях, занимающихся конструированием биологических препаратов, а также на предприятиях биологической промышленности.The invention relates to veterinary medicine, in particular to vaccines, and can be used in institutions involved in the design of biological products, as well as in enterprises of the biological industry.
Известен способ получения вакцины против колибактериоза поросят (патент РФ на изобретение №2022563, 26.05.88, МКИ A61K 39/125, 39/135). Данный способ предполагает раздельное выращивание штаммов Е. coli ВГНКИ №№305-37/10, 355-37/12, 357-37/12, 331-37/12, 359-37/12, 360-37/12, 299-37/10, 330-37/11 в бульоне Хоттингера, смешивают культуры в равных соотношениях, инактивируют формалином и тиомерсалом с последующим адсорбированием на гидроксиде алюминия. Применяют для профилактики колибактериоза поросят.A known method for producing a vaccine against colibacteriosis of piglets (RF patent for the invention No. 2022563, 05.26.88, MKI A61K 39/125, 39/135). This method involves the separate cultivation of strains of E. coli VGNKI No№305-37 / 10, 355-37 / 12, 357-37 / 12, 331-37 / 12, 359-37 / 12, 360-37 / 12, 299- 37/10, 330-37 / 11 in the Hottinger broth, mix the cultures in equal proportions, inactivate formalin and thiomersal, followed by adsorption on aluminum hydroxide. Used for the prevention of colibacillosis of piglets.
Известен способ получения вакцины для профилактики стрептококкоза нутрий (патент РФ на изобретение №2099081 от 30.09.94, МКИ A61K 39/125, 39/135). Данный способ включает выращивание штамма Streptococcus zooepidemicus ВГНКИ №К-ДЕП в жидкой питательной среде с добавлением глюкозы до достижения концентрации 5-6 млрд микробных клеток в 1 см3, затем подвергают замораживанию-оттаиванию, отделяют жидкую фракцию, добавляют к ней 0,3-0,4%-ный раствор формалина, выдерживают в течение 44-50 ч и вносят 3%-ный раствор гидроокиси алюминия в количестве 10% к объему культуры. Технология получения вакцины сложная, применяется для профилактики стрептококкоза нутрий.A known method of producing a vaccine for the prevention of streptococcosis nutria (RF patent for the invention No. 2099081 from 09/30/94, MKI A61K 39/125, 39/135). This method involves the cultivation of a strain of Streptococcus zooepidemicus VGNKI No. K-DEPT in a liquid nutrient medium with glucose added to achieve a concentration of 5-6 billion microbial cells in 1 cm 3 , then subjected to freezing and thawing, the liquid fraction is separated, 0.3- A 0.4% formalin solution is kept for 44-50 hours and a 3% solution of aluminum hydroxide is added in an amount of 10% by volume of the culture. The technology for producing the vaccine is complex, it is used to prevent streptococcosis of nutria.
Техническим решением задачи изобретения является устранение перечисленных недостатков, в частности повышение эффективности способа изготовления вакцины против колибактериоза кроликов путем введения новой культуры возбудителя, новых компонентов и исключения отрицательного и побочного влияния.The technical solution to the problem of the invention is to remedy these shortcomings, in particular, to increase the efficiency of the method of manufacturing a vaccine against colibacteriosis of rabbits by introducing a new culture of the pathogen, new components and eliminating negative and side effects.
Поставленная задача достигается тем, что способ изготовления вакцины против колибактериоза кроликов, включающий получение антигена, инактивацию, внесение адъюванта, отличающийся тем, что проводят отбор пораженных органов от павших кроликов из местного эпизоотического очага, из которых приготавливают суспензию, делают посев на дифференциально-диагностические среды, выделяют чистую культуру возбудителя, выращивают культуру Escherichia coli О35 в мясо-пептонном бульоне с титром 5-6 млрд микробных клеток в 1 см3, инактивируют путем внесения формалина до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 48-72 ч, затем вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему, тщательно смешивают, фасуют и укупоривают.This object is achieved in that a method of manufacturing a vaccine against colibacteriosis of rabbits, including the production of antigen, inactivation, the introduction of an adjuvant, characterized in that the selection of the affected organs from dead rabbits from the local epizootic focus, from which the suspension is prepared, sowing on differential diagnostic environments is isolated pure culture of the pathogen grown culture of Escherichia coli O35 in meat-peptone broth with a titer of 5.6 billion microbial cells per 1 cm 3, inactivated form by making ina strength to 0.4-0.5% final concentration, kept at a temperature of 37 ° C for 48-72 hours, then making the solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume, thoroughly mixed, packed and sealed.
Новизна заявляемого предложения обусловлена тем, что в отличие от известных способов проводят отбор органов от павших кроликов в период заболевания и гибели животных от колибактериоза, приготавливают суспензию из патологического материала, выделяют чистую культуру посевом на дифференциально-диагностические среды, это позволяет выделить чистую культуру возбудителя. Использование при выращивании чистой культуры Escherichia coli О35 мясо-пептонной питательной среды позволяет получать концентрацию микробных клеток не менее 5-6 млрд в 1 см3. Инактивация культуры путем внесения формалина до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации при температуре 37°C в течение 48-72 ч, надежно подавляет патогенность возбудителя, сохраняя иммуногенность. Способ обеспечивает получение безвредной, высокоиммуногенной, специфичной вакцины для защиты кроликов против колибактериоза.The novelty of the proposed proposal is due to the fact that, in contrast to the known methods, organs from dead rabbits are taken during the period of illness and animal death from colibacteriosis, a suspension is prepared from pathological material, a pure culture is isolated by culture on differential diagnostic media, this allows you to select a pure culture of the pathogen. The use of meat-peptone culture medium when growing a pure culture of Escherichia coli O35 allows to obtain a concentration of microbial cells of at least 5-6 billion in 1 cm 3 . Inactivation of the culture by introducing formalin to 0.4-0.5% of the final concentration at a temperature of 37 ° C for 48-72 hours, reliably suppresses the pathogenicity of the pathogen, while maintaining immunogenicity. The method provides a harmless, highly immunogenic, specific vaccine for protecting rabbits against colibacteriosis.
По данным патентной и научно-технической литературы не обнаружена аналогичная заявляемой совокупность признаков, что позволяет судить об изобретательском уровне заявленного технического решения.According to the patent and scientific and technical literature, no similar set of features has been found that allows us to judge the inventive step of the claimed technical solution.
Что касается критерия «промышленная применимость», то компоненты, входящие в состав вакцины, известны и широко применяются в ветеринарной практике при изготовлении инактивированных вакцин: инструкция по изготовлению и контролю формолвакцины поливалентной гидроокисьалюминиевой против колибактериоза (эшерихиоза) поросят, телят и ягнят, утвержденная ГУВ МСХ СССР 26.04.1984 г.; инструкция по изготовлению и контролю вакцины против брадзота, инфекционной энтеротоксемии, злокачественного отека овец и дизентерии ягнят, поливалентная концентрированная гидроокисьалюминиевая, утвержденная Главным управлением ветеринарии с государственной ветеринарной инспекцией 10.10.1991 г.Regarding the criterion of "industrial applicability", the components that make up the vaccine are known and widely used in veterinary practice in the manufacture of inactivated vaccines: instructions for the manufacture and control of polyvalent aluminum hydroxide formol vaccine against colibacteriosis (escherichiosis) of piglets, calves and lambs, approved by the GUV of the Ministry of Agriculture USSR 04/26/1984; instructions for the manufacture and control of a vaccine against bradzot, infectious enterotoxemia, malignant edema of sheep and lambs dysentery, concentrated polyvalent aluminum hydroxide approved by the General Directorate of Veterinary Medicine with the State Veterinary Inspection on 10.10.1991.
Предложенная вакцина против колибактериоза кроликов проста в исполнении, доступна и является промышленно применимой.The proposed vaccine against colibacteriosis of rabbits is simple to implement, affordable and is industrially applicable.
Методы выделения чистой культуры возбудителя колибактериоза и характеристика описаны в «Методических указаниях по бактериологической диагностике колибактериоза (эшерихиоза) животных», утвержденных 27.07.2000 г. №13-7-2/2117, Департаментом ветеринарии МСХ РФ, описана характеристика эшерихий в справочнике «Определитель зоопатогенных микроорганизмов» под ред.проф. Сидорова М.А. - Москва: Колос, 1995, стр.196-201, а также в «Практикуме по ветеринарной микробиологии и иммунологии» авторы: Костенко Т.С., Родионова В.Б., Скородумов Д.И. - М.: Колос, 2001, стр.219-222.Methods for isolating a pure culture of the causative agent of colibacteriosis and characteristics are described in the “Methodological guidelines for the bacteriological diagnosis of colibacteriosis (Escherichiosis) of animals”, approved on July 27, 2000, No. 13-7-2 / 2117, by the Department of Veterinary Medicine of the Ministry of Agriculture of the Russian Federation, describes the characteristics of Escherichia in the guide zoopathogenic microorganisms "under the editorship of prof. Sidorova M.A. - Moscow: Kolos, 1995, pp. 196-201, as well as in the "Workshop on Veterinary Microbiology and Immunology" authors: Kostenko TS, Rodionova VB, Skorodumov DI - M .: Kolos, 2001, p. 219-222.
Сущность предлагаемого способа заключается в том, что проводят отбор пораженных органов от павших кроликов из местного эпизоотического очага, из которых приготавливают суспензию, делают посев на дифференциально-диагностические среды, выделяют чистую культуру возбудителя, выращивают культуру Escherichia coli О35 в мясо-пептонном бульоне до концентрации с титром 5-6 млрд микробных клеток в 1 см3, инактивируют путем внесения формалина до 0,4-0,5%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 48-72 ч, вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему, тщательно смешивают, фасуют и укупоривают.The essence of the proposed method consists in the selection of affected organs from dead rabbits from the local epizootic focus, from which the suspension is prepared, inoculation on differential diagnostic media, a pure pathogen culture is isolated, the culture of Escherichia coli O35 is grown in meat-peptone broth to concentration with a titer of 5-6 billion microbial cells in 1 cm 3 , inactivate by adding formalin to 0.4-0.5% final concentration, incubate at a temperature of 37 ° C for 48-72 hours, add a solution of aluminum hydroxide niya in an amount of 20% by volume, mix thoroughly, pack and seal.
Пример конкретного осуществления способа изготовления вакциныAn example of a specific implementation of the method of manufacturing a vaccine
Для определения морфологии и тинкториальных свойств возбудителя колибактериоза готовят мазки - отпечатки из пораженных органов павших нутрий - путем прикосновения обезжиренным стеклом к свежему разрезу пораженной ткани и последующей фиксацией над пламенем спиртовки окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании препаратов под иммерсионной системой микроскопа наблюдают толстые палочки с закругленными концами красного цвета, расположенные одиночно, что характерно для Escherichia coli.To determine the morphology and tinctorial properties of the causative agent of colibacteriosis, smears are prepared - prints from the affected organs of the fallen nutria - by staining with a fat-free glass to a fresh section of the affected tissue and subsequent fixation over the flame of an alcohol lamp, they are stained using the Gram method. When microscopying the preparations under the immersion system of the microscope, thick sticks with rounded ends of red color, located singly, are observed, which is typical for Escherichia coli.
Для определения культуральных свойств возбудителя колибактериоза нутрий Escherichia coli делают посевы выделенной культуры из патологического материала в мясо-пептонный бульон (МПБ), на среду Эндо, на мясо-пептонный агар (МПА) и инкубируют в термостате при 37°C в течение 16-24 ч. На чашках Петри с МПА вырастают влажные колонии с ровными краями и гладкой поверхностью серого цвета. В пробирках с МПБ наблюдали равномерное помутнение питательной среды с небольшим осадком, разбивающимся при встряхивании. В чашках Петри, на среде Эндо наблюдают рост колоний малиново-красного цвета с розовым ободком диаметром 2-3 мм, характерным для Escherichia coli.To determine the cultural properties of the causative agent of colibacteriosis, Nutria Escherichia coli make inoculated cultures from pathological material into meat-peptone broth (MPB), on Endo medium, meat-peptone agar (MPA) and incubate in an incubator at 37 ° C for 16-24 h. On Petri dishes with MPA, wet colonies grow with smooth edges and a smooth gray surface. In test tubes with BCH, a uniform turbidity of the nutrient medium was observed with a slight precipitate breaking upon shaking. In Petri dishes, on Endo medium, raspberry-red colonies are observed to grow with a pink rim of 2-3 mm in diameter, characteristic of Escherichia coli.
При определении биохимической активности чистых баккультур проводят посевы на дифференциально-диагностические среды с различным набором компонентов. Для Escherichia coli характерно расщепление глюкозы и лактозы с образованием кислоты и газа, выделение индола, отсутствие уреазы.When determining the biochemical activity of pure bacultures, crops are sown on differential diagnostic media with a different set of components. Escherichia coli is characterized by the breakdown of glucose and lactose with the formation of acid and gas, the release of indole, and the absence of urease.
Патогенность чистых выделенных культур определяют путем внутрибрюшинного заражения белых мышей массой 14-18 г. Через 2-4 сут наблюдения все зараженные лабораторные животные погибают при 100%-ной сохранности в контроле. Для подтверждения специфичности гибели мышей из паренхиматозных органов павших мышей приготавливают мазки - отпечатки, окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании под иммерсионной системой микроскопа в препаратах видны толстые палочки с закругленными концами красного цвета, расположенные одиночно, характерные для Escherichia coli. Серологическую типизацию кишечной палочки проводят в реакции агглютинации с набором типоспецифических сывороток по общепринятой методике в пробирках. В реакции агглютинации исследуемая культура кишечной палочки реагирует с колисывороткой O35 и виден хлопьевидный осадок (положительный результат) при отрицательном контроле.The pathogenicity of pure isolated cultures is determined by intraperitoneal infection of white mice weighing 14-18 g. After 2-4 days of observation, all infected laboratory animals die with 100% safety in the control. To confirm the specificity of the death of mice from the parenchymal organs of fallen mice, smears — fingerprints — are prepared and stained using the Gram method. When microscoping under the immersion system of the microscope, thick rods with rounded ends of red color, located singly, characteristic of Escherichia coli, are visible in the preparations. Serological typification of Escherichia coli is carried out in an agglutination reaction with a set of type-specific sera according to the standard technique in test tubes. In the agglutination reaction, the test Escherichia coli culture reacts with O35 coliserum and a flocculent precipitate (positive result) is seen with a negative control.
Выращивание чистой культуры возбудителя Escherichia coli 035 проводят в мясо-пептонной питательной среде. Для заражения берут 1-2 см3 свежей культуры и засевают 80-100 мл жидкой питательной среды и выращивают при 37°C в течение 12-14 ч. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяют по стандарту мутности и разводят стерильной дистиллированной водой до концентрации 5-6 млрд в 1 см3. Инактивацию полученного баксырья проводят внесением формалина 0,4-0,5%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°C в течение 48-72 ч при периодическом перемешивании, затем вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему и тщательно перемешивают, фасуют и укупоривают.The cultivation of a pure culture of the pathogen Escherichia coli 035 is carried out in a meat-peptone culture medium. For infection, take 1-2 cm 3 of fresh culture and sow 80-100 ml of liquid nutrient medium and grow at 37 ° C for 12-14 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass is determined according to the turbidity standard and diluted with sterile distilled water to a concentration of 5 -6 billion in 1 cm 3 . Inactivation of the obtained raw materials is carried out by adding formalin of 0.4-0.5% final concentration, kept at a temperature of 37 ° C for 48-72 hours with periodic stirring, then a solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume is added and thoroughly mixed, Packed and corked.
Таким образом, использование для изготовления вакцины против колибактериоза кроликов чистой культуры Escherichia coli О35, выделенной из пораженных органов кроликов из местного эпизоотического очага, позволяет получать специфичную, высокоиммуногенную вакцину для защиты кроликов от колибактериоза. Выращивание чистой культуры возбудителя в мясо-пептонной питательной среде позволяет получать концентрацию бактериальных клеток не менее 5-6 млрд в 1 см3 в течение 12-14 ч культивирования. Использование формалина для инактивации в 0,4-0,5%-ной конечной концентрации позволяет в течение 48-72 ч при температуре 37°C подавить патогенность и сохранить высокую иммуногенность в течение 12 месяцев хранения. Адсорбирование антигена на гидроокиси алюминия позволяет через 12-15 сут после введения кроликам обеспечить у привитых формирование напряженного иммунитета, продолжительностью не менее 9 месяцев (срок наблюдения). После однократного введения нутриям внутримышечно не вызывает поствакцинальных осложнений. Результаты по сравнительной характеристике вакцин представлены в таблице 1.Thus, the use of a pure culture of Escherichia coli O35 isolated from the affected organs of rabbits from the local epizootic foci for the preparation of a vaccine against colibacteriosis in rabbits allows one to obtain a specific, highly immunogenic vaccine to protect rabbits from colibacteriosis. Growing a pure culture of the pathogen in a meat-peptone nutrient medium allows to obtain a concentration of bacterial cells of at least 5-6 billion in 1 cm 3 for 12-14 hours of cultivation. The use of formalin for inactivation in a 0.4-0.5% final concentration allows suppressing pathogenicity for 48-72 hours at a temperature of 37 ° C and maintaining high immunogenicity for 12 months of storage. Adsorption of antigen on aluminum hydroxide allows 12-15 days after administration to rabbits to provide vaccines with the formation of intense immunity, lasting at least 9 months (observation period). After a single administration to nutria, intramuscularly does not cause post-vaccination complications. The results of the comparative characteristics of the vaccines are presented in table 1.
Предложенный способ прост в исполнении, доступен и является промышленно применимым.The proposed method is simple to implement, affordable and is industrially applicable.
Таким образом, предлагаемый способ изготовления вакцины против колибактебиоза кроликов имеет ряд преимуществ по сравнению с прототипом.Thus, the proposed method of manufacturing a vaccine against colibacteriosis of rabbits has several advantages compared with the prototype.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009111964/13A RU2404801C1 (en) | 2009-03-31 | 2009-03-31 | Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009111964/13A RU2404801C1 (en) | 2009-03-31 | 2009-03-31 | Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2009111964A RU2009111964A (en) | 2010-10-10 |
RU2404801C1 true RU2404801C1 (en) | 2010-11-27 |
Family
ID=44024618
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2009111964/13A RU2404801C1 (en) | 2009-03-31 | 2009-03-31 | Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2404801C1 (en) |
-
2009
- 2009-03-31 RU RU2009111964/13A patent/RU2404801C1/en not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2009111964A (en) | 2010-10-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2429012C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
RU2388489C1 (en) | Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias | |
RU2687488C1 (en) | Poly-strain formolated vaccine against calves pneumonia streptococcal etiology | |
US4472378A (en) | Live vaccine for the prevention of salmonellosis in water fowl, a process for making and applying the same | |
RU2538158C1 (en) | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2309767C1 (en) | Method for manufacturing vaccine against pseudomonosis in swine | |
RU2432174C1 (en) | Method for producing colibacillosis anatoxin | |
RU2316345C1 (en) | Method for manufacturing associated vaccione against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias | |
RU2404801C1 (en) | Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits | |
RU2288002C1 (en) | Method for preparing vaccine against enterococcus infection in nutrias | |
RU2301077C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against coli-bacteriosis, salmonellosis and streptococcosis in nutria | |
RU2406532C1 (en) | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2288005C1 (en) | Method for preparing vaccine against colibacteriosis in nutrias | |
RU2707289C1 (en) | Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals | |
RU2429880C1 (en) | Method to manufacture vaccine associated against streptococcosis and virus haemorrhagic disease of rabbits | |
RU2388487C1 (en) | Method for preparing vaccine against pseudomonosis of nutrias | |
RU2443774C1 (en) | Method for producing associated colibacillosis, streptococcosis and rabbit viral hemorrhagic disease vaccine | |
RU2301076C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against streptococcosis and enterococcus infection in nutria | |
RU2406530C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against streptococcosis, pseudomonosis and enterococcal infection of nutrias | |
RU2292915C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and colibacteriosis in nutrias | |
RU2338554C2 (en) | Method of manufacturing of vaccine associated against colibacillosis, salmonellosis and enterococcus infections of nutrias | |
RU2496518C1 (en) | Method for producing associated salmonellosis, escherichiosis and rabbit viral hemorrhagic disease vaccine | |
RU2325183C1 (en) | Production method of animal colibacillosis vaccine | |
RU2650628C1 (en) | Method of obtaining vaccine associated with colibacillosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
RU2292911C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and streptococcosis in nutrias |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20110401 |