RU2292914C1 - Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias - Google Patents
Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias Download PDFInfo
- Publication number
- RU2292914C1 RU2292914C1 RU2005124660/13A RU2005124660A RU2292914C1 RU 2292914 C1 RU2292914 C1 RU 2292914C1 RU 2005124660/13 A RU2005124660/13 A RU 2005124660/13A RU 2005124660 A RU2005124660 A RU 2005124660A RU 2292914 C1 RU2292914 C1 RU 2292914C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cultures
- salmonellosis
- vaccine
- enterococcal
- nutria
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной медицине, в частности к способу изготовления вакцин и может быть использовано в научно - исследовательских и производственных учреждениях, занимающихся конструированием биопрепаратов, а также на предприятиях биологической промышленности.The invention relates to veterinary medicine, in particular to a method for the manufacture of vaccines and can be used in research and production institutions involved in the design of biological products, as well as in enterprises of the biological industry.
Известен способ получения ассоциированной вакцины для профилактики инфекций, вызываемых условно-патогенными бактериями (патент РФ на изобретение №2035189 от 02.01.86, МКИ А 61 К 39/125, 39/135). Данный способ включает раздельное выделение протективных антигенов, из штамма Staphylococcus aureus № Б-243 выделяют цитоплазматический антиген, из токсинопродуцирующего штамма Pseudomonas aeruginosa НИИЭМ № PA-7 получают анатоксин синегнойной палочки, из клинических штаммов Proteus mirabilis №6, 8, 40, 508, 1115, 4641 выделяют растворимые антигены путем контролируемого протеолиза, полученные антигены смешивают в физрастворе из расчета содержания их в 1 мл вакцины 0,15-0,2 мг белка, 15-30 мкг белка, 10-20 мкг белка соответственно и в смесь дополнительно добавляют коммерческий стафилококковый анатоксин и гидроокись алюминия в количестве 5-10 ЕС и 1-2 мг соответственно. Технология получения вакцины очень сложная, для профилактики нутрий не применяется.A known method of producing an associated vaccine for the prevention of infections caused by opportunistic bacteria (RF patent for the invention No. 2035189 from 02.01.86, MKI A 61 K 39/125, 39/135). This method involves the separate isolation of protective antigens, from the Staphylococcus aureus strain No. B-243, the cytoplasmic antigen is isolated, from the toxin-producing strain of Pseudomonas aeruginosa NIIEM No. PA-7, Pseudomonas aeruginosa is received, from clinical strains of Proteus mirabilis No. 6, 8, 15, 50, 50 4641 isolate soluble antigens by controlled proteolysis, the resulting antigens are mixed in saline based on their content in 1 ml of the vaccine 0.15-0.2 mg of protein, 15-30 μg of protein, 10-20 μg of protein, respectively, and commercial stafilo okkovy toxoid and aluminum hydroxide in an amount of 5-10 EU and 1-2 mg, respectively. The technology for producing the vaccine is very complicated; it is not used for the prevention of nutria.
Известен способ получения вакцины против стрептококкоза и пастереллеза нутрий (патент РФ на изобретение №2099083 от 30.09.94, МКИ А 61 К 39/125, 39/135). Данный способ предусматривает раздельное выращивание в жидкой питательной среде с добавлением глюкозы штаммов Streptococcus zooepidemicus ВГНКИ № К-ДЕП, Pasteurella multosida ВГНКИ №2394 и Pasteurella multocida ВГНКИ №1015 в течение 18-24 часов, полученные культуральные среды подвергают замораживанию-оттаиванию, отделяют жидкие фракции, инактивируют 0,3-0,4%-ным раствором формалина, объединяют их в равных соотношениях по объему и последовательно вносят гидроокись алюминия. Данный способ позволяет получать вакцину против стрептококкоза и пастереллеза нутрий.There is a method of obtaining a vaccine against streptococcosis and pasteurellosis nutria (RF patent for the invention No. 2099083 from 09/30/94, MKI A 61 K 39/125, 39/135). This method involves separate cultivation in a liquid nutrient medium with the addition of glucose of the strains of Streptococcus zooepidemicus VGNKI No. K-DEPH, Pasteurella multosida VGNKI No. 2394 and Pasteurella multocida VGNKI No. 1015 for 18-24 hours, the obtained culture mediums are subjected to freezing-thawing, and the liquid is separated , inactivate with 0.3-0.4% formalin solution, combine them in equal proportions by volume and sequentially introduce aluminum hydroxide. This method allows to obtain a vaccine against streptococcosis and pasteurellosis nutria.
Техническим решением задачи изобретения является устранение перечисленных недостатков, в частности повышение специфичности, эффективности способа изготовления ассоциированной вакцины против сальмонеллеза и энтерококковой инфекции нутрий, путем введения новых чистых культур возбудителей, компонентов, исключая отрицательного и побочного влияния.The technical solution to the problem of the invention is to remedy these shortcomings, in particular, to increase the specificity, efficiency of the method for manufacturing the associated vaccine against salmonellosis and enterococcal nutria infection by introducing new pure cultures of pathogens and components, excluding negative and side effects.
Решение задачи достигается тем, что способ изготовления вакцины ассоциированной против сальмонеллеза и энтерококковой инфекции нутрий, включающий получение антигенов, инактивацию, внесение адъюванта, проводят отбор пораженных органов от павших нутрий из местного эпизоотического очага, из которых приготавливают суспензию, делают посев на дифференциально-диагностические среды, выделяют чистые культуры, раздельно выращивают культуры возбудителей сальмонеллеза Salmonella typhimurium и энтерококковой инфекции Streptococcus fecalis в мясо-пептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, инактивируют путем внесения формалина до 0,4-0,6%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°С в течение 72-96 часов, смешивают культуры в соотношении 1:2, затем вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему культуры, тщательно смешивают, фасуют и укупоривают.The solution to the problem is achieved by the fact that a method of manufacturing a vaccine associated against salmonellosis and enterococcal nutria infection, including obtaining antigens, inactivation, and adjuvant administration, selects affected organs from fallen nutria from the local epizootic focus, from which the suspension is prepared, inoculate onto differential diagnostic media , pure cultures are isolated, cultures of Salmonella typhimurium salmonellosis pathogens and Streptococcus fecalis enterococcal infections are separately grown in meat-peptone broth e with the addition of glucose to 0.2% concentration with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , inactivate by adding formalin to 0.4-0.6% final concentration, incubated at a temperature of 37 ° C within 72-96 hours, mix the cultures in a ratio of 1: 2, then add a solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume of the culture, mix thoroughly, pack and seal.
Новизна заявляемого предложения обусловлена тем, что в отличие от известных способов проводят отбор пораженных органов от павших нутрий в период заболевания и гибели нутрий от сальмонеллеза и энтерококковой инфекции, приготавливают суспензию из патологического материала, выделают чистую культуру посевом на дифференциально-диагностические среды. Используют при раздельном выращивании чистые культуры возбудителей сальмонеллеза Salmonella typhimurium и энтерококковой инфекции Streptococcus fecalis мясо-пептонный бульон с добавлением глюкозы до 0,2% и получают концентрацию микробных клеток не менее 4-5 млрд в 1 см3. Инактивируют формалином до 0,4-0,6%-ной конечной концентрации при температуре 37°С в течение 72-96 часов и смешивают чистые культуры в соотношении 1:2, что позволяет полностью подавить патогенность и сохранить высокую иммуногенность против сальмонеллеза и энтерококковой инфекции. Добавление гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему культуры позволяет через 12-15 суток после однократного введения в дозе 1 см3 нутриям обеспечить у привитых формирование напряженного иммунитета против двух инфекций. Способ обеспечивает получение безвредной высокоиммуногенной более специфичной вакцины для защиты нутрий от сальмонеллеза и энтерококковой инфекции.The novelty of the proposed proposal is due to the fact that, in contrast to known methods, the selection of affected organs from fallen nutria during the disease and the death of nutria from salmonellosis and enterococcal infection is carried out, a suspension is prepared from pathological material, a pure culture is isolated by inoculation on differential diagnostic media. When separately grown, pure cultures of Salmonella typhimurium salmonellosis pathogens and Streptococcus fecalis enterococcal infection meat-peptone broth with glucose up to 0.2% are used and a microbial cell concentration of at least 4-5 billion in 1 cm 3 is obtained. Formalin is inactivated to a 0.4-0.6% final concentration at 37 ° C for 72-96 hours and pure cultures are mixed in a ratio of 1: 2, which allows to completely suppress pathogenicity and maintain high immunogenicity against salmonellosis and enterococcal infection . The addition of aluminum hydroxide in an amount of 20% to the volume of the culture allows 12-15 days after a single injection at a dose of 1 cm 3 nutria to provide the vaccinated with the formation of intense immunity against two infections. The method provides a harmless highly immunogenic more specific vaccine to protect nutria from salmonellosis and enterococcal infection.
По данным патентной и научно-технической литературы не обнаружена аналогичная заявляемой совокупность признаков, что позволяет судить об изобретательском уровне заявленного технического решения.According to the patent and scientific and technical literature, no similar set of features has been found that allows us to judge the inventive step of the claimed technical solution.
Что касается критерия «промышленная применимость», то компоненты, входящие в состав вакцины, известны и широко применяются в ветеринарной практике при изготовлении инактивированных вакцин: формолквасцовая вакцина против паратифа (сальмонеллеза) телят ТУ 46-21-166-75, утверждено 10.05.75 г. инструкция по изготовлению и контролю данной вакцины утверждена Главным управлением ветеринарии МСХ СССР 28.03.80 г.; вакцина против паратифа (сальмонеллеза) поросят ТУ 46-21-952-74, утверждено 15.07.74 г., инструкция по изготовлению и контролю данной вакцины утверждена Главным управлением ветеринарии МСХ СССР 23.10.96 г.; ассоциированная вакцина против сальмонеллеза, пастереллеза и энтерококковой инфекции поросят ТУ 10.09-62-90, утверждено 01.08.90 г., инструкция по изготовлению и контролю данной вакцины утверждена Главным управлением ветеринарии 16.07.90 г.; вакцина против энтерококковой инфекции телят, ягнят и поросят ТУ 10.09-91-90, утверждено 15.12.90 г. представлены все необходимые сведения о микроорганизмах рода Salmonella и рода Streptococcus. Однако для нутрий эти вакцины не применяются.With regard to the criterion of "industrial applicability", the components that make up the vaccine are known and widely used in veterinary practice in the manufacture of inactivated vaccines: formolvac vaccine against paratyphoid (salmonellosis) calves TU 46-21-166-75, approved 10.05.75 g The instructions for the manufacture and control of this vaccine were approved by the General Veterinary Administration of the Ministry of Agriculture of the USSR on March 28, 1980; vaccine against paratyphoid (salmonellosis) piglets TU 46-21-952-74, approved July 15, 74, instructions for the manufacture and control of this vaccine approved by the General Directorate of Veterinary of the Ministry of Agriculture of the USSR 10.23.96; associated vaccine against salmonellosis, pasteurellosis and enterococcal infection of piglets TU 10.09-62-90, approved on 08.18.90, the instruction for the manufacture and control of this vaccine was approved by the General Directorate of Veterinary Medicine on 16.07.90; vaccine against enterococcal infection of calves, lambs and piglets TU 10.09-91-90, approved 15.12.90, provides all the necessary information about the microorganisms of the genus Salmonella and the genus Streptococcus. However, for vaccines, these vaccines are not used.
Методы выделения и характеристика сальмонелл описаны в методических указаниях «Лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды». - М.: ВО «Агропромиздат», 1990 г., а также в справочнике «Определитель зоопатогенных микроорганизмов» под редакцией профессора Сидорова М.А. - М.: Колос, 1995, стр.201-204. В «Практикуме по ветеринарной микробиологии и иммунологии» авторы: Костенко Т.С., Родионова В.Б., Скородумов Д.И. - М.: «Колос», 2001, на стр.222-231.Methods of isolation and characterization of salmonella are described in the guidelines "Laboratory diagnosis of salmonella in humans and animals, the detection of salmonella in feed, food and environmental objects." - M .: VO "Agropromizdat", 1990, as well as in the directory "Key to Zoopathogenic Microorganisms" edited by Professor Sidorov M.A. - M .: Kolos, 1995, pp. 201-204. In "Workshop on Veterinary Microbiology and Immunology" authors: Kostenko TS, Rodionova VB, Skorodumov DI - M .: “Kolos”, 2001, on pages 222-231.
Методы выделения и характеристика стрептококков представлены в «Методических указаниях по лабораторной диагностике стрептококкоза животных», утвержденных 25.09.1990 г. Главным управлением ветеринарии с государственной инспекцией при Государственной комиссии СМ СССР по продовольствию и закупкам, а также в справочнике «Определитель зоопатогенных микроорганизмов» под редакцией профессора Сидорова М.А. - М.: Колос, 1995, стр.90-95.Methods of isolation and characterization of streptococci are presented in the Methodological Instructions for the Laboratory Diagnosis of Animal Streptococcosis, approved on September 25, 1990 by the General Directorate of Veterinary Medicine with the State Inspectorate under the State Commission of the USSR Council of Ministers for Food and Procurement, as well as in the reference book “Identifier of zoopathogenic microorganisms” Professor Sidorov M.A. - M .: Kolos, 1995, pp. 90-95.
Сущность предлагаемого способа заключается в том, что проводят отбор пораженных органов от павших нутрий из местного эпизоотического очага, приготавливают суспензию из патологического материала, делают посев на дифференциально-диагностические среды, выделяют чистые культуры возбудителей инфекционных болезней сальмонеллеза и энтерококковой инфекции, раздельно выращивают чистые культуры возбудителей Salmonella typhimurium и Streptococcus fecalis в мясо-пептонном бульоне с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации с титром 4-5 млрд микробных клеток в 1 см3, инактивируют путем внесения формалина до 0,4-0,6%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°С в течение 72-96 часов, смешивают культуры в соотношении 1:2, затем вносят раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему культуры, тщательно смешивают, фасуют и укупоривают.The essence of the proposed method lies in the fact that they carry out the selection of affected organs from fallen nutria from the local epizootic focus, prepare a suspension of pathological material, sow on differential diagnostic media, isolate pure cultures of pathogens of infectious diseases of salmonellosis and enterococcal infection, separate pure cultures of pathogens Salmonella typhimurium and Streptococcus fecalis in meat-peptone broth with glucose added to 0.2% concentration with a titer of 4-5 billion microbial cells in 1 cm 3 , inactivate by introducing formalin to 0.4-0.6% of the final concentration, incubate at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours, mix the cultures in a ratio of 1: 2, then add a solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% to the volume of culture, thoroughly mix, pack and seal.
Пример конкретного осуществления способа изготовления вакцины.An example of a specific implementation of the method of manufacturing a vaccine.
Для изготовления вакцины ассоциированной против сальмонеллеза и энтерококковой инфекции нутрий проводят отбор пораженных органов от павших нутрий в период заболевания их сальмонеллезом и энтерококковой инфекцией, из которых приготавливают суспензию и проводят бактериологические исследования с целью выделения чистых культур возбудителей.For the manufacture of a vaccine associated with salmonellosis and enterococcal infection, nutria carry out the selection of affected organs from fallen nutria during the period of illness with their salmonellosis and enterococcal infection, from which a suspension is prepared and bacteriological studies are carried out in order to isolate pure cultures of pathogens.
Для определения морфологии и тинкториальных свойств возбудителя сальмонеллеза готовят мазки-отпечатки из пораженных органов павших нутрий, окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании препаратов под иммерсионной системой микроскопа наблюдают тонкие палочки красного цвета, расположенные одиночно, характерные для рода Salmonella.To determine the morphology and tinctorial properties of the pathogen of salmonellosis, fingerprint smears are prepared from the affected organs of the fallen nutria, and they are stained using the Gram method. When microscopying the preparations under the immersion system of the microscope, thin red rods are observed, located singly, characteristic of the genus Salmonella.
Для определения культуральных свойств возбудителя сальмонеллеза нутрий делают посевы выделенной культуры из патологического материала в мясо-пептонный бульон (МПБ), на дифференциально-диагностические среды (Эндо, Левина, висмут-сульфитный агар), на мясо-пептонный агар (МПА) и инкубируют в термостате при 37°С в течение 16-24 часов. На чашках Петри с МПА выростают гладкие, прозрачные, бесцветные колонии с ровными краями. В пробирках с МПБ наблюдают диффузное помутнение питательной среды. В чашках Петри, на среде Эндо наблюдают прозрачные бесцветные колонии, на среде Левина - голубоватые, на висмут-сульфитном агаре - черные колонии с характерными металлическим блеском, что характерно для рода Salmonella.To determine the cultural properties of the causative agent of salmonellosis nutria, the selected culture is inoculated from pathological material into meat-peptone broth (MPB), on differential diagnostic media (Endo, Levina, bismuth-sulfite agar), on meat-peptone agar (MPA) and incubated in thermostat at 37 ° C for 16-24 hours. Smooth, transparent, colorless colonies with even edges grow on Petri dishes with MPA. In test tubes with BCH, diffuse turbidity of the nutrient medium is observed. Transparent colorless colonies are observed in Petri dishes, on Endo medium, bluish on Levin medium, black colonies with characteristic metallic luster on bismuth-sulfite agar, which is typical for the genus Salmonella.
При определении биохимической активности чистых культур проводят посевы на дифференциально-диагностические среды с различным набором углеводов и компонентов.When determining the biochemical activity of pure cultures, crops are sown on differential diagnostic media with a different set of carbohydrates and components.
Выделенная чистая культура возбудителя сальмонеллеза характерна для представителей рода сальмонелл (ферментирует глюкозу, манит, не утилизирует лактозу, сахарозу, не расщепляет мочевину, не образует индол, не разжижает желатину).The isolated pure culture of the causative agent of salmonellosis is characteristic of representatives of the genus Salmonella (ferments glucose, beckons, does not utilize lactose, sucrose, does not break down urea, does not form indole, and does not dilute gelatin).
Патогенность и специфичность чистой выделенной культуры определяют путем внутрибрюшинного заражения белых мышей массой 14-18 г. Через 2-4 суток наблюдения все зараженные лабораторные животные погибают при 100% сохранности в контроле. Для подтверждения специфичности гибели белых мышей из паренхиматозных органов павших мышей готовят мазки-отпечатки, окрашивают их по методу Грама. При микроскопировании под иммерсионной системой микроскопа наблюдают тонкие палочки красного цвета, расположенные одиночно, характерные для рода Salmonella.The pathogenicity and specificity of the pure isolated culture is determined by intraperitoneal infection of white mice weighing 14-18 g. After 2-4 days of observation, all infected laboratory animals die at 100% safety in the control. To confirm the specificity of the death of white mice from the parenchymal organs of fallen mice, fingerprints are prepared and stained using the Gram method. When microscoping under the immersion system of the microscope, thin red rods are observed, located singly, characteristic of the genus Salmonella.
Для установления серотиповой принадлежности выделенной чистой культуры Salmonella ставят реакцию агглютинации (РА) на стекле по общепринятой методике. Выделенную чистую культуру проверяют с О-комплексными и монореценторными О- и Н-агглютинирующими сыворотками в реакции агглютинации. Для этого выделенную чистую культуру выращивают на скошенном МПА в течение 18-24 ч при температуре 37°С. РА на стекле ставят с каждой из О- и Н-комплексных сывороток последовательно, до получения положительного результата с двумя сыворотками. Положительный результат РА наблюдают в виде с трудом разбивающихся хлопьев с выделенной культурой Salmonella typhimurium.To establish the serotypic affiliation of the isolated pure Salmonella culture, an agglutination reaction (RA) was placed on glass according to the generally accepted method. The isolated pure culture was tested with O-complex and monorecentric O- and H-agglutinating sera in the agglutination reaction. To do this, the selected pure culture is grown on a beveled MPA for 18-24 hours at a temperature of 37 ° C. RA on glass is placed with each of the O- and H-complex sera in series, until a positive result with two sera is obtained. A positive RA result is observed in the form of hard-breaking flakes with an isolated culture of Salmonella typhimurium.
Для определения морфологии и тинкториальных свойств возбудителя энтерококковой инфекции готовят мазки-отпечатки из пораженных органов павших нутрий, окрашивают их по методу Грама. При микроскопии препаратов под иммерсионной системой микроскопа наблюдают мелкие кокки в виде цепочек и расположенные попарно, окрашенные в фиолетовый цвет, характерные для рода Streptococcus. Для определения культуральных свойств возбудителя энтерококковой инфекции делают посевы выделенной культуры из патматериала в мясо-пептонный бульон с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации и 10% инактивированной сыворотки лошади (МПБ), в чашки Петри с мясо-пептонным агаром (МПА) с добавлением с добавлением глюкозы до 0,2%-ной конечной концентрации и 5% дефибринированной крови кролика. Через 18-20 часов инкубирования в термостате при температуре 37°С наблюдают в МПБ рост в виде диффузного помутнения среды. В чашках Петри с кровяным МПА наблюдают рост мелких росинчатых, слегка мутноватых с ровньми краями колоний, окруженных зеленоватой зоной гемолиза, что характерно для Streptococcus fecalis.To determine the morphology and tinctorial properties of the causative agent of enterococcal infection, fingerprint smears are prepared from the affected organs of the fallen nutria, and they are stained using the Gram method. Microscopy of preparations under the immersion microscope system observed small cocci in the form of chains and arranged in pairs, colored in purple, characteristic of the genus Streptococcus. To determine the cultural properties of the causative agent of enterococcal infection, crops of the isolated culture are made from the material in the meat-peptone broth with glucose up to 0.2% final concentration and 10% inactivated horse serum (MPB), in Petri dishes with meat-peptone agar (MPA ) with the addition of glucose up to 0.2% final concentration and 5% defibrinated rabbit blood. After 18-20 hours of incubation in a thermostat at a temperature of 37 ° C, growth in the form of diffuse turbidity of the medium is observed in the BCH. In Petri dishes with blood MPA, growth of small dewy, slightly turbid with flat edges colonies surrounded by a greenish hemolysis zone is observed, which is typical for Streptococcus fecalis.
Для дифференциации стрептококков от стафилококков используют каталазную пробу. При постановке каталазной пробы на предметное стекло наносят каплю свежеприготовленного 3%-ного раствора перекиси водорода. Бактериологической петлей снимают одну колонию исследуемой культуры и растирают ее в капле перекиси водорода. Стафилококки, в отличие от стрептококков, образуют каталазу и вызывают пенообразование. Для предварительной идентификации стрептококков и энтерококков баккультуру высевают в пробирки с 10%, 40% желчи, с 6,5% хлористого натрия, с углеводами (раффинозой, сорбитом, маннитом), учитывают рост в жидкой среде и гемолиз на МПА с кровью.To differentiate streptococci from staphylococci, a catalase test is used. When staging a catalase sample, a drop of a freshly prepared 3% hydrogen peroxide solution is applied to a glass slide. Bacteriological loop remove one colony of the studied culture and rub it in a drop of hydrogen peroxide. Staphylococci, unlike streptococci, form catalase and cause foaming. For preliminary identification of streptococci and enterococci, the culture is seeded in test tubes with 10%, 40% bile, with 6.5% sodium chloride, with carbohydrates (raffinose, sorbitol, mannitol), growth in a liquid medium and hemolysis on MPA with blood are taken into account.
В результате в пробирках с желчью наблюдают диффузный рост баккультуры, отмечают ферментацию маннита. На МПА с кровью наблюдают неполный гемолиз эритроцитов с образованием вокруг колоний зеленоватой зоны, что характерно для стрептококков группы D.As a result, diffuse growth of baculture is observed in test tubes with bile, fermentation of mannitol is noted. On blood MPA, incomplete hemolysis of red blood cells is observed with the formation of a greenish zone around the colonies, which is typical for group D streptococci.
При выделении культуры стрептококков серологической группы D необходимо определять разновидность энтерококков, так как кроме патогенных Streptococcus fecalis в эту группу входит и Streptococcus faecium, который является облигатным обитателем кишечника животных и человека. Для этого использовуют дифференциально-диагностическую среду. На энтерококковой дифференциально-диагностической среде через 14-18 часов инкубирования наблюдают рост колоний вишнево-красного цвета, что характерно для возбудителя энтерококковой инфекции Streptococcus fecalis. Для установления серогрупповой принадлежности стрептококков используют стрептококковые групповые преципитирующие сыворотки. Серогрупповую принадлежность стрептококков определяют в реакции преципитации (РП) в капиллярах. Патогенность подтверждают биопробой на молодых белых мышках.When isolating the culture of streptococci of serological group D, it is necessary to determine the variety of enterococci, since in addition to pathogenic Streptococcus fecalis, this group also includes Streptococcus faecium, which is an obligate inhabitant of the intestines of animals and humans. To do this, use a differential diagnostic environment. On enterococcal differential diagnostic medium after 14-18 hours of incubation, the growth of cherry red colonies is observed, which is typical for the causative agent of enterococcal infection Streptococcus fecalis. To establish the serogroup affiliation of streptococci, streptococcal group precipitating serums are used. The serogroup affiliation of streptococci is determined in the precipitation reaction (RP) in the capillaries. Pathogenicity is confirmed by bioassay on young white mice.
Выделенные таким образом чистые культуры возбудителей сальмонеллеза Salmonella typhimurium и энтерококковой инфекции Streptococcus fecalis используют для получения баксырья.Pure cultures of Salmonella typhimurium salmonellosis pathogens and Streptococcus fecalis enterococcal infection isolated in this way are used to produce bakery.
Выращивание чистых культур возбудителей проводят раздельно в мясо-пептонном бульоне. Для заражения берут 5 см3 свежей чистой культуры возбудителя сальмонеллеза Salmonella typhimurium на 1000 см3 мясо-пептонной питательной среды с добавлением глюкозы до 0,2%-ной концентрации и выращивают при 37°С в течение 12-14 часов. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяют по стандарту мутности и разводят стерильной дистиллированной водой до концентрации 4-5 млрд в 1 см3. Инактивацию полученного баксырья проводят внесением формалина 0,4-0,6%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании.The cultivation of pure cultures of pathogens is carried out separately in meat-peptone broth. For infection, take 5 cm 3 fresh pure culture of the pathogen Salmonella Salmonella typhimurium per 1000 cm 3 meat-peptone culture medium with the addition of glucose to 0.2% concentration and grown at 37 ° C for 12-14 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass is determined according to the turbidity standard and diluted with sterile distilled water to a concentration of 4-5 billion in 1 cm 3 . The inactivation of the obtained raw materials is carried out by introducing formalin of 0.4-0.6% final concentration, kept at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring.
Для заражения берут 5 см3 чистой культуры возбудителя энтерококковой инфекции Streptococcus fecalis на 1000 см3 жидкой питательной среды с добавлением 0,2% глюкозы и выращивают при 37°С в течение 12-14 часов. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяют по стандарту и разводят стерильной дистиллированной водой до концентрации 4-5 млрд в 1 см3. Инактивацию баксырья проводят раздельно внесением формалина 0,4-0,6%-ной конечной концентрации, выдерживают при температуре 37°С в течение 72-96 часов при периодическом перемешивании, смешивают инактивированные баккультуры в соотношении 1:2. Затем к смеси баккультур добавляют раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему и тщательно перемешивают, фасуют и укупоривают.For infection, take 5 cm 3 of a pure culture of the causative agent of enterococcal infection Streptococcus fecalis per 1000 cm 3 of liquid nutrient medium with the addition of 0.2% glucose and grown at 37 ° C for 12-14 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass is determined according to the standard and diluted with sterile distilled water to a concentration of 4-5 billion in 1 cm 3 . Inactivation of bakery is carried out separately by adding formalin of 0.4-0.6% final concentration, kept at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours with periodic stirring, inactivated baculture is mixed in a ratio of 1: 2. Then, a solution of aluminum hydroxide in an amount of 20% by volume is added to the mixture of bacultures and thoroughly mixed, packaged and sealed.
Таким образом, использование для изготовления вакцины ассоциированной против сальмонеллеза и энтерококковой инфекции нутрий чистых культур возбудителей Salmonella typhimurium и Streptococcus fecalis, выделенных из местного эпизоотического очага, позволяет получать более специфичную, высокоиммуногенную ассоциированную вакцину для защиты от этих двух опасных инфекционных болезней: сальмонеллеза и энтерококковой инфекции нутрий. Раздельное выращивание возбудителей с содержанием 0,2% глюкозы позволяет получать концентрацию бактериальных клеток не менее 4 млрд. в 1 см3 в течение 12-14 часов инкубирования. Использование формалина для инактивации в 0,4-0,6%-ной конечной концентрации позволяет в течение 72-96 часов при температуре 37°С подавить патогенность и сохранить высокую иммуногенность в течение 12 месяцев хранения. Адсорбирование двух антигенов на гидроокиси алюминия позволяет через 12-15 суток после однократного введения в дозе 1 см3 нутриям обеспечить у привитых нутрий формирование напряженного иммунитета против сальмонеллеза и энтерококковой инфекции продолжительностью не менее 9 месяцев (срок наблюдения). После однократного введения нутриям внутримышечно не вызывает у них поствакцинальных осложнений (таблица).Thus, the use of pure cultures of Salmonella typhimurium and Streptococcus fecalis pathogens isolated from the local epizootic focus for the manufacture of a vaccine associated with salmonellosis and enterococcal nutria infection allows the preparation of a more specific, highly immunogenic associated vaccine to protect against these two dangerous infectious diseases: salmonellosis and enterococcus nutria. Separate growth of pathogens with a content of 0.2% glucose allows to obtain a concentration of bacterial cells of at least 4 billion in 1 cm 3 during 12-14 hours of incubation. The use of formalin for inactivation in 0.4-0.6% of the final concentration allows to suppress pathogenicity for 72-96 hours at a temperature of 37 ° C and maintain high immunogenicity for 12 months of storage. The adsorption of two antigens on aluminum hydroxide allows 12-15 days after a single injection of 1 cm 3 nutria to provide the vaccinated nutria with the formation of intense immunity against salmonellosis and enterococcal infection lasting at least 9 months (observation period). After a single administration to nutria, intramuscularly does not cause post-vaccination complications in them (table).
Предложенный способ прост в исполнении, доступен и является промышленно применимым.The proposed method is simple to implement, affordable and is industrially applicable.
Сравнительная характеристика изготовления вакцины по предлагаемому способу и прототипуTable
Comparative characteristics of the manufacture of the vaccine according to the proposed method and prototype
Таким образом, данные таблицы показывают преимущества предлагаемого способа изготовления вакцины ассоциированной против сальмонеллеза и энтерококковой инфекции нутрий по сравнению с имеющимся прототипом.Thus, these tables show the advantages of the proposed method for the manufacture of a vaccine associated against salmonellosis and enterococcal nutria infection in comparison with the existing prototype.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005124660/13A RU2292914C1 (en) | 2005-08-02 | 2005-08-02 | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005124660/13A RU2292914C1 (en) | 2005-08-02 | 2005-08-02 | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2292914C1 true RU2292914C1 (en) | 2007-02-10 |
Family
ID=37862479
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2005124660/13A RU2292914C1 (en) | 2005-08-02 | 2005-08-02 | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2292914C1 (en) |
-
2005
- 2005-08-02 RU RU2005124660/13A patent/RU2292914C1/en not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Craven et al. | Serogroup identification of Neisseria meningitidis: comparison of an antiserum agar method with bacterial slide agglutination | |
RU2429012C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
RU2388489C1 (en) | Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias | |
RU2316345C1 (en) | Method for manufacturing associated vaccione against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias | |
RU2538158C1 (en) | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2288002C1 (en) | Method for preparing vaccine against enterococcus infection in nutrias | |
RU2432174C1 (en) | Method for producing colibacillosis anatoxin | |
RU2292914C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias | |
RU2301077C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against coli-bacteriosis, salmonellosis and streptococcosis in nutria | |
RU2309767C1 (en) | Method for manufacturing vaccine against pseudomonosis in swine | |
RU2292911C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and streptococcosis in nutrias | |
RU2406532C1 (en) | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2338554C2 (en) | Method of manufacturing of vaccine associated against colibacillosis, salmonellosis and enterococcus infections of nutrias | |
RU2301076C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against streptococcosis and enterococcus infection in nutria | |
RU2406530C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against streptococcosis, pseudomonosis and enterococcal infection of nutrias | |
RU2292915C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and colibacteriosis in nutrias | |
RU2429880C1 (en) | Method to manufacture vaccine associated against streptococcosis and virus haemorrhagic disease of rabbits | |
RU2707289C1 (en) | Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals | |
RU2799603C1 (en) | Sa-21 strain of bacteria of streptococcus genus of streptococcus agalactiae species for the manufacture of biological products for the specific prevention of mastitis in cows | |
RU2325183C1 (en) | Production method of animal colibacillosis vaccine | |
RU2818959C1 (en) | Pasteurella multocida "pm - b" bacterium strain for manufacture of biopreparations for specific prevention of pasteurellosis (hemorrhagic septicemia) in cattle caused by serogroup b pasteurella | |
RU2279891C1 (en) | Method for production of vaccine against coypu salmonellosis | |
RU2443774C1 (en) | Method for producing associated colibacillosis, streptococcosis and rabbit viral hemorrhagic disease vaccine | |
RU2804137C1 (en) | Streptococcus pneumoniae strain serotype 19f | |
RU2404801C1 (en) | Method for manufacturing of vaccine against colibacteriosis of rabbits |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20070803 |