RU2605635C1 - СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА С ЭНДОИНУЛИНАЗНОЙ И САХАРАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ШТАММА МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM CANESCENS Sopp INUA3 - Google Patents

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА С ЭНДОИНУЛИНАЗНОЙ И САХАРАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ШТАММА МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM CANESCENS Sopp INUA3 Download PDF

Info

Publication number
RU2605635C1
RU2605635C1 RU2015151482/10A RU2015151482A RU2605635C1 RU 2605635 C1 RU2605635 C1 RU 2605635C1 RU 2015151482/10 A RU2015151482/10 A RU 2015151482/10A RU 2015151482 A RU2015151482 A RU 2015151482A RU 2605635 C1 RU2605635 C1 RU 2605635C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
inua3
sopp
cultivation
recombinant
Prior art date
Application number
RU2015151482/10A
Other languages
English (en)
Inventor
Аркадий Пантелеймонович Синицын
Александра Михайловна Рожкова
Иван Никитич Зоров
Павел Валерьевич Волков
Original Assignee
Аркадий Пантелеймонович Синицын
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Аркадий Пантелеймонович Синицын filed Critical Аркадий Пантелеймонович Синицын
Priority to RU2015151482/10A priority Critical patent/RU2605635C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2605635C1 publication Critical patent/RU2605635C1/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/65Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression using markers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к микробиологии. Описан способ получения ферментного препарата с эндоинулиназной и сахаразной активностью путем культивирования рекомбинантного штамма мицелиального гриба Penicillium canescens Sopp INUA3. Изобретение повышает сахаразную активность, достаточную для снижения уровня сахарозы при гидролизе клубней топинамбура, что частично решает проблему эффективного выделения ФОС после ферментативного гидролиза инулина, при сохранении эндоинулиназной активности рекомбинантного штамма. 2 н.п. ф-лы, 1 ил., 2 табл., 3 пр.

Description

Изобретение в области биотехнологии относится к микробиологической промышленности и представляет собой способ получения ферментных препаратов с эндоинулиназной и сахаразной активностью путем культивирования рекомбинантного штамма мицелиального гриба Penicillium canescens Sopp INUA3 (ВКМ F-4564D), полученного в результате генетической трансформации фрагментом ДНК, содержащим гетерологичный ген эндоинулиназы Aspergillus niger.
Функциональные продукты питания и напитки на сегодняшний день являются самым быстрорастущим сегментом пищевой отрасли на мировом рынке. Тенденция массового перехода на «здоровые» продукты имеет место и в России. Уже сегодня спрос на продукты здорового питания устойчиво растет. Одним из компонентов здорового питания являются пребиотики, вещества, которые селективно ферментируются микрофлорой толстой кишки, вызывая активный рост полезных микроорганизмов, что, в свою очередь, приводит к улучшению пищеварения и усвояемости питательных веществ в организме. К пребиотикам относят соединения углеводной группы - моносахариды, полисахариды и олигосахариды, в частности, фруктоолигосахариды (ФОС). Наиболее популярными в мировой практике пребиотиками являются инулин, биополимер-олигофруктан, состоящий из β-2,1-связанной фруктозы, с остатком глюкозы на невосстанавливающем конце цепи, и фруктоолигосахариды, получающиеся путем расщепления инулина на более короткие полимерные цепочки.
Долгое время считалось, что возможностей для производства инулина и ФОС в РФ нет. Ведущие мировые производители ФОС в качестве сырья используют цикорий. В России же полностью отсутствуют посадки цикория инулиносодержащих сортов в связи с климатическими условиями. В этой связи, особого внимания заслуживает многолетнее растение топинамбур (Heliantnus tuberosus), который, благодаря исключительному биополимерному составу (линейному, в отличии от цикория) становится одной из самых популярных сырьевых культур.
Существует ряд технических решений, связанных с экстракцией фруктоолигосахаридов из клубней топинамбура [RU 2489445]. Данное техническое решение характеризуется высокой энергозатратностью и, как следствие, экономической неэффективностью процесса получения ФОС. В мировой практике существуют и другие способы выделения ФОС из инулинсодержащего сырья, например, связанные с применением кислотного гидролиза инулосодержащего сырья. Однако такие способы экологически небезопасны.
В отличии от вышеуказанных технологий, ферментативный гидролиз инулосодержащего сырья является экологически чистым процессом и происходит под действием так называемого инулиназного комплекса ферментов - набора эндо- и экзоинулиназ, гидролизующих молекулы инулина - основного полисахарида топинамбура с получением ФОС и простых (фруктозы и глюкозы) сахаров, в зависимости от типа используемого фермента. Прототипом такого способа может являться технология получения инулина у компании Sudzucker AG (Mannheim/Ochsenfurt, DE) [Process for the preparation of long-chain inulin with inulinase, US 5478732] и получения ФОС у компании Raffinerie Tirlemontoise (BE) [Fructooligosaccharide composition, process for its production and use, US 20110081449 A1]. Однако оба процесса в данных патентах предполагают использование цикория - основной инулосодержащей культуры Европы.
Таким образом, получение ФОС путем ферментативного гидролиза линейного инулина клубней топинамбура является для современной пищевой индустрии в РФ актуальной и социально-значимой задачей.
В качестве основного инулолитического фермента, используемого для деструкции инулина с получением ФОС применяется эндоинулиназа. Эндоинулиназа (2,1-β-D-фруктанфруктаногидролаза, КФ 3.2.1.7) является эндодеполимеразой и гидролизует β-2,1-связи инулина преимущественно до ФОС. Данный тип ферментов функционирует в более мягких условиях по сравнению с кислотным гидролизом, широко использующимся на сегодняшний день для деструкции инулина и требующим значительной концентрации ионов водорода, высокой температуры и специального оборудования, устойчивого к агрессивным средам [Yi, Н., Zhang, Lanwei, Hua, С., Sun, K., & Zhang, L. Extraction and Enzymatic Hydrolysis of Inulin from Jerusalem artichoke and their Effects on Textural and Sensorial Characteristics of Yogurt // Food and Bioprocess Tech. - 2009. - V. 3. - N. 2. - P. 315-319].
Ранее, на основе рекомбинантного штамма Penicillium canescens Sopp INUA3 (BКM F-4564D) был получен экспериментальный образец нового ферментного препарата эндоинулиназы (ЭНДИН), характеризующийся высоким содержанием эндоинулиназы с высокой удельной активностью. Данный ферментный препарат осуществляет гидролиз олигофруктана-инулина с образованием более коротких цепочек - фруктоолигосахаридов со степенью полимеризации от 2 до 8, что является оптимальным размером ФОС, использующихся в пищевой промышленности в качестве пребиотиков [Волков П.В. и др. Получение ферментных препаратов эндоинулиназы для высокоэффективного гидролиза клубней топинамбура, Хранение и переработка сельхозсырья 2012, №2, стр. 12-14; Волков П.В. и др. Получение ферментных препаратов на основе рекомбинантных штаммов Penicillium canescens с высокой способностью к гидролизу растительного сырья // Прикладная биохимия и микробиология, 2012, т. 48, N1, с. 66-73].
Стоит отметить, что ферментный препарат ЭНДИН, продуцентом которого является рекомбинантный штамм Penicillium canescens, является одним из ряда аналогичных ферментных препаратов инулиназ (2,1-β-D-фруктан-фруктаногидролазы эндо- и/или экзо-типа действия), используемых в мировой практике и предназначенных для гидролиза инулин-содержащего сырья с получением фруктоолигосахаридов и простых сахаров (фруктозы, глюкозы). К таким ферментным препаратам относятся: Novozym 230, Fructozyme SP 230, Fructozyme L (Novozymes) или, например, Oligofructase 3000 (Beldem/Puratos).
Однако, в технологическом процессе переработки топинамбура в ФОС существует стадия отделения фруктоолигосахаридов (ФОС) от низкомолекулярных продуктов (сахарозы и моносахаридов), где применяются мембранные или хроматографические методы разделения [Jerusalem artichoke/chicory comprehensive utilization method, CN 102504048, Continuous type nanofiltration purification and concentration device for inulin extraction, CN 202543120]. Присутствие сахарозы в разделяемой смеси значительно ухудшает параметры разделения, приводит к снижению степени чистоты ФОС на выходе процесса разделения и понижению качества конечной продукции.
Сахароза (a-D-глюкопиранозил-1,2-β-D-фруктофуранозид) под действием фермента сахаразы (α-β-(1,2)-глизозилгидролазы, сахарозо-α-глюкозидазы) расщепляется с образованием D-глюкозы и D-фруктозы. Наличие фермента сахаразы наряду с эндоинулиназной активностью, приведет к понижению уровня сахарозы в реакционной смеси, что приведет к улучшению технологических характеристик процесса биоконверсии топинамбура в ФОС.
Опытным путем было установлено, что штамм Penicillium canescens RN-3-11-7, который является реципиентом штамма Penicillium canescens Sopp INUA3 (ВКМ F-4564D), обладает ферментативной активностью по сахарозе на уровне 36±3 ед/мл культуральной жидкости при использовании стандартной ферментационной среды следующего состава, %: свекловичный жом - 3, пептон - 5, KH2PO4 - 2,5.
Таким образом, стоит задача в получении ферментного препарата, обладающего наряду с эндоинулиназной активностью, также и достаточной сахаразной активностью.
Поставленная задача решается путем модификации условий культивирования штамма P. canescens Sopp INUA3 с целью увеличения сахаразной активности в секретируемом комплексе рекомбинантного штамма.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является повышение сахаразной активности, достаточной для снижения уровня сахарозы при гидролизе клубней топинамбура, что частично решает проблему эффективного выделения ФОС после ферментативного гидролиза инулина, при сохранении эндоинулиназной активности рекомбинантного штамма.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами.
Пример 1. Культивирование рекомбинантного штамма Р. canescens Sopp INUA3 в 1-л ферментере на модифицированной ферментационной среде с целью получения сахаразной активности в секретируемом комплексе рекомбинантного штамма.
Культивирование штамма P. canescens Sopp INUA3 ВКМ F-4564D в лабораторном ферментере объемом 1 л, оснащенном системой автоматического регулирования pH, pO2 и температуры, а также барботерами для подачи воздуха в аппарат и двухъярусной мешалкой. Получение инокулята в колбах для засева в ферментеры проводят на среде следующего состава, %: глюкоза - 2,0, KH2PO4 - 1,5, (NH4)2SO4 - 0,5, дрожжевой экстракт - 1,0, CaCl2 - 0,03, MgSO4 × 7H2O - 0,03. После суток культивирования при T=28±0,2°C и pH=6,2±0,2 инокулят переносят в ферментер и культивирование проводят на ферментационной среде следующего состава, масс. %: свекловичный жом - 3, пептон - 5, KH2PO4 - 2,5, пшеничные отруби - 1, вода - остальное. В качестве пеногасителя перед стерилизацией вносят 0,1% Лапрола. Ферментеры засевают 10% вегетативного посевного материала, выращенного в колбах. Температура культивирования - 28±0,2°C; pH в начале ферментации составляет 5,0-5,5, в течение ферментации поддерживается 4,5-5,0. На 3-и и 4-ые сутки культивирования рекомбинантного штамма P. canescens Sopp INUA3 проводят индукцию биосинтеза ферментов лактозой. Для этого 20 г лактозы растворяют в 100 мл стерильной воды и добавляют по 10 мл лактозы в ферментационную среду через 72 и 96 ч соответственно.
Через каждые 24 ч отбирают пробы культуральной жидкости и после удаления биомассы определяют активности целевых ферментов и концентрацию растворимого белка.
Ферментативные активности инулиназы, сахаразы и ксиланазы через 144 ч ферментации, а также концентрация растворимого белка в культуральной жидкости штамма P. canescens Sopp INUA3, выращенного на стандартной среде культивирования, включающей свекловичный жом - 3, пептон - 5, KH2PO4 - 2,5, вода - остальное, и модифицированной среде культивирования с добавками лактозы на 72 и 96 ч культивирования с финальной концентрацией 0,2% приведены в таблице 1.
Из культуральной жидкости штамма P. canescens Sopp INUA3, наработанного в соответствии с примером 1 на средах без добавок лактозы и с добавкой лактозы, получают концентрированные ферментные препараты (ФП) ЭНДИН и INUA-SAC, соответственно, методом лиофильного высушивания ультраконцентрата.
Пример 2. Определение качественного и количественного состава ФП и ЭНДИН и INUA-SAC.
Качественный и количественный состав ФП INUA-SAC определяли хроматографическим методом. Навеску ФП растворяли в 0,1 М Na-ацетатном буфере (pH 5,0), центрифугировали и обессоливали с заменой буфера при помощи гель-проникающей хроматографии на носителе Bio-Gel P-6 фирмы Bio-Rad (США) в 20 мМ буфере bis-Tris-HCl, pH 6,9. Подготовленный таким образом ФП фракционировали с помощью FPLC-системы фирмы «Pharmacia» (Швеция) на анионообменном носителе Source 15Q («Amersham Biosciences), (Швеция) объем колонки составил 1 мл. Образец наносили в стартовом буфере Bis-Tris/HCl при pH 6,9; связавшиеся белки элюировали в градиентой концентрации NaCl от 0 до 0,4М. В полученных в ходе элюирования фракциях, а также в несвязавшейся фракции, определяли инулиназную, ксиланазную и сахаразную активности, а также содержание белка. Ксиланазную активность определяли по начальной скорости образования BC при гидролизе березового ксилана, активность выражали в международных единицах (одна единица активности соответствует количеству фермента, гидролизующего 1 мкмоль гликозидных связей ксилана за 1 мин).
Инулиназную активность по отношению к инулину топинамбура и олигосахаридному субстрату - сахарозе определяли по начальным скоростям образования восстанавливающих сахаров (BC) модифицированным методом Шомоди-Нельсона.
Активность выражали в международных единицах на 1 мг белка (одна единица активности соответствует количеству фермента, гидролизующего 1 мкмоль гликозидных связей субстрата за 1 мин).
Аналогичным образом был определен состав контрольного ФП ЭНДИН.
Содержание целевых и других ферментов в ФП INUA-SAC и ЭНДИН приведено в табл. 2.
Таким образом, путем изменения ферментационной схемы культивирования рекомбинантного штамма P. canescens Sopp INUA3 (ВКМ F-4564D), продуцента гетерологичной эндонулиназы Aspergillus niger, удалось повысить уровень собственной секретируемой сахаразы, без изменения уровня содержания гетерологичной эндоинулиназы.
Пример 3. Применение ФП INUA-SAC и коммерческого препарата Oligofructase 3000 (Beldem/Puratos) при гидролизе клубней топинамбура.
Предварительно вымытые в проточной воде, измельченные на лабораторной мельнице клубни топинамбура подвергали гидролизу в естественных условиях pH среды (в воде) при 50°C, в течение 3 ч, при перемешивании 250 об/мин на орбитальной качалке. Концентрация клубней топинамбура составляет 100 г/л по сухому веществу. Дозировка ФП INUA-SAC и Oligoofructase 3000 - 10 ед/г сухого субстрата. Через 3 ч ферментативного гидролиза отбирают пробу объемом 0,5 мл и центрифурируют для осаждения непрогидролизованного субстрата. С помощью ВЭЖХ с амперометрической детекцией в супернатанте определяют качественный и количественный состав ФОС, содержащийся в клубнях топинамбура. В качестве неподвижной фазы используется сильный анионообменник (колонка типа Carbopak РА 100), подвижной фазы 100 мМ раствор NaOH, элюирование проводилось в градиенте от 0 до 500 мМ NaOAc в течение 20 мин. Результаты представлены на рисунке 1, где получаемые ФОС представлены инулоолигосахаридами со степенью полимеризации от 2 до 6. Из Рисунка 1 следует, что использование ФП INUA-SAC (в тех же условиях и в той же концентрации, что и ФП Oligofructase 3000) приводит к образованию существенно меньшего количества сахарозы при образовании сходного качества и количества ФОС.
Figure 00000001
Figure 00000002

Claims (2)

1. Способ получения ферментного препарата, обладающего эндоинулиназной и сахаразной активностями, состоящий в культивировании рекомбинантного штамма Penicillium canescens Sopp INUA3 (ВКМ F-4564D) на среде следующего состава (масс. %): свекловичный жом - 3, пептон - 5, КН2РО4 - 2,5, пшеничные отруби - 1, вода-остальное, где через 72 и 96 часов после начала культивирования вносят лактозу в конечной концентрации 0,2%.
2. Ферментный препарат, полученный способом по п. 1 с последующим концентрированием культуральной жидкости и сушкой и обладающий эндоинулиназной и сахаразной активностью.
RU2015151482/10A 2015-12-02 2015-12-02 СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА С ЭНДОИНУЛИНАЗНОЙ И САХАРАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ШТАММА МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM CANESCENS Sopp INUA3 RU2605635C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015151482/10A RU2605635C1 (ru) 2015-12-02 2015-12-02 СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА С ЭНДОИНУЛИНАЗНОЙ И САХАРАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ШТАММА МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM CANESCENS Sopp INUA3

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015151482/10A RU2605635C1 (ru) 2015-12-02 2015-12-02 СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА С ЭНДОИНУЛИНАЗНОЙ И САХАРАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ШТАММА МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM CANESCENS Sopp INUA3

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2605635C1 true RU2605635C1 (ru) 2016-12-27

Family

ID=57793593

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015151482/10A RU2605635C1 (ru) 2015-12-02 2015-12-02 СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА С ЭНДОИНУЛИНАЗНОЙ И САХАРАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ШТАММА МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM CANESCENS Sopp INUA3

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2605635C1 (ru)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5478732A (en) * 1993-05-17 1995-12-26 Sudzucker Ag Process for the preparation of long-chain inulin with inulinase
RU2489445C2 (ru) * 2011-04-13 2013-08-10 Владимир Дмитриевич Артемьев Способ получения из топинамбура инулинсодержащего раствора, способ получения инулина и способ получения фруктоолигосахаридов на основе этого раствора

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5478732A (en) * 1993-05-17 1995-12-26 Sudzucker Ag Process for the preparation of long-chain inulin with inulinase
RU2489445C2 (ru) * 2011-04-13 2013-08-10 Владимир Дмитриевич Артемьев Способ получения из топинамбура инулинсодержащего раствора, способ получения инулина и способ получения фруктоолигосахаридов на основе этого раствора

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2015223025B2 (en) Enzymatic hydrolysis of disaccharides and oligosaccharides using alpha-glucosidase enzymes
CA1199292A (en) Debranching enzyme product, preparation and use thereof
JP2011004730A (ja) リグノセルロース系バイオマスの変換方法
US11390890B2 (en) Dibasic organic acid producing strain and preparation and application of same
CN105431534A (zh) β-1,3-葡聚糖酶、多核苷酸、重组载体、转化体、β-1,3-葡聚糖酶的制造方法、酶制剂及低分子化裸藻淀粉的制造方法
CN108467876B (zh) 一种提高可得然胶产量的发酵方法
CN104962594B (zh) 一种提高黑曲霉糖化酶葡萄糖转化率的方法
JP6581904B2 (ja) リグノセルロース材料の生化学的変換プロセスからの液体残渣を使用する酵素カクテルの産生方法
CN102220244B (zh) 一种哈茨木霉菌株及其用该菌株制备右旋糖酐酶的方法
CN109929891A (zh) 黄原胶发酵培养基的制备工艺
Jang et al. Production of L (+)-lactic acid from mixed acid and alkali hydrolysate of brown seaweed
CN103614303B (zh) 一种表达糖化酶的里氏木霉菌株
AU2012322594A1 (en) Method for the continuous production of cellulases by a filamentous fungus using a carbon substrate obtained from an acid pretreatment
US9708580B2 (en) Bacterial culture media and methods for their preparation and use
ES2510666T3 (es) Proceso para fermentar azúcares que contienen sacáridos oligómeros
WO2016029431A1 (en) Processing of plant material into bacterial feedstock
CN101703152A (zh) 一种利用啤酒麦糟制备虾青素饲料添加剂的方法
CN104812767B (zh) 从槐糖脂生产槐糖的方法
RU2605635C1 (ru) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА С ЭНДОИНУЛИНАЗНОЙ И САХАРАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ШТАММА МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM CANESCENS Sopp INUA3
CN110093389A (zh) 速溶黄原胶的发酵生产方法
CN109929892A (zh) 一种发酵产高品质黄原胶的工艺
RU2397247C1 (ru) Способ биосинтеза липазы
CN103834574B (zh) 一种右旋糖酐酶及其在制备低分子右旋糖酐中的应用
CN110066839A (zh) 用于黄原胶发酵的培养基
Yu et al. Efficient conversion of cane molasses into Tremella fuciformis polysaccharides with enhanced bioactivity through repeated batch culture

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20171203