RU2548107C1 - Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery - Google Patents

Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery Download PDF

Info

Publication number
RU2548107C1
RU2548107C1 RU2014150177/93A RU2014150177A RU2548107C1 RU 2548107 C1 RU2548107 C1 RU 2548107C1 RU 2014150177/93 A RU2014150177/93 A RU 2014150177/93A RU 2014150177 A RU2014150177 A RU 2014150177A RU 2548107 C1 RU2548107 C1 RU 2548107C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
microalgae
stage
cultivated
feed
growing
Prior art date
Application number
RU2014150177/93A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Людмила Владимировна Ладыгина
Original Assignee
Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского filed Critical Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского
Priority to RU2014150177/93A priority Critical patent/RU2548107C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2548107C1 publication Critical patent/RU2548107C1/en

Links

Classifications

    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
    • Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
    • Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish

Landscapes

  • Farming Of Fish And Shellfish (AREA)

Abstract

FIELD: agriculture.
SUBSTANCE: proposed process comprises cultivation of microalgae in accumulation and flow conditions with application of modified Convey medium. At veliger stage, microalgae are used which are cultivated for 17 days in accumulation mode. At veliconcha stage, 10-day microalgae are used which are cultivated in flow mode. At pediveliger stage, microalgae are cultivated for 24 days in accumulation mode.
EFFECT: perfected method.

Description

Прелагаемое изобретение относится к области биотехнологий и предназначено для получения жизнестойкой молоди гигантской устрицы Crassostrea gigas в питомниках с целью дальнейшего их выращивания в условиях морских ферм.The proposed invention relates to the field of biotechnology and is intended to produce viable juveniles of giant oysters Crassostrea gigas in nurseries for the purpose of their further cultivation in marine farms.

Для получения товарной продукции гигантской устрицы Crassostrea gigas в промышленных масштабах необходимо обеспечивать фермы молодью, которую при традиционных технологиях собирают в природных условиях. Существенно повышается эффективность работы морских хозяйств, если их обеспечивать жизнестойким посадочным материалом, полученным в питомниках и подращиваемых на искусственных кормах до переноса на фермы. Одним из факторов, влияющих на темп роста и выживание личинок моллюсков, выращиваемых в питомнике, является питание. Процесс эффективного культивирования личинок устриц возможен только при наличии сбалансированных кормов. Для личинок двустворчатых моллюсков гигантской устрицы Crassostrea gigas характерна избирательность к корму, чувствительность к его размерам и даже к толщине клеточных оболочек. Современные способы культивирования моллюсков ориентированы на получение максимальных биомасс кормовых видов водорослей без учета качественных характеристик кормов, способных удовлетворить физиологические потребности личинок на всех стадиях развития. Успешный рост и развитие личинок устриц в культуре зависит в значительной степени от качества корма, точнее, его биохимического состава.To obtain commercial products of the giant oyster Crassostrea gigas on an industrial scale, it is necessary to provide farms with young people, which are harvested under natural conditions in traditional technologies. The efficiency of marine farms increases significantly if they are provided with viable planting stock obtained in nurseries and cultivated on artificial feed before being transferred to farms. One of the factors affecting the growth rate and survival of mollusk larvae grown in the nursery is nutrition. The process of effective cultivation of oyster larvae is possible only with balanced feed. Crassostrea gigas bivalve mollusk larvae are characterized by feed selectivity, sensitivity to its size and even to the thickness of cell membranes. Modern methods of cultivation of mollusks are focused on obtaining the maximum biomass of fodder species of algae without taking into account the qualitative characteristics of the feed that can satisfy the physiological needs of the larvae at all stages of development. The successful growth and development of oyster larvae in culture depends to a large extent on the quality of the feed, more precisely, its biochemical composition.

Известен Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море [см. П. № 76680 Украина, МПК А01K 61/00, 2005], в котором личинок устрицы обеспечивают кормом на всех стадиях развития. На ранних стадиях (стадия велигера) корм состоит из микроводорослей Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans при соотношении клеток 2:1. На стадии великонхи корм содержит микроводоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части).Known Method of growing giant oysters Crassostrea gigas in the Black Sea [see P. No. 76680 Ukraine, IPC A01K 61/00, 2005], in which oyster larvae provide food at all stages of development. In the early stages (Veliger's stage), the feed consists of microalgae Isochrysis galbana and Chaetoceros calcitrans with a cell ratio of 2: 1. At the Velikonha stage, the feed contains microalgae Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica with a cell ratio of 2: 1: 1: 1, respectively, and at the pediveliger stage, the microelement Skeletonema costatum is additionally introduced into the feed composition (2 parts).

Недостаток известного способа состоит в том, что при формировании корма не учитывают биохимический состав микроводорослей, что влечет качественное несоответствие кормов потребностям личинок и молоди на разных стадиях развития.The disadvantage of this method is that when the feed is formed, the biochemical composition of microalgae is not taken into account, which entails a qualitative mismatch of feed with the needs of larvae and juveniles at different stages of development.

В основу изобретения "Способ подготовки кормов для выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море в условиях питомника№ поставлена задача путем культивирования микроводорослей заданного биохимического состава и включения их в рацион личинок и молоди гигантской устрицы Crassostrea gigas, обеспечить создание оптимальных кормов для выращивания личинок в питомниках и подращивания спата до размещения на ферме.The basis of the invention is “A method for preparing feed for growing the giant oyster Crassostrea gigas in the Black Sea in a nursery. The task is to cultivate microalgae of a given biochemical composition and including them in the diet of larvae and juvenile oysters Crassostrea gigas, to ensure the creation of optimal feed for growing larvae in nurseries and growing up spaths before being placed on a farm.

Поставленная задача достигается тем, что применяются комбинации смесей микроводорослей, достигших необходимых качественных характеристик на разных стадиях культивирования. Известно [Далакян Т.А., Волкова Е.Р., Недосекин А.Г., 1984], что, каждая из фаз роста микроводорослей характеризуется ярко выраженной направленностью потока углерода в один из основных блоков метаболизма клеток. В логарифмической фазе синтезируется белок, в фазе замедления скорости роста - углеводы, в стационарной фазе, особенно в конце фазы, накапливаются липиды. Для удовлетворения пищевых потребностей личинок устриц на стадии велигера необходимо применять микроводоросли с максимальным количеством углеводов. На стадии великонхи целесообразно применять в качестве корма водоросли в логарифмической фазе роста с максимальным количеством белка. На стадии педивелигера - водоросли богатые липидами, т.е. в конце стационарной фазы роста.The problem is achieved by the fact that combinations of mixtures of microalgae are used that have achieved the necessary quality characteristics at different stages of cultivation. It is known [Dalakyan TA, Volkova ER, Nedosekin AG, 1984] that each of the phases of microalgae growth is characterized by a pronounced directivity of the carbon flow to one of the main blocks of cell metabolism. In the logarithmic phase, protein is synthesized, in the phase of slowing the growth rate - carbohydrates, in the stationary phase, especially at the end of the phase, lipids accumulate. To meet the nutritional needs of oyster larvae at the veliger stage, it is necessary to use microalgae with the maximum amount of carbohydrates. At the Velikonha stage, it is advisable to use algae as a feed in the logarithmic growth phase with a maximum amount of protein. At the pediveliger stage, algae are rich in lipids, i.e. at the end of the stationary growth phase.

Известны два режима наращивания микроводорослей: проточный и накопительный. Например, [c.Brown M., Robert R. Preparation and assessment of microalgal concentrates as feeds for larval and juvenile Pacific oyster {Crassostrea gigas).// aguaculture. - 2002. - 207. - P. 289-309], в питомниках по выращиванию личинок устриц во Франции и Испании используют накопительное культивирование. Такой режим культивирования предусматривает накопление биомассы до тех пор, пока не будут использованы все биогены и не прекратится рост микроводорослей. При достижении максимальной биомассы водоросли используются на корм. Проточное культивирование характеризуется непрерывным ростом водорослей, который связан с изъятием определенной биомассы урожая и внесением в культуру питательной среды. Проточное культивирование позволяет задавать такую плотность культуры, что водоросли в течение длительного периода находятся в фазе линейного роста. В предлагаемом способе культивирование микроводорослей проводят в двух режимах - накопительном и проточном, что позволяет наращивать биомассу микроводорослей заданного биохимического состава. При культивировании микроводорослей в режиме непрерывного проточного культивирования микроводоросли длительное время находятся в фазе линейного роста (логарифмическая фаза). При накопительном режиме культивирования микроводоросли находятся в стационарной фазе роста, а также в фазе замедления роста.Two modes of microalgae growth are known: flow-through and cumulative. For example, [c. Brown M., Robert R. Preparation and assessment of microalgal concentrates as feeds for larval and juvenile Pacific oyster {Crassostrea gigas) .// aguaculture. - 2002. - 207. - P. 289-309], in nurseries for growing oyster larvae in France and Spain, accumulative cultivation is used. This mode of cultivation provides for the accumulation of biomass until all the nutrients are used and the growth of microalgae ceases. When maximum biomass is reached, algae are used as feed. Flow cultivation is characterized by the continuous growth of algae, which is associated with the removal of a certain biomass of the crop and the introduction of a culture medium into the culture. Flowing cultivation allows you to set such a density of the culture that algae for a long period are in the phase of linear growth. In the proposed method, the cultivation of microalgae is carried out in two modes - cumulative and flow, which allows to increase the biomass of microalgae of a given biochemical composition. When cultivating microalgae in the continuous flow culture mode, microalgae are in a linear growth phase for a long time (logarithmic phase). In the cumulative regime of cultivation, microalgae are in a stationary phase of growth, as well as in a phase of growth retardation.

Способ реализуется следующим образом. Микроводоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum культивируют в полиэтиленовых мешках объемом до 18 л с толщиной стенок 300 мкм (0.25м χ 1.5м). Мешки подвешивают на стойку перед панелью из люминесцентных ламп LD-40, суммарной освещенностью 10 тыс. л к Оптимальная температура выращивания кормовых микроводорослей - 22-24°С. В качестве питательной среды используют модифицированную среду Конвея, в которой содержание железа увеличили вдвое. Состав питательной среды и условйя культивирования оказывают значительное влияние на биохимический состав микроводорослей.The method is implemented as follows. Microalgae Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum are cultivated in plastic bags up to 18 l in volume with a wall thickness of 300 μm (0.25 m χ 1.5 m). Bags are suspended on a rack in front of a panel of LD-40 fluorescent lamps, with a total illumination of 10 thousand liters. The optimal temperature for growing fodder microalgae is 22-24 ° C. As a nutrient medium, a modified Conway medium is used, in which the iron content is doubled. The composition of the nutrient medium and cultivation conditions have a significant effect on the biochemical composition of microalgae.

Состав среды Конвея с увеличенным содержанием железа:Composition of Conway medium with increased iron content:

NaNO3 NaNO 3 200 г200 g NaH2 НРО4·2Н2O NaH 2 NRA 4 · 2H 2 O 40 г40 g Н3ВО3 H 3 IN 3 67,2 г67.2 g МnСl2·4 Н2O MnCl 2 · 4 H 2 O 0, 72 г0, 72 g FeC·6 Н2O FeC · 6 H 2 O 5, 2 г5, 2 g ЭДТА (трилон Б) EDTA (Trilon B) 90 г90 g Н2O дистил. H 2 O distill. 2 л2 l

Раствор следов металлов Trace solution of metals 2 мл2 ml

Раствор следов металловTrace solution of metals

ZnCl2 ZnCl 2 2,1 г2.1 g СоСl2 CoCl 2 2 г2 g ΝΗ4)6Μο7O24·4Н2O ΝΗ 4 ) 6 Μο 7 O 24 · 4H 2 O 0,9 г0.9 g CuSO4·5 Н2OCuSO 4 · 5 H 2 O 2 г2 g Н20 дист. H 2 dist. 100 г100 g

При использовании среды такого состава концентрация микроводорослей увеличивается в 1,5 раза по сравнению с контролем. Высокий уровень азота в среде Конвея способствует синтезу белков, в то же время недостаток азота в конце стационарной фазы способствует синтезу липидов. Высокая интенсивность света приводит к увеличению содержания углеводов в клетках и тормозит синтез белка.When using a medium of this composition, the concentration of microalgae increases by 1.5 times in comparison with the control. A high level of nitrogen in Conway's medium promotes the synthesis of proteins, while a lack of nitrogen at the end of the stationary phase promotes the synthesis of lipids. High light intensity leads to an increase in carbohydrate content in cells and inhibits protein synthesis.

Для кормления личинок на стадии велигера используют водоросли Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans, находящиеся в фазе замедления роста (на 17-й день выращивания) при накопительном режиме культивирования. Личинок на стадии великонхи кормят микроводорослями Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica (логарифмическая фаза роста), культивируемых в проточном режиме. Для кормления личинок на стадии педивелигера используют водоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum, которые находятся в стационарной фазе роста (24-х дневные культуры) при выращивании в накопительном режиме.To feed the larvae at the veliger stage, the algae Isochrysis galbana and Chaetoceros calcitrans are used, which are in the phase of growth inhibition (on the 17th day of cultivation) under the accumulative cultivation mode. Larvae at the Velikonha stage are fed with microalgae Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica (logarithmic growth phase), cultivated in a continuous mode. To feed the larvae at the pediveliger stage, the algae Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum, which are in the stationary phase of growth (24-day-old cultures) when growing in the cumulative mode, are used.

Пример реализации способа.An example implementation of the method.

Микроводоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum выращивали при температуре 22-24° С в полиэтиленовых мешках объемом до 18 л с толщиной стенок 300' мкм (0,25м×1.5м) в течение 24 дней при накопительном режиме, и в течение 60 дней при проточном режиме культивирования. Мешки подвешивали на стойку перед панелью из люминесцентных ламп LD-40, суммарной освещенностью 10 тыс. лк. В качестве питательной среды использовали среду Конвея, модифицированную авторами, в которой содержание железа увеличили вдвое. Критериями оценки качества пищи были темп роста и выживаемость личинок.Microalgae Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum were grown at a temperature of 22-24 ° C in plastic bags up to 18 l with a wall thickness of 300 'μm (0.25 m × 1.5 m) for 24 days with a storage mode, and for 60 days with a flowing regime of cultivation. Bags were hung on a rack in front of a panel of LD-40 fluorescent lamps, with a total illumination of 10 thousand lux. The medium used was Conway’s medium modified by the authors, in which the iron content was doubled. The criteria for evaluating food quality were the growth rate and survival of the larvae.

Личинок устриц на стадии велигера кормили микроводорослями Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans с размером клеток 4-5 мкм, срок культивирования которых составлял 17 дней. Водоросли находились в фазе замедления скорости роста и имели самое высокое содержание углеводов. Высокие темпы роста личинок на стадии велигера наблюдались в том случае, если корм содержал 90% углеводов и 10% белков. Максимальный среднесуточный прирост личинок устриц составил 11,1 мкм/сут.The oyster larvae at the veliger stage were fed with microalgae Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans with a cell size of 4-5 μm, the cultivation period of which was 17 days. Algae were in a phase of slowing growth and had the highest carbohydrate content. High growth rates of larvae at the veliger stage were observed if the feed contained 90% carbohydrates and 10% protein. The maximum daily average growth of oyster larvae was 11.1 μm / day.

На стадии великонхи личинок устриц G. gigas кормили смесью микроводорослей Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, время культивирования которых составило 10 дней. Водоросли находились в логарифмической фазе роста, и удельная калорийность водорослей возрастала в период накопления белков. Максимальный среднесуточный прирост личинок устриц составил 22,6 мкм/сут.At the Velikonkh stage, oyster larvae G. gigas were fed with a mixture of microalgae Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, the cultivation time of which was 10 days. Algae were in the logarithmic growth phase, and the specific caloric content of algae increased during the accumulation of proteins. The maximum daily average growth of oyster larvae was 22.6 μm / day.

На стадии педивелигера корм личинок устриц состоял из Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum, которые культивировали в течение 24 дней в накопительном режиме. Водоросли находились в конце стационарной фазы роста, и их биохимический состав характеризовался высоким содержанием липидов. Благодаря высокому содержанию липидов в водорослях личинки устриц успешно проходили метаморфоз.At the pediveliger stage, the food of oyster larvae consisted of Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, Skeletonema costatum, which were cultivated for 24 days in a cumulative mode. Algae were at the end of the stationary growth phase, and their biochemical composition was characterized by a high content of lipids. Due to the high lipid content in algae, oyster larvae successfully underwent metamorphosis.

Основное преимущество заявляемого Способ подготовки кормов для выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море в условиях питомниказаключается в том, что предлагаемый корм является оптимальным для выращивания личинок устриц в питомниках и подращивания спата до размещения на фермах. Способ позволяет составить корма, удовлетворяющие пищевым потребностям моллюсков на ранних стадиях онтогенеза. Подготовка водорослей заданного биохимического состава и включение их в пищевой рацион личинок мидий, находящихся на разных стадиях развития, обеспечивает высокий суточный прирост и выживаемость.The main advantage of the proposed method of preparation of feed for growing giant oysters Crassostrea gigas in the Black Sea in a nursery is that the proposed feed is optimal for growing oyster larvae in nurseries and growing spaths before being placed on farms. The method allows to formulate feeds that satisfy the nutritional needs of mollusks in the early stages of ontogenesis. The preparation of algae of a given biochemical composition and their inclusion in the diet of mussel larvae at different stages of development provides a high daily gain and survival.

Figure 00000001
Figure 00000002
Figure 00000001
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Figure 00000004
Figure 00000004

Claims (1)

Способ подготовки кормов для выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Чёрном море в условиях питомника путем обеспечения личинок устрицы кормом на всех стадиях развития, используя на стадии велигера смесь микроводорослей Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans, на стадии великонхи корм содержит микроводоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum, отличающийся тем, что микроводоросли культивируют при температуре 22-24°С и суммарной освещенности 10 тыс. лк в накопительном и проточном режимах с применением модифицированной среды Конвея, причем на стадии велигера используют микроводоросли, культивируемые в течение 17-ти дней в накопительном режиме, для стадии великонхи применяют 10-дневные микроводоросли, которые культивируют в проточном режиме, и для стадии педивелигера микроводоросли культивируют 24 дня в накопительном режиме, а модифицированная среда Конвея имеет следующий состав:
NaNO3 200 г NaH2HPO4·2Н2О 40 г Н3ВО3 67,2 г МnСl2·4Н2О 0,72 г FeC·6Н2О 5,2 г ЭДТА (трилон Б) 90 г Н2О дистил. 2 л Раствор следов металлов 2 мл
A method of preparing feed for growing giant oyster Crassostrea gigas in the Black Sea in a nursery by providing oyster larvae with food at all stages of development, using a mixture of microalgae Isochrysis galbana and Chaetoceros calcitrans at the stage of veliger, at the stage of velicha, the food contains microalgae Isochrysis galbosos, Chaetoceroceros galberos galbos, Chaetococactos tricornutum, Tetraselmis suecica, and at the pediveliger stage, the microalgae Skeletonema costatum is additionally introduced into the feed composition, characterized in that the microalgae are cultivated at a temperature of 22-24 ° C and a total illumination of 10 thousand. lx in the cumulative and flow regimes using the modified Conway medium, and at the veliger stage, microalgae cultivated for 17 days in the accumulative regimen are used, 10-day microalgae, which are cultivated in the flow regime, and microalgae for the pediveliger stage are used cultivated 24 days in a cumulative mode, and the modified Conway medium has the following composition:
NaNO 3 200 g NaH 2 HPO 4 · 2H 2 O 40 g H 3 IN 3 67.2 g MnCl 2 · 4H 2 O 0.72 g FeC · 6H 2 O 5.2 g EDTA (Trilon B) 90 g H 2 O distill. 2 l Trace solution of metals 2 ml
RU2014150177/93A 2014-10-30 2014-10-30 Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery RU2548107C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014150177/93A RU2548107C1 (en) 2014-10-30 2014-10-30 Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014150177/93A RU2548107C1 (en) 2014-10-30 2014-10-30 Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2548107C1 true RU2548107C1 (en) 2015-04-10

Family

ID=53296622

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014150177/93A RU2548107C1 (en) 2014-10-30 2014-10-30 Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2548107C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2824043C1 (en) * 2024-01-16 2024-08-01 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского" Дальневосточного отделения Российской академии наук Method for intensive cultivation of brachionus plicatilis using cultures of sea microalgae

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2824043C1 (en) * 2024-01-16 2024-08-01 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского" Дальневосточного отделения Российской академии наук Method for intensive cultivation of brachionus plicatilis using cultures of sea microalgae

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kang et al. A beneficial coculture: charm abalone Haliotis discus hannai and sea cucumber Stichopus japonicus
CN102283150B (en) Method for pond culturing Coilia ectenes
De la Peña Cell growth and nutritive value of the tropical benthic diatom, Amphora sp., at varying levels of nutrients and light intensity, and different culture locations
CN105918168B (en) Exopalaemon carinicauda saline-alkali water artificial cultivating method
CN104737971B (en) Method for culturing litopenaeus vannamei through water body osmotic pressure regulator
CN106719139A (en) A kind of brackish culture method of crucian
WO2010089864A1 (en) Selenium-containing unicellular microalgae for animal plankton feeds and method of culturing selenium-containing animal planktons using the same
CN109479779A (en) A kind of japonicus high yield environment-protecting cultivation method
CN104757328A (en) Microalgae compound living body bait used for raising fishes and production method thereof
CN103385170B (en) A seedling cultivation method for Sargassum vachellianum greville by using tissue culture
KR101223232B1 (en) Method for culturing fresh water laver
Kavale et al. Scaling the production of Monostroma sp. by optimizing culture conditions
JP2007097463A (en) Culture feed for water flea
RU2548107C1 (en) Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery
CN109804962B (en) Water transfer method for healthy ecological aquaculture
UA80385C2 (en) Method for preparation of feeds for growing giant oyster grassostrea gigas in the black sea under conditions of nursery
KR101323887B1 (en) Novel Nannochloris sp. Capable High Temperature Growth and Use Thereof
CN105010199A (en) Mixed high-yield breeding method for catfish
KR20060114836A (en) Tintinnid, undella sp. chuuk-04 available for hatched fry feed and culturing method thereof
CN110402852A (en) Conducive to the cultural method for improving tiger spot inkfish spawning quantity and quality
CN106213069B (en) Artificial feed for larva of onychomycosis
WO2015172573A1 (en) Initial feed for early-stage larvas of eels and culturing method therefor
JP2008228709A (en) New microorganism, new microorganism for feed of crassostrea gigas and method for culturing crassostrea gigas by using this new microorganism
Mohshina et al. Culture of Chlorella ellipsoidea in different culture media
CN103380751A (en) Culture method of Thai Marble Goby

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner
PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20160608