RU2481394C2 - Nutrient medium for extraction, cultivation and determination of haemolytic properties of bacteria from clinical material - Google Patents

Nutrient medium for extraction, cultivation and determination of haemolytic properties of bacteria from clinical material Download PDF

Info

Publication number
RU2481394C2
RU2481394C2 RU2011128466/10A RU2011128466A RU2481394C2 RU 2481394 C2 RU2481394 C2 RU 2481394C2 RU 2011128466/10 A RU2011128466/10 A RU 2011128466/10A RU 2011128466 A RU2011128466 A RU 2011128466A RU 2481394 C2 RU2481394 C2 RU 2481394C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
agar
nutrient medium
medium
cultivation
bacteria
Prior art date
Application number
RU2011128466/10A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2011128466A (en
Inventor
Любовь Григорьевна Боронина
Елена Валерьевна Саматова
Original Assignee
Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации" (ГОУ ВПО УГМА Минздравсоцразвития России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации" (ГОУ ВПО УГМА Минздравсоцразвития России) filed Critical Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации" (ГОУ ВПО УГМА Минздравсоцразвития России)
Priority to RU2011128466/10A priority Critical patent/RU2481394C2/en
Publication of RU2011128466A publication Critical patent/RU2011128466A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2481394C2 publication Critical patent/RU2481394C2/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnologies.
SUBSTANCE: nutrient medium contains HMF - agar, erythrocytic mass from donor's human blood, serum of cattle and yeast extract at the specified ratio.
EFFECT: invention makes it possible to increase sensitivity of medium to extracted microorganisms, to improve growth properties of nutrient medium and to simplify method of its preparation.

Description

Изобретение относится к микробиологии, в частности к питательным средам, может быть использовано в научно-исследовательской и практической работе для бактериологической диагностики бактерий, в том числе бронхолегочных патогенов, таких как: Streptococcus pneumoniae, Moraxella (Branchamella) catarrhalis, Streptococcus pyogenes, β-гемолитические Streptococcus spp., Staphylococcus aureus.The invention relates to microbiology, in particular to nutrient media, can be used in research and practical work for bacteriological diagnosis of bacteria, including bronchopulmonary pathogens, such as: Streptococcus pneumoniae, Moraxella (Branchamella) catarrhalis, Streptococcus pyogenes, β-hemolytic Streptococcus spp., Staphylococcus aureus.

Болезни органов дыхания по официальным статистическим данным стабильно занимают в нашей стране первое место в структуре общей заболеваемости детей и подростков. Многие клинические формы респираторной патологии определяют уровень детской заболеваемости и младенческой смертности. Нередко бронхолегочные болезни, начавшись у детей, продолжаются в зрелом возрасте, приводят больных к инвалидности, а иногда - к драматическим исходам [10]. Поэтому важно совершенствование лабораторной диагностики воспалительных заболеваний дыхательной системы и ЛОР-органов, в том числе бактериальной этиологии у детей.According to official statistics, respiratory diseases steadily occupy the first place in the structure of the overall incidence of children and adolescents in our country. Many clinical forms of respiratory pathology determine the incidence of childhood morbidity and infant mortality. Often, bronchopulmonary diseases, starting in children, continue into adulthood, leading patients to disability, and sometimes to dramatic outcomes [10]. Therefore, it is important to improve the laboratory diagnosis of inflammatory diseases of the respiratory system and ENT organs, including bacterial etiology in children.

Выбор питательных сред для посева клинического материала от пациентов с воспалительными заболеваниями дыхательной системы и ЛОР-органов затруднен в связи с многочисленностью возбудителей и разнообразием клинического материала при данной патологии.The choice of culture media for inoculating clinical material from patients with inflammatory diseases of the respiratory system and ENT organs is difficult due to the many pathogens and the variety of clinical material for this pathology.

Известна питательная среда для посева и выделения Streptococcus pneumoniae, пропись которой разработана Катосовой Л.К. [1, 2], для которой в качестве агаровой основы можно использовать эритрит-агар, сухой питательный агар, ГРМ-агар №1 (содержит панкреатический гидролизат рыбной муки, сухой), ГРМ-агар (сухой), АГВ (агар Гивенталя-Ведьминой) с оптимальной рН среды - 7,2±0,2. После стерилизации агар охлаждают до температуры 45°C, добавляют 10% инактивированной лошадиной сыворотки, 3% эритроцитарной массы или 5% дефибринированной крови.Known culture medium for sowing and isolation of Streptococcus pneumoniae, the recipe of which was developed by Katosova L.K. [1, 2], for which erythritol agar, dry nutrient agar, Timing agar No. 1 (containing pancreatic hydrolyzate of fish meal, dry), Timing agar (dry), AGV (Givental-Vedminoy agar can be used as agar base) ) with an optimal pH of the medium - 7.2 ± 0.2. After sterilization, the agar is cooled to a temperature of 45 ° C, 10% inactivated horse serum, 3% erythrocyte mass, or 5% defibrinated blood are added.

В готовую основу, в качестве которой могут быть использованы эритрит-агар, сухой питательный агар, ГРМ-агар №1, ГРМ-агар, агар Гивенталя-Ведьминой, приготовленную по прописи, указанной на этикетке, рН 7,2±0,2, охлажденную до 45°С, добавить:In the finished base, which can be used erythritol agar, dry nutrient agar, timing agar No. 1, timing agar, Giventhal-Vedminoy agar, prepared according to the recipe indicated on the label, pH 7.2 ± 0.2, cooled to 45 ° С, add:

1) 3% эритроцитарной массы (на 100 мл основы - 3 мл) или 5% дефибринированной крови;1) 3% of erythrocyte mass (per 100 ml of the base - 3 ml) or 5% of defibrated blood;

2) 10% инактивированной лошадиной сыворотки (на 100 мл основы - 10 мл);2) 10% inactivated horse serum (per 100 ml of the base - 10 ml);

3) разлить в чашки Петри.3) pour into Petri dishes.

К недостаткам данной питательной среды следует отнести хорошие ростовые свойства в отношении только Streptococcus pneumoniae; использование лошадиной сыворотки для большинства практических лабораторий клинической микробиологии, особенно области, затруднительно, что в конечном итоге увеличивает себестоимость конечного продукта.The disadvantages of this nutrient medium include good growth properties in relation to only Streptococcus pneumoniae; the use of horse serum for most practical laboratories in clinical microbiology, especially in the field, is difficult, which ultimately increases the cost of the final product.

Известна питательная среда 5% кровяной агар для первичного выделения микроорганизмов и определения их гемолитических свойств, которая рекомендована Приказом Министерства Здравоохранения СССР №535 от 22 апреля 1985 года «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений» [9], как основная питательная среда для посева, отделяемого дыхательных путей стр.119 (отделяемое зева и носа; мокрота; содержимое бронхов, полученное при бронхоскопии или при отсасывании через трахеостому (у больных, находящихся на аппаратном дыхании); экссудаты; резецированные ткани и др.) и ЛОР-органов. Для приготовления данной среды, согласно приказу №535, в качестве основы используют сухой питательный агар. По прописи, указанной на этикетке, готовят 2% агар, рН 7,4-7,6. К расплавленному и охлажденному до 45°С агару, соблюдая правила асептики, добавляют 5% (5 мл крови на 100 мл питательной среды) дефибринированной бараньей, лошадиной или кроличьей крови, цитратной или дефибринированной крови человека без антибактериальных препаратов. Смесь тщательно перемешивают, чтобы не образовалась пена, и разливают в стерильные чашки Петри, предварительно подогретые в термостате, слоем 3-4 мм. Слой агара должен быть равномерно окрашен в красный цвет. Хранят не более двух недель в целлофановых мешках при 4-6°С.A nutrient medium of 5% blood agar is known for the primary isolation of microorganisms and the determination of their hemolytic properties, which is recommended by Order of the Ministry of Health of the USSR No. 535 of April 22, 1985 "On the unification of microbiological (bacteriological) research methods used in clinical diagnostic laboratories of medical institutions "[9], as the main nutrient medium for inoculation, of the separated airways p.119 (separated pharynx and nose; sputum; bronchial contents obtained with bronchus Oscopy or with suction through a tracheostomy (in patients who are on a breathing apparatus); exudates; resected tissues, etc.) and ENT organs. To prepare this medium, according to order No. 535, dry nutrient agar is used as the basis. According to the recipe indicated on the label, 2% agar is prepared, pH 7.4-7.6. 5% (5 ml of blood per 100 ml of culture medium) defibrinated lamb, horse or rabbit blood, citrated or defibrinated human blood without antibacterial drugs is added to the agar, which is molten and cooled to 45 ° C, following aseptic rules. The mixture is thoroughly mixed so that foam does not form, and poured into sterile Petri dishes, preheated in a thermostat, with a layer of 3-4 mm. The agar layer should be uniformly colored red. Store no more than two weeks in cellophane bags at 4-6 ° C.

К недостаткам данной питательной среды следует отнести: низкие ростовые свойства для прихотливых микроорганизмов, в частности для Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, β-гемолитических Streptococcus spp.The disadvantages of this nutrient medium include: low growth properties for fastidious microorganisms, in particular for Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, β-hemolytic Streptococcus spp.

Прототипом заявляемой среды явилась питательная среда по Катосовой Л.К., где общим является основа - сухой питательный агар и добавление эритроцитарной массы. А отличительными признаками являются: добавление в нами предлагаемую среду сыворотки крупного рогатого скота и дрожжевого экстракта вместо 10% инактивированной лошадиной сыворотки. Прототип - один должен быть для составления формулы изобретения, возможно, ближайший аналог (прототип) - это питательная среда по прописи Катосовой Л.К. И если согласны с этим, то, пожалуйста, укажите Общие признаки и Отличительные признаки Вашей среды и среды по прототипу. А также нужен прототип для способа.The prototype of the claimed medium was the nutrient medium according to Katosova L.K., where the basis is common - dry nutrient agar and the addition of red blood cells. And the distinguishing features are: adding to our proposed environment of cattle serum and yeast extract instead of 10% inactivated horse serum. The prototype - one should be for the preparation of the claims, perhaps the closest analogue (prototype) is a nutrient medium according to the formulation of Katosova L.K. And if you agree with this, then please indicate the Common features and Distinctive features of your environment and the environment of the prototype. And also need a prototype for the method.

Для определения гемолитической активности бактерий ряд авторов рекомендует агар с сердечной вытяжкой (с добавлением крови, HiMedia, Heart Infusion Agar) [11], который используют для выделения и культивирования большого количества разнообразных микроорганизмов, в частности как основу для приготовления кровяного агара с 5% дефибринированной крови кролика, лошади или барана для определения гемолитической активности S.pneumoniae, S.pyogenes. Состав, г/л, включает:To determine the hemolytic activity of bacteria, a number of authors recommend heart-drawn agar (with the addition of blood, HiMedia, Heart Infusion Agar) [11], which is used to isolate and cultivate a large number of various microorganisms, in particular, as a basis for the preparation of blood agar with 5% defibrated blood of a rabbit, horse or ram to determine the hemolytic activity of S. pneumoniae, S. pyogenes. Composition, g / l, includes:

Вытяжка говяжьего сердца 500,0Beef heart hood 500.0

Триптоза 10,0Tryptose 10.0

Натрия хлорид 5,0Sodium Chloride 5.0

Агар 15,0Agar 15.0

рН 7,4±0,2pH 7.4 ± 0.2

Известна также другая питательная среда для выявления гемолитической активности требовательных микроорганизмов - основа кровяного агара №2 (HiMedia, Blood Agar №2) [11]. Состав, г/л: пептон протеозный 15,0; вытяжка печеночная 2,5; экстракт дрожжевой 5,0; натрия хлорид 5,0; агар 15,0; рН 7,4±0,2. После стерилизации автоклавированием 15 мин при температуре 121°С охлаждают до 45-50°С и стерильно добавляют 7% стерильной крови барана, кролика, лошади или человека (без консервантов).Another nutrient medium for detecting the hemolytic activity of demanding microorganisms is also known - the basis of blood agar No. 2 (HiMedia, Blood Agar No. 2) [11]. Composition, g / l: proteose peptone 15.0; hepatic extract 2.5; yeast extract 5.0; sodium chloride 5.0; agar 15.0; pH 7.4 ± 0.2. After sterilization by autoclaving for 15 minutes at a temperature of 121 ° C, it is cooled to 45-50 ° C and 7% sterile blood of a ram, rabbit, horse or human is added sterile (without preservatives).

Известны ряд сред для выделения и культивирования пневмококка, такие как триптический перевар мяса по Хоттингеру [11], который содержит: 70-75% гидролизата мяса по Хоттингеру или казеина (1,8-2,0 г/л аминного азота); 20-25% гидролизата бычьих сердец (1,4-1,5 г/л аминного азота); 1,7-2,0% агара; воду дистиллированную 1000,0 мл; рН 7,6±0,1. Эту основу стерилизуют при 121°С 20 мин. Перед употреблением к расплавленной и охлажденной до 45°С среде добавляют 0,5% экстракта кормовых дрожжей (вместе с сывороткой или кровью).A number of media for isolation and cultivation of pneumococcus are known, such as tryptic meat digest according to Hottinger [11], which contains: 70-75% meat hydrolyzate according to Hottinger or casein (1.8-2.0 g / l of amine nitrogen); 20-25% bovine heart hydrolyzate (1.4-1.5 g / l amine nitrogen); 1.7-2.0% agar; distilled water 1000.0 ml; pH 7.6 ± 0.1. This base is sterilized at 121 ° C for 20 minutes. Before use, 0.5% feed yeast extract (together with serum or blood) is added to the medium melted and cooled to 45 ° C.

К недостаткам вышеперечисленных питательных сред для определения гемолитической активности бактерий, выделения и культивирования пневмококка следует отнести их высокую себестоимость и использование дефицитных компонентов в приготовлении.The disadvantages of the above nutrient media for determining the hemolytic activity of bacteria, isolation and cultivation of pneumococcus include their high cost and the use of scarce components in the preparation.

Технический результат - увеличить ростовые свойства питательной среды с одновременным снижением ее себестоимости, а также обеспечить доступность ее приготовления для практических лабораторий клинической микробиологии. В связи с тем что наиболее частыми бактериальными возбудителями воспалительных заболеваний дыхательной системы и ЛОР-органов внебольничной этиологии являются Streptococcus pneumoniae, Moraxella (Branchamella) catarrhalis, Streptococcus pyogenes, β-гемолитические Streptococcus spp., Staphylococcus aureus, Haemophilus unfluenzae [4, 8, 13, 14], мы предлагаем следующую питательную среду - кровяно-сывороточный агар - для выделения, культивирования и определения гемолитических свойств бактерий из клинического материала.The technical result is to increase the growth properties of the nutrient medium while reducing its cost, as well as to ensure the availability of its preparation for practical laboratories of clinical microbiology. Due to the fact that the most common bacterial pathogens of inflammatory diseases of the respiratory system and ENT organs of a community-acquired etiology are Streptococcus pneumoniae, Moraxella (Branchamella) catarrhalis, Streptococcus pyogenes, β-hemolytic Streptococcus spp., Staphylococcus aureus, Haemophilus 4 defluen 8 , 14], we propose the following nutrient medium, blood serum agar, for the isolation, cultivation, and determination of the hemolytic properties of bacteria from clinical material.

Указанный технический результат достигается тем, что предлагается следующее.The specified technical result is achieved by the fact that the following is proposed.

Питательная среда для выделения, культивирования и определения гемолитических свойств бактерий из клинического материала, содержащая ГМФ - агар, эритроцитарную массу из донорской крови человека, сыворотку крупного рогатого скота и дрожжевой экстракт при следующем количественном соотношении компонентов:Nutrient medium for isolation, cultivation and determination of the hemolytic properties of bacteria from clinical material, containing GMF - agar, erythrocyte mass from human blood, cattle serum and yeast extract in the following quantitative ratio of components:

ГМФ - агарGMF - Agar - 100 мл- 100 ml эритроцитарная масса из донорской крови человекаerythrocyte mass from human blood - 3 мл- 3 ml сыворотка крупного рогатого скотаcattle serum - 5 мл- 5 ml дрожжевой экстрактyeast extract - 3 мл- 3 ml

Способ приготовления питательной среды для выделения, культивирования и определения гемолитических свойств бактерий из клинического материала, включает 3 этапа:A method of preparing a nutrient medium for the isolation, cultivation and determination of hemolytic properties of bacteria from clinical material includes 3 stages:

1) этап - приготовление дрожжевого экстракта: в 2 л дистиллированной воды растворяют 1 кг пекарских дрожжей, варят с момента закипания 1 ч. Затем необходимо разлить в стеклянные мерные колбы по 1 л, накрыть салфеткой и дать отстоятся при комнатной температуре до утра. На следующий день надосадочную жидкость переливают с помощью стерильных пипеток в стерильные мерные флаконы по 100 мл с ватно-марлевой пробкой (всего получается 1,5 л дрожжевого экстракта) и стерилизуют автоклавированием при 110,8°С (0,5 кг/см2 [6]) 30 мин. После полного остывания флаконы с дрожжевым экстрактом можно хранить в холодильнике +2-+8°С до 1 месяца.1) stage - preparation of yeast extract: 1 kg of baker's yeast is dissolved in 2 liters of distilled water, boiled for 1 hour after boiling. Then it is necessary to pour 1 liter in glass volumetric flasks, cover with a napkin and let stand at room temperature until morning. The next day, the supernatant is transferred using sterile pipettes into 100 ml sterile volumetric bottles with a cotton-gauze plug (a total of 1.5 l of yeast extract is obtained) and sterilized by autoclaving at 110.8 ° C (0.5 kg / cm 2 [ 6]) 30 min. After cooling completely, the bottles with yeast extract can be stored in the refrigerator + 2- + 8 ° С for up to 1 month.

Прототипом способа приготовления дрожжевого экстракта явился способ, описанный в книге «Энтеробактерии», 1985 г., под редакцией Покровского В.И. [12]. Состав: 1. Дрожжи прессованные хлебные (лучше маточные) - 0,5 кг. 2. Вода дистиллированная - 1000 мл. Дрожжи измельчают и кипятят на слабом огне 1 ч, вновь размешивают, разливают во флаконы, стерилизуют при 121°С 30 мин. Готовый экстракт помещают в холодильник на 5-7 дней. Для приготовления сред используют надосадочную жидкость. Консервируют добавлением 0,5% хлороформа. Консервированный экстракт можно хранить при 4-10°С несколько месяцев.The prototype of the method of preparing the yeast extract was the method described in the book "Enterobacteria", 1985, edited by V. Pokrovsky. [12]. Ingredients: 1. Pressed bread yeast (preferably uterine) - 0.5 kg. 2. Distilled water - 1000 ml. The yeast is crushed and boiled over low heat for 1 hour, stirred again, poured into bottles, sterilized at 121 ° C for 30 minutes. The finished extract is placed in the refrigerator for 5-7 days. For the preparation of media using a supernatant. Canned by adding 0.5% chloroform. Canned extract can be stored at 4-10 ° C for several months.

Общим для обоих способов является растворение пекарских дрожжей в дистиллированной воде и кипячение в течение 1 ч, для приготовления в дальнейшем питательных сред используют надосадочную жидкость.Common to both methods is the dissolution of baker's yeast in distilled water and boiling for 1 h; supernatant is used to prepare further nutrient media.

Отличительными признаками предлагаемого нами способа является: 1) после кипячения готовый экстракт разливают по мерным колбам и дают отстояться при комнатной температуре, после чего надосадочную жидкость переливают в мерные стерильные флаконы - это удобно с практической точки зрения, так как отсутствует возможность попадания осадка при добавлении дрожжевого экстракта в питательные среды; 2) стерилизация автоклавированием при 110,8°С (0,5 кг/см2 [6]) 30 мин, в результате чего сводится к минимуму вредное влияние температурного фактора на питательные вещества, содержащиеся в дрожжевом экстракте; 3) мы не добавляем консервант - 0,5% хлороформ, в результате чего сводится к минимуму вредное влияние консерванта на питательные вещества, содержащиеся в дрожжевом экстракте, и в последующем нет ингибирующего действия на рост микроорганизмов на питательной среде с добавлением дрожжевого экстракта.Distinctive features of our proposed method is: 1) after boiling, the finished extract is poured into volumetric flasks and allowed to stand at room temperature, after which the supernatant is poured into sterile volumetric vials - this is convenient from a practical point of view, since there is no possibility of sediment from adding yeast extract into culture media; 2) autoclaving sterilization at 110.8 ° C (0.5 kg / cm 2 [6]) for 30 minutes, as a result of which the harmful effect of the temperature factor on nutrients contained in the yeast extract is minimized; 3) we do not add a preservative - 0.5% chloroform, as a result of which the harmful effect of the preservative on the nutrients contained in the yeast extract is minimized, and subsequently there is no inhibitory effect on the growth of microorganisms on the nutrient medium with the addition of yeast extract.

2) этап - приготовление основы из сухого питательного агара для культивирования микроорганизмов, рН 7,4-7,6 (ГМФ - агар, состав: гидролизат мяса ферментативный 15,0 г; натрий хлористый 9,0 г; агар 12,0 г. Готовая сухая среда, производитель ЗАО «Научно-исследовательский центр фармакотерапии», Санкт-Петербург), по прописи указанной на этикетке: 36,0 г ГМФ - агара размешивают в 1 л дистиллированной воды, кипятят 1-2 мин до полного расплавления агара. Фильтруют через ватно-марлевый фильтр, разливают в стерильные мерные флаконы и стерилизуют автоклавированием при 121°С (1,1 кг/см2) 15 мин. Среду охлаждают до 45-50°С, разливают в стерильные мерные флаконы по 100 мл с ватно-марлевой пробкой, рН основы 7,4-7,6. После полного остывания флаконы с дрожжевым экстрактом хранят в холодильнике +2-+8°С до 1 месяца.2) stage - preparation of a base from dry nutrient agar for the cultivation of microorganisms, pH 7.4-7.6 (GMF - agar, composition: enzymatic meat hydrolyzate 15.0 g; sodium chloride 9.0 g; agar 12.0 g Ready-made dry medium, manufacturer of Scientific Research Center of Pharmacotherapy, St. Petersburg), according to the recipe indicated on the label: 36.0 g of GMF agar are mixed in 1 liter of distilled water, boiled for 1-2 minutes until the agar is completely melted. Filter through a cotton-gauze filter, pour into sterile volumetric bottles and sterilize by autoclaving at 121 ° C (1.1 kg / cm 2 ) for 15 minutes. The medium is cooled to 45-50 ° C, poured into sterile 100 ml volumetric bottles with a cotton-gauze plug, the pH of the base is 7.4-7.6. After complete cooling, the bottles with yeast extract are stored in the refrigerator + 2- + 8 ° C for up to 1 month.

3) этап - непосредственное приготовление питательной среды для выделения, культивирования и определения гемолитических свойств бактерий из клинического материала: 100 мл основы расплавить на водяной бане, затем к охлажденной до 45°С основе добавить, в условиях стерильного бокса, 5 мл сыворотки крупного рогатого скота, 3 мл эритроцитарной массы из крови человека и 3 мл дрожжевого экстракта. Смесь тщательно перемешивают, чтобы не образовалась пена. Затем среду (КСА) разлить стерильной пипеткой по 20 мл в стерильные чашки Петри (толщина агара должна быть 3-4 мм). Слой агара должен быть равномерно окрашен в красный цвет. Дать среде застыть и готовую среду хранить в условиях холодильника +2-+8°С в течение 2 недель в пакетах (для предотвращения высыхания).3) stage - the direct preparation of a nutrient medium for isolation, cultivation and determination of the hemolytic properties of bacteria from clinical material: melt 100 ml of the base in a water bath, then add to the cooled base to 45 ° C, in a sterile box, 5 ml of cattle serum , 3 ml of red blood cells from human blood and 3 ml of yeast extract. The mixture is thoroughly mixed so that foam does not form. Then pour the medium (KSA) with a sterile pipette of 20 ml into sterile Petri dishes (agar thickness should be 3-4 mm). The agar layer should be uniformly colored red. Allow the medium to solidify and store the finished medium in a refrigerator + 2- + 8 ° C for 2 weeks in bags (to prevent drying out).

Количественное соотношение компонентов питательной среды и ее рН обеспечивают чувствительность среды.The quantitative ratio of the components of the nutrient medium and its pH ensure the sensitivity of the medium.

Увеличение ростовых свойств питательной среды обусловлено наличием в ней 1) дрожжевого экстракта, который является источником углерода и азота с повышенной питательной ценностью, источником витаминов группы В, витамина Д и других факторов роста - пуриновых и пиримидиновых оснований. Белок дрожжей сбалансирован по аминокислотному составу и по этому показателю близок к животному белку. Отличается высоким содержанием лизина, лейцина, изолейцина, аспарагиновой и глютаминовой кислот, а также незаменимых аминокислот - аргинина, гистидина, триптофана, тирозина, цистеина, фенилаланина, метионина, треонина [3, 8]; 2) сыворотки крупного рогатого скота, необходимой для роста Streptococcus pneumoniae и проявления им типичной морфологии и культуральных свойств: нежные полупрозрачные четко очерченные колонии диаметром около 1 мм или они могут быть плоскими с углублением в центре. Кроме того, сыворотка стимулирует образование капсул Streptococcus pneumoniae [5]; 3) эритроцитарной массы добавление, которой, во-первых, имеет диагностическое значение - определение гемолитических свойств микроорганизма (α, β, γ-гемолиз), во-вторых, обеспечивает эффективный рост Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, β-гемолитические Streptococcus spp., они не имеют цитохрома и утилизируют кислород атмосферы при помощи системы флавопротеина, в результате чего образуется перекись водорода, которую микроорганизмы самостоятельно не в состоянии обезвредить, так как не обладают каталазой [2].The increase in the growth properties of the nutrient medium is due to the presence of 1) yeast extract, which is a source of carbon and nitrogen with high nutritional value, a source of B vitamins, vitamin D and other growth factors - purine and pyrimidine bases. The yeast protein is balanced in amino acid composition and is close to animal protein in this indicator. It is characterized by a high content of lysine, leucine, isoleucine, aspartic and glutamic acids, as well as essential amino acids - arginine, histidine, tryptophan, tyrosine, cysteine, phenylalanine, methionine, threonine [3, 8]; 2) cattle serum, necessary for the growth of Streptococcus pneumoniae and the manifestation of typical morphology and cultural properties: delicate translucent, clearly defined colonies with a diameter of about 1 mm or they can be flat with a depression in the center. In addition, serum stimulates the formation of Streptococcus pneumoniae capsules [5]; 3) the addition of erythrocyte mass, which, firstly, has diagnostic value - determining the hemolytic properties of the microorganism (α, β, γ-hemolysis), and secondly, ensures the effective growth of Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, β-hemolytic Streptococcus spp., they do not have cytochrome and utilize atmospheric oxygen using a flavoprotein system, resulting in the formation of hydrogen peroxide, which microorganisms are not able to neutralize on their own, since they do not possess catalase [2].

Таким образом, полученные данные показали, что предлагаемая среда и способ ее приготовления позволяют выделить бактериологическим методом основные бронхолегочные патогены даже при малом количестве возбудителя в патологическом материале. Предлагаемая среда обладает лучшими ростовыми свойствами, чем в используемых в настоящее время средах, кроме этого, доступность компонентов ее производства не требует дефицитных препаратов, таких как лошадиная инактивированная сыворотка или дефибринированная баранья, лошадиная или кроличья кровь и др. Простота приготовления заявляемой среды позволяет использовать ее для выделения, культивирования и определения гемолитических свойств бактерий, в том числе бронхолегочных патогенов, таких как Streptococcus pneumoniae, Moraxella (Branchamella) catarrhalis, Streptococcus pyogenes, β-гемолитические Streptococcus spp., Staphylococcus aureus из клинического материала в лабораторных условиях при диагностике воспалительных заболеваний.Thus, the obtained data showed that the proposed environment and the method of its preparation allow us to identify the main bronchopulmonary pathogens using the bacteriological method even with a small amount of the pathogen in the pathological material. The proposed environment has better growth properties than in the currently used environments, in addition, the availability of the components of its production does not require scarce preparations, such as horse inactivated serum or defibrinated lamb, horse or rabbit blood, etc. The simplicity of the preparation of the claimed medium allows its use for isolation, cultivation and determination of hemolytic properties of bacteria, including bronchopulmonary pathogens, such as Streptococcus pneumoniae, Moraxella (Branchamella) catarrhalis, Streptococcus pyogenes, β-hemolytic Streptococcus spp., Staphylococcus aureus from clinical material in the laboratory for the diagnosis of inflammatory diseases.

Авторы провели сравнительные исследования заявляемой среды кровяно-сывороточного агара (питательный агар для культивирования микроорганизмов, рН 7,4-7,6 (ГМФ - агар) - 100 мл + эритроцитарная масса из донорской крови человека - 3 мл + сыворотка крупного рогатого скота - 5 мл + дрожжевой экстракт - 3 мл), питательной среды по прописи Катосовой Л.К. (100 мл основы, приготовленной из сухого питательного агара по прописи, указанной на этикетке, рН 7,2±0,2 + 10 мл инактивированной лошадиной сыворотки + 3 мл эритроцитарной массы) и 5% кровяного агара согласно приказу №535 (100 мл основы - 2% агар, рН 7,4-7,6, приготовленной из сухого питательного агара по прописи, указанной на этикетке, + 5 мл крови дефибринированной крови).The authors conducted comparative studies of the inventive medium of blood serum agar (nutrient agar for the cultivation of microorganisms, pH 7.4-7.6 (GMF - agar) - 100 ml + red blood cell mass from human blood - 3 ml + cattle serum - 5 ml + yeast extract - 3 ml), nutrient medium according to the formulation Katosova L.K. (100 ml of the base prepared from dry nutrient agar according to the recipe indicated on the label, pH 7.2 ± 0.2 + 10 ml of inactivated horse serum + 3 ml of erythrocyte mass) and 5% blood agar according to order No. 535 (100 ml of the base - 2% agar, pH 7.4-7.6, prepared from dry nutritious agar according to the recipe indicated on the label, + 5 ml of blood of defibrinated blood).

Для биологического контроля питательных сред использовали культуру Streptococcus pneumoniae ATCC 49619 и клинический материал от больных с воспалительными заболеваниями дыхательной системы и ЛОР-органов (мокрота, заднеглоточные и назофарингеальные мазки, бронхоальвеолярный лаваж, аспират трахеи, пунктаты пазух носа и плевральной полости, полученное при тимпаноцентезе содержимое среднего уха от больных детей). Все посевы культивировали при температуре 37°С в обычной атмосфере в течение 24-48 ч (до 48 ч, если при посеве клинического материала от больного на первые сутки роста микроорганизмов выявлено не было).For biological control of culture media, a culture of Streptococcus pneumoniae ATCC 49619 and clinical material from patients with inflammatory diseases of the respiratory system and ENT organs (sputum, posterior pharyngeal and nasopharyngeal smears, bronchoalveolar lavage, tracheal aspirate, punctured nasal sinuses and pleural cavity, obtained from tympanum were used). middle ear from sick children). All crops were cultured at a temperature of 37 ° C in a normal atmosphere for 24-48 hours (up to 48 hours if no microorganism growth was detected during inoculation of clinical material from the patient on the first day).

Для определения чувствительности сред готовилась микробная взвесь из суточной культуры Streptococcus pneumoniae ATCC 49619, соответствующая по плотности 0,5 по стандарту Мак-Фарланда (содержащую приблизительно 1,5×108 КОЕ/мл), из полученной микробной взвеси готовили серию последовательных разведений 1:10. Затем на приготовленные чашки с соответствующим агаром высевали по 0,1 мл взвеси -5, -6, -7 разведении, содержащих соответственно 1×103, 1×102, 1×101 КОЕ/мл. При хороших питательных свойствах среды должен отмечаться рост микроорганизмов из -6, -7 разведений [7].To determine the sensitivity of the media, a microbial suspension was prepared from a daily culture of Streptococcus pneumoniae ATCC 49619, corresponding to a density of 0.5 according to the McFarland standard (containing approximately 1.5 × 10 8 CFU / ml), a series of serial dilutions 1 was prepared from the obtained microbial suspension: 10. Then, 0.1 ml of a suspension of -5, -6, -7 dilution containing 1 × 10 3 , 1 × 10 2 , 1 × 10 1 CFU / ml, respectively, were sown on prepared plates with the corresponding agar. With good nutritional properties of the medium, growth of microorganisms from -6, -7 dilutions should be noted [7].

Результаты исследований показали, что предлагаемый состав питательной среды имеет высокую чувствительность - выделение минимального количества Streptococcus pneumoniae ATCC 49619 (до 10 колоний при высеве из -7 разведения), а предлагаемый способ приготовления полноценной среды в условиях практической лаборатории является простым и доступным для лабораторий любого уровня.The research results showed that the proposed composition of the nutrient medium has high sensitivity - isolation of the minimum amount of Streptococcus pneumoniae ATCC 49619 (up to 10 colonies when plated from -7 dilution), and the proposed method for preparing a complete medium in a practical laboratory is simple and affordable for laboratories of any level .

Кроме того, при исследовании 20 проб мокроты и 496 проб бронхоальвеолярного лаважа от больных детей с хроническими инфекционно-воспалительными заболеваниями (ХИВЗЛ) в период с января 2005 по апрель 2011 гг. S. pneumoniae и М. catarrhalis выделены в 18,8% и 10,6% случаев, соответственно, на заявляемой питательной среде, что можно использовать для диагностических целей. В 49,1% случаев при ХИВЗЛ была выделена Haemophilus influenzae на шоколадном агаре, при этом ее рост был отмечен на заявляемой среде на 2 сутки инкубации при 37°С, обычной атмосфере в виде точечных колоний без гемолиза.In addition, in the study of 20 sputum samples and 496 samples of bronchoalveolar lavage from sick children with chronic infectious and inflammatory diseases (HIVZL) in the period from January 2005 to April 2011. S. pneumoniae and M. catarrhalis were isolated in 18.8% and 10.6% of cases, respectively, on the claimed nutrient medium, which can be used for diagnostic purposes. In 49.1% of cases with chronic obstructive pulmonary obstruction, Haemophilus influenzae was isolated on chocolate agar, and its growth was noted on the inventive medium on the 2nd day of incubation at 37 ° C, the usual atmosphere in the form of point colonies without hemolysis.

При исследовании заднеглоточных и назофарингеальных мазков от детей на заявляемой среде также были выделены в 1 случае Neisseria meningitidis и в одном случае Corynebacterium diphtheriae.When examining the posterior pharyngeal and nasopharyngeal smears from children on the claimed medium, Neisseria meningitidis and in one case Corynebacterium diphtheriae were also isolated.

Себестоимость заявляемой среды 680 руб/л.The cost of the claimed medium is 680 rubles / liter.

ЛитератураLiterature

1. Выделение, идентификация и определение чувствительности к антибиотикам Streptococcus pneumonia / Л.С.Страчунский, О.И.Кречикова, Р.С.Козлов, Т.М.Богданович, О.У.Стецюк, М.М.Суворов, Л.К.Катосова, Л.А.Вишнякова, М.Е.Фаустова // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2000. - Т.2, №1. С.88-98.1. Isolation, identification and determination of sensitivity to Streptococcus pneumonia antibiotics / L. S. Strachunsky, O. I. Krechikova, R. S. Kozlov, T. M. Bogdanovich, O. U. Stetsyuk, M. M. Suvorov, L. .K.Katosova, L.A. Vishnyakova, M.E. Faustova // Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. - 2000. - T.2, No. 1. S.88-98.

2. Козлов Р.С. Пневмококки: прошлое, настоящее и будущее. Смоленск: Смоленская государственная медицинская академия, 2005. - 128 с.2. Kozlov R.S. Pneumococci: past, present and future. Smolensk: Smolensk State Medical Academy, 2005. - 128 p.

3. Козлов Ю.А. Питательные среды в медицинской микробиологии. Руководство по изготовлению питательных сред для микробиологических институтов и санитарно-бактериологических лабораторий. Государственное издательство медицинской литературы МЕДГИЗ, 1950, Москва. - 252 с.3. Kozlov Yu.A. Nutrient media in medical microbiology. Guidelines for the production of culture media for microbiological institutes and sanitary-bacteriological laboratories. State Publishing House of Medical Literature MEDGIZ, 1950, Moscow. - 252 p.

4. Марри П.Р., Шей И.Р. Клиническая микробиология. Краткое руководство: пер. с англ. М.: Мир, 2006. - 425 с.4. Murray P.R., Shay I.R. Clinical Microbiology. Quick Guide: Per. from English M .: Mir, 2006 .-- 425 p.

5. Медицинская микробиология. Под редакцией В.И.Покровского. - 3-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. - 768 с.5. Medical microbiology. Edited by V.I. Pokrovsky. - 3rd ed. M .: GEOTAR-Media, 2005 .-- 768 p.

6. Методические указания по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов, утв. Минздравом СССР от 28.02.91, N 15/6-5.6. Guidelines for monitoring the operation of steam and air sterilizers, approved. Ministry of Health of the USSR of 28.02.91, N 15 / 6-5.

7. МУК 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам». - М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004. - 91 с.7. MUK 4.2.1890-04 "Determination of the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs." - M.: Federal Center for Sanitary Inspection of the Ministry of Health of Russia, 2004. - 91 p.

8. Поляк М.С., Сухаревич В.И., Сухаревич М.Э. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СПб. - 2008. - 352 с.8. Polyak M.S., Sukharevich V.I., Sukharevich M.E. Nutrient media for medical and sanitary microbiology. SPb .: ELBI-SPb. - 2008 .-- 352 p.

9. Приказ МЗ СССР №535 от 22 апреля 1985 года «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».9. Order of the Ministry of Health of the USSR No. 535 dated April 22, 1985 “On the Unification of Microbiological (Bacteriological) Research Methods Used in Clinical and Diagnostic Laboratories of Medical Institutions”

10. Пульмонология детского возраста: проблемы и решения. Под ред. Мизерницкого Ю.Л., Царегородцева А.Д. Выпуск 4. Москва, 2004. - 257 с.10. Pulmonology of childhood: problems and solutions. Ed. Misernitsky Yu.L., Tsaregorodtseva A.D. Issue 4. Moscow, 2004. - 257 p.

11. Частная медицинская микробиология с техникой микробиологических исследований: учебное пособие. Под ред. Лабинской А.С., Блинковой Л.П., Ещиной А.С. - М.: ОАО «Издательство «Медицина», 2005. - 600 с.11. Private medical microbiology with the technique of microbiological research: a training manual. Ed. Labinskaya A.S., Blinkova L.P., Yeschina A.S. - M .: OJSC "Publishing house" Medicine ", 2005. - 600 p.

12. Энтеробактерии: Руководство для врачей / И.В.Голубева, В.А.Килесо, Б.С.Киселева и др. Под ред. В.И.Покровского. - М.: Медицина, 1985. - 321 с.12. Enterobacteria: A guide for doctors / I.V. Golubeva, V.A. Kileso, B. S. Kiseleva and others. Ed. V.I. Pokrovsky. - M .: Medicine, 1985 .-- 321 p.

13. Essential procedures for clinical microbiology. Editor in chief, Henry D. Isenberg. Washington, DC 20005, 1998. 841 P.13. Essential procedures for clinical microbiology. Editor in chief, Henry D. Isenberg. Washington, DC 20005, 1998. 841 P.

14. Manual of clinical microbiology. Editor in chief, Patrick R. Murray. 7th ed. Washington, DC 20005, 1999. 1773 P.14. Manual of clinical microbiology. Editor in chief, Patrick R. Murray. 7 th ed. Washington, DC 20005, 1999. 1773 P.

Claims (1)

Питательная среда для выделения, культивирования и определения гемолитических свойств бактерий из клинического материала, содержащая ГМФ-агар, эритроцитарную массу из донорской крови человека, сыворотку крупного рогатого скота и дрожжевой экстракт при следующем количественном соотношении компонентов, мл:
ГМФ-агар 100 эритроцитарная масса из донорской крови человека 3 сыворотка крупного рогатого скота 5 дрожжевой экстракт 3
Nutrient medium for isolation, cultivation and determination of the hemolytic properties of bacteria from clinical material, containing GMF agar, erythrocyte mass from human blood, cattle serum and yeast extract in the following quantitative ratio of components, ml:
GMF agar one hundred erythrocyte mass from human blood 3 cattle serum 5 yeast extract 3
RU2011128466/10A 2011-07-08 2011-07-08 Nutrient medium for extraction, cultivation and determination of haemolytic properties of bacteria from clinical material RU2481394C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011128466/10A RU2481394C2 (en) 2011-07-08 2011-07-08 Nutrient medium for extraction, cultivation and determination of haemolytic properties of bacteria from clinical material

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011128466/10A RU2481394C2 (en) 2011-07-08 2011-07-08 Nutrient medium for extraction, cultivation and determination of haemolytic properties of bacteria from clinical material

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2011128466A RU2011128466A (en) 2013-01-20
RU2481394C2 true RU2481394C2 (en) 2013-05-10

Family

ID=48789670

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2011128466/10A RU2481394C2 (en) 2011-07-08 2011-07-08 Nutrient medium for extraction, cultivation and determination of haemolytic properties of bacteria from clinical material

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2481394C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2536964C1 (en) * 2013-12-11 2014-12-27 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Ханты-Мансийского автономного округа-Югры "Ханты-Мансийская государственная медицинская академия" Nutrient medium for revealing hemolytic activity of cultures of staphylococcus aureus and candida albicans

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1735370A1 (en) * 1989-05-03 1992-05-23 Кишиневский государственный медицинский институт Method for isolation of bacteria of genus streptococcus
RU2293986C2 (en) * 2005-02-21 2007-02-20 ГОУ ВПО Омская Государственная Медицинская Академия Microbial diagnostic method for determining vaginal dysbacteriosis
RU2342435C2 (en) * 2003-01-10 2008-12-27 Сентро Насьональ Де Биопрепарадос Selective culture medium for separatng and detecting types of streptococcus
RU2354706C2 (en) * 2006-10-18 2009-05-10 Любовь Григорьевна Боронина Feeding medium for detecting h influenzae and method of its obtaining

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1735370A1 (en) * 1989-05-03 1992-05-23 Кишиневский государственный медицинский институт Method for isolation of bacteria of genus streptococcus
RU2342435C2 (en) * 2003-01-10 2008-12-27 Сентро Насьональ Де Биопрепарадос Selective culture medium for separatng and detecting types of streptococcus
RU2293986C2 (en) * 2005-02-21 2007-02-20 ГОУ ВПО Омская Государственная Медицинская Академия Microbial diagnostic method for determining vaginal dysbacteriosis
RU2354706C2 (en) * 2006-10-18 2009-05-10 Любовь Григорьевна Боронина Feeding medium for detecting h influenzae and method of its obtaining

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ВОРОНИНА Л.Г. и др. Микробиота различных локусов у детей с онкологическими заболеваниями в стадии интенсивного лечения. - Проблемы медицинской микологии, т.11, №3, 2009, с.10-15. *
КРЕЧИКОВА О.И., КОЗЛОВ Р.С. и др. Выделение, идентификация и определение чувствительности к антибиотикам Streptococcus pneumoniae. - Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия, No. 1, 2000, ст.88-98. *
КРЕЧИКОВА О.И., КОЗЛОВ Р.С. и др. Выделение, идентификация и определение чувствительности к антибиотикам Streptococcus pneumoniae. - Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия, № 1, 2000, ст.88-98. *
СИДОРОВ М.А., СКОРОДУМОВ Д.И, ФЕДОТОВ В.Б. Справочник. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. - М.: Медицина, 1985, стр.95-96. *
СИДОРОВ М.А., СКОРОДУМОВ Д.И, ФЕДОТОВ В.Б. Справочник. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. - М.: Медицина, 1985, стр.95-96. ПОЛЯК М.С. и др. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. - СПб.: Элби - СПб., 2008, с.334-336. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2536964C1 (en) * 2013-12-11 2014-12-27 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Ханты-Мансийского автономного округа-Югры "Ханты-Мансийская государственная медицинская академия" Nutrient medium for revealing hemolytic activity of cultures of staphylococcus aureus and candida albicans

Also Published As

Publication number Publication date
RU2011128466A (en) 2013-01-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Egwuatu et al. Effect of blood agar from different animal blood on growth rates and morphology of common pathogenic bacteria
CN107743519A (en) For separate include can not cultivating in conventional medium as mycoplasma species clinical sample culture medium
RU2481394C2 (en) Nutrient medium for extraction, cultivation and determination of haemolytic properties of bacteria from clinical material
Leigh et al. Killing of Streptococcus uberis by bovine neutrophils following growth in chemically defined media
Trager A growth factor required by mosquito larvae
RU2455351C1 (en) Nutrient medium for cultivation of diphtheria bacteria
Swain et al. Survival of meningococci outside of the host: implications for acquisition
Lenchenko et al. Bird immunobiological parameters in the dissemination of the biofilm-forming bacteria Escherichia coli
Khan et al. Biomass production of Pasteurella multocida using biofermenter
RU2538158C1 (en) Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle
RU2738858C1 (en) Method of extracting uncultivated forms of staphylococci
Muhammed et al. A comparative study on detecting bacterial flora of the nasal cavity in normal healthy workers that work in cement factory and the healthy students in Koya University
Mussayeva et al. Salmonella sheep abortion: Distribution, diagnosis, and control measures
Abunna et al. Staphylococcus Species: Isolation, Identification and Antimicrobial Sensitivity in Livestock and Foods in and Around Holeta, Ethiopia
RU2354706C2 (en) Feeding medium for detecting h influenzae and method of its obtaining
RU2820305C1 (en) Staphylococcus aureus bacteria strain "sau-21l" for production of biopreparations for specific prevention of cow mastitis
Rasheed et al. Isolation, identification and sensitivity of Mannheimia haemolytica from Ewes udder with clinical mastitis
RU2717535C1 (en) Method for extracting pure culture of pasteurellosis activator pasteurella multocida
RU2787392C1 (en) Bacterial strain gallibacterium anatis intended for obtaining mono- and polyvalent immunogenic compositions aimed for the specific prevention of gallibacterium anatis in farm poultry
JP4210674B2 (en) Mycoplasma gallicepticum culture medium
RU2654669C1 (en) Diagnostic nutrient medium for differentiation of the bacillus anthracis by capsule and toxin formation
RU2373275C1 (en) Bifidobacterium pseudocatenulatum ov-17 strain, used for making bacterial preparations, bioligically active additives to food, fermented and unfermented food products, hygienic and cosmetic agents
Martinez-Herrera et al. Isolation of Brucella abortus from the milk of serum positive cows using chiken embryos as amplifier
ŞAHİN et al. An atypical localization of Bacillus anthracis in a cow's milk and udder
RU2549707C1 (en) Nutrient medium for culturing diphtheria microbes

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20130709