RU2458131C1 - Test system for mutation detection in human fumarylacetoacetate hydrolase and alpha-1-antitrypsin genes - Google Patents
Test system for mutation detection in human fumarylacetoacetate hydrolase and alpha-1-antitrypsin genes Download PDFInfo
- Publication number
- RU2458131C1 RU2458131C1 RU2010149949/10A RU2010149949A RU2458131C1 RU 2458131 C1 RU2458131 C1 RU 2458131C1 RU 2010149949/10 A RU2010149949/10 A RU 2010149949/10A RU 2010149949 A RU2010149949 A RU 2010149949A RU 2458131 C1 RU2458131 C1 RU 2458131C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- seq
- mutation
- gene
- mutations
- fah
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Область техникиTechnical field
Изобретение относится к молекулярной биологии и медицине и рассматривает создание и применение тест-системы для определения наличия точечных мутаций в гене фумарилацетоацетат гидролазы, вызывающих поражение печени у новорожденных детей.The invention relates to molecular biology and medicine, and considers the creation and use of a test system for determining the presence of point mutations in the fumaryl acetoacetate hydrolase gene, causing liver damage in newborns.
Одним из наиболее частых нарушений метаболизма, выявляемых в период новорожденности, является повышение концентрации билирубина в сыворотке крови. Известно, что причинами гипербилирубинемии являются: повышенное образование билирубина при распаде гемоглобина в клетках ретикулоэндотелиальной системы, снижение конъюгации билирубина, нарушение его экскреции или сочетание некоторых из вышеперечисленных факторов. Частота гипербилирубинемии составляет около 55% у доношенных новорожденных. В большинстве случаев гипербилирубинемия новороженных является функциональной (связана с незрелостью ферментативной системы) и проходит в течение первых недель жизни. Тем не менее, повышение уровня билирубина может быть связано с патологией экскреторной функции гепатобилиарной системы и носить злокачественный характер, в частности приводить к необратимому поражению центральной нервной системы.One of the most frequent metabolic disorders detected during the neonatal period is an increase in the concentration of bilirubin in the blood serum. It is known that the causes of hyperbilirubinemia are: increased bilirubin formation during the breakdown of hemoglobin in the cells of the reticuloendothelial system, decreased conjugation of bilirubin, impaired excretion, or a combination of some of the above factors. The incidence of hyperbilirubinemia is about 55% in full-term infants. In most cases, neonatal hyperbilirubinemia is functional (associated with the immaturity of the enzymatic system) and disappears during the first weeks of life. Nevertheless, an increase in the level of bilirubin may be associated with the pathology of the excretory function of the hepatobiliary system and be malignant, in particular, lead to irreversible damage to the central nervous system.
За последние десятилетия углубилось понимание основ и патофизиологии многих болезней печени, был установлен ряд новых нозологических форм, появились возможности эффективного лечения многих заболеваний, в частности стала применяться диетотерапия (при галактоземии и тирозинемии), стала возможной трансплантация печени. На сегодняшний день число распознанных наследственных болезней печени у новорожденных составляет около 20 различных форм. Гены всех этих заболеваний картированы, и во многих случаях определен спектр основных патогенных мутаций. Для некоторых генов (кодирующих в основном ферменты) также охарактеризованы полиморфные варианты, представленные преимущественно однонуклеотидными заменами, которые могут влиять на остаточную активность белка. Однако дифференциальная диагностика большинства из них крайне затруднительна ввиду схожести клинических проявлений. В нашей стране число пациентов, которым быстро и правильно устанавливается диагноз, сравнительно невелико. Большинство детей погибают в раннем возрасте, не получая адекватного лечения, а отягощенные семьи не имеют информации о наследственном заболевании.Over the past decades, understanding of the basics and pathophysiology of many liver diseases has deepened, a number of new nosological forms have been established, the possibilities of effective treatment of many diseases have appeared, in particular, diet therapy (for galactosemia and tyrosinemia) has begun, and liver transplantation has become possible. To date, the number of recognized hereditary liver diseases in newborns is about 20 different forms. The genes of all these diseases are mapped, and in many cases the spectrum of the main pathogenic mutations is determined. For some genes (encoding mainly enzymes), polymorphic variants have also been characterized, represented mainly by single nucleotide substitutions, which can affect the residual activity of the protein. However, the differential diagnosis of most of them is extremely difficult due to the similarity of clinical manifestations. In our country, the number of patients who are quickly and correctly diagnosed is relatively small. Most children die at an early age without adequate treatment, and burdened families do not have information about a hereditary disease.
Поскольку в ряде случаев причины злокачественной гипербилирубинемии новорожденных остаются не выясненными, изучение роли генетических факторов в формировании данного патологического состояния - актуальная научная задача, имеющая большое практическое значение.Since in some cases the causes of malignant hyperbilirubinemia of newborns remain unclear, studying the role of genetic factors in the formation of this pathological condition is an urgent scientific task of great practical importance.
Уже на первом месяце жизни могут выявляться первые клинические признаки, свидетельствующие о наследственной патологии печени и желчевыводящих протоков и проявляющиеся в виде синдрома холестаза. Одной из причин нарушения экскреторной функции гепатобилиарной системы в неонатальный период (неонатального холестаза) являются наследственные заболевания. По приблизительным подсчетам распространенность врожденных или наследственных заболеваний печени у детей составляет 1 случай на 2500 новорожденных детей. Именно у таких детей развиваются тяжелые формы печеночной патологии. Правильно и быстро установленный диагноз в данном случае является очень важным, т.к. позволяет прогнозировать течение болезни и проводить адекватную терапию. Однако дифференциальная диагностика этой группы заболеваний чрезвычайно сложна.Already in the first month of life, the first clinical signs that indicate a hereditary pathology of the liver and bile ducts and manifest as cholestasis syndrome can be detected. One of the reasons for the violation of the excretory function of the hepatobiliary system in the neonatal period (neonatal cholestasis) is hereditary disease. According to rough estimates, the prevalence of congenital or hereditary liver diseases in children is 1 case per 2500 newborns. It is in such children that severe forms of hepatic pathology develop. A correct and quick diagnosis in this case is very important, because allows you to predict the course of the disease and conduct adequate therapy. However, differential diagnosis of this group of diseases is extremely difficult.
Объектом исследования являются гены фумарилацетоацетат гидролазы и альфа-1-антитрипсина человека.The object of the study is the fumaryl acetoacetate hydrolase and human alpha-1-antitrypsin genes.
Цель работы - разработка системы, обеспечивающей диагностику и генетический анализ нескольких наследственных болезней из группы врожденных нарушений обмена веществ, приводящих к развитию неонатальной гипербилирубинемии: тирозинемии типа 1 и недостаточности альфа-1-антитрипсина.The purpose of the work is to develop a system that ensures the diagnosis and genetic analysis of several hereditary diseases from the group of congenital metabolic disorders leading to the development of neonatal hyperbilirubinemia:
Разработана тест-система, которая представляет собой биочип для детекции мутаций и полиморфизмов генов фумарилацетоацетат гидролазы и альфа-1-антитрипсина на микрочипе. В процессе работы проводились дизайн и оптимизация последовательностей олигонуклеотидных последовательностей для иммобилизации на микрочипе. Подобраны условия гибридизации на микрочипе. В результате исследования подобраны ДНК детей, больных тирозинемией типа 1 и недостаточностью альфа-1-антитрипсина, несущие нуклеотидные замены в областях исследуемых мутаций и полиморфизмов генов фумарилацетоацетат гидролазы и альфа-1-антитрипсина. Проведен анализ фрагментов этих ДНК методами полиморфизма длин рестрикционных фрагментов (ПДРФ), секвенирования, гибридизации на микрочипе. Проведен сравнительный анализ результатов, полученных этими методами.A test system has been developed, which is a biochip for the detection of mutations and polymorphisms of the fumarylacetoacetate hydrolase and alpha-1-antitrypsin genes on a microchip. In the process, design and optimization of the sequences of oligonucleotide sequences for immobilization on a microchip was carried out. The hybridization conditions on the microchip are selected. As a result of the study, the DNA of children with
Целью нашей работы является разработка системы, обеспечивающей одновременную диагностику и генетический анализ двух наследственных болезней из группы врожденных нарушений обмена веществ, приводящих к развитию неонатальной гипербилирубинемии: тирозинемии типа 1, недостаточности альфа-1-антитрипсина. Для решения этой задачи должна быть создана тест-система на основе одного микрочипа для выявления мутаций в генах галактозо-1-фосфат уридил трансферазы; фумарилацетоацетат гидролазы и в гене альфа-1 антитрипсина. Разрабатываемый метод обеспечивает точный генетический анализ и позволяет максимально сократить сроки проведения диагностики.The aim of our work is to develop a system that provides simultaneous diagnosis and genetic analysis of two hereditary diseases from the group of congenital metabolic disorders leading to the development of neonatal hyperbilirubinemia:
Наследственная тирозинемия тип 1.
Одним из факторов, вызывающих тяжелейшие нарушения функционирования печени, является нарушение метаболизма тирозина, вызываемое мутациями в генах, кодирующих белки-ферменты.One of the factors causing severe liver dysfunctions is a violation of tyrosine metabolism caused by mutations in genes encoding enzyme proteins.
На сегодняшний день известно три типа тирозинемии: тирозинемия типа 1 или гепаторенальная тирозинемия (недостаточность фумарилацетоацетат гидролазы), тирозинемия тип 2 (недостаточность тирозин трансаминазы) и тирозинемия тип 3 (хавкинсурия или недостаточность 4-гидроксифенилпируват диоксигеназы).Three types of tyrosinemia are known today:
Среди этих заболеваний тирозинемия 1 типа является наиболее тяжелой, требующей неотложной коррекции патологии. Массовый скрининг новорожденных, проводимый во многих странах, направлен на выявление именно этой формы тирозинемии. Своевременная диагностика тирозинемии позволяет вовремя начать диетотерапию и избежать серьезных последствий для здоровья ребенка, а также снизить экономические издержки, связанные с медицинской реабилитацией при поздней диагностике.Among these diseases,
Тирозинемия тип 1 описана U.Baber et al. в 1956 году. Тип наследования - аутосомно-рецессивный. Заболевание связано с недостаточностью фумарилацетоацетат гидролазы, катализирующей последнюю ступень деградации тирозина. Вследствие недостаточности фермента нарушается обмен тирозина, в тканях накапливаются его метаболиты: фумарилацетоацетат, малеилацетоацетат, сукцинилацетон, сукцинилацетоацетат, которые оказывают токсическое действие на клетки печени и проксимальных почечных канальцев, в результате чего страдают процессы канальцевой реабсорбции, в первую очередь, фосфатов. Происходит вторичное ингибирование активности ряда ферментов: 4-гидроксифенилпируват диоксигеназы, порфобилиноген синтазы, метионинаденозил трансферазы, дегидратазы дельта-ами-нолевулиновой кислоты, ферментов глюконеогенеза, что влечет за собой значительные биохимические расстройства. Нарушается антиоксидантная защита, падает общая антиокислительная активность плазмы.Tyrosinemia
Основными методами подтверждения диагноза тирозинемия типа 1 являются биохимические тесты, основанные на определении концентрации тирозина в крови и сукцинилацетона в моче. Для подтверждения диагноза осуществляется исследование фермента фумарилацетоацетат гидролазы в лейкоцитах или фибробластах. Разработаны способы пренатальной диагностики заболевания путем исследования сукцинилацетона в амниотической жидкости и активности фумарилацетоацетат гидролазы в культуре амниоцитов или клетках хориона. Трудности интерпретации метаболических изменений связаны с тем, что при поражении печени другой этиологии (как наследственной, так и ненаследственной) возможно повышение уровня тирозина в крови. Поэтому молекулярно-генетические методы играют важную роль в диагностике этого заболевания. Проведение мутационного анализа в случае тирозинемии типа 1 может быть полезно для выявления ложно-положительных результатов, полученных при проведении биохимических тестов.The main methods for confirming the diagnosis of
Ген фумарилацетоацетат гидроксилазы (FAH) картирован на 15 хромосоме (локус q23-q25) и состоит из 14 экзонов, разделенных 13 интронами. На сегодняшний день в гене описано более 70 мутаций, которые преимущественно представлены миссенс-мутациями. В таблице 1 приведены данные по всем описанным в литературе мутациям гена FAH.The fumaryl acetoacetate hydroxylase (FAH) gene is mapped to chromosome 15 (locus q23-q25) and consists of 14 exons separated by 13 introns. To date, the gene describes more than 70 mutations, which are mainly represented by missense mutations. Table 1 shows the data for all the mutations of the FAH gene described in the literature.
Наиболее распространенной мутацией у пациентов из Европы, Пакистана, Турции и США является внутриинтронная замена IVS12+5 G>A [Rootwelt H, Høie K, Berger R, Kvittingen EA. Fumarylacetoacetase mutations in tyrosinaemia type I. Hum Mutat. 1996; 7 (3):239-43; Rootwelt H, Kristensen T, Berger R, Høie K, Kvittingen EA. Tyrosinemia type I-complex splicing defects and a missense mutation in the fumarylacetoacetase gene. Hum Genet. 1994 Sep; 94(3):235-9]. Мутация IVS 6-1 G>T превалирует в Центральной и Восточной Европе [Bergman AJ, van den Berg IE, Brink W, Poll-The ВТ, Ploos van Amstel JK, Berger R. Spectrum of mutations in the fumarylacetoacetate hydrolase gene of tyrosinemia type I patients in northwestern Europe and Mediterranean countries. Hum Mutat. 1998; 12(1): 19-26], а в Испании составляет около 70% всех мутантных аллелей [Arranz JA, Piñol F, Kozak L, Pérez-Cerdá C, Cormand B, Ugarte M, Riudor E. Splicing mutations, mainly IVS6-1(G>T), account for 70% of fumarylacetoacetate hydrolase (FAH) gene alterations, including 7 novel mutations, in a survey of 29 tyrosinemia type I patients. Hum Mutat. 2002 Sep; 20(3):180-8]. Для некоторых популяций характерны свои особенности профиля мутаций, так в популяции евреев-ашкенази мутация Pro261Leu составляет почти 100% мутантных аллелей [Elpeleg ON, Shaag A, Holme E, Zughayar G, Ronen S, Fisher D, Hurvitz H. Mutation analysis of the FAH gene in Israeli patients with tyrosinemia type I. Hum Mutat. 2002 Jan; 19(l):80-l]. В Финляндии мутация Trp262Term составляет 80% мутантных аллелей, в то время как у пациентов из других частей Европы данная мутация не детектировалась [St-Louis М, Leclerc В, Laine J, Salo MK, Holmberg С, Tanguay RM. Identification of a stop mutation in five Finnish patients suffering from hereditary tyrosinemia type I. Hum Mol Genet. 1994 Jan; 3(l):69-72].The most common mutation in patients from Europe, Pakistan, Turkey and the United States is the intron intrusion replacement IVS12 + 5 G> A [Rootwelt H, Høie K, Berger R, Kvittingen EA. Fumarylacetoacetase mutations in tyrosinaemia type I. Hum Mutat. 1996; 7 (3): 239-43; Rootwelt H, Kristensen T, Berger R, Høie K, Kvittingen EA. Tyrosinemia type I-complex splicing defects and a missense mutation in the fumarylacetoacetase gene. Hum Genet 1994 Sep; 94 (3): 235-9]. Mutation IVS 6-1 G> T prevails in Central and Eastern Europe [Bergman AJ, van den Berg IE, Brink W, Poll-The BT, Ploos van Amstel JK, Berger R. Spectrum of mutations in the fumarylacetoacetate hydrolase gene of tyrosinemia type I patients in northwestern Europe and Mediterranean countries. Hum mutat. 1998; 12 (1): 19-26], and in Spain it makes up about 70% of all mutant alleles [Arranz JA, Piñol F, Kozak L, Pérez-Cerdá C, Cormand B, Ugarte M, Riudor E. Splicing mutations, mainly IVS6- 1 (G> T), account for 70% of fumarylacetoacetate hydrolase (FAH) gene alterations, including 7 novel mutations, in a survey of 29 tyrosinemia type I patients. Hum mutat. 2002 Sep; 20 (3): 180-8]. Some populations have their own characteristics of the mutation profile, for example, in the Ashkenazi Jewish population, the Pro261Leu mutation accounts for almost 100% of the mutant alleles [Elpeleg ON, Shaag A, Holme E, Zughayar G, Ronen S, Fisher D, Hurvitz H. Mutation analysis of the FAH gene in Israeli patients with tyrosinemia type I. Hum Mutat. 2002 Jan; 19 (l): 80-l]. In Finland, the Trp262Term mutation accounts for 80% of the mutant alleles, while in patients from other parts of Europe this mutation was not detected [St-Louis M, Leclerc B, Laine J, Salo MK, Holmberg C, Tanguay RM. Identification of a stop mutation in five Finnish patients suffering from hereditary tyrosinemia type I. Hum Mol Genet. 1994 Jan; 3 (l): 69-72].
С целью разработки биочипа нами были проанализированы данные литературы и частоты мутаций в гене FAH у пациентов с тирозинемией типа 1 из Российской Федерации.In order to develop a biochip, we analyzed literature data and mutation frequencies in the FAH gene in patients with
Наиболее частые мутации в гене FAH у пациентов с тирозинемией типа 1 из Российской Федерации: Pro342Leu; Argl74Term; IVS 12+5 G->A; IVS6-1 G->T.The most frequent mutations in the FAH gene in patients with
Учитывая вышеизложенное, для создания биочипа были выбраны следующие мутации в гене FAH: Pro342Leu, Argl74Term, IVS 12+5 G->A, IVS6-1 G->T, IVS7-1 G->A.Considering the above, the following mutations in the FAH gene were chosen to create the biochip: Pro342Leu, Argl74Term,
Альфа-1-антитрипсина недостаточность.Alpha-1-antitrypsin deficiency.
Альфа-1-антитрипсина недостаточность - аутосомно-рецессивное наследственное заболевание, обусловленное мутациями в гене SERPINA1. Альфа-1-антитрипсин является ингибитором широкого спектра сериновых протеаз, играя важную роль в защите тканей от протеолиза. В число ингибируемых им сериновых протеаз входят протеазы системы свертывания крови и фибринолиза и протеазы иммунного ответа. Нарушение ингибиции этих групп протеаз объясняет симптомы повышенной кровоточивости у больных и частую гибель детей от интеркурретных заболеваний и сепсиса. К раннему летальному исходу приводят те формы недостаточности альфа-1-анитрипсина, которые манифестируют заболеванием печени в неонатальный период. Более легкие формы заболевания манифестируют позже. Течение заболевания хроническое. Оно приводит к хронической печеночной недостаточности или менее часто протекает как асимптоматическая гепатоспленомегалия или холанокарцинома. У взрослых отмечается высокая частота цирроза печени. Также отмечен высокий риск развития эмфиземы легких.Alpha-1-antitrypsin deficiency is an autosomal recessive inherited disorder caused by mutations in the SERPINA1 gene. Alpha-1-antitrypsin is an inhibitor of a wide range of serine proteases, playing an important role in protecting tissues from proteolysis. Serine proteases that he inhibits include proteases from the blood coagulation system and fibrinolysis and proteases of the immune response. Violation of the inhibition of these protease groups explains the symptoms of increased bleeding in patients and the frequent death of children from intercurrent diseases and sepsis. Those forms of alpha-1-anitrypsin deficiency that manifest liver disease in the neonatal period lead to an early death. Lighter forms of the disease manifest later. The course of the disease is chronic. It leads to chronic liver failure or less often occurs as asymptomatic hepatosplenomegaly or cholanocarcinoma. In adults, a high incidence of cirrhosis is noted. There is also a high risk of developing emphysema.
Основными методами подтверждения диагноза альфа-1-антитрипсина недостаточности являются биохимические тесты, основанные на определении концентрации афльфа-1-антитрипсина в плазме крови. Также исследуется электрофоретическая подвижность (изоэлектрофокусирование в полиакриламидном геле). У гомозиготных носителей мутаций она изменена по сравнению с контролем. Проведение мутационного анализа в случае альфа-1-антитрипсина недостатоточности может быть полезно для выявления ложно-положительных результатов, полученных при проведении биохимических тестов.The main methods for confirming the diagnosis of alpha-1-antitrypsin deficiency are biochemical tests based on determining the concentration of aflf-1-antitrypsin in the blood plasma. Electrophoretic mobility (isoelectric focusing in a polyacrylamide gel) is also being investigated. In homozygous carriers of mutations, it is changed compared to the control. Mutation analysis in the case of alpha-1-antitrypsin deficiency may be useful for detecting false-positive results from biochemical tests.
Ген SERPINA1 картирован на 14 хромосоме (локус q32.1) и состоит из 5 экзонов, разделенных 4 интронами. На сегодняшний день в гене описано более 40 мутаций, которые преимущественно представлены миссенс-мутациями. Наиболее распространенной мутацией, обуславливающей развитие ранней формы заболевания, является мутация Е342К (аллель Z). Второй частой мутацией является мутация E264V, которая в сочетании с аллелем может вызывать развитие эмфиземы легких.The SERPINA1 gene is mapped on chromosome 14 (q32.1 locus) and consists of 5 exons separated by 4 introns. To date, the gene describes more than 40 mutations, which are mainly represented by missense mutations. The most common mutation that causes the development of an early form of the disease is the E342K mutation (Z allele). The second common mutation is the E264V mutation, which in combination with an allele can cause the development of emphysema.
ДНК-анализ, как диагностико-подтверждающая процедура, основан на определении мутаций с помощью ПЦР и последующего рестрикционнго анализа.DNA analysis, as a diagnostic-confirming procedure, is based on the determination of mutations using PCR and subsequent restriction analysis.
Для создания биочипа были выбраны частые мутации в гене SERPINA1: Е342К, E264V.To create a biochip, frequent mutations in the SERPINA1 gene were selected: E342K, E264V.
Для обнаружения точечных мутаций в различных генах применяются следующие методы.The following methods are used to detect point mutations in various genes.
1. Экстенция цепи меченным дидезоксирибонуклеозидтрифосфатом (SNP-single nucleotide polymorphism);1. The extent of the chain labeled with dideoxyribonucleoside triphosphate (SNP-single nucleotide polymorphism);
2. Аллель - специфичная ПЦР (Allele specific PCR);2. Allele - specific PCR (Allele specific PCR);
3. Изучение полиморфизма фрагментов после рестрикции (RFLP-restriction fragment length polymorphism);3. The study of fragment polymorphism after restriction (RFLP-restriction fragment length polymorphism);
4. Анализ конформационного полиморфизма одно- и двухцепочечной ДНК (SSCP и DSCP-single-(double)-strand conformation polymorphism);4. Analysis of conformational polymorphism of single and double stranded DNA (SSCP and DSCP-single- (double) -strand conformation polymorphism);
5. Гибридизацией на микроматрицах (Hybridization on microai Tay);5. Hybridization on microarrays (Hybridization on microai Tay);
6. Секвенирование (sequencing);6. Sequencing (sequencing);
7. Дидезоксифингерпринтинг (ddF-method);7. Dideoxyfingerprinting (ddF-method);
8. ПЦР-гетеродуплексный анализ (PCR-heteroduplex analysis);8. PCR heteroduplex analysis (PCR-heteroduplex analysis);
9. Метод несовершенного дуплекса с РНК (RNA mismatch analysis);9. The method of imperfect duplex with RNA (RNA mismatch analysis);
10. Метод структурно-специфичного расщепления (Structure-specific endonuclease cleavage);10. The method of structurally specific cleavage (Structure-specific endonuclease cleavage);
11. Метод зондов (Line Probe assay (LiPA));11. The method of probes (Line Probe assay (LiPA));
12. Метод PhaB.12. The PhaB method.
Однако все перечисленные выше методы имеют определенные недостатки, которые на практике могут существенно усложнить массовый скрининг пациентов. Так, методы экстенции цепи и аллель - специфичная ПЦР (1, 2) требуют постановки независимых реакций по числу изучаемых мутаций (т.е. несколько десятков проб для одного пациента в случае гена галактоза-1-фосфат уридилтрансферазы) и, соответственно, большого количества изучаемого образца.However, all of the above methods have certain disadvantages, which in practice can significantly complicate the mass screening of patients. Thus, chain extension methods and allele-specific PCR (1, 2) require independent reactions to be performed according to the number of mutations studied (i.e., several dozen samples for one patient in the case of the galactose-1-phosphate uridyl transferase gene) and, accordingly, a large number the studied sample.
Методы изучения полиморфизма (3, 4), ПЦР - гетеродуплексный анализ (8) и метод несовершенного дуплекса с РНК (9) трудоемки, занимают большое количество времени, дают косвенное заключение о типе мутации и требуют типовых стандартов (на каждую мутацию); кроме того, для метода несовершенного дуплекса предъявляются повышенные требования к отсутствию РНК-азы. Также данный метод трудоемкий и не приемлем для детекции дуплекса G-U.Methods for studying polymorphism (3, 4), PCR - heteroduplex analysis (8) and the imperfect duplex method with RNA (9) are laborious, take a lot of time, give an indirect conclusion about the type of mutation and require standard standards (for each mutation); In addition, for the imperfect duplex method, increased requirements are imposed on the absence of RNAase. Also, this method is time-consuming and not acceptable for the detection of G-U duplex.
Гибридизация на микроматрицах (5) требует сложного компьютерного обсчета полученных результатов и дорогостоящих расходных материалов (собственно микроматрица).Hybridization on microarrays (5) requires a complex computer calculation of the results and expensive consumables (the microarray itself).
Прямое секвенирование (6) требует выделения последовательности гена, отличается высокой себестоимостью и требует секвенирующее устройство.Direct sequencing (6) requires isolation of the gene sequence, has a high cost and requires a sequencing device.
Методы структурно-специфического расщепления (10) и дидезоксифингерпринтинг (7) требуют предварительной стандартизации (подбора условий), что увеличивает трудоемкость, а также наличия типовых стандартов. Кроме того, дидезоксифингерпринтинг выполняется с радиоактивно-меченным зондом.Structurally specific splitting methods (10) and dideoxy fingerprinting (7) require preliminary standardization (selection of conditions), which increases the complexity and the presence of standard standards. In addition, dideoxy fingerprinting is performed with a radiolabeled probe.
Метод зондов (11) отличается высокой себестоимостью и работает в случае небольшого количества мутаций.The probe method (11) has a high cost and works in the case of a small number of mutations.
Осуществление метода PhaB (12) занимает большое количество времени, поскольку связано с репликацией фагов и последующей регистрацией лизирования на культуре М. smegmatis, а также он очень трудоемок.The implementation of the PhaB method (12) takes a large amount of time, since it is associated with the replication of phages and subsequent registration of lysis in the culture of M. smegmatis, and it is also very laborious.
Данные недостатки устраняются в настоящем изобретении.These disadvantages are eliminated in the present invention.
Метод гибридизации на биочипах выгодно отличается от всех вышеперечисленных методик возможностью определения нескольких присутствующих мутаций одновременно, низкой себестоимостью, малым временем получения результата. Также он не требует дорогостоящего оборудования и высококвалифицированного персонала.The hybridization method on biochips compares favorably with all of the above methods with the ability to determine several mutations present at the same time, low cost, short time to obtain the result. Also, it does not require expensive equipment and highly qualified personnel.
При проведении патентного поиска нами не было обнаружено аналогов заявленного изобретения. Представленное изобретение обладает рядом преимуществ по сравнению с другими методами медико-генетической диагностики тирозинемии типа 1.When conducting a patent search, we did not find analogues of the claimed invention. The presented invention has several advantages compared with other methods of medical genetic diagnosis of
1. При помощи заявленного биочипа можно детектировать одновременно несколько различных точечных мутаций в гене FAH и SERPINA1, что позволит с большей вероятностью исключить ложно-положительные результаты при постановке диагноза пациенту.1. Using the claimed biochip, it is possible to simultaneously detect several different point mutations in the FAH and SERPINA1 gene, which will make it more likely to exclude false-positive results when a patient is diagnosed.
2. Заявленный биочип будет более приемлем, чем более дорогостоящие и трудоемкие методы для использования в рутинной медико-генетической диагностике тирозинемии 1 типа в клинических лабораториях.2. The claimed biochip will be more acceptable than the more expensive and time-consuming methods for use in routine medical genetic diagnosis of
Таким образом, заявленное нами изобретение позволит более просто и точно определять наличие мутаций в генах РАН и SERPINA1, что позволит в значительной мере улучшить диагностику тирозинемии I типа и недостаточности альфа-1-антитрипсина.Thus, our claimed invention will allow us to more easily and accurately determine the presence of mutations in the genes of the RAS and SERPINA1, which will significantly improve the diagnosis of tyrosinemia type I and alpha-1-antitrypsin deficiency.
Раскрытие изобретения.Disclosure of the invention.
Заявленные изобретения относятся к биочипу, который позволяет детектировать наличие точечных мутаций у пациента-человека; применению указанного биочипа для постановки диагноза пациенту-человеку, а также способу получения и использования указанного биочипа.The claimed invention relates to a biochip, which allows to detect the presence of point mutations in a human patient; the use of the specified biochip for the diagnosis of the patient-person, as well as the method of obtaining and using the specified biochip.
Краткое описание фигур.A brief description of the figures.
Фигура 1. Нанесение олигонуклеотидов, комплементарных различным мутациям в гене FAH, на биочип (блок 1).Figure 1. Application of oligonucleotides complementary to various mutations in the FAH gene on a biochip (block 1).
Фигура 2. Нанесение олигонуклеотидов, комплементарных различным мутациям в гене SERPINA1, на биочип (блок 2).Figure 2. Application of oligonucleotides complementary to various mutations in the SERPINA1 gene on a biochip (block 2).
Фигура 3. Детекция мутации Argl74 (CGA->TGA). Прямое ДНК-секвенирование. Стрелками указана локализация мутации. А. Фрагмент экзона 6 гена FAH. Норма. Б. Фрагмент экзона 6 гена FAH. Мутация Argl74Term в гетерозиготном состоянии.Figure 3. Detection of the Argl74 mutation (CGA-> TGA). Direct DNA sequencing. Arrows indicate the location of the mutation. A. Fragment of
Фигура 4. Детекция мутации IVS6-1 g->t. ПДРФ анализ. При возникновении мутации IVS 6-1 G->T исчезает сайт рестрикции для эндонуклеазы рестрикции Bsp 1720 I (GC^TNAGC). Дорожки: 1 - маркеры молекулярного веса; 2 - фрагмент экзона 7 гена FAH до рестрикции; 3, 4 - фрагмент экзона 7 гена FAH после обработки эндонуклеазой рестрикции Bsp 1720 I, норма; 5 - фрагмент экзона 7 гена FAH после обработки эндонуклеазой рестрикции Bsp 1720 I, мутация IVS 6-1 G->T в гомозиготном состоянии; 6 - фрагмент экзона 7 гена FAH после обработки эндонуклеазой рестрикции Bsp 1720 I, мутация IVS 6-1 G->T в гетерозиготном состоянии.Figure 4. Detection of the mutation IVS6-1 g-> t. RFLP analysis. When an IVS 6-1 G-> T mutation occurs, the restriction site for the restriction endonuclease Bsp 1720 I (GC ^ TNAGC) disappears. Lanes: 1 - molecular weight markers; 2 - fragment of
Фигура 5. Детекция мутации IVS7-1 g->a. ПДРФ анализ. При возникновении мутации IVS7-1 G->A появляется сайт рестрикции для эндонуклеазы рестрикции Alu I (AG^CT). Дорожки: 1 - маркеры молекулярного веса; 2 - фрагмент экзона 8 гена FAH до рестрикции; 3 - фрагмент экзона 8 гена FAH после обработки эндонуклеазой рестрикции Alu I, норма.Figure 5. Detection of the mutation IVS7-1 g-> a. RFLP analysis. When the IVS7-1 G-> A mutation occurs, a restriction site for the restriction endonuclease Alu I (AG ^ CT) appears. Lanes: 1 - molecular weight markers; 2 - fragment of
Фигура 6. Детекция мутации IVS 12+5 g->a. Прямое ДНК-секвенирование. Стрелками указана локализация мутации. А. Фрагмент интрона 6 - экзона 7 гена FAH. Норма. Б. Фрагмент интрона 6 - экзона 7 гена РАН, мутация IVS 12+5 G->A в гетерозиготном состоянии.Figure 6. Detection of the
Фигура 7. Детекция мутации Pro342Leu (CCG->CTG). Прямое ДНК-секвенирование. Стрелками указана локализация мутации. А. фрагмент экзона 12 гена FAH. Норма. Б. Фрагмент экзона 12 гена FAH, мутация Pro342Leu в гомозиготном состоянии.Figure 7. Detection of the Pro342Leu mutation (CCG-> CTG). Direct DNA sequencing. Arrows indicate the location of the mutation.
Фигура 8. Детекция мутаций E264V (GAA->GTA) и Е342К (GAG->AAG). Дорожки: 1 - маркер молекулярного веса 100bp DNA ladder; 2 - ПЦР-продукт экзона 5 гена альфа-1-антитрипсина до рестрикции (мутация Е342К); 3-ПЦР-продукт экзона 5 гена альфа-1-антитрипсина образца с мутацией Е342К после рестрикции с эндонуклеазой Taq I; 4-ПЦР-продукт экзона 5 гена альфа-1-антитрипсина контрольного образца (норма) после рестрикции с эндонуклеазой Taq I; 5-ПЦР-продукт экзона 3 гена альфа-1-антитрипсина до рестрикции (мутация E264V); 6, 7-ПЦР-продукты экзона 3 гена альфа-1-антитрипсина контрольных образцов (норма) после рестрикции с эндонуклеазой Taq I.Figure 8. Detection of mutations E264V (GAA-> GTA) and E342K (GAG-> AAG). Lanes: 1 - molecular weight marker 100bp DNA ladder; 2 - PCR product of
Фигура 9. Электрофореграмма мультиплексных ПЦР для первого раунда (ген FAH). Дорожки: 1 - маркер молекулярного веса; 2-3 - первый раунд ПЦР: фрагмент экзонов 6-7 гена FAH (мутации Argl74Term, IVS6-1 g-t) - 463 пн + фрагмент экзона 12 гена FAH (мутации IVS 12+5 g-a, Pro342Leu) - 382 пн + фрагмент экзона 8 гена FAH (мутация IVS7-1 g-a) - 252 пн.Figure 9. Electrophoregram of multiplex PCR for the first round (FAH gene). Lanes: 1 - molecular weight marker; 2-3 - the first round of PCR: exon fragment 6-7 of the FAH gene (Argl74Term mutations, IVS6-1 gt) - 463 bp +
Фигура 10. Электрофореграмма мультиплексных ПЦР для второго раунда (ген FAH). Дорожки: 1 - маркер молекулярного веса; 2 - второй раунд ПЦР: фрагмент экзона 12 гена FAH (мутация IVS 12+5 g-a) - 149 пн+фрагмент экзона 7 гена FAH (мутация IVS6-1 g-t) - 129 пн; 3 - второй раунд ПЦР: фрагмент экзона 12 гена FAH (мутация Pro342Leu) - 140 пн+фрагмент экзона 8 гена FAH (мутация IVS37-1 g-a) - 121 пн+фрагмент экзона 6 гена FAH (мутация Argl74Term) - 111 пн.Figure 10. Electrophoregram of multiplex PCR for the second round (FAH gene). Lanes: 1 - molecular weight marker; 2 - second round of PCR: fragment of
Фигура 11. Электрофореграмма мультиплексных ПЦР для первого раунда (ген SERPINA1). Дорожки: 1 - маркер молекулярного веса; 2-3 - второй раунд ПЦР: фрагмент экзона 3 гена SERPINA1 (мутация E264V) - 374 пн+фрагмент экзона 5 гена SERPINA1 (мутация Е342К) - 289 пн.Figure 11. Electrophoregram of multiplex PCR for the first round (gene SERPINA1). Lanes: 1 - molecular weight marker; 2-3 - second round of PCR: fragment of
Фигура 12. Электрофореграмма мультиплексных ПЦР для второго раунда (ген SERPINA1). Дорожки: 1 - маркер молекулярного веса; 2-3 - второй раунд ПЦР: фрагмент экзона 3 гена SERPINA1 (мутация E264V) - 139 пн+фрагмент экзона 5 гена SERPINA1 (мутация Е342К) - 92 пн.Figure 12. Electrophoregram of multiplex PCR for the second round (gene SERPINA1). Lanes: 1 - molecular weight marker; 2-3 - second round of PCR: fragment of
Фигура 13. Гибридизационная картина образца ДНК, полученного из человека, не несущего мутации в гене FAH с биочипом. Расположение точек соответствует фиг.1.Figure 13. Hybridization pattern of a DNA sample obtained from a person not carrying a mutation in the FAH gene with a biochip. The location of the points corresponds to figure 1.
Фигура 14. Гибридизационная картина образца ДНК, полученного из человека, несущего мутации Argl74Term и IVS12+5 g->a в гетерозиготном состоянии в гене FAH с биочипом. Расположение точек соответствует фиг.1.Figure 14. Hybridization pattern of a DNA sample obtained from a person carrying the Argl74Term and IVS12 + 5 g-> a mutations in the heterozygous state in the FAH gene with a biochip. The location of the points corresponds to figure 1.
Фигура 15. Гибридизационная картина образца ДНК, полученного из человека, несущего мутацию IVS12+5 a->g в гетерозиготном состоянии в гене FAH с биочипом. Расположение точек соответствует фиг.1.Figure 15. Hybridization pattern of a DNA sample obtained from a person carrying the IVS12 + 5 a-> g mutation in a heterozygous state in the FAH gene with a biochip. The location of the points corresponds to figure 1.
Фигура 16. Гибридизационная картина образца ДНК, полученного из человека, несущего мутации Argl74Term и IVS6-1 g->t в гетерозиготном состоянии в гене FAH с биочипом. Расположение точек соответствует фиг.1.Figure 16. Hybridization pattern of a DNA sample obtained from a person carrying the Argl74Term and IVS6-1 g-> t mutations in the heterozygous state in the FAH gene with a biochip. The location of the points corresponds to figure 1.
Фигура 17. Гибридизационная картина образца ДНК, полученного из человека, несущего мутацию Pro342Leu в гомозиготном состоянии в гене FAH с биочипом. Расположение точек соответствует фиг.1.Figure 17. Hybridization picture of a DNA sample obtained from a person carrying the Pro342Leu mutation in the homozygous state in the FAH gene with a biochip. The location of the points corresponds to figure 1.
Фигура 18. Гибридизационная картина образца ДНК, полученного из человека, не несущего мутации в гене SERPINA1 с биочипом. Расположение точек соответствует фиг.2.Figure 18. Hybridization picture of a DNA sample obtained from a person not carrying a mutation in the SERPINA1 gene with a biochip. The location of the points corresponds to figure 2.
Фигура 19. Гибридизационная картина образца ДНК, полученного из человека, несущего мутацию Е342К в гомозиготном состоянии в гене SERPINA1 с биочипом. Расположение точек соответствует фиг.2.Figure 19. Hybridization picture of a DNA sample obtained from a person carrying the E342K mutation in a homozygous state in the SERPINA1 gene with a biochip. The location of the points corresponds to figure 2.
Осуществление изобретенияThe implementation of the invention
Осуществление изобретения проиллюстрировано следующими примерами.The implementation of the invention is illustrated by the following examples.
Пример 1. Установление мутаций, использованных для создания биочипа.Example 1. Identification of mutations used to create a biochip.
С целью разработки блока-1 биочипа нами были проанализированы данные литературы и частоты мутаций в гене FAH у пациентов с тирозинемией тип 1 из Российской Федерации.In order to develop a biochip block-1, we analyzed the literature data and mutation frequencies in the FAH gene in patients with
Частоты мутаций Pro342Leu, Argl74Term, IVS 12+5 G->A, IVS6-1 G->T составляют на данный момент исследования 44%, 18%, 18% и 9% соответственно. При анализе литературных данных также были выбраны мутации и полиморфизмы, которые с наибольшей частотой встречались в других популяциях.The mutation frequencies of Pro342Leu, Argl74Term,
Учитывая вышеизложенное, для создания биочипа были выбраны следующие мутации в гене FAH: Pro342Leu, Argl74Term, IVS 12+5 G->A, IVS6-1 G->T, IVS7-1 G->A.Considering the above, the following mutations in the FAH gene were chosen to create the biochip: Pro342Leu, Argl74Term,
С целью разработки блока-2 биочипа нами были проанализированы данные литературы и частоты мутаций в гене SERPINA1 у пациентов с альфа-1-антитрипсина недостаточностью из Российской Федерации. Наиболее распространенной мутацией, обуславливающей развитие ранней формы заболевания, является мутация Е342К (аллель Z). Второй частой мутацией является мутация E264V, которая в сочетании с аллелем может вызывать развитие эмфиземы легких.In order to develop a block-2 biochip, we analyzed literature data and mutation frequencies in the SERPINA1 gene in patients with alpha-1-antitrypsin deficiency from the Russian Federation. The most common mutation that causes the development of an early form of the disease is the E342K mutation (Z allele). The second common mutation is the E264V mutation, which in combination with an allele can cause the development of emphysema.
Учитывая вышеизложенное, для создания биочипа были выбраны две мутации в гене SERPINA1: Е342К, E264V.Considering the above, two mutations in the SERPINA1 gene were chosen to create the biochip: E342K, E264V.
Пример 2. Дизайн и оптимизация последовательностей олигонуклеотидов для иммобилизации на микрочипе.Example 2. Design and optimization of oligonucleotide sequences for immobilization on a microchip.
Дизайн олигонуклеотидных последовательностей для иммобилизации на микрочипе проводили с учетом анализа нуклеотидной последовательности генов фумарилацетоацетат гидролазы (FAH) и альфа-1-антитрипсина (SERPINA1) в областях клинически значимых мутаций. Для этой цели использовали программу Oligo 6 (США).The design of the oligonucleotide sequences for immobilization on a microchip was carried out taking into account the analysis of the nucleotide sequence of the fumarylacetoacetate hydrolase (FAH) and alpha-1-antitrypsin (SERPINA1) genes in the areas of clinically significant mutations. For this purpose, the
Пример 3. Конструирование микрочипа для детекции полиморфизма в гене галактоза-1-фосфат уридилтрансферазы.Example 3. Construction of a microchip for the detection of polymorphism in the galactose-1-phosphate uridyl transferase gene.
При выборе полиморфных локусов, анализ которых будет проводиться при помощи биочипа по изобретению, руководствовались следующими подходами: 1) в генах выбирались функционально значимые аллели, встречающиеся с наибольшей частотой; 2) включали только те нуклеотидные замены, полиморфизм которых уже изучен в ряде популяций России.When choosing polymorphic loci, the analysis of which will be carried out using the biochip according to the invention, they were guided by the following approaches: 1) functionally significant alleles that were found with the greatest frequency were selected in the genes; 2) included only those nucleotide substitutions whose polymorphism has already been studied in a number of populations of Russia.
Последовательности нуклеотидов, использованных для создания биочипа по изобретению, приведены в таблицах 1; 2; 3 и 4.The nucleotide sequences used to create the biochip according to the invention are shown in tables 1; 2; 3 and 4.
Олигонуклеотиды, приведенные в таблицах 1, 2, 3, 4, синтезированы с использованием стандартной фосфоамитидной процедуры на автоматическом синтезаторе 394 DNA/RNA Synthesizer ("Applied Biosystems", США) На 3'-конце олигонуклеотидов находится спейсер со свободной аминогруппой, который вводили при синтезе с помощью 3'-Amino-Modifier C7 CPG 500 ("Glen Reseach", США) с целью проведения фотоиндуцируемой совместной полимеризации олигонуклеотидов и компонентов полиакриламидного геля.The oligonucleotides shown in Tables 1, 2, 3, 4 were synthesized using a standard phosphoamitide procedure using an automated 394 DNA / RNA Synthesizer (Applied Biosystems, USA). At the 3'-end of the oligonucleotides, there is a free amino group spacer introduced at synthesis using 3'-Amino-Modifier C7 CPG 500 ("Glen Reseach", USA) in order to conduct photoinduced co-polymerization of oligonucleotides and components of a polyacrylamide gel.
С целью повышения надежности определения сигнала каждую олигонуклеотидную пробу продублировали. Для подбора последовательности олигонуклетидов, обеспечивающих максимальную специфичность, в биочипе использовались несколько типов олигонуклеотидов, комплементарных одной и той же мутации или немутантной последовательности.In order to increase the reliability of signal determination, each oligonucleotide sample was duplicated. To select the sequence of oligonucleotides that ensure maximum specificity, several types of oligonucleotides complementary to the same mutation or non-mutant sequence were used in the biochip.
Факт наличия немутантных и мутантных аллелей в геноме пациента установлен при анализе интенсивности флюоресценции соответствующих ячеек на чипе. Нанесение олигонуклетидов, комплементарных нормальной последовательности и различным мутациям гена FAH, на биочип показано на фигуре 1, а комплементарных нормальной последовательности и различным мутациям гена SERPINA1 - показано на фигуре 2 (обозначение олигонуклеотидов такое же, как и в таблицах 1, 2, 3, 4).The fact of the presence of non-mutant and mutant alleles in the patient’s genome was established by analyzing the fluorescence intensity of the corresponding cells on the chip. The application of oligonucleotides complementary to the normal sequence and various mutations of the FAH gene on the biochip is shown in Figure 1, and complementary to the normal sequence and various mutations of the SERPINA1 gene are shown in Figure 2 (the designation of the oligonucleotides is the same as in tables 1, 2, 3, 4 )
Таким образом, сконструированный биочип позволяет определять наличие мутаций в генах фумарилацетоацетат гидролазы (FAH) и альфа-1-антитрипсина (SERPINA1), приводящих к возникновению заболевания.Thus, the designed biochip allows us to determine the presence of mutations in the genes of fumaryl acetoacetate hydrolase (FAH) and alpha-1-antitrypsin (SERPINA1), leading to the onset of the disease.
Пример 4. Подготовка образцов ДНК от здоровых доноров и больных галактоземией 1 типа для тестирования биочипа.Example 4. Preparation of DNA samples from healthy donors and patients with
В результате работы были отобраны образцы ДНК больных галактоземией детей для каждой из десяти исследуемых мутаций. Эти образцы ДНК подготовлены для тестирования полученного ДНК-чипа.As a result of the work, DNA samples of children with galactosemia patients were selected for each of the ten studied mutations. These DNA samples are prepared for testing the resulting DNA chip.
Все выбранные нами для создания биочипа мутации были подтверждены методом прямого нерадиоактивного секвенирования и/или анализом полиморфизма длины рестрикционных фрагментов. В качестве примеров на фигурах 2-8 приведены результаты части экспериментов. Как видно на приведенных фигурах мутации хорошо детектируются с помощью данных методов. Таким образом, в результате данной работы были отобраны образцы ДНК, которые можно применить для тестирования полученного биочипа.All mutations that we selected to create the biochip were confirmed by direct non-radioactive sequencing and / or restriction fragment length polymorphism analysis. As examples in figures 2-8 shows the results of part of the experiments. As can be seen in the figures, mutations are well detected using these methods. Thus, as a result of this work, DNA samples were selected that can be used to test the resulting biochip.
Пример 5. Гибридизация биочипа с ДНК-зондами с известной структурой и с ДНК-зондами, полученными от пациентов.Example 5. Hybridization of the biochip with DNA probes with a known structure and with DNA probes obtained from patients.
В результате исследования подобраны олигонуклеотидные праймеры и условия проведения реакции для проведения второго раунда ПЦР на последовательностях генов FAH и SERPINA1, полученной в первом раунде ПЦР, для дальнейшей детекции патогенно-значимых нуклеотидных замен генов FAH и SERPINA1 на микрочипе. Для проведения первого и второго раундов мультиплексной ПЦР генов FAH и SERPINA1 были подобраны следующие олигонуклеотидные праймеры (таблицы 5 и 6 соответственно).As a result of the study, oligonucleotide primers and reaction conditions were selected for the second round of PCR on the sequences of the FAH and SERPINA1 genes obtained in the first round of PCR for further detection of pathogenic significant nucleotide substitutions of the FAH and SERPINA1 genes on the microchip. For the first and second rounds of multiplex PCR of the FAH and SERPINA1 genes, the following oligonucleotide primers were selected (tables 5 and 6, respectively).
Так как экзоны гена РАН располагаются плотным кластером, то, чтобы избежать перекрестной ПЦР, второй раунд проводили следующим образом: аликвота от первого раунда ПЦР объемом 2 мкл с последующей мультиплексной ПЦР.Since the exons of the RAS gene are located in a dense cluster, in order to avoid cross-PCR, the second round was carried out as follows: an aliquot from the first round of PCR with a volume of 2 μl followed by multiplex PCR.
1. Фрагмент экзона 12 гена FAH (мутация Pro342Leu) + фрагмент экзона 8 гена FAH (мутация IVS37-1 g-a)+фрагмент экзона 6 гена FAH (мутация Argl74Term).1. Fragment of
2. Фрагмент экзона 12 гена РАН (мутация IVS12+5 g-a) + фрагмент экзона 7 гена FAH (мутация IVS6-1 g-t).2. Fragment of
Электрофореграмма мультиплексных ПЦР для гена РАН представлена на фигурах 9 и 10.Electrophoregram multiplex PCR for the RAS gene is presented in figures 9 and 10.
Для гена SERPINA1 второй раунд ПЦР проводили следующим образом: аликвота от первого раунда ПЦР объемом 2 мкл с последующей мультиплексной ПЦР: фрагмент экзона 3 гена SERPINA1 (мутация E264V)+фрагмент экзона 5 гена SERPINA1 (мутация Е342К).For the SERPINA1 gene, the second round of PCR was performed as follows: an aliquot of the first round of PCR with a volume of 2 μl followed by multiplex PCR:
Электрофореграмма мультиплексных ПЦР для гена SERPINA1 представлена на фигурах 11 и 12.Electrophoregram multiplex PCR for the gene SERPINA1 presented in figures 11 and 12.
Реакционная смесь (25 мкл) на втором этапе ПЦР содержала 0,5 пмоль каждого праймера, 2,5 мкл буфера для ПЦР с 2,5 мМ MgCl2 («Силекс», Россия), 6,25 нМ каждого из dNTP («Силекс», Россия), 0,2 нМ флюоресцентно-меченного dUTP-Cy5 и 1 ед. акт. Taq-полимеразы («Силекс», Россия). Для амплификации использовали программируемый ДНК-амплификатор фирмы «ДНК-технология» (Россия). После предварительной денатурации ДНК (3 минуты при 94°C) проводили амплификацию в режиме: 33 цикла амплификации: 94°С - 30 сек, 59°С - 30 сек, 72°С - 1 мин. Заключительный синтез 72°С - 3 минуты.The reaction mixture (25 μl) at the second PCR stage contained 0.5 pmol of each primer, 2.5 μl of PCR buffer with 2.5 mM MgCl 2 (Sileks, Russia), 6.25 nM of each of dNTP (Silex ”, Russia), 0.2 nM fluorescently-labeled dUTP-Cy5 and 1 unit. Act. Taq polymerase (Sileks, Russia). For amplification, a programmable DNA amplifier of the DNA Technology company (Russia) was used. After preliminary DNA denaturation (3 minutes at 94 ° C), amplification was performed in the mode: 33 amplification cycles: 94 ° C for 30 sec, 59 ° C for 30 sec, 72 ° C for 1 min. The final synthesis of 72 ° C - 3 minutes.
Гибридизацию на микрочипе проводили с использованием флюоресцентно-меченных образцов, полученных на второй стадии реакции ПЦР, в 32 мкл смеси следующего состава: 8 мкл формамида ("Serva", США), 8 мкл 20XSSPE ("Promega", США), 4 мкл амплификата и 12 мкл Н2О. Гибридизационную смесь денатурировали при 95°С (5 мин), охлаждали на льду (3 мин), наносили на биочип и оставляли на ночь при температуре 37°С. Далее чип отмывали в 1XSSPE в течение 5 мин при 20°С и высушивали.Microchip hybridization was performed using fluorescence-labeled samples obtained in the second stage of the PCR reaction in 32 μl of a mixture of the following composition: 8 μl of formamide (Serva, USA), 8 μl of 20XSSPE (Promega, USA), 4 μl of amplification and 12 μl of H 2 O. The hybridization mixture was denatured at 95 ° C (5 min), cooled on ice (3 min), applied to the biochip and left overnight at 37 ° C. The chip was then washed in 1XSSPE for 5 minutes at 20 ° C and dried.
Флюоресцентный сигнал от ячеек регистрировали с помощью широкопольного люминисцентного микроскопа, снабженного камерой ПЗС и программным обеспечением Imageware («Биочип-ИМБ», Россия). Использовали нормированные сигналы флюоресценции Jm=(Im-I0)/(Bm-I0), где Im - интенсивность сигнала на единицу площади внутренней части составляющей ячейки, Bm - фоновый сигнал, отражающий распределение освещенности микрочипа, I0 - темновой ток ПЗС матрицы, a m - номер ячейки чипа. При анализе интенсивности флюоресценции использовали среднее значение между двумя дублирующими ячейками. Сигналы Jm сортировали по возрастанию. Ячейкой сравнения считали ячейку, после которой наблюдали резкое увеличение нормированного сигнала. Считали, что ячейка имеет положительный сигнал, если ее сигнал превышал сигнал ячейки сравнения. Затем сравнивали между собой ячейки, содержащие нуклеотидную последовательность дикого типа и соответствующую мутантную последовательность, выявляя доминирующий сигнал, который превышал пороговое значение. Пороговое значение сигнала определяли статистически, обработав более 20 гибридизационных картин. Если в паре положительных сигналов «проба дикого типа - мутантная проба» ни один из сигналов не доминировал, значимыми считали сигналы с обеих ячеек, что соответствовало гетерозиготному состоянию анализируемого локуса.The fluorescent signal from the cells was recorded using a wide-field luminescent microscope equipped with a CCD camera and Imageware software (Biochip-IMB, Russia). We used normalized fluorescence signals Jm = (Im-I 0 ) / (Bm-I 0 ), where I m is the signal intensity per unit area of the internal part of the cell component, B m is the background signal reflecting the distribution of the microchip illumination, I 0 is the dark current CCD matrix, am - chip cell number. When analyzing the fluorescence intensity, an average value between two duplicate cells was used. Signals Jm were sorted in ascending order. The reference cell was considered the cell, after which a sharp increase in the normalized signal was observed. It was believed that the cell has a positive signal if its signal exceeded the signal of the comparison cell. Then, cells containing the wild-type nucleotide sequence and the corresponding mutant sequence were compared with each other, revealing a dominant signal that exceeded the threshold value. The threshold signal value was determined statistically by processing more than 20 hybridization patterns. If in the pair of positive signals “wild-type probe - mutant probe” none of the signals dominated, the signals from both cells were considered significant, which corresponded to the heterozygous state of the analyzed locus.
Пример 6. Анализ данных, полученных при гибридизации на биочипе по изобретению.Example 6. Analysis of data obtained by hybridization on a biochip according to the invention.
6.1. Результат гибридизации продуктов ПЦР-реакции, полученных с использованием геномной ДНК доноров, не болеющих тирозинемией типа 1, с биочипом по изобретению приведен на фигуре 13 и в таблице 7.6.1. The result of hybridization of the PCR reaction products obtained using the genomic DNA of donors not suffering from
Согласно сведениям, приведенным в таблице 7 и на фигуре 13, уровень нормированных сигналов флюоресценции (Jm) в точках, соответствующих нормальной последовательности гена FAH, в несколько раз выше, чем в точках, соответствующих мутированным последовательностям (в соответствующих парах олигонуклеотидов). Таким образом, заявленный биочип не дает ложноположительных результатов в случае пациента, не несущего указанных мутаций в последовательности гена FAH.According to the information given in table 7 and figure 13, the level of normalized fluorescence signals (Jm) at the points corresponding to the normal sequence of the FAH gene is several times higher than at the points corresponding to the mutated sequences (in the corresponding pairs of oligonucleotides). Thus, the claimed biochip does not give false positive results in the case of a patient who does not carry these mutations in the FAH gene sequence.
6.2. Результат трех различных гибридизаций продуктов ПЦР-реакции, полученных с использованием геномной ДНК доноров, несущих мутации Argl74Term IVS12+5 g->a, с биочипом по изобретению приведен на фигуре 14 и в таблице 8.6.2. The result of three different hybridizations of the PCR reaction products obtained using the genomic DNA of donors carrying Argl74Term IVS12 + 5 g-> a mutations with the biochip according to the invention is shown in Figure 14 and Table 8.
Согласно сведениям, приведенным в таблице 8 и на фигуре 14, уровень сигналов флюоресценции в точках, соответствующих мутациям Argl74Term и IVS12+5 g->a в гене FAH, такой же, как и в точках, соответствующих последовательности, не содержащей данную замену в интроне 3. Данный факт говорит о том, что мутация находится в гетерозиготном состоянии. Во всех остальных точках уровень сигнала, соответствующий нормальным последовательностям, в несколько раз сильнее сигнала, соответствующего мутированным последовательностям. Таким образом, заявленный биочип позволяет установить наличие мутаций Argl74Term и IVS12+5 g->a в гене FAH с высокой специфичностью (даже в гетерозиготном состоянии). При этом не возникает ложноположительных сигналов, соответствующих другим мутациям.According to the information given in table 8 and figure 14, the level of fluorescence signals at the points corresponding to the mutations Argl74Term and IVS12 + 5 g-> a in the FAH gene is the same as at the points corresponding to the sequence that does not contain this substitution in the
6.3. В результате гибридизации продуктов ПЦР-реакции, полученных с использованием геномной ДНК пациента, несущего мутацию IVS12+5 g->a в гене FAH в гетерозиготном состоянии, был получен результат, приведенный на фигуре 15 и в таблице 9.6.3. As a result of hybridization of the PCR reaction products obtained using the genomic DNA of a patient carrying the IVS12 + 5 g-> a mutation in the FAH gene in the heterozygous state, the result is shown in Figure 15 and Table 9.
Согласно сведениям, приведенным в таблице 9 и на фигуре 15, уровень сигналов флюоресценции в точках, соответствующих мутации IVS12+5 g->a в гене FAH, такой же, как и в точках, соответствующих последовательностям, не содержащим данные замены. Данный факт говорит о том, что мутация находятся в гетерозиготном состоянии. Во всех остальных точках уровень сигнала, соответствующий нормальным последовательностям, в несколько раз сильнее сигнала, соответствующего мутированным последовательностям. Таким образом, заявленный биочип позволяет установить наличие мутации IVS12+5 g->a в гене FAH с высокой специфичностью (даже в гетерозиготном состоянии). При этом не возникает ложноположительных сигналов, соответствующих другим мутациям.According to the information given in table 9 and figure 15, the level of fluorescence signals at the points corresponding to the IVS12 + 5 g-> a mutation in the FAH gene is the same as at the points corresponding to sequences that do not contain replacement data. This fact suggests that the mutation is in a heterozygous state. At all other points, the signal level corresponding to normal sequences is several times stronger than the signal corresponding to mutated sequences. Thus, the claimed biochip allows us to establish the presence of the IVS12 + 5 g-> a mutation in the FAH gene with high specificity (even in the heterozygous state). In this case, false positive signals corresponding to other mutations do not occur.
6.4. В результате гибридизации продуктов ПЦР-реакции, полученных с использованием геномной ДНК пациента, несущего мутации Argl74Term и IVS6 g->t в гене FAH в гетерозиготном состоянии, был получен результат, приведенный на фигуре 16 и в таблице 10.6.4. As a result of hybridization of the PCR reaction products obtained using the genomic DNA of a patient carrying the Argl74Term and IVS6 g-> t mutations in the FAH gene in the heterozygous state, the result is shown in figure 16 and table 10.
Согласно сведениям, приведенным в таблице 10 и на фигуре 16 уровень сигналов флюоресценции в точках, соответствующих мутациям Argl74Term и IVS6 g->t в гене FAH, такой же, как и в точках, соответствующих последовательностям, не содержащим данные замены. Данный факт говорит о том, что мутация находится в гетерозиготном состоянии. Во всех остальных точках уровень сигнала, соответствующий нормальным последовательностям, в несколько раз сильнее сигнала, соответствующего мутированным последовательностям. Данный факт показывает, что заявленный биочип позволяет установить наличие мутаций Argl74Term и IVS6 g->t в гене FAH с высокой специфичностью даже в гетерозиготном состоянии. При этом не возникает ложноположительных сигналов, соответствующих другим мутациям.According to the information given in table 10 and figure 16, the level of fluorescence signals at points corresponding to the Argl74Term and IVS6 g-> t mutations in the FAH gene is the same as at points corresponding to sequences that do not contain replacement data. This fact suggests that the mutation is in a heterozygous state. At all other points, the signal level corresponding to normal sequences is several times stronger than the signal corresponding to mutated sequences. This fact shows that the claimed biochip allows us to establish the presence of Argl74Term and IVS6 g-> t mutations in the FAH gene with high specificity even in the heterozygous state. In this case, false positive signals corresponding to other mutations do not occur.
6.5. В результате гибридизации продуктов ПЦР-реакции, полученных с использованием геномной ДНК пациента, несущего мутацию Pro342Leu в гене FAH в гомозиготном состоянии, был получен результат, приведенный на фигуре 17 и в таблице 11.6.5. As a result of hybridization of the PCR reaction products obtained using the genomic DNA of a patient carrying the Pro342Leu mutation in the FAH gene in a homozygous state, the result shown in Figure 17 and Table 11 was obtained.
Согласно сведениям, приведенным в таблице 11 и на фигуре 17, уровень сигналов флюоресценции в точках, соответствующих мутации Pro342Leu в гене FAH, в несколько десятков раз сильнее, чем в точках, соответствующих последовательностям, не содержащим данные замены. Данный факт говорит о том, что мутация находится в гомозиготном состоянии. Во всех остальных точках уровень сигнала, соответствующий нормальным последовательностям, в несколько раз сильнее сигнала, соответствующего мутированным последовательностям. Таким образом, биочип позволяет установить наличие мутации Pro342Leu в гене FAH с высокой специфичностью (в гомозиготном состоянии). При этом не возникает ложноположительных сигналов, соответствующих другим мутациям.According to the information given in table 11 and figure 17, the level of fluorescence signals at points corresponding to the Pro342Leu mutation in the FAH gene is several tens of times stronger than at points corresponding to sequences that do not contain replacement data. This fact suggests that the mutation is in a homozygous state. At all other points, the signal level corresponding to normal sequences is several times stronger than the signal corresponding to mutated sequences. Thus, the biochip allows us to establish the presence of the Pro342Leu mutation in the FAH gene with high specificity (in the homozygous state). In this case, false positive signals corresponding to other mutations do not occur.
6.6. В результате гибридизации продуктов ПЦР-реакции, полученных с использованием геномной ДНК пациента, не несущего мутации в гене SERPINA1, был получен результат, приведенный на фигуре 18 и в таблице 12.6.6. As a result of hybridization of the PCR reaction products obtained using the genomic DNA of a patient not carrying a mutation in the SERPINA1 gene, the result is shown in figure 18 and table 12.
Согласно сведениям, приведенным в таблице 12 и на фигуре 18, уровень нормированных сигналов флюоресценции (Jm) в точках, соответствующих нормальной последовательности гена SERPINA1, в несколько раз выше, чем в точках соответствующих мутированным последовательностям (в соответствующих парах олигонуклеотидов). Таким образом, заявленный биочип не дает ложноположительных результатов в случае пациента, не несущего указанных мутаций в последовательности гена SERPINA1.According to the information given in table 12 and figure 18, the level of normalized fluorescence signals (Jm) at the points corresponding to the normal sequence of the SERPINA1 gene is several times higher than at the points corresponding to the mutated sequences (in the corresponding pairs of oligonucleotides). Thus, the claimed biochip does not give false positive results in the case of a patient who does not carry these mutations in the SERPINA1 gene sequence.
6.7 В результате гибридизации продуктов ПЦР-реакции, полученных с использованием геномной ДНК пациента, несущего мутацию Е342К в гене SERPINA1 в гомозиготном состоянии, был получен результат, приведенный на фигуре 19 и в таблице 13.6.7. As a result of hybridization of the PCR reaction products obtained using the genomic DNA of a patient carrying the E342K mutation in the SERPINA1 gene in a homozygous state, the result shown in Figure 19 and Table 13 was obtained.
Согласно сведениям, приведенным в таблице 13 и на фигуре 19, уровень сигналов флюоресценции в точках, соответствующих мутации Е342К в гене SERPINA1, в несколько раз сильнее, чем в точках, соответствующих последовательностям, не содержащим данные замены. Данный факт говорит о том, что мутация находится в гомозиготном состоянии. Во всех остальных точках уровень сигнала, соответствующий нормальным последовательностям, в несколько раз сильнее сигнала, соответствующего мутированным последовательностям. Данный факт показывает, что заявленный биочип позволяет установить наличие мутации Е342К в гене SERPINA1 с высокой специфичностью (в гомозиготном состоянии). При этом не возникает ложноположительных сигналов, соответствующих другим мутациям.According to the information given in table 13 and figure 19, the level of fluorescence signals at the points corresponding to the E342K mutation in the SERPINA1 gene is several times stronger than at the points corresponding to sequences that do not contain replacement data. This fact suggests that the mutation is in a homozygous state. At all other points, the signal level corresponding to normal sequences is several times stronger than the signal corresponding to mutated sequences. This fact shows that the claimed biochip allows us to establish the presence of the E342K mutation in the SERPINA1 gene with high specificity (in the homozygous state). In this case, false positive signals corresponding to other mutations do not occur.
Claims (3)
1) постановке двухраундной мультиплексной ПЦР на геномной ДНК пациента с использованием праймеров, имеющих последовательности Seq ID NO: 19, Seq ID NO: 20, Seq ID NO: 21, Seq ID NO: 22, Seq ID NO: 23, Seq ID NO: 24, Seq ID NO: 25, Seq ID NO: 26, Seq ID NO: 27, Seq ID NO: 28, ID NO: 29, Seq ID NO: 30, Seq ID NO: 31, Seq ID NO: 32, Seq ID NO: 33, Seq ID NO: 34, Seq ID NO: 35, Seq ID NO: 36, Seq ID NO: 37, Seq ID NO: 38, Seq ID NO: 39, Seq ID NO: 40, Seq ID NO: 41, Seq ID NO: 42 и применяемых согласно таблицам 5 и 6.
2) гибридизации полученных продуктов ПЦР с биочипом по п.1,
3) анализе результатов гибридизации с установлением наличия мутации и ее гомозиготного или гетерозиготного состояния. 3. A method for detecting point mutations in the FAH and SERPINA1 genes that cause human type 1 tyrosinemia and human alpha-1-antitrypsin deficiency, comprising
1) staging a two-round multiplex PCR on the patient’s genomic DNA using primers having the sequences Seq ID NO: 19, Seq ID NO: 20, Seq ID NO: 21, Seq ID NO: 22, Seq ID NO: 23, Seq ID NO: 24, Seq ID NO: 25, Seq ID NO: 26, Seq ID NO: 27, Seq ID NO: 28, ID NO: 29, Seq ID NO: 30, Seq ID NO: 31, Seq ID NO: 32, Seq ID NO: 33, Seq ID NO: 34, Seq ID NO: 35, Seq ID NO: 36, Seq ID NO: 37, Seq ID NO: 38, Seq ID NO: 39, Seq ID NO: 40, Seq ID NO : 41, Seq ID NO: 42 and used according to tables 5 and 6.
2) hybridization of the obtained PCR products with a biochip according to claim 1,
3) analysis of the results of hybridization with the establishment of the presence of a mutation and its homozygous or heterozygous state.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010149949/10A RU2458131C1 (en) | 2010-12-07 | 2010-12-07 | Test system for mutation detection in human fumarylacetoacetate hydrolase and alpha-1-antitrypsin genes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010149949/10A RU2458131C1 (en) | 2010-12-07 | 2010-12-07 | Test system for mutation detection in human fumarylacetoacetate hydrolase and alpha-1-antitrypsin genes |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2010149949A RU2010149949A (en) | 2012-06-20 |
RU2458131C1 true RU2458131C1 (en) | 2012-08-10 |
Family
ID=46680502
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2010149949/10A RU2458131C1 (en) | 2010-12-07 | 2010-12-07 | Test system for mutation detection in human fumarylacetoacetate hydrolase and alpha-1-antitrypsin genes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2458131C1 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2528247C2 (en) * | 2013-05-07 | 2014-09-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ИБХ РАН) | Method of evaluation of sensitivity of lung cancer cells to doxorubicin based on expression levels of marker genes and set for its implementation |
RU2627115C2 (en) * | 2015-12-24 | 2017-08-03 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет им. М.К. Аммосова" | Method for simultaneous diagnosis of hereditary diseases |
RU2627647C1 (en) * | 2016-03-30 | 2017-08-09 | Федеральное государственное автономное учреждение "Научный центр здоровья детей" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАУ "НЦЗД") | Method for step-by-step diagnostics of type 1 hereditary tyrosinemia in children |
RU2763933C1 (en) * | 2020-12-24 | 2022-01-11 | Юлия Викторовна Мукий | Test system for identifying a mutation in the btpkd gene of the domestic dog (canis lupus familiaris), causing polycystic kidney disease |
-
2010
- 2010-12-07 RU RU2010149949/10A patent/RU2458131C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
LIU С. ЕТ AL., Gastroenterology, 132(1), 119-126, 2007. BARTELS С. ЕТ AL., Am. Transl. Res., 1(4), 406-411, 2009. FANEUF D. ЕТ AL., J. Clin. Invest., 90 (4), 1185-1192, 1992. ROOTWELT H. ET AL., Hum. Mutat., 7(3), 239-243, 1996. ARRANZ J. ЕТ AL., Hum. Mutat., 20(3), 180-188, 2002. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2528247C2 (en) * | 2013-05-07 | 2014-09-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ИБХ РАН) | Method of evaluation of sensitivity of lung cancer cells to doxorubicin based on expression levels of marker genes and set for its implementation |
RU2627115C2 (en) * | 2015-12-24 | 2017-08-03 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет им. М.К. Аммосова" | Method for simultaneous diagnosis of hereditary diseases |
RU2627647C1 (en) * | 2016-03-30 | 2017-08-09 | Федеральное государственное автономное учреждение "Научный центр здоровья детей" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАУ "НЦЗД") | Method for step-by-step diagnostics of type 1 hereditary tyrosinemia in children |
RU2763933C1 (en) * | 2020-12-24 | 2022-01-11 | Юлия Викторовна Мукий | Test system for identifying a mutation in the btpkd gene of the domestic dog (canis lupus familiaris), causing polycystic kidney disease |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2010149949A (en) | 2012-06-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Lucarelli et al. | A new targeted CFTR mutation panel based on next-generation sequencing technology | |
KR102303638B1 (en) | Method for evaluation of alzheimer disease risk | |
EP1847615A1 (en) | Expression and polymorphism of the ornithine transcarbamylase (OTC) gene as markers for diagnosing Alzheimer's disease | |
RU2458131C1 (en) | Test system for mutation detection in human fumarylacetoacetate hydrolase and alpha-1-antitrypsin genes | |
JP2014511691A (en) | A novel marker related to beta-ceracemic traits | |
US20220162710A1 (en) | Composition for diagnosis or prognosis prediction of glioma, and method for providing information related thereto | |
JP2014511691A5 (en) | ||
US20120190577A1 (en) | Processes and methods for diagnosis of alzheimer's disease | |
US20070148656A1 (en) | Method for detecting the risk of cancer, coronary heart disease, and stroke by analysing a catalase gene | |
US20020045171A1 (en) | Method of profiling genes as risk factors for attention deficit hyperactivity disorder | |
US20240084389A1 (en) | Use of simultaneous marker detection for assessing difuse glioma and responsiveness to treatment | |
JP6494356B2 (en) | Nonalcoholic fatty liver disease and / or nonalcoholic steatohepatitis risk and / or severity risk determination method, and oligonucleotide kit for determination | |
JP6342627B2 (en) | A novel pathogenic gene for amyotrophic lateral sclerosis | |
RU2423521C1 (en) | Biochip for mutation detection in galactose-1-phosphate-uridyl transferase gene causing hepatic involvement in newborns | |
US7842455B2 (en) | Susceptibility gene for Alzheimer's disease | |
JP2007166962A (en) | Method for predicting or diagnosing alzheimer's disease | |
KR101728023B1 (en) | Detection of mutations in ATP7B gene using PCR-LDR | |
JP5648948B2 (en) | Genetic mutation screening method for hypophosphatasia | |
KR101203353B1 (en) | Probe composition for diagnosing bipolar disorder and diagnosis method using it | |
RU2657821C1 (en) | Method for detecting early physiological cardiac malfunction in children in conditions of contamination with phenol | |
RU2650867C1 (en) | Method for determining genetic predisposition to develop panic disorder | |
Khin Sandar | Association Between Angiotensinogen Gene M235T Polymorphism and Plasma Angiotensinogen Level in Essential Hypertension | |
US7771942B2 (en) | Genetic marker for prostate cancer | |
JP2022150707A (en) | METHODS IN WHICH PRESENCE OR ABSENCE OF AMYLOID β ACCUMULATION RISK IS USED AS INDICATOR AS WELL AS METHODS, COMPOSITIONS, AND KITS FOR DETECTING PRESENCE OR ABSENCE OF SINGLE NUCLEOTIDE POLYMORPHISMS (SNPS) | |
WO2015129018A1 (en) | Method and kit for diagnosing glaucoma in dogs |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PC41 | Official registration of the transfer of exclusive right |
Effective date: 20170227 |
|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20181208 |