RU2431664C1 - Способ получения вакцины против аэромоноза рыб - Google Patents
Способ получения вакцины против аэромоноза рыб Download PDFInfo
- Publication number
- RU2431664C1 RU2431664C1 RU2010122828/10A RU2010122828A RU2431664C1 RU 2431664 C1 RU2431664 C1 RU 2431664C1 RU 2010122828/10 A RU2010122828/10 A RU 2010122828/10A RU 2010122828 A RU2010122828 A RU 2010122828A RU 2431664 C1 RU2431664 C1 RU 2431664C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cultivation
- vaccine
- culture fluid
- glucose
- aeromonads
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Изобретение относится к биотехнологии и касается способа изготовления вакцины против аэромоноза рыб. Представленный способ включает засев вакцинного штамма Aeromonas sobria, его культивирование с последующей инактивацией, причем культивирование аэромонад проводят в жидкой питательной среде на основе перевара Хоттингера в ферментере в течение 4-6 часов при температуре 26±1°С, сразу после засева окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до (-40)-(-100) мВ, после чего до окончания процесса культивирования рO2 в культуральной жидкости поддерживают на уровне 20-30% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,1-7,3 ед. рН, а дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,25-0,35% при лимитировании роста аэромонад глюкозой. Способ позволяет повысить выход вакцины при сокращении времени ее производства. 4 табл.
Description
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для промышленного получения вакцины для профилактики аэромоноза рыб.
Известен способ изготовления бактерина против аэромоноза рыб (1). Культивирование вакцинного штамма Aeromonas sobria (2) проводилось на плотной питательной среде.
Однако способ культивирования аэромонад на плотных питательных средах является нетехнологичным, малопродуктивным, в силу чего не пригодным для промышленного получения вакцины.
Известен также способ изготовления химической вакцины ВЮС-2 (3), однако указанная вакцина предназначена для инъекционного способа введения, а сам способ длителен, трудоемок и экономически нецелесообразен.
Технический результат заявляемого изобретения состоит в повышении выхода целевого продукта, сокращении длительности его производства и упрощении способа.
Эта цель достигается осуществлением управляемого периодического процесса культивирования вакцинного штамма Aeromonas sobria в жидкой питательной среде.
Способ осуществляется следующим образом.
Для культивирования аэромонад используют жидкую питательную среду на основе перевара Хоттингера с ростовыми добавками.
Среду засевают культурой аэромонад (Аеrоmоnas sobria), выращенной в жидкой питательной среде аналогичного состава. Культивируют при температуре (+25)-(+27)°C в течение 4-6 часов.
После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал (eH) культуральной жидкости снижают до (-40)-(-100) мВ, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают pO2 в культуральной жидкости на уровне 20-30% от насыщения кислородом воздуха, pH культуральной жидкости регулируют на уровне 7,1-7,3 ед. pH, а дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,25-0,35% при лимитировании роста аэромонад глюкозой, характеризующемся резким повышением pO2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения pH культуральной жидкости (табл.1).
| Таблица 1 | |||||||||
| Технологические параметры периодического процесса культивирования аэромонад | |||||||||
| №№ | Значения параметров | Время культивирования, ч | Температура, °C | pH, ед. | eH, мВ | PO2, % | Кол-во глюкозы, % | Накопле ние, млрд/см3 | ТАА |
| 1 | <min | 3 | 24 | 7,0 | -10 | 15 | 0,20 | 16 | 1:1024 |
| 2 | min | 4 | 25 | 7,1 | -40 | 20 | 0,25 | 19 | 1:1024 |
| 3 | opt | 5 | 26 | 7,2 | -70 | 25 | 0,30 | 22 | 1:1024 |
| 4 | max | 6 | 27 | 7,3 | -100 | 30 | 0,35 | 25 | 1:1024 |
| 5 | >max | 7 | 28 | 7,4 | -130 | 35 | 0,40 | 28 | 1:256 |
ТАА - титр агглютинирующих антител к антигену A. sobria в сыворотке вакцинированных рыб.
Пример 1.
Способ изготовления вакцины со значениями ниже минимальных параметров культивирования
eH культуральной жидкости снижают до (-10) мВ; pO2 поддерживают на уровне 15%; pH в культуральной жидкости регулируют на уровне 7,0; дробная подача глюкозы осуществляется дозами до концентрации 0,2%.
Культивирование при 24°C в течение 3-х часов.
Накопление - 16 млрд/см3
ТАА - 1:1024.
Пример 2.
Способ изготовления вакцины с минимальными значениями параметров культивирования
eH культуральной жидкости снижают до (-40) мВ; pO2 поддерживают на уровне 20%; pH в культуральной жидкости регулируют на уровне 7,1; дробная подача глюкозы осуществляется дозами до концентрации 0,25%.
Культивирование при 25°C в течение 4 часов.
Накопление - 19 млрд/см3.
ТАА - 1:1024.
Пример 3. Способ изготовления вакцины с оптимальными значениями параметров культивирования
eH культуральной жидкости снижают до (-70) мВ; pO2 поддерживают на уровне 25%; pH в культуральной жидкости регулируют на уровне 7,2; дробная подача глюкозы осуществляется дозами до концентрации 0,3%.
Культивирование при 26°C в течение 5 часов.
Накопление - 22 млрд/см3.
ТАА - 1:1024.
Пример 4.
Способ изготовления вакцины с максимальными значениями параметров культивирования
eH культуральной жидкости снижают до (-100) мВ; pO2 поддерживают на уровне 30%; pH в культуральной жидкости регулируют на уровне 7,3; дробная подача глюкозы осуществляется дозами до концентрации 0,35%.
Культивирование при 27°C в течение 6 часов.
Накопление - 25 млрд/см3.
ТАА - 1:1024.
Пример 5.
Способ изготовления вакцины со значениями выше максимальных параметров культивирования
eH культуральной жидкости снижают до (-130) мВ; pO2 поддерживают на уровне 35%; pH культуральной жидкости регулируют на уровне 7,4; дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,4%.
Культивирование при 28°C в течение 7 часов.
Накопление - 28 млрд/см3.
ТАА - 1:256.
Таким образом, параметры культивирования в примерах 2-4 позволяют за короткое время культивирования (4-6 часов) получать наибольшее количество жизнеспособных (полноценных в антигенном отношении) клеток - 19-25 млрд/см3. Титр агглютинирующих антител (ТАА) к антигену Aeromonas sobria в сыворотке вакцинированных рыб составляет 1:1024.
Способ, параметры которого изложены в примере 1, экономически нецелесообразен из-за низкого накопления аэромонад, тогда как способ, приведенный в примере 5, неприемлем по причине низкой активности вакцины ТАА - 1:256.
Сравнительная оценка известного способа культивирования с заявляемым представлена в табл.2.
| Таблица 2 | ||
| Показатели процесса культивирования | Питательная среда | |
| жидкая | плотная (эритрит-агар) прототип | |
| Выход клеток с 1 л пит. среды (млрд) | 19000-25000 | 4000 |
| Время культивирования (ч) | 4-6 | 18-20 |
| Дополнительные стадии получения бакмассы | 1. Застывание агара 2. Смыв культуры с агара |
|
| Для получения 80 л бакмассы с концентрацией микробных клеток 20 млрд/см3 необходимо: | ||
| - емкость для культивирования; | Ферментер, емк. 100 л | Матрас стеклянный, емк. 1 л |
| - количество емкостей (шт.); | 1 | 1467 |
| - количество питательной среды (л) | 80 | 440 |
Предложенный способ в отличие от известного обладает следующими преимуществами:
1. Увеличивает выход микробных клеток с 1 л питательной среды более чем в 5 раз;
2. Сокращает время культивирования более, чем в 3,5 раза;
3. В технологии получения бакмассы исключаются стадии - застывание агара и смыв микробных клеток с агара;
4. Более прост в исполнении и менее трудоемок: 1 ферментер емкостью 100 л заменяет 1467 стеклянных матрасов емкостью 1 л;
5. Позволяет получать стандартную культуру в больших объемах за короткий срок;
6. Экономически более целесообразен, что вытекает из пунктов 1-5.
Вакцина, приготовленная по предлагаемому способу, безвредна и обладает высокой иммуногенной активностью (табл.3).
| Таблица 3 | |||||
| Группа | Уровень контаминации, % от общего числа рыб | БАСК | ТАА | ||
| нет роста | единичный | умеренный | |||
| 1 | 94,4 | 5,6 | 0 | 53,2±3,2 | 1:256-1:1024 |
| П | 100,0 | 0 | 0 | 67,6±8,8 | 1:512-1:2048 |
| К | 0 | 20,0 | 80,0 | 19,2±6,7 | 1:2-1:32 |
1 и П - группы рыб, вакцинированные разными сериями вакцины;
К - контрольная группа (невакцинированные рыбы);
БАСК - бактерицидная активность сыворотки крови рыб;
ТАА - титр агглютинирующих антител к антигену A.sobria в сыворотке.
Вакцина, приготовленная по предлагаемому способу, по иммуногенной активности не уступает химической вакцине ВЮС-2.
Результаты вакцинации карпа представлены в табл.4.
| Таблица 4 | |
| Иммуногенная активность | |
| Вакцина, приготовленная по заявляемому способу | Вакцина ВЮС-2 |
| 94,4-100% | 80-96,7% |
При одинаковых качественных показателях (активность, безвредность) вакцина, приготовленная по предлагаемому способу, в отличие от вакцины ВЮС-2, обладает следующими преимуществами: во-первых, изготавливается по экономичной технологии, легко воспроизводимой в промышленных условиях; во-вторых, при ее применении исключается инъекционный способ введения.
Источники информации
1. Временная инструкция по изготовлению и контролю бактерина против аэромоноза (бактериальной геморрагической септицемии) рыб, утв. 31.05.05 г. (прототип).
2. Авт. св. СССР №1839458 A1, C12 №1/20, А61К 39/02, 27.04.1996 г.
3. Патент РФ №2080874 C1, А61К 39/02, 10.06.1997.
Claims (1)
- Способ изготовления вакцины против аэромоноза рыб, включающий засев вакцинного штамма Aeromonas sobria, его культивирование с последующей инактивацией, отличающийся тем, что культивирование аэромонад проводят в жидкой питательной среде на основе перевара Хоттингера в ферментере в течение 4-6 ч при температуре (26±1)°С, сразу после засева окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до (-40) - (-100) мВ, после чего до окончания процесса культивирования рO2 в культуральной жидкости поддерживают на уровне 20-30% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,1-7,3 ед. рН, а дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,25-0,35% при лимитировании роста аэромонад глюкозой.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010122828/10A RU2431664C1 (ru) | 2010-06-07 | 2010-06-07 | Способ получения вакцины против аэромоноза рыб |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010122828/10A RU2431664C1 (ru) | 2010-06-07 | 2010-06-07 | Способ получения вакцины против аэромоноза рыб |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2431664C1 true RU2431664C1 (ru) | 2011-10-20 |
Family
ID=44999190
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2010122828/10A RU2431664C1 (ru) | 2010-06-07 | 2010-06-07 | Способ получения вакцины против аэромоноза рыб |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2431664C1 (ru) |
-
2010
- 2010-06-07 RU RU2010122828/10A patent/RU2431664C1/ru active
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| SMIRNOV LP et al. Cytoplasmic protein vaccine against bacterial hemorrhagic septicemia (aeromonosis) of fish, Priki Biokhim Mikrobiol., 2000 Sep - Oct, Vol.36, No.5, p.592-596. * |
| Временная инструкция по изготовлению и контролю бактерина против аэромоноза (бактериальной геморрагической септицемии) рыб, 31.05.2005. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN102660461A (zh) | 一种缩短烟叶发酵周期的微生物制剂及其应用 | |
| CN101851610A (zh) | 一种大规模生产动物用狂犬病毒抗原的方法 | |
| CN101979514B (zh) | 猪蓝耳病病毒与疫苗及二者的生产方法 | |
| CN101695572B (zh) | 一种利用生物反应器生产伪狂犬病活疫苗的方法及其制品 | |
| CN108949619A (zh) | 一种鸭疫里默氏杆菌的发酵工艺 | |
| CN102038947A (zh) | 应用生物反应器工业化生产动物狂犬病疫苗的方法 | |
| CN101695571B (zh) | 一种利用生物反应器生产猪瘟细胞活疫苗的方法及其制品 | |
| CN105925517B (zh) | 马链球菌兽疫亚种无血清厌氧高密度发酵培养工艺 | |
| CN107794248A (zh) | 一种用微载体悬浮培养犬瘟热病毒的方法 | |
| RU2431664C1 (ru) | Способ получения вакцины против аэромоноза рыб | |
| CN103122324A (zh) | 鸡大肠杆菌培养方法 | |
| RU2649754C2 (ru) | Способ изготовления формолвакцины гидроокисьалюминиевой полиштаммной против стрептококковых заболеваний крупного рогатого скота | |
| RU2287343C1 (ru) | Способ получения антирабической вакцины | |
| CN101648013B (zh) | 鸡传染性鼻炎灭活疫苗的制备方法 | |
| CN104328077A (zh) | 副鸡禽杆菌发酵培养方法 | |
| RU2723580C1 (ru) | Способ получения адсорбированной вакцины против вибриоза лососевых рыб | |
| CN109355221B (zh) | 一种用于高密度发酵制备霍乱弧菌菌影的培养基和方法 | |
| RU2325183C1 (ru) | Способ получения вакцины против эшерихиоза животных | |
| EP2499233B1 (en) | Method to grow lawsonia intracellularis bacteria in persistently infected mccoy cells | |
| CN105296407A (zh) | 一种副鸡禽杆菌菌液的培养方法 | |
| RU2405567C1 (ru) | Способ получения вакцины против пастереллеза животных | |
| RU2311199C1 (ru) | Вакцина против пастереллеза животных | |
| RU2694597C1 (ru) | Способ приготовления посевных культур в технологии сибиреязвенных вакцин | |
| RU2198921C2 (ru) | Способ получения нативной споровой суспензии для приготовления сибиреязвенных вакцин | |
| RU2541454C1 (ru) | Питательная среда для культивирования штамма возбудителя рожи свиней erysipelothrix rhuisipathie |