RU2416648C1 - Oligonucleotide primers, method and test system for identifying genome of rabbit viral hemorrhagic disease by reverse transcription - polymerase chain reaction - Google Patents

Oligonucleotide primers, method and test system for identifying genome of rabbit viral hemorrhagic disease by reverse transcription - polymerase chain reaction Download PDF

Info

Publication number
RU2416648C1
RU2416648C1 RU2009141090/10A RU2009141090A RU2416648C1 RU 2416648 C1 RU2416648 C1 RU 2416648C1 RU 2009141090/10 A RU2009141090/10 A RU 2009141090/10A RU 2009141090 A RU2009141090 A RU 2009141090A RU 2416648 C1 RU2416648 C1 RU 2416648C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
reaction
rna
hemorrhagic disease
virus
viral hemorrhagic
Prior art date
Application number
RU2009141090/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Галина Сергеевна Бурмакина (RU)
Галина Сергеевна Бурмакина
Ольга Николаевна Жигалева (RU)
Ольга Николаевна Жигалева
Александр Сергеевич Малоголовкин (RU)
Александр Сергеевич Малоголовкин
Содном Жамьянович Цыбанов (RU)
Содном Жамьянович Цыбанов
Денис Владимирович Колбасов (RU)
Денис Владимирович Колбасов
Андрей Владимирович Луницин (RU)
Андрей Владимирович Луницин
Анна Григорьевна Гузалова (RU)
Анна Григорьевна Гузалова
Original Assignee
Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии filed Critical Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority to RU2009141090/10A priority Critical patent/RU2416648C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2416648C1 publication Critical patent/RU2416648C1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to synthetic oligonucleotide primers, complementary to high conservative VP60 gene region of a genome of rabbit viral hemorrhagic disease virus, to a method for identifying rabbit viral hemorrhagic disease virus and to a test system for identifying RNA of rabbit viral hemorrhagic disease virus. The offered invention can be used in veterinary virology. The method for identifying rabbit viral hemorrhagic disease virus involves sample preparation, RNA recovery from the biological material. It is followed with conducting a polymerase chain reaction with using primers 5'-caa cgt get cca gtt ttg gta cg-3', 5'-att ctg tct ggt tgg ggc gtg t-3'. Further, viral RNA is amplified. Then, the reaction is assessed by agarose gel electrophoresis, with a reaction result considered as positive if the PCR product corresponds to the size of 398 base pairs.
EFFECT: invention allows higher sensitivity of the method, as well as reduced time of diagnostic manipulations with organ and blood samples of the infected animals.
3 cl, 4 tbl, 4 ex

Description

Изобретение относится к ветеринарной вирусологии, а именно к средствам диагностики.The invention relates to veterinary virology, and in particular to diagnostic tools.

Вирусная геморрагическая болезнь кроликов (ВГБК) - остропротекающая высококонтагиозная болезнь, характеризующаяся явлениями геморрагического диатеза во всех органах, в особенности в легких и печени [1].Viral hemorrhagic rabbit disease (HBV) is an acute, highly contagious disease characterized by hemorrhagic diathesis in all organs, especially in the lungs and liver [1].

Высокая смертность кроликов при вирусной геморрагической болезни кроликов обуславливают необходимость разработки экспресс-методов диагностики ВГБК с целью быстрого и своевременного принятия карантинных мер и профилактических мероприятий. Одним из таких методов является полимеразная цепная реакция (ПЦР), которая уже нашла широкое применение в диагностических исследованиях в ветеринарии.High mortality of rabbits with viral hemorrhagic rabbit disease necessitates the development of rapid diagnostic methods for HCVF in order to quickly and timely take quarantine measures and preventive measures. One of these methods is polymerase chain reaction (PCR), which has already found wide application in diagnostic studies in veterinary medicine.

Известны многие методы лабораторной диагностики ВГБК, такие как реакция гемагглютинации (РГА), реакция длительного связывания комплемента (РДСК), реакция торможения гемагглютинации (РТГА), реакция иммуноферментного анализа (ИФА) [2]. Однако в некоторых случаях применение этих методов не дает четких результатов, например при исследовании разложившихся патматериалов или объектов ветсаннадзора. Кроме того, перед постановкой реакции требуется предварительное приготовление суспензии органов, что достаточно трудоемко.Many methods of laboratory diagnosis of HBVC are known, such as the hemagglutination reaction (RGA), the long-term complement fixation reaction (RDSK), the hemagglutination inhibition reaction (RTGA), and the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) [2]. However, in some cases, the application of these methods does not give clear results, for example, when studying decomposed material or objects of veterinary surveillance. In addition, before setting up the reaction, preliminary preparation of an organ suspension is required, which is rather laborious.

Известен способ обнаружения вируса ВГБК методом ПНР, в котором для выделения РНК используют метод фенольно-хлороформенной экстракции с использование протеиназы К [3, 4]. Необходимость работы с токсичными реагентами и длительность процедуры ограничивает его широкое применение. Кроме того, данный способ включает этап приготовления суспензии органов, что увеличивает время проведения реакции.A known method for detecting HBV virus by the method of PNR, in which for the isolation of RNA using the method of phenol-chloroform extraction using proteinase K [3, 4]. The need to work with toxic reagents and the duration of the procedure limits its widespread use. In addition, this method includes the step of preparing a suspension of organs, which increases the reaction time.

Целью изобретения является разработка более специфичного, чувствительного экспресс-способа и соответствующей тест-системы для выявления вируса ВГБК с помощью гнездового варианта ОТ-ПЦР с использованием пары синтезированных олигонуклеотидных праймеров, комплементарных к консервативной области гена VP60 генома вируса, позволяющий амплифицировать фрагмент комплементарной ДНК размером 398 п.о.The aim of the invention is to develop a more specific, sensitive express method and the corresponding test system for the detection of HBVV virus using the nested RT-PCR variant using a pair of synthesized oligonucleotide primers complementary to the conserved region of the VP60 gene of the virus genome, which allows amplification of a 398 complementary DNA fragment by.

Для достижения поставленной цели были подобраны и синтезированы специфические праймеры для идентификации возбудителя ВГБК, которые используются для синтеза кДНК и постановки ПЦР:To achieve this goal, specific primers were selected and synthesized to identify the causative agent of HBVC, which are used for the synthesis of cDNA and PCR:

5' - саа cgt get cca gtt ttg gta cg-3'5 '- saa cgt get cca gtt ttg gta cg-3'

5' - att ctg tct ggt tgg ggc gtg t-3'5 '- att ctg tct ggt tgg ggc gtg t-3'

Способ обнаружения РНК вируса ВГБК в пробах органов, образцах крови инфицированных кроликов включает предварительный этап денатурации РНК и отжига праймеров при 75°С в течение 5 мин с последующим синтезом кДНК при 37°С в течение 30 мин. Реакция ПНР включает 42 цикла амплификации: 94°С - 30 сек, 60°С - 30 сек, 72°С - 30 сек. Затем проводят оценку и учет результатов реакции без предварительной рестрикции полученного продукта с применением набора для постановки электрофореза.A method for detecting HBV virus RNA in organ samples, blood samples of infected rabbits includes a preliminary stage of RNA denaturation and annealing of primers at 75 ° C for 5 min followed by cDNA synthesis at 37 ° C for 30 min. The reaction of the NDP includes 42 amplification cycles: 94 ° C - 30 sec, 60 ° C - 30 sec, 72 ° C - 30 sec. Then, the results of the reaction are evaluated and taken into account without preliminary restriction of the obtained product using the electrophoresis kit.

Тест-система, состоит из трех отдельных наборов с пластиковыми флаконами и пробирками:The test system consists of three separate sets with plastic bottles and test tubes:

Набор 1 - для выделения нуклеиновых кислот, содержащий нуклеосорбент с отмывочным буфером на основе гуанидинтиоционата, буфер для реакции, отрицательный контроль;Set 1 - for the isolation of nucleic acids, containing a nucleosorbent with washing buffer based on guanidine thiocyanate, a buffer for the reaction, a negative control;

Набор 2 - для постановки ОТ-ПЦР, включающий пластиковые пробирки, содержащие: олигонуклеотидные праймеры, термостабильный фермент Taq-полимеразу, фермент M-MLV обратная транскриптаза, ПЦР-буфер и буфер для обратной транскрипции, смесь нуклеозидтрифосфатов, положительный и отрицательный контроли;Set 2 - for staging RT-PCR, including plastic tubes containing: oligonucleotide primers, thermostable Taq polymerase enzyme, M-MLV reverse transcriptase enzyme, PCR buffer and reverse transcription buffer, a mixture of nucleoside triphosphates, positive and negative controls;

Набор 3 - для проведения электрофореза, содержащий агарозу, буфер для электрофореза.Set 3 - for electrophoresis, containing agarose, electrophoresis buffer.

Первый набор позволяет быстро и качественно выделить РНК вируса ВГБК без предварительной подготовки суспензии из органов и без использования токсичных веществ.The first set allows you to quickly and accurately isolate RNA of HBV virus without preliminary preparation of the suspension from the organs and without the use of toxic substances.

При постановке ОТ-ПЦР с использованием второго набора производится денатурация вирусной РНК при 75°С и одновременная гибридизация праймеров. В результате дальнейшей амплификации концентрация синтезированного фрагмента в исследуемой пробе увеличивается в миллионы раз, что позволяет визуально учитывать результаты анализа с помощью электрофореза в агарозном геле (третий набор).When setting up RT-PCR using the second set, denaturation of viral RNA is performed at 75 ° C and the primers are hybridized at the same time. As a result of further amplification, the concentration of the synthesized fragment in the test sample increases millions of times, which allows you to visually take into account the results of the analysis using agarose gel electrophoresis (third set).

Техническим результатом изобретения является общедоступность, безопасность, чувствительность, а также сокращение времени проведения диагностической работы с пробами органов и крови от инфицированных животных.The technical result of the invention is the accessibility, safety, sensitivity, as well as reducing the time for conducting diagnostic work with samples of organs and blood from infected animals.

Сущность изобретения заключается в том, что выявление генома вируса ВГБК проводят методом полимеразной цепной реакции, предусматривающим амплификацию кДНК вируса, электрофоретическое разделение продуктов амплификации и учет результатов реакции. При наличии в исследуемых образцах вируса ВГБК синтезируется ДНК фрагмент длиной 398 п.о. Для определения размера фрагмента вносится маркер молекулярного веса.The essence of the invention lies in the fact that the identification of the genome of HBVC virus is carried out by the method of polymerase chain reaction, which involves amplification of the cDNA of the virus, electrophoretic separation of the amplification products and accounting for the reaction results. In the presence of HBVK virus in the studied samples, a DNA fragment of 398 bp is synthesized. A molecular weight marker is introduced to determine the fragment size.

Существенным отличием заявляемого способа является то, что:A significant difference of the proposed method is that:

1. Анализ можно проводить непосредственно из пробы органа (например, печени, легкого, сердца, мышцы) без предварительного приготовления суспензии. При этом навеска органа гомогенизируется в лизирующем буфере. Таким образом, значительно сокращается время постановки реакции.1. The analysis can be carried out directly from a sample of an organ (for example, liver, lung, heart, muscle) without first preparing a suspension. At the same time, a portion of the organ is homogenized in a lysis buffer. Thus, significantly reduces the time of setting the reaction.

2. Для анализа можно использовать пробы крови. Таким образом, данный способ позволяет определять наличие возбудителя у инфицированных животных на ранних сроках после заражения.2. Blood samples may be used for analysis. Thus, this method allows you to determine the presence of the pathogen in infected animals in the early stages after infection.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.

Тест-система укомплектована пластиковыми флаконами и пробирками.The test system is equipped with plastic bottles and test tubes.

Пример 1. Набор №1 для выявления нуклеиновых кислоты используют для работы с пробами органов и кровью.Example 1. Set No. 1 for the detection of nucleic acids is used to work with samples of organs and blood.

Исследуемый материал (кровь) в объеме 200 микролитров (далее мкл) или пробу органа весом 0,2 г вносят в 1,5 см3 пробирку и добавляют лизирующий буфер на основе гуанидинтиоцианата. Пробы органов гомогенизируют в лизирующем буфере и инкубируют 40 мин при 56°С, затем центрифугируют 5 минут и отбирают супернатант в чистые пробирки. В течение 10 мин пробы с кровью и супернатантом инкубируют при комнатной температуре с 40 мкл нуклеосорбента, периодически встряхивая на миксере. Пробирки центрифугируют при 5000 об/мин, и удаляют надосадочную жидкость. В пробирки вносят 300 мкл отмывочного буфера, встряхивают пробирки и центрифугируют при 5000 об/мин, удаляют надосадочную жидкость. Процедуру повторяют дважды. В пробирки вносят 400 мкл 70% спирта. Пробирки встряхивают и центрифугируют при 12000 об/мин, удаляют надосадочную жидкость. Процедуру повторяют дважды. Пробирки инкубируют 8 мин при 56°С, и вносят в пробирки 50 мкл бидистиллированной воды, тем самым эллюируя нуклеиновые кислоты с нуклеосорбента в воду. 5 мкл этого раствора используют для дальнейшего синтеза комплементарной ДНК.The test material (blood) in a volume of 200 microliters (hereinafter µl) or an organ sample weighing 0.2 g is added to a 1.5 cm 3 tube and a guanidine thiocyanate-based lysis buffer is added. Organ samples are homogenized in lysis buffer and incubated for 40 minutes at 56 ° C, then centrifuged for 5 minutes and the supernatant is collected in clean tubes. For 10 min, samples with blood and supernatant are incubated at room temperature with 40 μl of nucleosorbent, periodically shaking on a mixer. The tubes are centrifuged at 5000 rpm and the supernatant is removed. 300 μl wash buffer was added to the tubes, the tubes were shaken and centrifuged at 5000 rpm, and the supernatant was removed. The procedure is repeated twice. 400 μl of 70% alcohol are added to the tubes. The tubes are shaken and centrifuged at 12,000 rpm, the supernatant is removed. The procedure is repeated twice. The tubes are incubated for 8 min at 56 ° C, and 50 μl of double-distilled water are introduced into the tubes, thereby eluting the nucleic acids from the nucleosorbent into water. 5 μl of this solution is used for further synthesis of complementary DNA.

Пример 2. Синтез кДНК и амплификация участка кДНК вируса ВГБК с применением набора №2 для проведения ОТ-ПЦР с синтетическими олигонуклеотидными праймерами.Example 2. Synthesis of cDNA and amplification of the cDNA region of HBV virus using kit No. 2 for RT-PCR with synthetic oligonucleotide primers.

Расчет первичной структуры олигонуклеотидных праймеров.Calculation of the primary structure of oligonucleotide primers.

Для идентификации вируса геморрагической болезни кроликовTo identify rabbit hemorrhagic disease virus

методом полимеразной цепной реакции необходимо было определить участок генома, нуклеотидная последовательность которого позволяла бы дифференцировать данный вирус от других представителей семейства Caliciviridae и одновременно являлась бы достаточно консервативной для различных штаммов и изолятов вируса ГБК. Проанализировав данные литературы, мы пришли к выводу, что геном, подходящим для идентификации ВГБК, является ген VP60, кодирующий белок капсида.using the polymerase chain reaction, it was necessary to determine the portion of the genome, the nucleotide sequence of which would make it possible to differentiate this virus from other representatives of the Caliciviridae family and at the same time would be quite conservative for various strains and isolates of the GBK virus. After analyzing the literature data, we came to the conclusion that the VP60 gene encoding the capsid protein is the gene suitable for identifying HBVC.

Подбор праймеров осуществляли на основе анализа нуклеотидных последовательностей штаммов и изолятов возбудителя ВГБК, имеющихся в базе данных GeneBank [http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank]. Множественное выравнивание и анализ последовательностей осуществляли с помощью компьютерной программы «BioEdit 6.0». Для расчета праймеров был выбран участок высококонсервативной области гена VP60. Расчет и анализ олигонкулеотидов проводили с использованием компьютерной программы «OLIGO 6.0». Для подбора и анализа праймеров использовали последовательность гена VP60 штамма Triptis вируса геморрагической болезни кроликов.The selection of primers was carried out on the basis of the analysis of the nucleotide sequences of strains and isolates of the causative agent of HBVC, available in the GeneBank database [http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank]. Multiple alignment and sequence analysis was performed using the BioEdit 6.0 computer program. For the calculation of primers, a highly conserved region of the VP60 gene was selected. Calculation and analysis of oligonucleotides was carried out using the computer program "OLIGO 6.0". For selection and analysis of primers, the VP60 gene sequence of the rabbit hemorrhagic disease virus Triptis strain was used.

Figure 00000001
Figure 00000001

Тест-система апробирована на различных штаммах и изолятах вируса ВГБК. В качестве отрицательных контролей использованы штаммы вируса миксомы кроликов и вируса везикулярной экзантемы свиней.The test system has been tested on various strains and isolates of the HBVC virus. The strains of rabbit myxoma virus and pig vesicular exanthema virus were used as negative controls.

Проводят отжиг праймеров, для чего в предварительно промаркированные пробирки объемом 0,5 или 0,2 мл вносят по 5 мкл РНК, по 0,2 мкл каждого праймера и 5,6 мкл бидистиллированной воды.Primers are annealed, for which 5 μl of RNA, 0.2 μl of each primer and 5.6 μl of bidistilled water are added to pre-labeled 0.5 or 0.2 ml tubes.

Денатурацию РНК и отжиг праймеров проводят в амплификаторе при температуре 75°С в течение 5 минут.RNA denaturation and annealing of the primers is carried out in a thermocycler at a temperature of 75 ° C for 5 minutes.

В отдельной пробирке готовят общую реакционную смесь на N образцов, в число которых входят положительный контроль (с водным раствором РНК вируса ВГБК) и отрицательный контроль (с бидистиллированной водой). Реактивы вносят в последовательности, приведенной в таблице. Фермент добавляют в последнюю очередь.In a separate test tube, a general reaction mixture is prepared for N samples, which include a positive control (with an aqueous solution of HBV virus RNA) and a negative control (with bidistilled water). Reagents are added in the sequence shown in the table. The enzyme is added last.

РеактивыReagents Кол-во на 1 пробу (мкл)Qty per sample (μl) К-во на N проб (мкл)Amount per N samples (μl) Буфер для обратной транскрипцииReverse Transcription Buffer 4four 4×(N+1)4 × (N + 1) dNTPdNTP 1one 1×(N+1)1 × (N + 1) Фермент MMLV ревертазаMMLV Enzyme Revertase 0.10.1 0.1×(N+1)0.1 × (N + 1) Вода бидистиллированнаяBidistilled water 4four 4×(N+1)4 × (N + 1)

Смесь вносят сверху на масло. Пробы инкубируют при температуре 37°С 30 минут в амплификаторе. После окончания инкубации кДНК используют для дальнейшего анализа или хранят при -20°С 2 недели.The mixture is applied on top of the oil. Samples are incubated at 37 ° C for 30 minutes in a thermocycler. After incubation, cDNA is used for further analysis or stored at -20 ° C for 2 weeks.

В отдельной пробирке объемом 0,5 или 0,2 мл готовят общую реакционную смесь на N образцов, в число которых входят положительный и отрицательный контроли. Реактивы вносят в последовательности, приведенной в таблице. Фермент добавляют в последнюю очередь.In a separate test tube with a volume of 0.5 or 0.2 ml, a total reaction mixture is prepared for N samples, which include positive and negative controls. Reagents are added in the sequence shown in the table. The enzyme is added last.

РеактивыReagents Кол-во на 1 пробу (мкл)Qty per sample (μl) К-во на N проб (мкл)Amount per N samples (μl) Вода бидистиллированнаяBidistilled water 14,614.6 14,6×(N+1)14.6 × (N + 1) Буфер для ПЦРPCR buffer 4four 4×(N+1)4 × (N + 1) Праймер RHDFPrimer RHDF 0,20.2 0,2×(N+1)0.2 × (N + 1) Праймер RHDRPrimer RHDR 0,20.2 0,2×(N+1)0.2 × (N + 1) dNTPdNTP 1one 1×(N+1)1 × (N + 1) Фермент Taq-полимеразаTaq polymerase enzyme 0.10.1 0.1×(N+1)0.1 × (N + 1)

В реакции ПЦР используют 5 мкл кДНК, полученной в ходе реакции обратной транскрипции.In the PCR reaction using 5 μl of cDNA obtained during the reverse transcription reaction.

Реакцию ПЦР проводят в амплификаторе при следующих режимах:The PCR reaction is carried out in a thermocycler under the following conditions:

94°С94 ° C 30 сек30 sec 60°С60 ° C 30 сек30 sec 42 цикла42 cycles 72°С72 ° C 30 сек30 sec

Пример 3. Определения размера продуктов ПЦР с применением набора для проведения электрофореза.Example 3. Determining the size of PCR products using a kit for electrophoresis.

Продукты ПЦР анализируют методом электрофореза в 2%-ном агарозном геле в стандартном трис-борном буфере.PCR products are analyzed by electrophoresis in a 2% agarose gel in standard Tris-boron buffer.

13 мкл продукта ПЦР вносят в лунку агарозного геля. Электрофорез проводят при напряжении 10 В/см длины геля до тех пор, пока краситель не пройдет от старта не менее половины геля (примерно 15 мин). Результат электрофореза учитывают, просматривая гель в ультрафиолетовом свете с длиной волны 230 нм на приборе «Трансиллюминатор». Результат считается положительным, если продукт ПЦР соответствует размеру фрагмента 398 пар оснований.13 μl of the PCR product is added to a well of an agarose gel. Electrophoresis is carried out at a voltage of 10 V / cm of the gel length until the dye passes from the start of at least half of the gel (approximately 15 min). The result of electrophoresis is taken into account when viewing the gel in ultraviolet light with a wavelength of 230 nm on a Transilluminator instrument. The result is considered positive if the PCR product matches the fragment size of 398 base pairs.

С применением тест-системы и рассчитанных праймеров выявлялись все исследуемые образцы вируса ВГБК. Отрицательные контроли не амплифицировались.Using the test system and calculated primers, all tested samples of the HBVC virus were detected. Negative controls were not amplified.

Пример 4. Определение чувствительности и специфичности ОТ-ПЦР на основе синтетических олигонуклеотидных праймеров.Example 4. Determination of the sensitivity and specificity of RT-PCR based on synthetic oligonucleotide primers.

Figure 00000002
Figure 00000003
Figure 00000002
Figure 00000003

Тест-система и синтетические олигонуклеотидные праймеры были проверены на специфичность и чувствительность. Установлено, что тест-система не амплифицирует кДНК других бактерий и вирусов. Тест-система показала диагностическую специфичность и чувствительность на уровне 100%.The test system and synthetic oligonucleotide primers were tested for specificity and sensitivity. It was found that the test system does not amplify the cDNA of other bacteria and viruses. The test system showed diagnostic specificity and sensitivity at 100%.

Аналитическая чувствительность была определена относительно активности вируса, выраженной в lg LD50/см3. Для чего проводили серию 10-кратных разведений вируса ВГБК штамма «В-87», с исходным титром 4,5 lg LD50/см3 и анализировали с применением метода ПНР. Пределом чувствительности являлось разведение 1:103 от исходного образца с титром инфекционной активности 4,5 lg LD50/см3.Analytical sensitivity was determined relative to the activity of the virus, expressed in lg LD 50 / cm 3 . For this, a series of 10-fold dilutions of the HBBC virus of strain “B-87” was carried out, with an initial titer of 4.5 lg LD 50 / cm 3 and analyzed using the PNR method. The sensitivity limit was a 1:10 3 dilution from the original sample with an infectious activity titer of 4.5 lg LD 50 / cm 3 .

Аналитическая чувствительность предлагаемого набора была также определена относительно активности вируса, выраженной в ГАЕ, амплификацией очищенной РНК вируса, выделенной из последовательных четырехкратных разведений 10%-ных суспензий проб печени кроликов, инфицированных ВГБК. Рассчитанное значение аналитической чувствительности превышало предел чувствительности РГА в 2 раза.The analytical sensitivity of the proposed kit was also determined relative to the activity of the virus, expressed in GAE, by amplification of purified virus RNA isolated from serial four-fold dilutions of 10% suspension of samples of liver samples of rabbits infected with HBV. The calculated value of the analytical sensitivity exceeded the sensitivity limit of the RGA by 2 times.

Источники информацииInformation sources

1. Власов Н.А. Физико-химические свойства и антигенная структура вируса геморрагической болезни кроликов. // Докторская диссертация. - Покров: ВНИИВВиМ, 1998. - 351 с.1. Vlasov N.A. Physico-chemical properties and antigenic structure of the rabbit hemorrhagic disease virus. // Doctoral dissertation. - Veil: VNIIVViM, 1998 .-- 351 p.

2. Шевченко А.А., Вишняков И.О., Бакулов И.А., Власова Т.А. Вирусная геморрагическая болезнь кроликов. // Ветеринария, 1994, №10. - С.22-23.2. Shevchenko A.A., Vishnyakov I.O., Bakulov I.A., Vlasova T.A. Viral hemorrhagic disease of rabbits. // Veterinary medicine, 1994, No. 10. - S.22-23.

3. Tian L., Liao J., Li J., Zhou W., Zhang X., Wang H. Isolation and identification of a non-haemagglutinating strain of rabbit hemorrhagic disease virus from China and sequence analysis for the VP60 Gene. // Virus Genes, 2007, №35. P.745-752.3. Tian L., Liao J., Li J., Zhou W., Zhang X., Wang H. Isolation and identification of a non-haemagglutinating strain of rabbit hemorrhagic disease virus from China and sequence analysis for the VP60 Gene. // Virus Genes, 2007, No. 35. P.745-752.

4. Ros Bascuñana С., Nowotny N. and Belák S. Detection and differentiation of rabbit hemorrhagic disease and European brown hare syndrome viruses by amplification of VP60 genomic sequences from fresh and fixed tissue specimens. // J. Clinical Microbiol., 1997, №35. - P.2492-2495.4. Ros Bascuñana S., Nowotny N. and Belák S. Detection and differentiation of rabbit hemorrhagic disease and European brown hare syndrome viruses by amplification of VP60 genomic sequences from fresh and fixed tissue specimens. // J. Clinical Microbiol., 1997, No. 35. - P.2492-2495.

Claims (3)

1. Синтетические олигонуклеотидные праймеры, комплементарные высоко консервативной области гена VP60 генома вируса вирусной геморрагической болезни кроликов, используемые для выявления РНК вируса ВГБК, имеющие следующий нуклеотидный состав:
5'-саа cgt gct cca gtt ttg gta cg-3'
5'-att ctg tct ggt tgg ggc gtg t-3'.
1. Synthetic oligonucleotide primers complementary to the highly conserved region of the VP60 gene of the rabbit viral hemorrhagic disease virus genome used to detect HBV virus RNA having the following nucleotide composition:
5'-caa cgt gct cca gtt ttg gta cg-3 '
5'-att ctg tct ggt tgg ggc gtg t-3 '.
2. Способ выявления вируса ВГБК, включающий пробоподготовку, выделение РНК из биологического материала, постановку полимеразной цепной реакции с использованием синтезированных праймеров, амплификацию РНК вируса, оценку проведения реакции гель-электрофорезом в агарозе, отличающийся тем, что проводят предварительную денатурацию вирусной РНК при 75°С в течение 5 мин, синтез кДНК проводят при 37°С в течение 30 мин, а для постановки ПНР подобраны и синтезированы две пары олигонуклеотидных праймеров по п.1 с 42 циклами амплификации при температуре денатурации 94°С 30 с, отжига 60°С 30 с, элонгации 72°С 30 с, затем проводят оценку результатов реакции без предварительной рестрикции полученного продукта, при этом результат реакции считается положительным, если продукт ПНР соответствует размеру 398 пар оснований.2. A method for detecting HBV virus, including sample preparation, isolation of RNA from biological material, production of a polymerase chain reaction using synthesized primers, amplification of the RNA of the virus, evaluation of the reaction by gel electrophoresis in agarose, characterized in that the preliminary denaturation of viral RNA at 75 ° C for 5 minutes, cDNA synthesis was carried out at 37 ° C for 30 minutes, and two pairs of oligonucleotide primers according to claim 1 with 42 amplification cycles at temperatures denaturation 94 ° C 30 s, 60 ° C annealing 30 s, elongation 72 ° C 30 s, then subjected to evaluation results of the reaction without prior restriction of the resulting product, the result of the reaction is considered positive if the product corresponds to the size NDP 398 base pairs. 3. Тест-система для выявления РНК вируса вирусной геморрагической болезни кроликов, включающая пластиковые флаконы и пробирки, термостабильный фермент Taq-полимеразу, ПЦР-смесь для постановки реакции, положительный и отрицательный контроли, отличающаяся тем, что содержит три набора: 1) набор для выявления нуклеиновой кислоты, содержащий нуклеосорбент с отмывочным буфером на основе гуанидинтиоционата, буфер для реакции, отрицательный контроль; 2) набор для проведения ОТ-ПЦР, включающий пластиковые пробирки, содержащие синтетические праймеры по п.1; 3) набор для проведения электрофореза, содержащий агарозу, буфер для электрофореза. 3. Test system for detecting RNA of the virus of viral hemorrhagic disease of rabbits, including plastic bottles and tubes, thermostable enzyme Taq polymerase, PCR mixture for the reaction, positive and negative controls, characterized in that it contains three sets: 1) set for detecting a nucleic acid containing a nucleosorbent with washing buffer based on guanidine thiocyanate, a reaction buffer, a negative control; 2) a kit for RT-PCR, including plastic tubes containing synthetic primers according to claim 1; 3) an electrophoresis kit containing agarose, electrophoresis buffer.
RU2009141090/10A 2009-11-09 2009-11-09 Oligonucleotide primers, method and test system for identifying genome of rabbit viral hemorrhagic disease by reverse transcription - polymerase chain reaction RU2416648C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009141090/10A RU2416648C1 (en) 2009-11-09 2009-11-09 Oligonucleotide primers, method and test system for identifying genome of rabbit viral hemorrhagic disease by reverse transcription - polymerase chain reaction

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009141090/10A RU2416648C1 (en) 2009-11-09 2009-11-09 Oligonucleotide primers, method and test system for identifying genome of rabbit viral hemorrhagic disease by reverse transcription - polymerase chain reaction

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2416648C1 true RU2416648C1 (en) 2011-04-20

Family

ID=44051348

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009141090/10A RU2416648C1 (en) 2009-11-09 2009-11-09 Oligonucleotide primers, method and test system for identifying genome of rabbit viral hemorrhagic disease by reverse transcription - polymerase chain reaction

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2416648C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
TIAN L. ЕТ AL., Isolation and identification of a non-haemagglutinating strain of rabbit hemorrhagic disease virus from China and sequence analysis for the VP60 Gene, Virus Genes., 2007, v.35, no.3, p.745-52. ROS BASCUÑANA C. ЕТ AL., Detection and differentiation of rabbit hemorrhagic disease and European brown hare syndrome viruses by amplification of VP60 genomic sequences from fresh and fixed tissue specimens, J Clin Microbiol., 1997, v.35, no.10, p.2492-5. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN110699489B (en) Real-time fluorescence PCR detection primer probe set, kit and method for African swine fever virus CD2V gene
CN111286559B (en) Primer, probe and kit for detecting African swine fever virus
CN110699490B (en) RAA constant-temperature fluorescence detection primer probe set, kit and method for African swine fever virus CD2V gene
RU2504585C1 (en) Set of oligodesoxyribonycleotide primers and fluorescent-marked probe for identification of rna of human coronavirus associated with severe sharp respiratory syndrome
RU2385943C2 (en) Oligonucleotide primers, method and test system for detecting bluetongue virus genome by polymerase chain reaction in electrophoretic detection of amplification products
Tan et al. Development of a cross-priming isothermal amplification assay based on the glycoprotein B gene for instant and rapid detection of feline herpesvirus type 1
RU2360971C1 (en) Method and test system to detect dna of african swine fever virus by means of specific oligonucleotide primers in polymerase chain reaction
US7700326B2 (en) RT-PCR detection for differential diagnosis of field isolates or lapinized vaccine strain of classical swine fever virus (CSFV) in samples
RU2511440C2 (en) Method of quantitative determination of fixed rabies virus "moskva 3253"
RU2743352C1 (en) Method for differential amplification of vp1 region fragment of enterovirus genome enterovirus a and enterovirus b
RU2416648C1 (en) Oligonucleotide primers, method and test system for identifying genome of rabbit viral hemorrhagic disease by reverse transcription - polymerase chain reaction
KR101236197B1 (en) Differential detection of West nile virus and Japanese encephalitis virus
Abbas et al. Molecular Detection Of Five Mixed Rice Viruses By Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction (RT-PCR)
JP4497846B2 (en) Detection method of human adenovirus
RU2822162C1 (en) Method for genotyping feline calicivirus isolates and strains by phylogenetic analysis using original oligonucleotide primers for highly variable region of orf2-orf3 genes
Kowalczyk et al. Duplex PCR for Detection of Aleutian Disease Virus from Biological and Environmental Samples
RU2731716C1 (en) Kit for differentiating cattle pestiviruses and method for differentiating cattle pestiviruses
RU2822037C1 (en) Method for differentiation of genome of arriah vaccine strain from field isolates of rabies virus by polymerase chain reaction in real time with analysis of peaks of melting temperatures of amplicons and use of asymmetric dye sybr green
RU2822036C1 (en) Method for genotyping isolates and strains of causative agent of canine parvoviral enteritis based on phylogenetic analysis using original oligonucleotide primers for highly variable region of vp2 gene
RU2552795C1 (en) Set of oligonucleotide primers and fluorescence-tagged probe for identification of rna of rift valley fever virus by pcr real time process
RU2740808C1 (en) System of oligonucleotide primers and probe for detecting dna mycoplasma bovis
RU2823779C1 (en) Method for differentiation of vaccine strain "pb-97" from field rabies virus isolates by data of maximum graph of derivative of sigmoid function during amplification of section of n-gene of viral cdna using syto 16 dye
RU2741887C1 (en) Test system for genome detection of a coronavirus infection agent of new type (ncov19) in primates
Ramadan et al. Molecular genetic approach by using the RAPD-PCR technique for detection of genetic variability in non-human isolates of Fasciola
Sharti et al. Development of quantitative real-time RT-PCR assay for detection and viral load determination of Crimean-Congo Hemorrhagic Fever (CCHF) virus

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20161110