RU2360971C1 - Method and test system to detect dna of african swine fever virus by means of specific oligonucleotide primers in polymerase chain reaction - Google Patents
Method and test system to detect dna of african swine fever virus by means of specific oligonucleotide primers in polymerase chain reaction Download PDFInfo
- Publication number
- RU2360971C1 RU2360971C1 RU2007143269/13A RU2007143269A RU2360971C1 RU 2360971 C1 RU2360971 C1 RU 2360971C1 RU 2007143269/13 A RU2007143269/13 A RU 2007143269/13A RU 2007143269 A RU2007143269 A RU 2007143269A RU 2360971 C1 RU2360971 C1 RU 2360971C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- dna
- virus
- swine fever
- test system
- reaction
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной вирусологии, а именно к средствам диагностики.The invention relates to veterinary virology, and in particular to diagnostic tools.
Африканская чума (АЧС) является наиболее опасной болезнью для свиней, способной привести к катастрофическим последствиям для свиноводства любой страны. Клинические признаки и патологоанатомические изменения имеют значительное сходство с симптомами, которые наблюдают при классической чуме свиней, поэтому при лабораторных исследованиях эти болезни всегда необходимо дифференцировать.African plague (ASF) is the most dangerous disease for pigs, which can lead to disastrous consequences for pig production in any country. Clinical signs and pathological changes have a significant similarity with the symptoms that are observed with classical swine fever, therefore, in laboratory studies, these diseases must always be differentiated.
Известен способ выявления вируса классической чумы свиней с помощью специфических олигонуклеотидных праймеров и полимеразной цепной реакции, включающий синтез синтетических олигонуклеотидов - праймеров в консервативной области наибольшего сходства геномов различных штаммов вируса классической чумы свиней, но имеющих наибольшие отличия от нуклеотидных последовательностей РНК штаммов вируса вирусной диареи крупного рогатого скота, затем синтез комплементарной ДНК на матрице вирусной РНК в реакции обратной транскрипции и амплификацию синтезированной комплементарной ДНК методом полимеразной цепной реакции с использованием вышеупомянутых праймеров [1].A known method for detecting the virus of classical swine fever using specific oligonucleotide primers and a polymerase chain reaction, including the synthesis of synthetic oligonucleotides, primers in the conservative region of the greatest similarity of the genomes of different strains of classical swine fever virus, but with the greatest differences from the nucleotide sequences of the RNA strains of the large viral di virus cattle, then the synthesis of complementary DNA on a viral RNA matrix in the reaction of reverse transcription and amplification the synthesis of complementary synthesized DNA by polymerase chain reaction using the aforementioned primers [1].
Наиболее близким аналогом (прототипом) является способ и набор для обнаружения ДНК вируса АЧС методом ПЦР. При этом амплифицируют фрагмент ДНК размером 1144 пар нуклеотидов с праймерами N1 и N3 и фрагмент 562 пары нуклеотидов с праймерами N2 и N3, содержащий сайт для рестриктазы Pst I. Набор включает пластиковые пробирки, содержащие специфические праймеры (N1, N2, N3); фермент Tag-полимеразу; 10-кратный буфер для реакции, смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов; положительный контроль - рекомбинатную плазмиду, содержащую ген белка Vp 72. Недостатком указанного способа и набора является необходимость специальной подготовки биологических проб и фенольно-детергентный метод выделения нуклеиновых кислот, при котором концентрация выхода нуклеиновой кислоты не постоянная и требует последующего ее разведения [2].The closest analogue (prototype) is a method and kit for detecting ASF virus DNA by PCR. In this case, a DNA fragment of 1144 nucleotides with primers N1 and N3 and a fragment of 562 nucleotides with primers N2 and N3 containing the site for Pst I restriction enzyme are amplified. The kit includes plastic tubes containing specific primers (N1, N2, N3); Tag polymerase enzyme; 10x reaction buffer, mixture of deoxynucleotide triphosphates; a positive control is a recombinant plasmid containing the Vp 72 protein gene. The disadvantage of this method and kit is the need for special preparation of biological samples and a phenol-detergent method for nucleic acid isolation, in which the concentration of nucleic acid yield is not constant and requires subsequent dilution [2].
Целью изобретения является разработка более чувствительного и специфичного способа и соответствующей тест-системы для выявления генома вируса АЧС в пробах органов и образцах крови от больных животных.The aim of the invention is to develop a more sensitive and specific method and an appropriate test system for detecting the ASF virus genome in organs and blood samples from sick animals.
Поставленная цель достигается способом для обнаружения ДНК вируса АЧС в пробах органов и образцах крови хронически инфицированных, больных и павших животных и в инфицированной культуре клеток, при котором для постановки ПЦР проводят денатурацию исследуемой ДНК при температуре 94°С, гибридизацию ДНК со специфическими праймерами, комплементарными высококонсервативной области генома вируса АЧС района гена Р30, имеющими следующий нуклеотидный состав:This goal is achieved by a method for detecting ASF virus DNA in samples of organs and blood samples of chronically infected, sick and dead animals, and in an infected cell culture, in which, for PCR, DNA is denatured at 94 ° C, DNA hybridization with specific primers complementary a highly conserved region of the ASF virus genome of the P30 gene region, having the following nucleotide composition:
P30F-5' - aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'P30F-5 '- aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'
P30R - 5' - cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3', с температурой отжига 55°C в течение 10-30 сек с числом циклов амплификации от 30-35, затем проводят оценку результатов реакции без предварительной рестрикции полученного продукта и тест-системой, включающей три набора с пластиковыми флаконами и пробирками:P30R - 5 '- cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3', with an annealing temperature of 55 ° C for 10-30 sec with the number of amplification cycles from 30-35, then the results of the reaction are evaluated without prior restriction the resulting product and a test system that includes three sets with plastic bottles and tubes:
1) набор для выделения нуклеиновых кислот, содержащий нуклеосорбент с отмывочным буфером на основе гуанидинтиоционата;1) a kit for the isolation of nucleic acids containing a nucleosorbent with washing buffer based on guanidine thiocyanate;
2) набор для постановки ПЦР, включающий специфические олигонуклеотидные праймеры, комплементарные высококонсервативной области генома вируса АЧС района гена P30, имеющие следующий нуклеотидный состав:2) a kit for staging PCR, including specific oligonucleotide primers complementary to the highly conserved region of the ASF virus genome of the P30 gene region, having the following nucleotide composition:
P30F-5' - aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'P30F-5 '- aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'
P30R-5' - cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3'P30R-5 '- cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3'
термостабильный фермент Tag-полимеразу, ПЦР-смесь для постановки реакции, положительный контроль;thermostable enzyme Tag-polymerase, PCR mixture for the formulation of the reaction, positive control;
3) набор для проведения электрофореза, содержащий агарозу и буфер для электрофореза с бромистым этидием.3) an electrophoresis kit containing agarose and an electrophoresis buffer with ethidium bromide.
Первый набор позволяет быстро и качественно выделить ДНК вируса АЧС без предварительной подготовки суспензии из органов и выделения форменных элементов из крови.The first set allows you to quickly and accurately isolate ASF virus DNA without first preparing the suspension from the organs and isolating the formed elements from the blood.
При постановке ПЦР во втором наборе производится многократное повторение циклов денатурации исследуемой кДНК при температуре 94°С, гибридизации ДНК со специфическими праймерами при температуре 55°С и синтеза из них комплементарных цепей ДНК с помощью стабильной ДНК-полимеразы при температуре 72°С и одновременная посадка праймеров, при этом исключается использование метилгидроксида ртути. В результате амплификации концентрация синтезированного фрагмента в исследуемой пробе увеличивается в миллионы раз, что позволяет визуально учитывать результаты анализа с помощью электрофореза в агарозном геле (третий набор).When setting up PCR in the second set, repeated cycles of denaturation of the studied cDNA at a temperature of 94 ° C are repeated, DNA hybridization with specific primers at a temperature of 55 ° C and synthesis of complementary DNA chains from them using stable DNA polymerase at a temperature of 72 ° C and simultaneous landing primers, the use of mercury methyl hydroxide is excluded. As a result of amplification, the concentration of the synthesized fragment in the test sample increases millions of times, which allows you to visually take into account the results of the analysis using agarose gel electrophoresis (third set).
Техническим результатом изобретения является повышение степени специфичности и чувствительности, а также сокращение времени проведения диагностической работы в пробах органов и крови от больных животных.The technical result of the invention is to increase the degree of specificity and sensitivity, as well as reducing the time of carrying out diagnostic work in samples of organs and blood from sick animals.
При наличии в исследуемом образце генома вируса АЧС синтезируется фрагмент 374 п.о.In the presence of the ASF virus genome in the test sample, a 374 bp fragment is synthesized.
Установлено, что в процессе выделения происходит «стандартный» выход ДНК, что не требует предварительного многократного разведения нуклеиновой кислоты для постановки ПЦР.It was found that in the process of isolation there occurs a “standard” DNA output, which does not require preliminary multiple dilution of the nucleic acid to perform PCR.
Существенными отличиями заявляемого способа от прототипа является то, что:Significant differences of the proposed method from the prototype is that:
1. Не требуется предварительная подготовка проб. Т.е. на первом этапе метода выделения к биоматериалу добавляется лизирующий буфер (1:10) без предварительного приготовления суспензий из органов. Это влияет на уменьшение контаминации и значительно сокращается время проведения диагностической экспертизы.1. No preliminary sample preparation is required. Those. at the first stage of the isolation method, a lysis buffer (1:10) is added to the biomaterial without preliminary preparation of suspensions from organs. This affects the reduction of contamination and significantly reduces the time of the diagnostic examination.
2. При выделении ДНК вируса фенол заменен на гуанидинтиоционат, обладающий меньшей токсичностью.2. When DNA virus is isolated, phenol is replaced by guanidine thiocyanate, which has less toxicity.
3. В процессе выделения происходит «стандартный» выход ДНК, что не требует его дополнительного разведения перед постановкой ПЦР.3. In the process of isolation, a “standard” DNA output occurs, which does not require its additional dilution before PCR.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.
Тест-система снабжена пластиковыми флаконами и пробирками.The test system is equipped with plastic bottles and test tubes.
Пример 1. Выявление ДНК вируса АЧС, выращенного в культуре клеток (13 вирулентных и авирулентных штаммов) и проб биологического материала, полученного от больных животных.Example 1. Detection of ASF virus DNA grown in cell culture (13 virulent and avirulent strains) and samples of biological material obtained from sick animals.
В качестве отрицательного контроля использовали: вирус классической чумы свиней, вирус болезни Ауески и пробы органов здоровых свиней.The following were used as a negative control: classical swine fever virus, Aujeszky's disease virus, and samples of organs of healthy pigs.
При использовании первого набора тест-системы в образец биологического материала (лимфатические узлы, селезенка, либо пула органов) добавляют (в соотношении 1:10) лизирующий буфер, содержащий гуанидинтиоционат, 1 М TrisHCl, тритон × 100, 0,5 ЭДТА. Смесь в течение 0,5 ч инкубируют при комнатной температуре, добавляют нуклеосорбент для сорбции ДНК, затем проводят отмывку сорбента, отмывочным буфером состоящим из гуанидинтиоционат, 1 М TrisHCl и воды от компонентов разрушенного вируса, после ДНК элюируют с сорбента бидистилированой водой. Выделенную ДНК используют в ПЦР.When using the first set of test systems, a lysis buffer containing guanidine thiocyanate, 1 M TrisHCl, triton × 100, 0.5 EDTA is added to the sample of biological material (lymph nodes, spleen, or organ pool). The mixture is incubated for 0.5 h at room temperature, a nucleosorbent for sorption of DNA is added, then the sorbent is washed with a washing buffer consisting of guanidine thiocyanate, 1 M TrisHCl and water from the components of the destroyed virus, after the DNA is eluted from the sorbent with bidistilled water. Isolated DNA is used in PCR.
При использовании 2-го набора проводят амплификацию участка ДНК (P30) вируса АЧС. Инкубационная смесь конечным объемом 25 мкл содержит: буфер для Tag-полимеразы с 15 mM MgCl2, 2,5 mM каждого dNTP, 10 mM каждого праймера, 5 ед. фермента. Поверх смеси наслаивают 25 мкл минерального масла. Температурный режим проведения ПЦР показан в табл.1When using the 2nd set, amplification of a portion of DNA (P30) of the ASF virus is performed. The incubation mixture with a final volume of 25 μl contains: Tag polymerase buffer with 15 mM MgCl 2 , 2.5 mM each dNTP, 10 mM each primer, 5 units. enzyme. Over the mixture layered 25 μl of mineral oil. The temperature regime of PCR is shown in table 1
Продукты ПЦР анализируют методом электрофореза в 2%-ном агарозном геле в стандартном трис-борном буфере с использованием 3-го набора.PCR products are analyzed by electrophoresis in a 2% agarose gel in standard Tris-boron buffer using the 3rd set.
10 мкл продукта ПЦР смешивают с 2 мкл буфера для нанесения образца и вносят в лунку агарозного геля. Электрофорез проводят при напряжении 10 В/см длины геля до тех пор, пока краситель не пройдет от старта не менее половины геля (15 мин). Результат электрофореза учитывают, просматривая гель в ультрафиолетовом свете с длиной волны 254 нм на приборе «Трансиллюминатор». Результат считается положительным, если продукт ПЦР соответствует размеру фрагмента 374 пар оснований.10 μl of PCR product is mixed with 2 μl of sample application buffer and added to a well of agarose gel. Electrophoresis is carried out at a voltage of 10 V / cm of the gel length until the dye passes from the start of at least half of the gel (15 min). The result of electrophoresis is taken into account when viewing the gel in ultraviolet light with a wavelength of 254 nm on a Transilluminator instrument. The result is considered positive if the PCR product matches the fragment size of 374 base pairs.
С применением предлагаемой тест-системы выявления вирус АЧС детектируется во всех исследованных образцах вируса АЧС, выращенных как в культуре клеток, так и из проб органов.Using the proposed detection test system, ASF virus is detected in all studied ASF virus samples grown both in cell culture and from organ samples.
Пример 2. Определение чувствительности и специфичности ПЦР на основе синтетических праймеров, синтезированных на ген P30Example 2. Determination of the sensitivity and specificity of PCR based on synthetic primers synthesized for the P30 gene
Специфичность метода ПЦР определяют амплификацией ДНК, выделенных из контрольных образцов по размеру синтезированного продукта ПЦР электрофорезом в геле агарозы.The specificity of the PCR method is determined by the amplification of DNA isolated from control samples according to the size of the synthesized PCR product by agarose gel electrophoresis.
Показана высокая специфичность предлагаемого способа при исследовании препаратов ДНК штаммов различных серотипов, отличающихся по вирулентности и способности к гемадсорбции.The high specificity of the proposed method is shown in the study of DNA preparations of strains of various serotypes that differ in virulence and haemadsorption ability.
Оценена пригодность применения разработанного способа для выявления ДНК вируса АЧС в пробах органов инфицированных животных. В опытах по обнаружению генома вируса АЧС были использованы препараты ДНК, выделенные из крови, селезенки, печени, лимфоузлов павших подсвинков, зараженных вирусом АЧС (штаммом Мадейра I серотипа); подсвинков, убитых через 21 день после иммунизации авирулентным штаммом МК-220 III серотипа (табл.2).The suitability of the developed method for detecting ASFV DNA in samples of organs of infected animals was evaluated. In experiments to detect the ASF virus genome, DNA preparations were used that were isolated from blood, spleen, liver, lymph nodes of fallen gilts infected with ASF virus (Madeira strain I serotype); gilts killed 21 days after immunization with the avirulent strain MK-220 of the III serotype (Table 2).
Высокая чувствительность способа позволила сделать вывод, что с помощью указанных праймеров можно выявлять животных с хроническим и бессимптомным течением болезни, когда титр инфекционности не превышает значений 1,5-2,5 lg ГАдЕ50/мл.The high sensitivity of the method allowed us to conclude that using these primers, it is possible to identify animals with a chronic and asymptomatic course of the disease when the infectivity titer does not exceed 1.5-2.5 lg GADE50 / ml.
При использовании тест-системы ДНК-родственных и гетерологичных вирусов не обнаружено. Требования к тест-системе представлены в табл.3.When using the test system, DNA-related and heterologous viruses were not detected. The requirements for the test system are presented in Table 3.
Требования к Тест-системеTable 3
Test System Requirements
В гель вносят маркер молекулярного веса, а оценку проведения реакции осуществляют по размеру продукта ПЦР, при этом результат реакции считается положительным, если продукт ПЦР соответствует размеру 374 пар оснований.A molecular weight marker is added to the gel, and the reaction is evaluated by the size of the PCR product, and the result of the reaction is considered positive if the PCR product corresponds to a size of 374 base pairs.
Таким образом, предлагаемые способ и тест-система позволяют достичь высокого уровня чувствительности с помощью 2-х праймеров вместо 3-х, используемых в стандартных ПЦР. Это позволяет в течение 3-х часов обнаружить 10 частиц в 1 мл инфекционного вируса в различных материалах, включая пробы органов свиней с хроническими и латентными формами течения болезни.Thus, the proposed method and test system can achieve a high level of sensitivity using 2 primers instead of 3 used in standard PCR. This allows for 3 hours to detect 10 particles in 1 ml of the infectious virus in various materials, including samples of pig organs with chronic and latent forms of the disease.
Тест-система для выявления вируса АЧС с помощью ПЦР рассчитана на 50 реакций.The test system for detecting ASFV virus using PCR is designed for 50 reactions.
Источники информацииInformation sources
1. Заявка RU 97103934, Пузырев А.Т., Донченко А.С., Орешкова С.Ф. и др., 1999 г.1. Application RU 97103934, Puzyrev A.T., Donchenko A.S., Oreshkova S.F. et al., 1999
2. Патент RU 2125089, Цыбанова Л.Я., Вишняков И.О., Цыбанов С.Ж., 1999 г.2. Patent RU 2125089, Tsybanova L.Ya., Vishnyakov I.O., Tsybanov S.Zh., 1999
Claims (2)
P30F-5' - aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'
P30R-5' - cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3'
с температурой отжига 55°С в течение 10-30 с с числом циклов амплификации от 30-35, затем проводят оценку результатов реакции методом электрофореза в агарозном геле без предварительной рестрикции полученного продукта.1. The method for detecting DNA of African swine fever virus, including the isolation of DNA from biological material, the polymerase chain reaction is carried out by denaturation of the studied DNA at a temperature of 94 ° C using synthesized primers, virus DNA amplification, evaluation of the reaction by gel electrophoresis in agarose, different the fact that DNA is produced by the method of sorption of nucleic acid using silica gel in the formulation of the polymerase chain reaction, the hybridization of DNA with specific primers, complementary to the highly conserved region of the ASF virus genome of the P30 gene region and not interacting with heterologous viruses having the following nucleotide composition:
P30F-5 '- aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'
P30R-5 '- cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3'
with an annealing temperature of 55 ° C for 10-30 s with the number of amplification cycles from 30-35, then the reaction results are evaluated by agarose gel electrophoresis without preliminary restriction of the obtained product.
P30F-5' - aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'
P30R-5' - cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3'; набор для проведения электрофореза, содержащий агарозу и буфер для электрофореза с бромистым этидием. 2. Test system for the detection of DNA from African swine fever virus, including plastic bottles and tubes, thermostable enzyme Tag polymerase, PCR mixture for the reaction, positive and negative controls, characterized in that it contains three sets: a kit for the isolation of nucleic acids containing a nucleosorbent with a guanidine thiocyanate lysis buffer; PCR kit with specific oligonucleotide primers complementary to the highly conserved region of the ASF virus genome of the P30 gene region according to claim 1, having the following nucleotide composition:
P30F-5 '- aga atg ggg atc cat tct gca tgt gct gtt tga - 3'
P30R-5 '- cta aaa atc cgg atg tag gtg aga tta aag ctt a - 3'; electrophoresis kit containing agarose and electrophoresis buffer with ethidium bromide.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007143269/13A RU2360971C1 (en) | 2007-11-23 | 2007-11-23 | Method and test system to detect dna of african swine fever virus by means of specific oligonucleotide primers in polymerase chain reaction |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007143269/13A RU2360971C1 (en) | 2007-11-23 | 2007-11-23 | Method and test system to detect dna of african swine fever virus by means of specific oligonucleotide primers in polymerase chain reaction |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2360971C1 true RU2360971C1 (en) | 2009-07-10 |
Family
ID=41045741
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2007143269/13A RU2360971C1 (en) | 2007-11-23 | 2007-11-23 | Method and test system to detect dna of african swine fever virus by means of specific oligonucleotide primers in polymerase chain reaction |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2360971C1 (en) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2571855C2 (en) * | 2014-05-12 | 2015-12-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Kit of oligonucleotide primers for generation of library of full-length genes coding immunodominant proteins p17 (d11l), p30 (cp204l), p54 (e183l), p60 (cp530r), p72 (b646l) of african swine fever virus |
RU2603056C2 (en) * | 2015-01-26 | 2016-11-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Российской академии сельскохозяйственных наук, RU | Expression plasmid vector pet32b(+)/asfv/p30e2 for production of recombinant protein, consisting of african swine fever virus protein p30, thioredoxin and polyhistidine sections |
RU2606253C1 (en) * | 2016-02-15 | 2017-01-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии | Oligonucleotide primers and fluorescent probe with inner damper, complementary to the gene section p30 (cp204l) of the african swine fever virus, for use in polymerase chain reaction in real time |
RU2639572C1 (en) * | 2016-10-21 | 2017-12-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for biomaterial preparation to control quality of swine house disinfection from african swine fever virus |
RU2710065C1 (en) * | 2018-12-14 | 2019-12-24 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Synthetic oligonucleotide primers and method for detecting dna of asf virus by loop isothermal amplification |
-
2007
- 2007-11-23 RU RU2007143269/13A patent/RU2360971C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2571855C2 (en) * | 2014-05-12 | 2015-12-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Kit of oligonucleotide primers for generation of library of full-length genes coding immunodominant proteins p17 (d11l), p30 (cp204l), p54 (e183l), p60 (cp530r), p72 (b646l) of african swine fever virus |
RU2603056C2 (en) * | 2015-01-26 | 2016-11-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Российской академии сельскохозяйственных наук, RU | Expression plasmid vector pet32b(+)/asfv/p30e2 for production of recombinant protein, consisting of african swine fever virus protein p30, thioredoxin and polyhistidine sections |
RU2606253C1 (en) * | 2016-02-15 | 2017-01-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии | Oligonucleotide primers and fluorescent probe with inner damper, complementary to the gene section p30 (cp204l) of the african swine fever virus, for use in polymerase chain reaction in real time |
RU2639572C1 (en) * | 2016-10-21 | 2017-12-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for biomaterial preparation to control quality of swine house disinfection from african swine fever virus |
RU2710065C1 (en) * | 2018-12-14 | 2019-12-24 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Synthetic oligonucleotide primers and method for detecting dna of asf virus by loop isothermal amplification |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Bhudevi et al. | Fluorogenic RT–PCR assay (TaqMan) for detection and classification of bovine viral diarrhea virus | |
CN106947838B (en) | African swine fever virus non-structural gene real-time fluorescence LAMP (loop-mediated isothermal amplification) detection primer group, kit and detection method | |
US8097419B2 (en) | Compositions and method for rapid, real-time detection of influenza A virus (H1N1) swine 2009 | |
Wellenberg et al. | Detection of bovine herpesvirus 4 glycoprotein B and thymidine kinase DNA by PCR assays in bovine milk | |
CN111286559B (en) | Primer, probe and kit for detecting African swine fever virus | |
Wang et al. | Multiplex PCR for avian pathogenic mycoplasmas | |
RU2360971C1 (en) | Method and test system to detect dna of african swine fever virus by means of specific oligonucleotide primers in polymerase chain reaction | |
Posuwan et al. | Prevalence of respiratory viruses isolated from dogs in Thailand during 2008-2009 | |
RU2385943C2 (en) | Oligonucleotide primers, method and test system for detecting bluetongue virus genome by polymerase chain reaction in electrophoretic detection of amplification products | |
JP4950656B2 (en) | Nucleic acid detection | |
Tan et al. | Development of a cross-priming isothermal amplification assay based on the glycoprotein B gene for instant and rapid detection of feline herpesvirus type 1 | |
EP2753629B1 (en) | Methods for detecting lyme disease | |
CN110656163A (en) | Double-label report fluorescent multiple pathogen nucleic acid detection method | |
Bohorquez et al. | Efficient detection of African Swine Fever Virus using minimal equipment through a LAMP PCR method | |
RU2457255C2 (en) | Synthetic oligonucleotide primers, method for detecting and differentiating rift valley virus strains by polymerase chain reaction and restriction enzyme digest analysis | |
Orlowska et al. | Comparison of real-time PCR and heminested RT-PCR methods in the detection of rabies virus infection in bats and terrestrial animals | |
Ihira et al. | Loop-mediated isothermal amplification for discriminating between human herpesvirus 6 A and B | |
RU2511440C2 (en) | Method of quantitative determination of fixed rabies virus "moskva 3253" | |
RU2125089C1 (en) | Method and set for detection of african plague pig virus dna by method of polymerase chain reaction | |
Karapınar et al. | Felid herpesvirus-1 infection in Van cats with conjunctivitis | |
RU2378384C2 (en) | Oligonucleotide primers, method and test system for detecting genome of african horse sickness virus by polymerase chain reaction in format of electrophoretic detection of amplification products | |
CN111304342A (en) | PCR kit for identifying Brucella strain S2 vaccine strain and wild strains of other species and use method thereof | |
Chowdhury et al. | Detection of classical swine fever virus by RT-PCR in West Bengal, India | |
RU2732626C1 (en) | System of oligonucleotide primers and probe for detecting dna mycoplasma bovigenitalium | |
RU2822037C1 (en) | Method for differentiation of genome of arriah vaccine strain from field isolates of rabies virus by polymerase chain reaction in real time with analysis of peaks of melting temperatures of amplicons and use of asymmetric dye sybr green |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20161124 |