RU2409658C1 - Посевной мицелий базидиомицета и способ его приготовления - Google Patents
Посевной мицелий базидиомицета и способ его приготовления Download PDFInfo
- Publication number
- RU2409658C1 RU2409658C1 RU2009145751/10A RU2009145751A RU2409658C1 RU 2409658 C1 RU2409658 C1 RU 2409658C1 RU 2009145751/10 A RU2009145751/10 A RU 2009145751/10A RU 2009145751 A RU2009145751 A RU 2009145751A RU 2409658 C1 RU2409658 C1 RU 2409658C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mycelium
- basidiomycete
- water
- medium
- seed
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Mushroom Cultivation (AREA)
Abstract
Группа изобретений относится к биотехнологии. Приготовление посевного материала осуществляют в два этапа, первый из которых - на стерильной агаровой питательной среде, содержащей 5-25 г агар-агара на литр основы, а второй - на стерильной жидкой питательной среде, содержащей источник углерода и азота в количествах, соответственно равных 10-35 и 7-15 г/л воды, и минеральные соли - дигидрофосфат калия и сульфат магния. В качестве жидкой основы используют отвар зерен пшеницы, полученный путем их кипячения в воде, содержащей кукурузный экстракт. Культивирование на первом этапе осуществляют при температуре 22-30°С до полного зарастания поверхности среды мицелием, а на втором - при температуре 24-30°С до максимального образования пеллет. Посевной материал базидиомицета характеризуется тем, что он получен выше оговоренным способом. Изобретение обеспечивает ускорение процесса приготовления посевного мицелия без снижения его жизнеспособности и биосинтетической активности. 2 н. и 14 з.п. ф-лы, 2 табл.
Description
Группа изобретений относится к биотехнологии, в частности к способам приготовления посевного мицелия базидиомицетов, используемых для культивирования базидиомицетов, как в погруженных условиях, так и на поверхности субстратов с целью получения биологически активных веществ из мицелия или плодовых тел базидиомицета.
Известно, что базидиомицеты являются источником биологически активных веществ, в частности, белков, витаминов, незаменимых аминокислот, липидов, полисахаридов и др.
В связи с этим большое внимание уделяется разработке технологий искусственного выращивания (культивирования) базидиомицетов как в погруженных условиях, так и на поверхности различных субстратов.
Образование базидиомицетами ценных стабильных биологически активных веществ зависит от вида используемых базидиомицетов и технологии культивирования, в частности, способа приготовления посевного мицелия.
Известен способ приготовления посевного мицелия базидиомицетов путем их культивирования на стерильной питательной среде, содержащей 20% отвар картофеля, глюкозу или сахарозу в количестве 20 г/л и 15 г агара при 24°С в течение 14 дней (WO 2004/097007, 11.11.2004).
Недостатком описанного способа является длительность процесса приготовления посевного материала.
Известен способ получения посевного мицелия базидиомицетов, предусматривающий приготовление стерильной жидкой питательной среды, содержащей, г/л воды: пшеничную муку - 10-40, картофельный отвар - 50-200 и стимулятор роста, в качестве которого используют суточную культуру бактерий Azospirillum. Приготовленную питательную среду засевают базидиомицетом, культивируют при 26°C в течение 3-х дней, а затем в полученную мицелиальную биомассу вносят суспензию бактерий Azospirillum из расчета 10 мл суспензии на 200 мл среды, и затем осуществляют совместное культивирование базидиомицета и вышеуказанных бактерий в течение 14 дней (RU 2249614 C2, 21.03.2003).
Недостатком описанного способа является длительность процесса приготовления посевного мицелия (17 дней) и его трудоемкость, поскольку необходимо дополнительно готовить питательную среду для бактерий и осуществлять их культивирование и подсев бактерий в среду, используемую для приготовления посевного мицелия.
Известен способ получения зернового посевного мицелия при выращивании плодовых тел съедобного базидиального гриба Pleurotus ostreatus, заключающийся в инокуляции зернового субстрата маточным мицелием, выращенным методом погруженного культивирования на жидких питательных средах (UA 36655 A, 16/04/2001). В способе приведен состав двух жидких питательных сред для выращивания маточного мицелия. Среда 1 содержит (г/л): крахмал кукурузный - 40, кукурузный экстракт - 30, (NH4)2SO4 - 1, KH2PO4 - 0,6, K2HPO4 - 0,6, MgSO4×7 H2O - 0,3, вода водопроводная - до 1 л. Среда 2 содержит (г/л): крахмал кукурузный - 40, кукурузный экстракт - 15, экстракт ячменно-солодовый - 15, (NH4)2SO4 - 2, KH2PO4 - 0,6, K2HPO4 - 0,6, MgSO4×7 H2O - 0,3, вода водопроводная - до 1 л. Процесс приготовления зернового посевного мицелия Pleurotus ostreatus включает выращивание культуры гриба на жидком пивном сусле (4°Б) в стационарных условиях при 24-26°C в течение 7-8 суток, последующий пересев культуры гриба на одну из вышеприведенных питательных жидких сред и культивирование на качалке при 200 об/мин, температуре 24-26°C в течение 3-4 суток, засев полученной погруженной культурой стерильного зернового субстрата и выращивание мицелия при 24-26°C. Полное обрастание зернового субстрата мицелием наступает через 6-8 суток.
Недостатком описанного способа является длительность процесса приготовления посевного мицелия и узкие рамки его применения, т.к. способ предназначен для приготовления посевного мицелия только одного вида базидиомицета и только для процесса получения его плодовых тел.
Задачей заявленного способа является ускорение процесса приготовления посевного мицелия без снижения его жизнеспособности и биосинтетической активности за счет использования разработанных составов питательных сред. Разработанные составы питательных сред являются универсальными для нескольких видов базидиомицетов.
Поставленная задача решается за счет того, что согласно изобретению приготовление посевного мицелия базидиомицета ведут в два этапа, первый из которых осуществляют засевом маточной культуры базидиомицета на стерильную агаровую питательную среду, содержащую жидкую основу и 5-25 г агар-агара на 1 л основы, а второй - на стерильную жидкую питательную среду, содержащую источник углерода и азота в количествах, соответственно равных 10-35 и 7-75 г/л воды, и минеральные соли - дигидрофосфат калия и сульфат магния в количествах, соответственно равных 2,0-3,0 и 0,2-0,4 г/л воды, культивирование на первом этапе осуществляют при температуре 22-30°С до полного зарастания поверхности среды мицелием, а на втором - при температуре 24-30°С до максимального образования пеллет. В качестве жидкой основы сред, применяемых на 1 этапе культивирования, можно использовать водный отвар зерен пшеницы или водный отвар клубней картофеля. Приготовление отвара зерен пшеницы заключается в том, что навеску зерен, взятую из расчета 30-150 г на 1 л воды, следует кипятить в течение 30 минут, взвесь охладить, фильтровать через лавсан или бязь и использовать полученный отвар. Навеску очищенных и нарезанных кубиками 1×1×1 см целесообразно брать из расчета 150-300 г на 1 л воды. Приготовление отвара клубней картофеля можно проводить таким же образом, как приготовление отвара зерен пшеницы. В приготовленные отвары можно вносить кукурузный экстракт в количестве 5-60 г на 1 литр отвара. В отвар клубней картофеля следует добавлять глюкозу в количествах 15-25 г/л. Рекомендуется pH приготовленных сред перед стерилизацией довести до 5,8-6,2.
На втором этапе культивирования в качестве источника углерода в жидкой питательной среде можно использовать вещество, выбранное из группы: глюкоза, сахароза, меласса, растительное масло или их смесь, а в качестве источника азота - соевая мука, пшеничная мука, кукурузная мука, овсяная мука или ржаная мука или их комбинация.
Жидкую питательную среду перед стерилизацией следует выдерживать в течение 8-12 часов при комнатной температуре.
Для активации роста базидиомицета в агаровую и жидкую питательные среды целесообразно вводить арахидоновую кислоту в количествах 1,0-5,0·10-5 г/л жидкой основы среды, используемой на 1 этапе культивирования, или воды (второй этап).
С целью улучшения качества посевного мицелия и сокращения длительности его приготовления в агаровую и жидкую питательные среды перед стерилизацией следует дополнительно вносить сухую измельченную биомассу базидиомицета в количестве 10-30 г/л жидкой основы среды, используемой на первом этапе культивирования, или воды, используемой при приготовлении сред второго этапа культивирования. Дополнительное внесение порошка биомассы базидиомицета можно осуществлять только в агаровую питательную среду или в жидкую питательную среду или в обе питательные среды. В качестве биомассы базидиомицета можно использовать его мицелий или плодовые тела. Биомасса может принадлежать тому же виду базидиомицета, который используют при приготовлении посевного мицелия, или другому виду.
После второго этапа культивирования базидиомицет можно пересевать на свежеприготовленную жидкую питательную среду того же состава и дополнительно культивировать до максимального образования пеллет.
Из базидиальных грибов следует использовать базидиомицет, выбранный из группы Ganoderma lucidum (Curt.:Fr.) P.Karst, Hypsizygus ulmarius (Bulliard:Fr.) Redhead, Trametes versicolor (L.:Fr.) Pilat.
Приготовленный посевной мицелий базидиомицета целесообразно гомогенизировать.
Гомогенизацию готового посевного мицелия можно осуществлять в гомогенизаторе в течение 2-6 минут или в колбах с отбойниками на ротационной качалке в течение 2-10 минут при 200-250 об/мин.
В том случае, когда культивирование базидиомицета на производственной среде осуществляют в биореакторе, гомогенизацию готового посевного материала целесообразно проводить непосредственно в нем в процессе засева производственной среды при включенной мешалке на 350-550 об/мин в течение 0,05-5 мин.
Приготовленный заявляемым способом посевной мицелий базидиомицета сохраняет свою активность при выдерживании при 2-4°C в течение 10-14 суток.
Посевной мицелий базидиомицета, приготовленный по заявленному способу, является вторым самостоятельным объектом группы изобретений.
Технический результат, достигаемый в результате использования предложенных изобретений, заключается в сокращении длительности приготовления посевного мицелия базидиомицетов за счет подбора компонентов питательных сред и условий культивирования базидиомицетов. Использование предложенных изобретений позволяет расширить число видов базидиомицетов, посевной мицелий которых может быть выращен на разработанных составах сред.
Изобретение иллюстрируется нижеприведенными примерами, которые не охватывают весь объем притязаний заявителя, но и не ограничивают его.
Пример 1. Готовили отвар зерен пшеницы кипячением их в воде с последующим отделением жидкой фазы и введением в нее кукурузного экстракта и агара. Состав сред представлен в таблице 1. Затем готовые среды засевали мицелием базидиомицетов, указанных в таблице 1. Базидиомицет Ganoderma lucidum штамм Gl-3 культивировали при температуре 29°C, а базидиомицеты Hypsizygus ulmarius штамм Hu-2, Trametes versicolor штамм Tv-12 - при температуре 24°C.
Базидиомицеты выращивали на скошенных питательных агаровых средах №№1-1, 1-3, 1-4, 1-5, 1-7 в пробирках или на столбиках питательных агаровых сред №№1-2 и 1-6 в пробирках. Полное зарастание сред №№1-1, 1-3, 1-6 происходило за 6,5-8 суток, а сред №№1-2, 1-4, 1-5 и 1-7 - за 4-6 суток.
В таблице 1 представлен состав стерильных питательных агаровых сред на основе отвара зерен пшеницы, используемых на первой стадии приготовления посевного мицелия базидиомицетов.
| Таблица 1. | ||||
| Виды базидиомицетов | Компоненты среды | |||
| Жидкая основа, кол-во зерен пшеницы, г/л воды | Кукурузный экстракт, мл/л отвара | Агар-агар, г/л отвара | ||
| 1-1. | Ganoderma lucidum | 30 | 5 | 20 |
| 1-2. | Ganoderma lucidum | 100 | 30 | 8 |
| 1-3. | Hypsizygus ulmarius | 30 | 10 | 25 |
| 1-4. | Hypsizygus ulmarius | 100 | 60 | 15 |
| 1-5. | Hypsizygus ulmarius | 150 | 20 | 20 |
| 1-6. | Trametes versicolor | 30 | 10 | 8 |
| 1-7. | Trametes versicolor | 100 | 30 | 20 |
Готовили жидкие питательные среды, состав которых представлен в таблице 2, среды №№2-1, 2-2, 2-5, 2-6 выдерживали при комнатной температуре в течение 8 часов, среды №№2-3 и 2-4 - в течение 12 часов, стерилизовали при 1,5 атм в течение 30 минут, охлаждали и засевали вышеприготовленным посевным мицелием.
В таблице 2 представлен состав стерильных жидких питательных сред, используемых на второй стадии процесса приготовления посевного мицелия.
| Таблица 2. | ||||||
| № | Вид базидиомицета | Компоненты среды, г/л воды | ||||
| Источник углерода | Источник азота | KH2PO4 | MgSO4 | Арахидоновая кислота | ||
| 2-1. | Ganoderma lucidum | глюкоза - 20 | соевая мука - 10 | 2,5 | 0,3 | |
| 2-2. | Ganoderma lucidum | подсолнечное масло - 5, меласса - 30 | пшеничная мука - 10 | 2,0 | 0,25 | 1,0·10-5 |
| 2-3. | Hypsizygus ulmarius | соевое масло - 15 | пшеничная мука - 7,5, овсяная мука - 7,5 | 2,5 | 0,3 | 2,0·10-5 |
| 2-4. | Hypsizygus ulmarius | Глюкоза - 20 | соевая мука - 10 | 2,5 | 0,3 | |
| 2-5. | Trametes versicolor | сахароза - 20 | ржаная мука - 7 | 3,0 | 0,4 | 5,0·10-5 |
| 2-6. | Trametes versicolor | меласса - 35 | кукурузная мука - 12 | 2,0 | 0,25 | |
Культивирование мицелия осуществляли при температуре 26°C в колбах на ротационной качалке при 200 об/мин до максимального образования пеллет, диаметр которых составил 2-6 мм.
Образование пеллет Ganoderma lucidum на среде №2-1 прошло за 3,5 суток, на среде №2-2 - за 3 суток, образование пеллет Hypsizygus ulmarius на среде №2-3 - за 2 суток, на среде №2-4 - за 3 суток, образование пеллет Trametes versicolor на среде №2-5 - за 3 суток, на среде №2-6 - за 3,5 суток. По визуальной оценке на средах с арахидоновой кислотой была выше однородность культур базидиомицетов по размеру пеллет и наполненность сред пеллетами.
Пример 2. Приготовление посевного мицелия Ganoderma lucidum.
Готовили стерильную агаровую среду из примера 1 №1-1 и стерильную агаровую среду, отличающуюся от среды №1 тем, что в нее дополнительно была введена арахидоновая кислота в количестве 1,0×10-5 г/л отвара зерен пшеницы. Мицелий Ganoderma lucidum выращивали на скошенных средах в пробирках при 29°C. Полное зарастание поверхности среды №1-1 мицелием прошло за 7 суток, среды с дополнительно внесенной арахидоновой кислотой - за 5,5 суток. При этом более интенсивное развитие воздушного мицелия было отмечено на среде с арахидоновой кислотой.
Выращенным на среде с арахидоновой кислотой мицелием Ganoderma lucidum засевали приготовленную стерильную жидкую питательную среду №2-2 из примера 1. Культивирование на жидкой питательной среде проводили на ротационной качалке при 200 об/мин и температуре 29°C. Образование пеллет прошло за 2 суток.
Пример 3. Приготовление посевного мицелия Trametes versicolor. Готовили стерильную агаровую среду, содержащую (г/л жидкой основы среды):
Кукурузный экстракт - 5 г,
Глюкоза - 20,
Агар-агар - 25,
Жидкая основа среды - до 1 литра.
В качестве жидкой основы среды использовали отвар клубней картофеля, приготовленный из расчета 150 г клубней на 1 л воды.
Кроме того, готовили стерильную агаровую среду, отличающуюся от вышеприведенной тем, что в нее был дополнительно перед стерилизацией внесен порошок сухого измельченного мицелия Trametes versicolor в количестве 10 г/л жидкой основы среды. Культивирование проводили при 26°C. Зарастание мицелием Trametes versicolor поверхности среды, не содержащей порошок биомассы базидиомицета, прошло за 7 суток, среды с дополнительно внесенным порошком мицелия Trametes versicolor - за 6 суток. По визуальной оценке воздушный мицелий базидиомицета был интенсивнее развит на среде, содержащей порошок мицелия. Мицелием Trametes versicolor, выращенным на агаровой среде с порошком мицелия базидиомицета, были засеяны колбы со стерильной питательной жидкой средой, содержащей (г/л воды):
Глюкоза - 22,
Соевая мука - 10,
Дигидрофосфат калия - 2,5,
Сульфат магния - 0,25,
Вода - до 1 литра.
Культивирование проводили на ротационной качалке при 180 об/мин при 26°C в течение 3 суток. Полученный посевной мицелий использовали при получении водорастворимых полисахаридов мицелия. Для этого приготовленным посевным мицелием засевали колбы со стерильной производственной средой, содержащей (г/л воды):
Глюкоза - 20,
Пептон - 10,
Дигидрофосфат калия - 2,0,
Сульфат магния - 0,2,
Вода - до 1 литра.
Посевной мицелий вносили в количестве 5%. Культивирование проводили на ротационной качалке при 180 об/мин при 26°C в течение 4 суток. По окончании процесса выращивания мицелий отделяли фильтрованием, высушивали при 60°C, измельчали. Содержание водорастворимых полисахаридов в воздушно-сухом мицелии Trametes versicolor, определенное с использованием фенолсернокислотного метода, составило 24%.
Пример 4. Получение средства с антибиотической активностью.
Мицелием Ganoderma lucidum, выращенным по примеру 1 на агаровой среде №1-2, засевали жидкую питательную среду №2-1 из примера 1, в которую перед стерилизацией вносили сухой порошок плодовых тел Pleurotus ostreatus в количестве 30 г/л воды. Выращивание проводили в колбах на ротационной качалке при 200 об/мин в течение 2 суток. Полученным посевным мицелием инокулировали стерильную производственную среду, содержащую (в г/л воды):
Сахароза - 20,
Пептон - 10,
Дигидрофосфат калия - 2,5,
Сульфат магния - 0,3,
Вода - до 1 литра.
Посевной мицелий вносили в количестве 2%. Культивирование осуществляли в биореакторе при 200 оборотах мешалки в минуту, температуре 26°C в течение 3 суток. По окончании процесса выращивания культуральную жидкость отделяли от мицелия фильтрованием и экстрагировали этилацетатом при соотношении объемов 1:2. Полученный экстракт отделяли от водной фазы и высушивали на вакуумном испарителе до сухого остатка. Сухой остаток растворяли в этаноле таким образом, чтобы сконцентрировать экстракт в 50 раз. Полученным концентратом пропитывали бумажные диски, высушивали их и помещали на газон тест-объекта в чашки Петри. В качестве тест-объектов использовали грамположительные и грамотрицательные бактерии, дрожжи и мицелиальные грибы. Полученное средство обладало антибиотической активностью в отношении Bacillus subtilis, Stahpylicoccus aureus, Micrococcus luteus, Comamonas terrigena, Pseudomonas aeuruginosa, Candida albicans, Aspergillus niger, Fusarium bulbigenum.
Пример 5. Получение мицелия Hypsizygus ulmarius с высоким содержанием липидов.
Готовили посевной мицелий Hypsizygus ulmarius, используя на первой стадии стерильную среду, содержащую (г/л жидкой основы среды):
Кукурузный экстракт - 60,
Глюкоза - 15,
Порошок мицелия Hypsizygus ulmarius - 15,
Агар-агар - 5,
Жидкая основа среды - до 1 литра.
В качестве жидкой основы среды использовали отвар клубней картофеля, приготовленный из расчета 300 г клубней на 1 л воды.
Второй этап получения посевного мицелия Hypsizygus ulmarius проводили на жидкой питательной среде, содержащей (г/л воды):
Глюкоза - 10,
Соевая мука - 10,
Кукурузная мука - 60,
Порошок плодовых тел Pleurotus ostreatus - 10,
Дигидрофосфат калия - 2,5,
Сульфат магния - 0,3,
Вода - до 1 литра.
Выращивание проводили в колбах на ротационной качалке при 180 об/мин, температуре 24°С в течение 2 суток. Приготовленный посевной мицелий Hypsizygus ulmarius в количестве 5% вносили в производственную среду, содержащую (г/л воды):
Глюкоза - 20,
Пептон - 15,
Дигидрофосфат калия - 2,5,
Сульфат магния - 0,3,
Вода - до 1 литра.
Культивирование осуществляли в колбах на ротационной качалке при 180 об/мин, температуре 24°С в течение 3 суток. По окончании процесса выращивания мицелий отделяли от культуральной жидкости фильтрованием, сушили при 50°C и измельчали. Определение общего содержания липидов в мицелии Hypsizygus ulmarius проводили согласно ГОСТ 28178-89, оно составило 48%.
Пример 6. Приготовленный по примеру 1 с использованием питательных сред №№1-1 и 2-2 посевной мицелий Ganoderma lucidum вновь пересевали на свежеприготовленную питательную среду №2-2 в биореактор. В процессе засева свежеприготовленной среды осуществляли гомогенизацию посевного мицелия путем включения мешалки на 350 об/мин в течение 5 минут. Культивирование базидиомицета осуществляли при температуре 26°C с подачей воздуха 1,5 объема / объем среды в минуту. Образование пеллет в биореакторе прошло за 2 суток. Полученный посевной мицелий был использован как для процесса получения биологически активных веществ в погруженных условиях, так и для выращивания плодовых тел на твердофазном субстрате.
Пример 7. Получение противоопухолевого средства.
Готовли 300 л производственной питательной среды для биореактора, содержащей 22 г/л смесь растительных масел (подсолнечное и соевое в соотношении 4:1) и соевую муку в количестве 26 г/л, дигидрофосфат калия - 2,0 г/л и сульфат магния - 0,2 г/л. Среду стерилизовали, охлаждали.
Посевной мицелий, приготовленный по примеру 6, гомогенизировали в процессе засева производственной среды при включенной мешалке на 500 об/мин в течение 1 мин, затем скорость мешалки устанавливали 200 об/мин. Культивирование осуществляли при температуре 28°C и подаче воздуха 1,5 объема/объем среды в минуту в течение 3 суток. Выход воздушно-сухой биомассы составил 25 г/л. Из погруженной культуры отделяли мицелий фильтрованием, выделяли из него полисахаридную фракцию общепринятым методом. Определяли противоопухолевую активность на взрослых самцах мышей-гибридов (C57B1/6×6DBA/2)F1 с перевиваемой солидной T-клеточной лимфомой Р388. Лечение начинали через 48 ч после прививки опухоли. Полисахаридную фракцию вводили перорально с помощью внутригастрального зонда ежедневно 1 раз в сутки в дозе 2 мк/кг в течение 14 суток. Массу опухоли рассчитывали по формуле M (мг)=(а×b×c)/2, где М - расчетная масса опухоли, a, b, c - 3 наибольших взаимоперпедикулярных диаметра опухолевого узла в мм. Торможение роста опухоли (ТРО) рассчитывали по формуле: ТРО (%)=(Мк-Мо)/(Мк)×100, где Мк и Мо - средняя расчетная масса опухоли в контроле и опыте соответственно.
Торможение роста опухоли на 14 сутки составило 74%.
Пример 8. Получение плодовых тел Hypsizygus ulmarius на субстрате с использованием посевного мицелия, приготовленного по примеру 1 на средах №№1-5 и 2-3.
Готовили субстрат для выращивания Hypsizygus ulmarius, содержащий смесь, состоящую из опилок, измельченной соломы и бланшированного зерна в соотношении 1:2:0,5 и мела в количестве 5% от субстрата. Субстрат пастеризовали. Относительная влажность пастеризованного субстрата составила 65%.
Приготовленный по примеру 1 на средах №№1-5 и 2-3 посевной мицелий Hypsizygus ulmarius гомогенизировали в гомогенизаторе в течение 3 минут и равномерно засевали субстрат гомогенизированным посевным мицелием в количестве 1% от массы субстрата.
Засеянный субстрат фасовали по 10 кг в полиэтиленовые пакеты диаметром 30 см. Пакеты инкубировали в темноте при 24°C до полного зарастания субстрата мицелием. Этот процесс занял 9 суток. Затем на пакетах делали отверстия и изменяли условия микроклимата. Инкубирование осуществляли при 14-16°C, освещении и вентиляции до образования плодовых тел. Образование плодовых тел проходило в три волны. Урожай плодовых тел составил 35% от массы сырого субстрата. Таким образом, использование посевного мицелия, приготовленного заявленным способом, обеспечило высокий урожай плодовых тел при сжатых сроках его получения.
Пример 9. Получение биомассы Trametes versicolor, обладающей антиоксидантными свойствами.
Приготовленный посевной мицелий Trametes versicolor по примеру 1 на средах №№1-6 и 2-5 гомогенизировали в колбах с отбойниками на ротационной качалке при 220 об/мин в течение 7 мин. Гомогенизированный мицелий вносили в количестве 5% в стерильную приготовленную производственную питательную среду следующего состава (г/л):
Глюкоза - 20,
Пептон - 10,
Гидрофосфат калия - 1,
Сульфат магния - 0,5,
Хлорид калия - 0,5
Сульфат железа - 0,01,
Вода - до 1 л.
Культивирование осуществляли в колбах на ротационной качалке при 200 об/мин, температуре 24°C в течение 4 суток. По окончании процесса культивирования биомассу отделяли от культуральной жидкости фильтрованием, сушили при температуре 50°C, измельчали и экстрагировали 90% этанолом в соотношении 1 г порошка биомассы на 15 мл экстрагента в течение 24 ч. Жидкий экстракт отделяли центрифугированием и определяли его антиоксидантные свойства кулонометрическим способом. Антиоксидантная емкость экстракта в пересчете на кверцетин составила 201 мг/мл экстракта.
Пример 10. Получение водорастворимых полисахаридов мицелия Ganoderma lucidum.
Приготовленным по примеру 2 посевным мицелием Ganoderma lucidum засевали стерильную питательную производственную среду следующего состава (г/л):
Сахароза - 20,
Пептон - 10,
Дигидрофосфат калия - 3,0,
Сульфат магния - 0,3,
Вода до 1 л.
Посевной мицелий вносили в производственную среду в количестве 10%. Культивирование на производственной среде осуществляли в биореакторе с рабочим объемом 7 л при 26°C при 200 оборотах мешалки в минуту и подаче воздуха 1.5 объема/объем среды в минуту в течение 3,5 суток. По окончании процесса культивирования мицелий отделяли от культуральной жидкости фильтрованием, сушили при 60°C и измельчали. Содержание водорастворимых полисахаридов определяли фенолсернокислотным методом. Согласно полученным результатам мицелий Ganoderma lucidum содержал 25,2% водорастворимых полисахаридов.
Таким образом, данное изобретение позволяет сократить длительность приготовления посевного мицелия и получить жизнеспособный посевной мицелий, который, как показано, может быть использован как для погруженного культивирования, так и для твердофазного. Использование посевного мицелия для дальнейшего твердофазного культивирования позволяет увеличить урожайность плодовых тел, а для погруженного - увеличить выход и эффективность биологически активных соединений.
Claims (16)
1. Способ приготовления посевного мицелия базидиомицета, характеризующийся тем, что процесс ведут в два этапа, первый из которых осуществляют засевом маточной культуры базидиомицета на стерильную агаровую питательную среду, содержащую жидкую основу и 5-25 г агар-агара на 1 литр основы, а второй - на стерильную жидкую питательную среду, содержащую источник углерода и азота в количествах, соответственно равных 10-35 и 7-75 г/л воды, и минеральные соли - дигидрофосфат калия и сульфат магния в количествах, соответственно равных 2,0-3,0 и 0,2-0,4 г/л воды, культивирование на первом этапе осуществляют при температуре 22-30°С до полного зарастания поверхности среды мицелием, а на втором - при температуре 24-30°С до максимального образования пеллет.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве жидкой основы используют отвар зерен пшеницы, взятых в количестве 30-150 г на 1 литр воды, полученный путем их кипячения в воде и содержащий 5-60 г кукурузного экстракта на 1 литр отвара.
3. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве жидкой основы используют отвар клубней картофеля, взятых в количестве 150-300 г клубней на 1 литр воды, полученный путем их кипячения в воде и содержащий кукурузный экстракт и глюкозу в количествах, соответственно равных 5-60 и 15-25 г на 1 литр отвара.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что на втором этапе культивирования в среду в качестве источника углерода вводят вещество, выбранное из группы: глюкоза, сахароза, меласса, растительное масло, а в качестве источника азота - соевая мука, пшеничная мука, кукурузная мука, овсяная мука или ржаная мука, или их комбинация.
5. Способ по п.1, отличающийся тем, что жидкую питательную среду перед стерилизацией выдерживают в течение 8-12 ч при комнатной температуре.
6. Способ по п.1, отличающийся тем, что в питательные среды, используемые на первом и втором этапах культивирования перед стерилизацией, вводят арахидоновую кислоту в количествах 1,0-5,0·10-5 г/л отвара зерен пшеницы или воды.
7. Способ по п.1, отличающийся тем, что перед стерилизацией в агаровую среду дополнительно вносят сухую измельченную биомассу базидиомицета в количестве 10-30 г/л отвара зерен пшеницы.
8. Способ по п.1, отличающийся тем, что перед стерилизацией в жидкую питательную среду дополнительно вносят сухую измельченную биомассу базидиомицета в количестве 10-30 г/л воды.
9. Способ по п.1, отличающийся тем, что на первом и втором этапах приготовления посевного мицелия в процессе приготовления каждой из сред в них перед стерилизацией дополнительно вносят сухую измельченную биомассу базидиомицета в количестве 10-30 г/л среды.
10. Способ по любому из пп.8, 9 и 10, отличающийся тем, что в качестве биомассы базидиомицета используют мицелий или плодовые тела вида базидиомицета, выращиваемого при приготовлении посевного мицелия, или другого вида.
11. Способ по п.1, отличающийся тем, что после второго этапа культивирования базидиомицет пересевают на свежеприготовленную жидкую питательную среду того же состава и дополнительно культивируют до максимального образования пеллет.
12. Способ по п.1, отличающийся тем, что из базидиомицетов используют базидиомицет, выбранный из группы Ganoderma lucidum (Curt.:Fr.) P.Karst, Hypsizygus ulmarius (Bulliard:Fr.) Redhead, Trametes versicolor (L.:Fr.) Pilat.
13. Способ по п.1, отличающийся тем, что приготовленный посевной мицелий базидиомицета гомогенизируют.
14. Способ по п.13, отличающийся тем, что гомогенизацию готового посевного мицелия осуществляют в гомогенизаторе в течение 2-6 мин или в колбах с отбойниками на ротационной качалке в течение 2-10 мин при 200-250 об/мин.
15. Способ по п.12, отличающийся тем, что гомогенизацию готового посевного материала осуществляют в биореакторе при включенной мешалке на 350-550 об/мин, в течение 0,05-5 мин.
16. Посевной мицелий базидиомицета, характеризующийся тем, что он приготовлен по любому из пп.1-15.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009145751/10A RU2409658C1 (ru) | 2009-12-10 | 2009-12-10 | Посевной мицелий базидиомицета и способ его приготовления |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009145751/10A RU2409658C1 (ru) | 2009-12-10 | 2009-12-10 | Посевной мицелий базидиомицета и способ его приготовления |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2409658C1 true RU2409658C1 (ru) | 2011-01-20 |
Family
ID=46307669
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2009145751/10A RU2409658C1 (ru) | 2009-12-10 | 2009-12-10 | Посевной мицелий базидиомицета и способ его приготовления |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2409658C1 (ru) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2499040C2 (ru) * | 2011-07-15 | 2013-11-20 | Федеральное государственное образовательное бюджетное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный университет нефти и газа имени И.М. Губкина" | Способ получения средства, обладающего противоопухолевой активностью |
| RU2498558C2 (ru) * | 2011-12-22 | 2013-11-20 | Общество с ограниченной ответственностью "ОВЛП" | Способ получения жидкого мицелия для использования в обогащении белком кормов для животных |
| RU2692636C1 (ru) * | 2017-12-29 | 2019-06-25 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Государственный аграрный университет Северного Зауралья" (ФГБОУ ВО ГАУ Северного Зауралья) | Способ приготовления питательной среды для выращивания чистой культуры мицелия вешенки устричной (Pleurotus ostreatus) |
| CN112831086A (zh) * | 2021-01-18 | 2021-05-25 | 刘永昶 | 一种用于液体发酵培养的专用固体菌种制备方法及其应用 |
| CN113367026A (zh) * | 2021-05-25 | 2021-09-10 | 贵州省生物研究所 | 一种鲜艳乳菇菌种培养基及菌种培养方法 |
| CN114621876A (zh) * | 2021-04-30 | 2022-06-14 | 宝丰县弘亚食用菌科技有限公司 | 一种大球盖菇菌种的制备方法 |
| RU2787269C1 (ru) * | 2021-07-26 | 2023-01-09 | Федеральный исследовательский центр "Пущинский научный центр биологических исследований Российской академии наук" (ФИЦ ПНЦБИ РАН) | Способ получения грибных экзополисахаридов |
-
2009
- 2009-12-10 RU RU2009145751/10A patent/RU2409658C1/ru active IP Right Revival
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2499040C2 (ru) * | 2011-07-15 | 2013-11-20 | Федеральное государственное образовательное бюджетное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный университет нефти и газа имени И.М. Губкина" | Способ получения средства, обладающего противоопухолевой активностью |
| RU2498558C2 (ru) * | 2011-12-22 | 2013-11-20 | Общество с ограниченной ответственностью "ОВЛП" | Способ получения жидкого мицелия для использования в обогащении белком кормов для животных |
| RU2692636C1 (ru) * | 2017-12-29 | 2019-06-25 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Государственный аграрный университет Северного Зауралья" (ФГБОУ ВО ГАУ Северного Зауралья) | Способ приготовления питательной среды для выращивания чистой культуры мицелия вешенки устричной (Pleurotus ostreatus) |
| CN112831086A (zh) * | 2021-01-18 | 2021-05-25 | 刘永昶 | 一种用于液体发酵培养的专用固体菌种制备方法及其应用 |
| CN114621876A (zh) * | 2021-04-30 | 2022-06-14 | 宝丰县弘亚食用菌科技有限公司 | 一种大球盖菇菌种的制备方法 |
| CN113367026A (zh) * | 2021-05-25 | 2021-09-10 | 贵州省生物研究所 | 一种鲜艳乳菇菌种培养基及菌种培养方法 |
| CN113367026B (zh) * | 2021-05-25 | 2023-09-22 | 贵州省生物研究所 | 一种鲜艳乳菇菌种培养基及菌种培养方法 |
| RU2787269C1 (ru) * | 2021-07-26 | 2023-01-09 | Федеральный исследовательский центр "Пущинский научный центр биологических исследований Российской академии наук" (ФИЦ ПНЦБИ РАН) | Способ получения грибных экзополисахаридов |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2409658C1 (ru) | Посевной мицелий базидиомицета и способ его приготовления | |
| Hiroko Hassegawa et al. | Growth and antibacterial activity of Lentinula edodes in liquid media supplemented with agricultural wastes | |
| RU2313941C2 (ru) | Препарат для защиты растений от возбудителей болезней сельскохозяйственных культур и винограда с ростстимулирующим эффектом, способ получения этого препарата и штаммы для его осуществления | |
| CN110184201B (zh) | 一种真姬菇菌株及其选育方法 | |
| RU2626543C2 (ru) | Штамм бактерий Paenibacillus mucilaginosus, способ стимуляции роста и защиты растений от болезней и применение штамма бактерий Paenibacillus mucilaginosus в качестве удобрения и агента биологического контроля (противопатогенного средства) в профилактике и/или лечении заболевания растений | |
| CN108277177B (zh) | 细黄链霉菌固体发酵培养基、制备方法及其发酵方法、发酵产物、生防产品和应用 | |
| KR100823541B1 (ko) | 꽃송이버섯 재배방법 | |
| RU2430155C1 (ru) | Посевной мицелий базидиомицета и способ его приготовления | |
| WO2015053285A1 (ja) | 微生物を植菌してなる種菌及びそれを使用する抗生物質の生産方法 | |
| KR101750286B1 (ko) | 진딧물 방제용 조성물 및 그 방제 방법 | |
| JPS5824504A (ja) | 植物にゲルマニウムを資化吸収せしめる方法 | |
| CN101861796B (zh) | 一种利用有色稻米发酵废糟培养豹斑毒鹅膏的方法 | |
| RU2625967C2 (ru) | Штамм бактерий Beijerinckia fluminensis Bf 2806, его применение в качестве удобрения и агента биологического контроля в профилактике и/или лечении заболеваний растений и способ стимуляции роста и защиты растений от болезней | |
| CN111406795B (zh) | 一种黄盖小脆柄菇代谢物在制备黄曲霉菌抑菌剂中的应用 | |
| KR101750288B1 (ko) | 귤응애 방제용 조성물 및 그 방제 방법 | |
| KR20150125199A (ko) | 쌀눈 배지를 이용한 눈꽃동충하초 액체배양물을 함유한 기능성 음료 및 그 제조방법 | |
| RU2189395C2 (ru) | Способ получения белковой биомассы гриба | |
| RU2289957C1 (ru) | Способ получения биологически активного продукта гепатопротекторного действия | |
| RU2291620C1 (ru) | Способ стимуляции роста и защиты растений от болезней | |
| CN110387334A (zh) | 一种快速培养牛樟芝菌丝体的方法 | |
| RU2732832C1 (ru) | Культивирование посевного мицелия гриба Pleurotus ostreatus (вешенки обыкновенной) c использованием сырой пивной дробины - отхода пивоваренной промышленности | |
| JP5694708B2 (ja) | Ａ−８７７７４化合物又はその塩、それらの製法及びそれらを有効成分として含有する農薬 | |
| CN113151002B (zh) | 一种平菇木霉及其应用 | |
| JPH01291726A (ja) | きのこの人工栽培方法 | |
| Bilay et al. | Influence of thermophilic fungi Humicola insolens on the growth of Agaricus brasiliensis (A. blazei). |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20111211 |
|
| NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20130127 |
|
| QB4A | Licence on use of patent |
Free format text: SUBSEQUENT PLEDGE Effective date: 20151019 Free format text: PLEDGE Effective date: 20151019 |
|
| QC41 | Official registration of the termination of the licence agreement or other agreements on the disposal of an exclusive right |
Free format text: SUBSEQUENT PLEDGE FORMERLY AGREED ON 20151019 Effective date: 20160311 Free format text: PLEDGE FORMERLY AGREED ON 20151019 Effective date: 20160311 |
|
| PD4A | Correction of name of patent owner | ||
| PC41 | Official registration of the transfer of exclusive right |
Effective date: 20190710 |
|
| PD4A | Correction of name of patent owner | ||
| PC41 | Official registration of the transfer of exclusive right |
Effective date: 20210628 |