RU2408083C1 - Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов - Google Patents

Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов Download PDF

Info

Publication number
RU2408083C1
RU2408083C1 RU2009124328/14A RU2009124328A RU2408083C1 RU 2408083 C1 RU2408083 C1 RU 2408083C1 RU 2009124328/14 A RU2009124328/14 A RU 2009124328/14A RU 2009124328 A RU2009124328 A RU 2009124328A RU 2408083 C1 RU2408083 C1 RU 2408083C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
retina
growth factor
dose
rabbits
mcg
Prior art date
Application number
RU2009124328/14A
Other languages
English (en)
Inventor
Владимир Владимирович Нероев (RU)
Владимир Владимирович Нероев
Ольга Ивановна Сарыгина (RU)
Ольга Ивановна Сарыгина
Оксана Александровна Левкина (RU)
Оксана Александровна Левкина
Инна Петровна Хорошилова-Маслова (RU)
Инна Петровна Хорошилова-Маслова
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение "МОСКОВСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ИМЕНИ ГЕЛЬМГОЛЬЦА ФЕДЕРАЛЬНОГО АГЕНТСТВА ПО ВЫСОКОТЕХНОЛОГИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение "МОСКОВСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ИМЕНИ ГЕЛЬМГОЛЬЦА ФЕДЕРАЛЬНОГО АГЕНТСТВА ПО ВЫСОКОТЕХНОЛОГИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ" filed Critical Федеральное государственное учреждение "МОСКОВСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ИМЕНИ ГЕЛЬМГОЛЬЦА ФЕДЕРАЛЬНОГО АГЕНТСТВА ПО ВЫСОКОТЕХНОЛОГИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ"
Priority to RU2009124328/14A priority Critical patent/RU2408083C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2408083C1 publication Critical patent/RU2408083C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Изобретение относится к офтальмологии и предназначено для моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва. Для этого опытным животным - кроликам - проводят интравитреальное введение водного раствора рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста в объеме 0,05-0,1 мл. Дозу указанного средства вводят дробно. На 1 и 3 сутки эксперимента доза составляет 3 мкг, на 7 и 11 сутки - 1,5 мкг, на 15 сутки - 1,0 мкг и на 24 сутки - 5,0 мкг. Способ, являясь технически доступным и легко воспроизводимым, обеспечивает последовательность развития изменений на глазном дне при четкой зависимости от вводимой дозы, что позволяет проследить все этапы патологического процесса, приводящего к новообразованию сосудов заднего отдела глаза. 9 ил.

Description

Предлагаемое изобретение относится к офтальмологии и предназначено для моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов. Полученная модель может быть использована для оценки влияния терапевтических агентов и лазерного излучения на эволюцию новообразованных сосудов заднего отдела глаза в эксперименте.
Уровень техники.
Ближайшим аналогом предлагаемого изобретения является способ того же назначения, включающий имплантацию в стекловидное тело кроликов полимерного импланта, содержащего определенное количество рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста (Alikacem N., Yoshizawa Т., Nelson К. D., et al. Quantitative MR imaging study intravitreal sustained release of VEGF in rabbits. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. - 2000. - Vol.41, №6. - P.1561-1569).
Полимерные импланты изготовлены из биодеструктирующегося сополимера полилактидгликолида, состоящего на 50% из L-лактида и 50% гликолида. В их структуру включен рекомбинантный человеческий сосудистый эндотелиальный фактор роста. Полимерные импланты получали путем растворения 0,31 г полилактидгликолида в 1,2 мл метилена хлорида. 230 мкг сосудистого эндотелиального фактора роста растворяли в 1,0 мл солевого раствора, содержащего 27,9 мг бычьего сывороточного альбумина и 61 мг поливинилалкоголя. Далее эти два раствора смешивали, подвергали эмульгированию в течение 2 минут и быстро замораживали. Замороженную эмульсию лиофилизировали в течение 24 часов для получения похожей на губку полимерной структуры. Полученный материал спрессовывали в «таблетки» весом 20 мг, содержащие 14,9 мкг VEGF и 1,8 мг бычьего сывороточного альбумина.
Эти таблетки имплантировали в стекловидное тело опытных животных (кроликов) в условиях операционной, под наркозом. Проводили разрез оболочек глаза в области плоской части цилиарного тела, через сформированную хирургическую склеротомию интравитреально вводили полимерный имплант, фиксированный швом к склере. Наблюдение за состоянием сосудов глазного дна опытных животных осуществляли с помощью офтальмоскопии, цветного фотографирования, флюоресцентной ангиографии, а также магнитно-резонансной томографии с использованием контрастного вещества. Перед интравитреальной имплантацией полимерных таблеток опытным животным в эксперименте in vitro была изучена динамика высвобождения действующего вещества (сосудистого эндотелиального фактора роста) из полимерного носителя. Данная модель позволила оценить влияние сосудистого эндотелиального фактора роста на состояние ретинальных сосудов кроликов, зафиксировать сроки нарушения проницаемости сосудов сетчатки и появления новообразованных сосудов в заднем отделе глаза, а также ориентировочно сопоставить появление подобных патологических изменений с определенной дозой выделившегося в стекловидное тело сосудистого эндотелиального фактора роста (по данным исследования in vitro).
Недостатками данного способа индукции роста новообразованных сосудов сетчатки и зрительного нерва являются: достаточно трудоемкий метод изготовления полимерных имплантов, «нагруженных» действующим веществом (сосудистым эндотелиальным фактором роста), необходимость проведения хирургической операции по имплантации «таблеток» в стекловидное тело опытных животных, невозможность прерывания патологического процесса на отдельных стадиях его развития без повторной операции по извлечению полимерного импланта из витреальной полости кроликов.
Раскрытие изобретения.
Задачей изобретения является разработка усовершенствованного способа моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов.
На настоящий момент накоплено немалое количество экспериментальных данных, подтверждающих проангиогенные свойства сосудистого эндотелиального фактора роста и его влияние на проницаемость стенки сосудов. In vivo ростовой фактор повышает проницаемость посткапиллярных венул и капилляров, вызывая фенестрацию эндотелиального слоя при введении в кожу или в мышечную ткань. Доказано, что сосудистый эндотелиальный фактор роста способен повышать проницаемость сосудистой стенки в 50000 раз активнее гистамина [Senger D.R., Connoly D., Van De Water L. et al. Purification and NH2-terminal amino acid sequence of guinea pig tumor secreted VPF // Cancer Res. - 1990. - Vol.50, №6. - P.1774-1778]. Ростовой фактор проявляет свойства митогена в культуре клеток эндотелия, стимулирует их миграцию и образование структур, подобных сосудам, так называемый «ангиогенез in vitro». Сосудистый эндотелиальный фактор роста также активирует синтез коллагеназы, тканевого активатора плазминогена и рецепторов к урокиназе в эндотелиальных клетках. Коллагеназа и тканевый активатор плазминогена являются протеазами, которые облегчают миграцию клеток эндотелия через интерстиций или фибринозный экссудат в процессе новообразования сосудов [Schlingemann R.О., van Hinsberg V.W. Role of vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor in eye disease // Br. J. Ophthalmol. - 1997. - Vol.81, №6. - P.501-512]. Эти результаты экспериментальных исследований послужили предпосылкой для разработки предлагаемого способа индукции роста новообразованных сосудов заднего отдела глаза у кроликов.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является последовательное нарушение проницаемости ретинальных сосудов и индукция роста новообразованных сосудов сетчатки и зрительного нерва у кроликов с возможностью анализа патологических изменений во времени и оценкой нарушения проницаемости стенки кровеносных сосудов, стимуляцией миграции и пролиферации клеток эндотелия с образованием «порочных» новообразованных сосудов.
Технический результат достигается за счет шестикратного введения в стекловидное тело опытных животных водного раствора рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста в определенные сроки от начала эксперимента и с использованием определенных доз, а также упрощения способа с повышением экономической эффективности.
В отличие от ближайшего аналога, предлагаемый нами способ не требует изготовления специальных полимерных имплантов, содержащих сосудистый эндотелиальный фактор роста, интравитреальное введение осуществляется инъекционной иглой, что не требует формирования склеротомии с последующей шовной герметизацией разреза, а дробность введения ростового фактора обеспечивает возможность выявления четкой связи между развитием тех или иных изменений на глазном дне опытных животных и дозой препарата, а также прерывания патологического процесса на любом интересующем исследователя этапе. Используемые нами дозы рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста и сроки введения были отработаны в ходе эксперимента и основывались на данных, получаемых при офтальмоскопии и флюоресцентной ангиографии глазного дна кроликов. Особенностью предлагаемой схемы введения сосудистого эндотелиального фактора роста является последовательность развития изменений на глазном дне, четкая зависимость их от вводимой дозы. Неоваскуляризация сетчатки и зрительного нерва возникала только после введения шестой, высокой, разрешающей дозы фактора роста (5,0 мкг) на фоне имеющихся изменений ретинальных сосудов с нарушением их проницаемости, спровоцированных введением предыдущих доз препарата. Это отличает предлагаемый способ от ближайшего аналога, где в процессе биодеградации полимерного импланта сосудистый эндотелиальный фактор роста высвобождается постепенно, неравномерно (80% фактора роста выделяется в первые 3 недели после введения импланта), что затрудняет выявление связи между точной дозой фактора роста, находящейся в стекловидной полости, и имеющимися изменениями на глазном дне.
Осуществление изобретения.
Способ осуществляют следующим образом.
Опытным животным (кроликам) интравитреально вводят рекомбинантный человеческий VEGF. В качестве растворителя используют стерильную воду для инъекций из расчета 100 мкг лиофилизированного белка в 1,0 мл. Путем дальнейшего разведения получают необходимое количество вещества в 0,05-0,1 мл раствора. Интравитреальное введение VEGF, как это принято, осуществляют с помощью иглы 26 gauge, в 4 мм от лимба, в меридиане 12 часов. Курс включает в себя шесть инъекций препарата, проводимых по следующей схеме: в первые и третьи сутки эксперимента вводят 3 мкг VEGF, на седьмые и одиннадцатые сутки - 1,5 мкг VEGF, на пятнадцатые сутки - 1,0 мкг препарата. На двадцать четвертые сутки после начала эксперимента производится инъекция разрешающей дозы VEGF - 5,0 мкг. Суммарная доза VEGF составляет 15 мкг.
Пример.
При осмотре глаз кроликов на следующий день после первого введения 3 мкг VEGF наблюдалось расширение и извитость сосудов сетчатки (Фиг.1). Интравитреально вводился рекомбинантный человеческий VEGF производства фирм "ProSpec", Израиль, "Pierce", США. После интравитреального введения 6 мкг препарата (две инъекции по 3 мкг VEGF) через 1 неделю после начала эксперимента, помимо имеющихся изменений сосудов отмечалось появление ретинальных кровоизлияний (Фиг.2). Присоединение геморрагического компонента на фоне уже имеющихся изменений сосудов сетчатки свидетельствовало о нарушении внутреннего гематоретинального барьера после суммарного введения 6 мкг фактора роста. По данным ФАГ, проведенной на 14 день эксперимента после суммарного введения 9 мкг рекомбинантного человеческого VEGF (всего четыре инъекции), выявлялось обогащение сосудистой сети сетчатки по сравнению с контрольными глазами за счет открытия в норме не функционирующих капилляров сетчатки (обозначено стрелками на фиг.3). Экстравазального выхода флюоресцеина не было. При офтальмоскопии на 21 день эксперимента после суммарного введения 10 мкг VEGF выявлялось сужение сосудов сетчатки, неравномерность их калибра, кровоизлияния отсутствовали. На фоне подобных изменений проводилось одномоментное введение 5,0 мкг VEGF (шестая инъекция). На следующий день после введения разрешающей дозы препарата при осмотре выявлялись частичный гемофтальм, множественные ретинальные геморрагии, расширение сосудов сетчатки.
При флюоресцентной ангиографии, проведенной на 4 день после введения 5,0 мкг препарата, отмечалось интенсивное гомогенное просачивание красителя из собственных ретинальных сосудов (Фиг.4). При повторном исследовании через 1 неделю после введения разрешающей дозы VEGF наблюдалось некоторое снижение интенсивности ликеджа флюоресцеина из сосудов сетчатки. Одновременно обнаруживалась гиперфлюоресценция диска зрительного нерва, усиливающаяся в поздней фазе исследования, что достоверно свидетельствовало о развитии неоваскуляризации. Энуклеация производилась на 35 сутки после начала эксперимента и через 10 дней после инъекции 5,0 мкг VEGF. Перед выведением животных из эксперимента офтальмоскопически отмечались расширение сосудов сетчатки, единичные ретинальные геморрагии, взвесь форменных элементов крови в стекловидном теле, перед диском зрительного нерва и по ходу медуллярных волокон определялась избыточная ярко-белая ткань.
По данным патоморфологических исследований в глазах опытных животных отмечались выраженные изменения диска зрительного нерва. Поверхность его была неровной, с многочисленными выростами. Последние представляли собой скопления пролиферирующих сосудов, которые прорастали на поверхность диска и образовывали своеобразную его продольную исчерченность. Внутренняя пограничная мембрана Эльшнига не дифференцировалась. Над диском в стекловидном теле выявлялось скопление новообразованных сосудов (отмечены стрелками) с тонкой стенкой капиллярного типа, формирующих паутинообразные структуры (Фиг.5). Отмечалось врастание сосудов диска зрительного нерва в стекловидное тело в виде своеобразных почек (отмечены стрелками на фиг.6). Вблизи диска зрительного нерва сетчатка была утолщена, на поверхности ее выявлялась эпиретинальная мембрана, состоящая из многочисленных сосудов, окруженных воспалительной инфильтрацией, и пронизанная разрастаниями волокнистых элементов (Фиг.7). Обращает внимание появление многочисленных новообразованных сосудов в сетчатке, прорастание их на ее поверхность и формирование сосудистой эпиретинальной мембраны. Внутренняя пограничная мембрана не дифференцируется. На внутренней поверхности сосудистой мембраны отмечалось образование тонкой волокнистой ткани, которая, видимо, обладая тракционными свойствами, способствовала складчатости сетчатки и формированию ее плоской отслойки. Закономерным в данном процессе являлось прорастание новообразованных сосудов через внутреннюю пограничную мембрану на поверхность сетчатки с формированием тонкого паутиноподобного образования из тонкостенных сосудов. Таким образом, в эпиретинальной мембране наряду с сосудами, обладающими полноценной стенкой, встречаются капилляры с очень тонкой стенкой, узким просветом, редко расположенными эндотелиоцитами и отсутствием кровотока в большей их части (Фиг.8). При врастании сосудов на внутреннюю поверхность сетчатки отмечается образование выростов в виде почек, прорывающих внутреннюю пограничную мембрану. В структуре почек определяются пролиферирующие эндотелиоциты, которые можно рассматривать в качестве предшественников новообразованных сосудов. Прослеживается связь эндотелиоцитов новообразованных сосудов сетчатки с формирующимися почками (Фиг.9).
Таким образом, предлагаемый способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов является технически доступным, легко воспроизводимым, позволяет проследить все этапы патологического процесса, приводящего к формированию новообразованных сосудов заднего отдела глаза.

Claims (1)

  1. Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов, включающий интравитреальное введение рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF), отличающийся тем, что используют водный раствор VEGF в объеме 0,05-0,1 мл и вводят дробно, последовательно в дозе 3,0 мкг на 1 и 3 сутки эксперимента, 1,5 мкг на 7 и 11 сутки, 1,0 мкг на 15 сутки и 5,0 мкг на 24 сутки.
RU2009124328/14A 2009-06-26 2009-06-26 Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов RU2408083C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009124328/14A RU2408083C1 (ru) 2009-06-26 2009-06-26 Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009124328/14A RU2408083C1 (ru) 2009-06-26 2009-06-26 Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2408083C1 true RU2408083C1 (ru) 2010-12-27

Family

ID=44055892

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009124328/14A RU2408083C1 (ru) 2009-06-26 2009-06-26 Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2408083C1 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2488891C1 (ru) * 2012-04-25 2013-07-27 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Московский научно-исследовательский институт глазных болезней имени Гельмгольца" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс
RU2498415C1 (ru) * 2012-07-24 2013-11-10 Государственное бюджетное учреждение "Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней Академии наук Республики Башкортостан" Способ моделирования диабетического макулярного отека
RU2504844C1 (ru) * 2012-07-24 2014-01-20 Государственное бюджетное учреждение "Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней Академии наук Республики Башкортостан" Способ моделирования диабетической макулярной неоваскуляризации
RU2662415C1 (ru) * 2017-08-31 2018-07-25 Федеральное государственное автономное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ прижизненной энуклеации глаза кролика

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ALIKACEM N. et al. Quantitative MR imaging study of intravitreal sustained release of VEGF in rabbits. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000 May; 41(6):1561-9. *
ПЕТРОВСКИ Б. Моделирование пролиферативной витреоретинопатии и отслойки сетчатки с помощью имплантации гомологичных фибробластов в стекловидное тело. Тезисы докладов восьмого Съезда офтальмологов Украинской ССР, 1990, с.109-110. JULIEN S. et al. A reproducible and quantifiable model of choroidal neovascularization induced by VEGF A 165 after subretinal adenoviral gene transfer in the rabbitMol Vis. 2008 Jul 30; 14:1358-72. *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2488891C1 (ru) * 2012-04-25 2013-07-27 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Московский научно-исследовательский институт глазных болезней имени Гельмгольца" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс
RU2498415C1 (ru) * 2012-07-24 2013-11-10 Государственное бюджетное учреждение "Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней Академии наук Республики Башкортостан" Способ моделирования диабетического макулярного отека
RU2504844C1 (ru) * 2012-07-24 2014-01-20 Государственное бюджетное учреждение "Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней Академии наук Республики Башкортостан" Способ моделирования диабетической макулярной неоваскуляризации
RU2662415C1 (ru) * 2017-08-31 2018-07-25 Федеральное государственное автономное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ прижизненной энуклеации глаза кролика

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101890167B (zh) 可方便植入的缓释药物组合物
CN102633863B (zh) 抗分泌因子对于治疗高眼压的应用
Figus et al. The supraciliary space as a suitable pathway for glaucoma surgery: Ho-hum or home run?
JP2007523912A (ja) 眼病変治療用へパリン
JPH08502033A (ja) TGF−βを用いる眼疾患の治療方法
RU2408083C1 (ru) Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов
Boone et al. THE USE OF INTRAVTTREAL TISSUE PLASMINOGEN ACTIVATOR IN THE TREATMENT OF EXPERIMENTAL SUBRETINAL HEMORRHAGE IN THE PIG MODEL
Hou et al. Animal models of proliferative vitreoretinopathy and their use in pharmaceutical investigations
WO2010125148A2 (en) Methods for treating ocular conditions
Desai et al. Intravitreal ranibizumab as an adjunct for Ahmed valve surgery in open‐angle glaucoma: a pilot study
CN108159051B (zh) 3-甲基腺嘌呤在制备治疗视网膜下纤维化的药物中的应用
RU2465872C1 (ru) Способ профилактики и лечения избыточного рубцевания после антиглаукоматозной операции
JPH08503969A (ja) 増殖因子と組織形成抑制剤を含有する組成物
Pozza et al. 500 penile prostheses implanted by a surgeon in Italy in the last 30 years
Miyake Fluorophotometric evaluation of the blood-ocular barrier function following cataract surgery and intraocular lens implantation
RU2575966C2 (ru) Способ лечения неоваскулярной глаукомы
Livny et al. Corneal melting in rheumatoid arthritis patients treated with a tectonic reinforcing corneolimbal graft: an interventional case series
JPH08503968A (ja) 増殖因子と代謝拮抗物質を含有する組成物
Herschler Long-term results of trabeculectomy with collagen sponge implant containing low-dose antimetabolite
RU2354335C1 (ru) Способ лечения передних увеитов
KR102183669B1 (ko) 이중 약물 방출을 위한 약물 전달체
CN103169718B (zh) 蒽环类抗生素及其可药用盐在治疗新生血管性青光眼中的用途
US10568931B2 (en) Pharmaceutical composition comprising ginseng extracts for prevention and treatment of ophthalmological diseases
CN100353947C (zh) 以甾体为有效成分的视网膜和脉络膜疾病治疗剂
CN116492462B (zh) Pad4抑制剂在防治角膜移植术后免疫排斥反应中的应用

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20110627