RU2488891C1 - Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс - Google Patents
Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс Download PDFInfo
- Publication number
- RU2488891C1 RU2488891C1 RU2012110780/14A RU2012110780A RU2488891C1 RU 2488891 C1 RU2488891 C1 RU 2488891C1 RU 2012110780/14 A RU2012110780/14 A RU 2012110780/14A RU 2012110780 A RU2012110780 A RU 2012110780A RU 2488891 C1 RU2488891 C1 RU 2488891C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- rats
- anterior segment
- vegf
- eye
- neovascularization
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности офтальмологии, и предназначено для моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс. Проводят однократное интравитреальное введение водного раствора рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF) в дозе 3.5 мкг. Способ обеспечивает получение полноценной неоваскуляризации, преимущественно в роговице и зоне цилиарного тела-корня радужки, в короткие сроки с минимальной травматичностью и уменьшением затрат на эксперимент. 7 ил.
Description
Предлагаемое изобретение относится к офтальмологии и предназначено для моделирования неоваскуляризации глаза у крыс.
Сосудистые заболевания глазного дна, приводящие к развитию неоваскуляризации, являются актуальной проблемой офтальмологии. Разработка экспериментальных моделей является необходимой для изучения процессов патогенеза и поиска новых возможностей лечения.
Уровень техники.
Известен способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва (Сарыгина О.И., Нероев В.В., Левкина О.А. Экспериментальное моделирование пролиферативной ретинопатии путем интравитреального введения сосудистого эндотелиального фактора (VEGF) кроликам. // Офтальмология, 2009, Том 6, №3, с.25-29), включающий многократное введение в стекловидное тело кроликов водного раствора рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста. Интравитреальные инъекции осуществляли с помощью иглы 26 gauge, в 4 мм от лимба, в меридиане 12 часов. Курс включал 6 инъекций препарата, проводимых по следующей схеме: в первые и третьи сутки вводили - по 3 мкг VEGF, на седьмые и одиннадцатые сутки - по 1,5 мкг VEGF, на пятнадцатые сутки - 1 мкг препарата. На двадцать четвертые сутки после начала эксперимента производилась инъекция разрешающей дозы - 5,0 мкг, приводящая к появлению неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва. Суммарная доза препарата составляла - 15 мкг.
Ближайшим аналогом предлагаемого изобретения является способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у обезьян, включающий многократное интравитреальное введение обезьянам водного раствора рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста (Tolentino M.J., Miller J.W., Gragoudas E.S., Ferrara N., Adamis A.P. Vascular endothelial growth factor is sufficient to iris neovascularization and neovascular glaucoma in a nonhuman primate. // Arch Ophthalmol. Vis. Sci. - 1996. Aug; 114(8) - P.964-70). В данном способе осуществляли введение в стекловидное тело обезьян водного раствора рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста в дозе 1,25 мкг каждые 3 дня в течение месяца. Данная модель вызывает нарушение проницаемости сосудов переднего отрезка глаза и индукцию роста новообразованных сосудов в радужке и углу передней камеры у обезьян.
Недостатками аналогов являются: необходимость длительного срока наблюдения, многократные интравитреальные введения препарата, что является достаточно травматичным, а также связано с большими финансовыми затратами, обусловленными расходами на дорогостоящих животных (обезьяны), реактивы и уход.
Раскрытие изобретения.
Задачей изобретения является разработка простого и легко воспроизводимого способа моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является получение полноценной неоваскуляризации в переднем отрезке глаза в короткие сроки при минимальной хирургической манипуляции, позволяющей снизить травматичность воздействия, и обусловливает экономические преимущества, связанные с затратами на экспериментальных животных, реактивы и уход.
Технический результат достигается за счет однократного введения в стекловидное тело крыс водного раствора VEGF в дозе 3,5 мкг.
В настоящее время проведено большое количество исследований, в которых оценивалось системное действие сосудистого эндотелиального фактора роста, а также его роль при заболеваниях глаз (Bandello P., Battaglia Parodi M. Anti-VEGF // Dev Ophthalmol. Basel, Karger, 2010. P.186).
VEGF является гомодимерным гликопротеидом, который одновременно является фактором проницаемости сосудов и фактором ангиогенеза. Кроме того, ростовой фактор является активным митогенным лигандом для эндотелиальных клеток сосудов. Сосудистый эндотелиальный фактор роста также стимулирует проколлагеназную активность эндотелия и усиливает хемотаксис через сосудистую стенку клеток мезенхимальной природы, которые способствуют созреванию стромы. Эти особенности дают возможность предполагать, что VEGF играет важную роль в развитии микрососудистых осложнений, наблюдаемых при пролиферативной ретинопатии, развитие которой характеризуется гипоксией ткани, ангиогенезом и повышенной сосудистой проницаемостью. На основании этого в предлагаемом способе моделирования также использовали VEGF.
Для моделирования в офтальмологии в качестве опытных животных наиболее часто используются крысы и кролики, т.к. эти животные имеют практические преимущества, связанные с затратами на реактивы и уход (Hammes H-P, Porta M: Experimental Approaches to Diabetic Retinopathy. Front Diabetes. Basel, Karger, 2010. P42-600).
Однако использование крыс для моделирования сосудистой патологии глаза является наиболее корректным, по сравнению с использованием кроликов, т.к. по морфологическому строению и ангиоархитектонике сосуды сетчатки крысы ближе к сосудам сетчатки человека, чем у кролика. Мы провели исследование по отработке дозы VEGF при условии уменьшения количества интравитреальных введений. Было доказано морфологическими исследованиями, что доза VEGF величиной 3.5 мкг при однократном введении крысам является адекватной для создания патогенетически обоснованной модели неоваскуляризации переднего отрезка глаза. Для адекватного интравитреального введения VEGF у крыс была выбрана зона в области экватора с направлением иглы к заднему полюсу глаза.
Способ осуществляется следующим образом.
Экспериментальной крысе интравитреально вводят рекомбинантный человеческий сосудистый эндотелиальный фактор роста, например, производства фирм «Pro Spec», Израиль, «Pierce», США. Интравитреальное введение VEGF осуществляют с помощью иглы 30 gauge в области экватора по направлению к заднему полюсу глаза. Инъекцию выполняют в стерильных условиях под контролем операционного микроскопа. Введение препарата проводят однократно, в дозе 3,5 мкг. Данную дозу разводят в 0,02 мл стерильной воды для инъекций.
Пример: Крыса №3. Крысе интравитреально ввели рекомбинантный человеческий сосудистый эндотелиальный фактор роста производства фирмы «Pro Spec», Израиль. Для введения использовали иглу 30 gauge. Инъекцию осуществили в области экватора по направлению к заднему полюсу глаза в стерильных условиях под контролем операционного микроскопа. Введение препарата провели однократно, в дозе 3,5 мкг. Дозу развели в 0,02 мл стерильной воды для инъекций.
При осмотре глаза крысы на 2 день после введения 3,5 мкг VEGF наблюдалась неоваскуляризация периферических отделов роговицы. В последующие дни наблюдалось усиление пролиферативной реакции - распространение новообразованных сосудов в центральные отделы роговицы, образование гифемы в передней камере. На 5 день неоваскуляризация занимала около 60% от площади роговицы, что не являлось препятствием для проведения флюоресцентной ангиографии (ФАГ) и осмотра глазного дна (Фиг.1).
По данным ФАГ на 2 день после интравитреального введения VEGF на ангиографических снимках наблюдалось расширение сосудов сетчатки. На 5 день эксперимента выявлялось увеличение дилатации и деформация интраретинальных вен, возникновение интраретинальных микрососудистых аномалий (Фиг.2). На 7 день эксперимента помимо имеющихся изменений отмечалось появление локальной гиперфлюоресценции, усиливающейся в поздней фазе исследования, что связанно с интенсивным просачиванием красителя из новообразованных сосудов (Фиг.3). Энуклеацию производили на 7 сутки после начала эксперимента.
Таким образом, по данным патоморфологического исследования, у крысы через 7 дней развивалась активная неоваскуляризация, преимущественно, в переднем отрезке глаза. Было выявлено, что основными тканевыми мишенями при интравитреальном введении VEGF крысы являлись роговица и зона цилиарного тела-корня радужки, изменения со стороны сетчатки были выражены в меньшей степени. В роговице отмечались многочисленные новообразованные сосуды, пронизывающие строму роговицы. Пролиферация сопровождалась лимфо-лейкоцитарной инфильтрацией (Фиг.4). Кроме этого на наружной поверхности цилиарного тела и в области корня радужки наблюдалось разрастание новообразованных сосудов, заполняющих переднюю камеру и угол передней камеры. Помимо новообразованных сосудов отмечалось появление эндотелиальных почек, свидетельствующих о начальном процессе ангиогенеза (Фиг.5). В радужке и передней камере выявлялись кровоизлияния (Фиг.6). В сетчатке наблюдалось полнокровие сосудов, периваскулярный отек, кровоизлияния и единичные новообразованные сосуды, а также изменения фоторецепторных элементов - деструкция наружных и внутренних сегментов палочек (Фиг.7). Полученные данные подтверждают получение адекватной модели неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крысы.
Таким образом, предлагаемый способ позволяет получить полноценную модель неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крысы, является технически доступным, легко воспрозводимым и экономичным.
Claims (1)
- Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс, отличающийся тем, что проводят однократное интравитреальное введение водного раствора рекомбинантного человеческого сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF) в дозе 3,5 мкг.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012110780/14A RU2488891C1 (ru) | 2012-04-25 | 2012-04-25 | Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012110780/14A RU2488891C1 (ru) | 2012-04-25 | 2012-04-25 | Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2488891C1 true RU2488891C1 (ru) | 2013-07-27 |
Family
ID=49155755
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012110780/14A RU2488891C1 (ru) | 2012-04-25 | 2012-04-25 | Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2488891C1 (ru) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2408083C1 (ru) * | 2009-06-26 | 2010-12-27 | Федеральное государственное учреждение "МОСКОВСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ИМЕНИ ГЕЛЬМГОЛЬЦА ФЕДЕРАЛЬНОГО АГЕНТСТВА ПО ВЫСОКОТЕХНОЛОГИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ" | Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов |
CN102217980A (zh) * | 2010-04-16 | 2011-10-19 | 四川大学华西医院 | 一种恒河猴脉络膜血管新生模型的制备方法 |
RU2440620C1 (ru) * | 2010-06-17 | 2012-01-20 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный медицинский университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО РГМУ Росздрава) | Способ моделирования неоваскуляризации роговицы |
-
2012
- 2012-04-25 RU RU2012110780/14A patent/RU2488891C1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2408083C1 (ru) * | 2009-06-26 | 2010-12-27 | Федеральное государственное учреждение "МОСКОВСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ИМЕНИ ГЕЛЬМГОЛЬЦА ФЕДЕРАЛЬНОГО АГЕНТСТВА ПО ВЫСОКОТЕХНОЛОГИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ" | Способ моделирования неоваскуляризации сетчатки и зрительного нерва у кроликов |
CN102217980A (zh) * | 2010-04-16 | 2011-10-19 | 四川大学华西医院 | 一种恒河猴脉络膜血管新生模型的制备方法 |
RU2440620C1 (ru) * | 2010-06-17 | 2012-01-20 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный медицинский университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО РГМУ Росздрава) | Способ моделирования неоваскуляризации роговицы |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
SENER Е. et al. The impact of subconjuctivally injected EGF and VEGF inhibitors on experimental corneal neovascularization in rat model Curr Eye Res. 2011 Nov; 36(11):1005-13. * |
ПУПКОВА Т.Н. Фотодинамическая терапия при неоваскуляризации роговицы с фотосенсибилизатором "Фотолон". - Обнинск, 2008, раздел 2.2. Научная библиотека диссертаций и авторефератов disserCat, Найдено в Интернете 19.11.2012, http://www.dissercat.com/content/fotodinamicheskaya-terapiya-pri-neovaskulyarizatsii-rogovitsy-s-fotosensibilizatorom-fotolon#ixzz2CfUMRYtH. COMAN L, et al. VEGF-induced corneal neovascularisation in a rabbit experimental model Rom J Morphol Embryol. 2010; 51(2):327-36. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP7082599B2 (ja) | ヒト被験体における眼部障害の処置のための方法およびデバイス | |
EP2262476B1 (en) | Drug delivery to the anterior and posterior segments of the eye using eye drops. | |
Wong et al. | Intravitreal VEGF and bFGF produce florid retinal neovascularization and hemorrhage in the rabbit | |
Fu et al. | Angiogenesis inhibition and choroidal neovascularization suppression by sustained delivery of an integrin antagonist, EMD478761 | |
US20070027102A1 (en) | Methods and compositions for treating macular degeneration | |
JP6944958B2 (ja) | 持続性浮腫を伴う滲出性加齢黄斑変性の処置のためのシロリムスの使用 | |
Lee et al. | Novel drug delivery systems for retinal diseases: a review | |
Ford et al. | Expression and role of VEGF-A in the ciliary body | |
Lee et al. | Aqueous humour outflow imaging: seeing is believing | |
Lee et al. | Structural confirmation of lymphatic outflow from subconjunctival blebs of live humans | |
US20170224815A1 (en) | Method of Preventing and Treating Retinal Microvasculature Inflammation Using C-Met Signaling Pathway Inhibition | |
WO2023192691A2 (en) | Methods and formulations for intranasal delivery of insulin in the treatment of diabetic eye disease | |
RU2488891C1 (ru) | Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс | |
Saati et al. | Effect of multiple injections of small divided doses vs single injection of intravitreal bevacizumab on retinal neovascular model in rabbits | |
Toyokawa et al. | Cytomegalovirus retinitis after subtenon triamcinolone acetonide and intravitreal injection of anti-vascular endothelial growth factor in an immunocompetent patient with age-related macular degeneration and diabetes mellitus | |
US10463532B2 (en) | Method for placing implant in choroid that can less invasively and simply place implant in choroid in optic disc-macula area | |
Cholkar et al. | Compositions, formulation, pharmacology, pharmacokinetics, and toxicity of topical, periocular, and intravitreal ophthalmic drugs | |
Bernd et al. | Influence of molecular weight on intracameral dextran movement to the posterior segment of the mouse eye | |
Hiller et al. | Ex Vivo Pig Eye Model for Studying Diffusion of Acylcarnitines with Different Physicochemical Properties | |
Falkenstein et al. | Toxicity and intraocular properties of a novel long-acting anti-proliferative and anti-angiogenic compound IMS2186 | |
Wang et al. | Accessing the suprachoroidal space for therapeutic delivery | |
Zamir et al. | Neurotrophic corneal endothelial failure complicating acute Horner syndrome | |
Kumar et al. | Characterization and validation of a chronic retinal neovascularization rabbit model by evaluating the efficacy of anti-angiogenic and anti-inflammatory drugs | |
Seethala et al. | Current treatments in diabetic macular edema | |
Zhou et al. | A simultaneous iris angiography technique in pigmented rabbits |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140426 |