RU2440620C1 - Способ моделирования неоваскуляризации роговицы - Google Patents
Способ моделирования неоваскуляризации роговицы Download PDFInfo
- Publication number
- RU2440620C1 RU2440620C1 RU2010124284/14A RU2010124284A RU2440620C1 RU 2440620 C1 RU2440620 C1 RU 2440620C1 RU 2010124284/14 A RU2010124284/14 A RU 2010124284/14A RU 2010124284 A RU2010124284 A RU 2010124284A RU 2440620 C1 RU2440620 C1 RU 2440620C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cornea
- trepan
- burn
- corneal
- diameter
- Prior art date
Links
Landscapes
- Prostheses (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Изобретение относится к экспериментальной медицине и касается моделирования неоваскуляризации роговицы. Для этого лабораторному животному формируют ожог роговицы раствором соляной кислоты. Просвет трепана для пересадки роговицы диаметром не менее 2 мм заполняют тампоном и пропитывают его 10% раствором соляной кислоты, устанавливают трепан на 20 секунд на центральную или парацентральную зону роговицы, обеспечивая контакт тампона и роговицы. Затем на 3-4 день после вмешательства трепаном для пересадки роговицы в области ожога выкраивают диск роговицы на 1/2 ее толщины, отсепаровывают и удаляют его. Способ обеспечивает упрощение моделирования за счет исключения сложных микрохирургических методик, а также устранение повреждения других структур глаза за счет локального дозированного воздействия, при сокращении сроков получения адекватной модели. 2 з.п. ф-лы.
Description
Изобретение относится к экспериментальной медицине и может быть применено при моделирования неоваскуляризации роговицы.
Известен способ моделирования неоваскуляризации роговицы, принятый за прототип (Белый Ю.А., Терещенко А.В., Володин П.Л., Каплан М.А., Пупкова Т.Н., Федотова М.В., Иванов A.M., Абносов А.А., Царенков В.М. Фотодинамическая терапия экспериментальной модели неоваскуляризации роговицы с использованием препарата «Фотолон» // Актуальные проблемы офтальмологии: Сб. тезисов по материалам 8-й научно-практич. конференции. - М., 2005 - С.23-24.). Данный способ заключается в следующем: исследования проведены на глазах кроликов породы шиншилла и массой 2,5-3 кг; под местной анестезией, включавшей инсталляции раствора «Инокаин» (0,4% оксибупрокаин), в верхнем полюсе роговицы накладывались интрастромальные роговичные швы (шелк 5,00), захватывавшие перилимбальную зону и доходившие до центра роговицы. Затем в месте наложения швов роговица тушировалась 10% раствором едкого натра (NaOH). Время экспозиции раствора составляло 20 с. Снятие роговичных швов производили на 30 сутки, когда наблюдалась состоятельная индуцированная неоваскулярная сеть роговицы.
Таким образом, известный способ предполагает необходимость использования микрохирургических методик, работу в стерильных условиях операционной, использование щелочных ожогов, которые являются более тяжелыми и непредсказуемыми по своей глубине и тяжести, а также получение отсроченных результатов.
Нами поставлена задача - разработать простой, воспроизводимый способ моделирования неоваскуляризации роговицы.
Технический результат заключается в упрощении моделирования за счет исключения сложных микрохирургических методик, в профилактике осложнений, связанных с повреждением других структур глаза, за счет формирования локального дозированного ожога, а также в сокращении сроков получения адекватной модели за счет выбора сочетанного повреждающего воздействия, вызывающего гипоксическое повреждение ткани роговицы в зоне воздействия.
Технический результат достигается тем, что животному формируют ожог роговицы с последующим на 3-4 день после вмешательства выкраиванием в области сформированного ожога диска роговицы на 1/2 ее толщины, который отсепаровывают и удаляют.
Сущность изобретения заключается в следующем: для моделирования неоваскуляризации роговицы у кролика формируют ожог роговицы. Для этого просвет трепана для пересадки роговицы диаметром не менее 2 мм заполняют тампоном и пропитывают его 10% раствором соляной кислоты. Затем устанавливают трепан на 20 секунд на центральную или парацентральную зону роговицы, обеспечивая контакт тампона и роговицы. Через 3-4 дня после вмешательства трепаном для пересадки роговицы диаметром, равным или менее диаметра трепана, использованного ранее, в области ожога выкраивают диск роговицы на 1/2 ее толщины, отсепаровывают и удаляют его. В частном случае может быть использован тампон из ваты и трепан диаметром не менее 5 мм.
Способ реализуется следующим образом.
Кролика породы шиншилла массой 2,5 кг содержали на стандартном рационе питания и свободном доступе к пище и воде в условиях вивария. Кролик помещался в ящик, в котором голова животного плотно фиксируется снаружи, однократно в конъюнктивальную полость инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина. Затем, через 2-3 мин. удаляли третье веко на обоих глазах кролика. Оперируемый глаз накрывался стерильной марлевой салфеткой с отверстием по середине, в которое устанавливался векорасширитель. Повторно инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина в глаз. Трепан для пересадки роговицы диаметром 5 мм плотно набивался ватным тампоном, который затем пропитывали раствором 10% соляной кислоты. Трепан устанавливался в центральной или парацентральной зоне роговицы на 20 секунд. Конъюнктивальную полость глаз после эксперимента не промывали. Сразу после удаления трепана на месте его контакта с роговицей оставался правильной округлой формы, одинакового диаметра у всех кроликов ожог роговицы II-III ст. На 3-4 день эксперимента проводили второй этап создания модели неоваскуляризации роговицы - создание стандартной по глубине и площади язвы роговицы. Трепаном для пересадки роговицы диаметром 2 мм в области ожоговой поверхности выкраивали диск на 1/2 толщины роговицы; затем он отсепаровывался с помощью копьевидного ножа и удалялся. Образовывалась стандартная по глубине и площади язва роговицы.
На 7-й день после ожога и 3-4-й день после формирования язвы отмечался рост сети новообразованных сосудов роговицы.
При биомикроскопии переднего отдела глаза оценивали состоятельность индуцированной неоваскулярной сети роговицы. Морфологическое исследование ткани роговицы проводили с фиксированием ткани по стандартной методике и окрашивали гематоксилином и эозином.
Для доказательства возможности реализации указанной модели и достижения технического результата, указанного выше, приводим следующие доказательства:
Пример 1.
Кролика породы шиншилла массой 2,5 кг содержали на стандартном рационе питания и свободном доступе к пище и воде в условиях вивария. Кролик помещался в ящик, в котором голова животного плотно фиксируется снаружи, однократно в конъюнктивальную полость инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина. Затем, через 2-3 мин удаляли третье веко на обоих глазах кролика. Оперируемый глаз накрывался стерильной марлевой салфеткой с отверстием по середине, в которое устанавливался векорасширитель. Повторно инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина в глаз. Трепан для пересадки роговицы диаметром 5 мм плотно набивался ватным тампоном, который затем пропитывали раствором 10% соляной кислоты. Трепан устанавливался в центральной зоне роговицы на 20 секунд. Конъюнктивальную полость глаз после эксперимента не промывали. Сразу после удаления трепана на месте его контакта с роговицей оставался правильной округлой формы, одинакового диаметра у всех кроликов ожог роговицы II-III ст. На 3 день эксперимента проводили второй этап создания модели неоваскуляризации роговицы - создание стандартной по глубине и площади язвы роговицы. Трепаном для пересадки роговицы диаметром 2 мм в области ожога выкраивали диск на 1/2 толщины роговицы; затем он отсепаровывался с помощью копьевидного ножа и удалялся. Образовывалась стандартная по глубине и площади язва роговицы.
На 7-й день после ожога и 4-й день после формирования язвы отмечался рост сети новообразованных сосудов роговицы. При биомикроскопии переднего отдела глаза четко визуализировалась неоваскулярная сеть роговицы. При морфологическом исследовании роговицы обнаружена состоятельная сеть новообразованных сосудов.
Пример 2.
Кролика породы шиншилла массой 2,0 кг содержали на стандартном рационе питания и свободном доступе к пище и воде в условиях вивария. Кролик помещался в ящик, в котором голова животного плотно фиксируется снаружи, однократно в конъюнктивальную полость инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина. Затем, через 2-3 мин удаляли третье веко на обоих глазах кролика. Оперируемый глаз накрывался стерильной марлевой салфеткой с отверстием по середине, в которое устанавливался векорасширитель. Повторно инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина в глаз. Трепан для пересадки роговицы диаметром 5 мм плотно набивался ватным тампоном, который затем пропитывали раствором 10% соляной кислоты. Трепан устанавливался в парацентральной зоне роговицы на 20 секунд. Конъюнктивальную полость глаз после эксперимента не промывали. Сразу после удаления трепана на месте его контакта с роговицей оставался правильной округлой формы, одинакового диаметра у всех кроликов ожог роговицы II-III ст. На 4 день эксперимента проводили второй этап создания модели неоваскуляризации роговицы - создание стандартной по глубине и площади язвы роговицы. Трепаном для пересадки роговицы диаметром 2 мм в области ожога выкраивали диск на 1/2 толщины роговицы; затем он отсепаровывался с помощью копьевидного ножа и удалялся. Образовывалась стандартная по глубине и площади язва роговицы.
На 7-й день после ожога и 3-й день после формирования язвы отмечался рост сети новообразованных сосудов роговицы. При биомикроскопии переднего отдела глаза четко визуализировалась неоваскулярная сеть роговицы. При морфологическом исследовании роговицы обнаружена состоятельная сеть новообразованных сосудов.
Пример 3.
Кролика породы шиншилла массой 2,2 кг содержали на стандартном рационе питания и свободном доступе к пище и воде в условиях вивария. Кролик помещался в ящик, в котором голова животного плотно фиксируется снаружи, однократно в конъюнктивальную полость инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина. Затем, через 2-3 мин удаляли третье веко на обоих глазах кролика. Оперируемый глаз накрывался стерильной марлевой салфеткой с отверстием по середине, в которое устанавливался векорасширитель. Повторно инсталлировали раствор фурациллина 1:5000 и 10% раствор лидокаина в глаз. Трепан для пересадки роговицы диаметром 5 мм плотно набивался ватным тампоном, который затем пропитывали раствором 10% соляной кислоты. Трепан устанавливался в центральной зоне роговицы на 20 секунд. Конъюнктивальную полость глаз после эксперимента не промывали. Сразу после удаления трепана на месте его контакта с роговицей оставался правильной округлой формы, одинакового диаметра у всех кроликов ожог роговицы II-III ст. На 3 день эксперимента проводили второй этап создания модели неоваскуляризации роговицы - создание стандартной по глубине и площади язвы роговицы. Трепаном для пересадки роговицы диаметром 2 мм в области ожога выкраивали диск на 1/2 толщины роговицы; затем он отсепаровывался с помощью копьевидного ножа и удалялся. Образовывалась стандартная по глубине и площади язва роговицы. На 7-й день после ожога и 4-й день после формирования язвы отмечался рост сети новообразованных сосудов роговицы. При биомикроскопии переднего отдела глаза четко визуализировалась неоваскулярная сеть роговицы. При морфологическом исследовании роговицы обнаружена состоятельная сеть новообразованных сосудов.
Предложенный способ моделирования был использован у 8 кроликов (16 глаз). Во всех случаях на 7 день была получена адекватная модель неовасукяризации роговицы, что было подтверждено при морфологическом исследовании роговицы.
Результат: предложенный способ является простым, не требующим микрохирургических вмешательств, ни в одном случае мы не получали повреждения окружающих структур и адекватная модель получена на 7 сутки.
Claims (3)
1. Способ моделирования неоваскуляризации роговицы у кролика, отличающийся тем, что формируют ожог роговицы, для чего просвет трепана для пересадки роговицы диаметром не менее 2 мм заполняют тампоном и пропитывают его 10%-ным раствором соляной кислоты, устанавливают трепан на 20 с на центральную или парацентральную зону роговицы, обеспечивая контакт тампона и роговицы, затем на 3-4 день после вмешательства трепаном для пересадки роговицы диаметром, равным или менее диаметра трепана, использованного ранее, в области ожога выкраивают диск роговицы на 1/2 ее толщины, отсепаровывают и удаляют его.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют тампон из ваты.
3. Способ по любому из пп.1 или 2, отличающийся тем, что для формирования ожога используют трепан диаметром не менее 5 мм.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010124284/14A RU2440620C1 (ru) | 2010-06-17 | 2010-06-17 | Способ моделирования неоваскуляризации роговицы |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010124284/14A RU2440620C1 (ru) | 2010-06-17 | 2010-06-17 | Способ моделирования неоваскуляризации роговицы |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2440620C1 true RU2440620C1 (ru) | 2012-01-20 |
Family
ID=45785783
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2010124284/14A RU2440620C1 (ru) | 2010-06-17 | 2010-06-17 | Способ моделирования неоваскуляризации роговицы |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2440620C1 (ru) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2488891C1 (ru) * | 2012-04-25 | 2013-07-27 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Московский научно-исследовательский институт глазных болезней имени Гельмгольца" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс |
| RU2709834C1 (ru) * | 2019-05-14 | 2019-12-23 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Способ моделирования в эксперименте рецидивирующей эрозии роговицы |
-
2010
- 2010-06-17 RU RU2010124284/14A patent/RU2440620C1/ru not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| АНДРУШКОВА О. А. Экспериментальное обоснование применения гидролизата РНК (ЭНКАД) при химических ожогах роговицы. Офтальмологический журнал, 1990, №6, с.338-343. AVISAR I. et al. Effect of subconjunctival and intraocular bevacizumab injections on corneal neovascularization in a mouse model. Curr Eye Res. 2010 Feb;35(2):108-15. ZHAO H. et al. A synthetic peptide selected by bioinformatics inhibits mouse corneal neovascularization. Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 2007 Feb;43(2): 151-7. * |
| БЕЛЫЙ Ю.А. и др. Фотодинамическая терапия экспериментальной модели неоваскуляризации роговицы с использованием препарата "Фотолон». Актуальные проблемы офтальмологии. Сб. тезисов по материалам 8-й научно-практической конференции. - М., 2005, с.23, 24. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2488891C1 (ru) * | 2012-04-25 | 2013-07-27 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Московский научно-исследовательский институт глазных болезней имени Гельмгольца" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Способ моделирования неоваскуляризации переднего отрезка глаза у крыс |
| RU2709834C1 (ru) * | 2019-05-14 | 2019-12-23 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Способ моделирования в эксперименте рецидивирующей эрозии роговицы |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Ong et al. | Evolution of therapies for the corneal endothelium: past, present and future approaches | |
| van der Zypen et al. | Ultrastructural changes of the trabecular meshwork of the monkey (Macaca speciosa) following irradiation with argon laser light | |
| JP2016538099A (ja) | 異種角膜材料の製造方法 | |
| RU2440620C1 (ru) | Способ моделирования неоваскуляризации роговицы | |
| Kunzmann et al. | Effects of ultrasound energy on the porcine corneal endothelium–Establishment of a phacoemulsification damage model | |
| Luft et al. | Evaluation of laser capsule polishing for prevention of posterior capsule opacification in a human ex vivo model | |
| Dohlman et al. | The Boston keratoprosthesis 2014: a step in the evolution of artificial corneas | |
| Min et al. | A new technique for Nd: YAG laser posterior capsulotomy | |
| Del Priore et al. | Experimental and surgical aspects of retinal pigment epithelial cell transplantation | |
| Chun et al. | Dried human amniotic membrane does not alleviate inflammation and fibrosis in experimental strabismus surgery | |
| Roh et al. | Impact on the corneal endothelium of mitomycin C during photorefractive keratectomy | |
| Moisseiev et al. | Simulation of neodymium: YAG posterior capsulotomy for ophthalmologists in training | |
| Akhter et al. | Reducing postoperative pterygium recurrence: comparison of free conjunctival auto-graft and conjunctival rotation flap techniques | |
| Yong et al. | Optimization of treatment strategy used during shockwave lithotripsy to maximize stone fragmentation efficiency | |
| Swamy et al. | Cicatricial entropion repair with hard palate mucous membrane graft: surgical technique and outcomes | |
| Stocker et al. | Medium term preservation of corneal tissue for grafting | |
| Monterosso et al. | Effect of 60 kHz and 150 kHz femtosecond lasers on corneal stromal bed surfaces: a comparative study | |
| Gundersen | RESULTS OF AUTOTRANSPLANTATION OF CORNEA INTO ANTERIOR CHAMBER: THEIR SIGNIFICANCE REGARDING CORNEAL NUTRITION | |
| Yesilirmak et al. | Application of a hydrogel ocular sealant to avoid recurrence of epithelial ingrowth after LASIK enhancement | |
| Ali et al. | Visual outcome evaluation of complicated perforating corneal injuries after surgicalrepair in 45 cats | |
| Daniel | Healing of the iris in rabbits following experimental iridectomy | |
| Lindstrom et al. | Neodymium: YAG laser interaction with intraocular lenses: an in vitro toxicity assay | |
| Peck et al. | Comparison of the corneal endothelial protective effects of Healon‐D and Viscoat | |
| Chambless | Neodymium: YAG laser anterior capsulotomy and a possible new application | |
| Snell Jr | Reactions of the iris to injury |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140618 |