RU2388064C1 - Method for simulation of malignant process in experiment - Google Patents
Method for simulation of malignant process in experiment Download PDFInfo
- Publication number
- RU2388064C1 RU2388064C1 RU2008133088/14A RU2008133088A RU2388064C1 RU 2388064 C1 RU2388064 C1 RU 2388064C1 RU 2008133088/14 A RU2008133088/14 A RU 2008133088/14A RU 2008133088 A RU2008133088 A RU 2008133088A RU 2388064 C1 RU2388064 C1 RU 2388064C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sterile
- tumor
- tumour
- transferred
- tissue
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к экспериментальной онкологии, и может быть использовано для получения злокачественной опухоли, растущей в ткани легкого.The invention relates to experimental medicine, namely to experimental oncology, and can be used to obtain a malignant tumor growing in lung tissue.
Разработкой методик перевивки опухолей было положено начало экспериментальной онкологии, так как сведения, полученные при изучении перевиваемых опухолей, сыграли исключительно важную роль в развитии современных представлений о сущности злокачественного роста и способах противоопухолевой терапии. В 1921 г. Флетэн, изменив традиционную перевивку под кожу, трансплантировал экспериментальные опухоли в мозг крысы, что послужило началом нового направления в изучении клиники, патоморфологической картины и влияния противоопухолевых воздействий на развивающиеся новообразования.The development of tumor transplantation techniques marked the beginning of experimental oncology, since the information obtained in the study of transplanted tumors played an extremely important role in the development of modern ideas about the nature of malignant growth and methods of antitumor therapy. In 1921, Fleten, changing the traditional grafting under the skin, transplanted experimental tumors into the rat brain, which served as the beginning of a new direction in the study of the clinic, the pathomorphological picture and the effect of antitumor effects on developing neoplasms.
Известно, что перевивные опухоли, не смотря на их большую отдаленность от опухолей человека, чем спонтанные или индуцированные, имеют ряд преимуществ. Это, во-первых, возможность постановки массовых экспериментов за относительно короткий срок, так как быстро могут быть получены в большом количестве. Другим преимуществом штаммов перевивных опухолей является относительное постоянство их строения и биологических свойств. Указанные преимущества делают их незаменимым средством в области экспериментальной онкологии, особенно при первичном отборе противоопухолевых препаратов (Коноплев В.П. Перевиваемые опухоли. // в кн. «Модели и методы экспериментальной онкологии (практическое пособие)». Под ред. А.Д.Тимофеевского, М., 1960. - С.144-162). Одной из удобных моделей при биохимических, иммунологических и фармакологических исследованиях считается саркома С-45. Эта саркома перевивается на беспородных крыс практически в 100% случаев. Самопроизвольное рассасывание опухолей, достигших 1-1,5 см в диаметре, отмечается менее чем в 1% случаев. Опухоль обладает умеренным темпом роста. На 5-8 день диаметр ее достигает 8-15 мм, а на 21-25 день - 40-60 мм. Животные погибают, как правило, на 25-30 день при среднем весе опухоли 37-38 г. Саркома растет равномерно, сезонные колебания в перевиваемости и темпе роста невелики.It is known that transplantable tumors, despite their greater remoteness from human tumors than spontaneous or induced, have several advantages. This is, firstly, the possibility of staging mass experiments in a relatively short time, since they can quickly be obtained in large quantities. Another advantage of transplantable tumor strains is the relative constancy of their structure and biological properties. These advantages make them an indispensable tool in the field of experimental oncology, especially during the initial selection of anticancer drugs (Konoplev VP. Tumors to be transplanted. // in the book “Models and methods of experimental oncology (practical guide).” Ed. A.D. Timofeevsky, M., 1960 .-- S. 144-162). One of the convenient models for biochemical, immunological and pharmacological studies is considered to be S-45 sarcoma. This sarcoma is transplanted to outbred rats in almost 100% of cases. Spontaneous resorption of tumors reaching 1-1.5 cm in diameter is noted in less than 1% of cases. The tumor has a moderate growth rate. On days 5-8, its diameter reaches 8-15 mm, and on days 21-25, 40-60 mm. Animals die, as a rule, on days 25-30 with an average tumor weight of 37-38 g. The sarcoma grows evenly, seasonal fluctuations in transplantability and growth rate are small.
Однако этот штамм опухоли до настоящего времени перевивается и растет в подкожной клетчатке, и все перечисленные положительные моменты не использовались для попытки воспроизведения С-45 в ткани легкого.However, this strain of the tumor is still transplanted and grows in the subcutaneous tissue, and all these positive points have not been used to attempt to reproduce C-45 in lung tissue.
Известен способ перевивки опухоли в ткань легкого мыши путем введения взвеси опухолевой ткани в нос («Воспроизведение заболеваний у животных для экспериментально-терапевтических исследований». Под ред. Лазарева Н.В., «Медгиз», Ленинградское отделение, 1954. - С.90-92), избранный нами в качестве прототипа. Техника перевивки состоит в следующем. Мыши подвергаются легкому эфирному наркозу, для чего их помещают в закрытый крышкой стеклянный сосуд с помещенным на дно ватным шариком с эфиром. Как только мышь примет лежачее положение, ее вынимают и при помощи тонко вытянутой пастеровской пипетки, соединенной с мягкой резиновой трубкой с мунштуком или туберкулинового шприца, на кончик носа мышей наносят асцитическую жидкость, полученную при карциноме Эрлиха мышей, таким образом, чтобы были закрыты обе ноздри. Обычно наносят 10 капель одну за другой (всего около 0,05 мл), по мере втягивания их в нос мыши. При правильно проведенном наркозе процент удачных перевивок достаточно высок - более 90%. Макроскопически заметные узелки опухоли обнаруживаются на 12-15 день, а опухоли значительной величины - на 20-25 день. Вскоре все мыши погибают.There is a method of transplanting a tumor into the lung tissue of a mouse by introducing a suspension of tumor tissue into the nose ("Reproduction of diseases in animals for experimental and therapeutic research." Edited by N. Lazarev, "Medgiz", Leningrad Branch, 1954. - P.90 -92), we have chosen as a prototype. The technique of transplantation is as follows. Mice undergo light ether anesthesia, for which they are placed in a glass jar closed with a lid with a cotton ball placed on the bottom with ether. As soon as the mouse is in a prone position, it is removed and a thin elongated Pasteur pipette connected to a soft rubber tube with a mouthpiece or a tuberculin syringe is applied to the tip of the mouse’s nose, the ascitic fluid obtained from Ehrlich carcinoma of the mice, so that both nostrils are closed . Usually 10 drops are applied one after the other (only about 0.05 ml), as they are drawn into the nose of the mouse. With proper anesthesia, the percentage of successful inoculations is quite high - more than 90%. Macroscopically noticeable tumor nodules are detected on days 12-15, and significant tumors on days 20-25. Soon, all the mice die.
Однако, как указывают сами авторы, успех перевивки зависит от правильной наркотизации мышей. При недостаточном наркозе мыши быстро просыпаются, перестают втягивать в дыхательные пути наносимую жидкость и начинают чихать, что удаляет наносимую взвесь из наружных дыхательных путей. При слишком глубоком наркозе мыши плохо втягивают жидкость и, при этом нередко, значительная часть асцитической жидкости попадает в пищевод. Кроме того, при слишком глубоком наркозе много мышей погибает вскоре после перевивки. Вторым моментом, делающим такой способ воспроизведения перевивной опухоли легкого практически не приемлемым в настоящее время, является использование в качестве наркозного медицинского эфира, отнесенного в список препаратов, находящихся на особом учете. И, наконец, единственным животным, на котором возможно воспроизведение злокачественных опухолей легких, адекватных таковым у человека, является крыса. Это связано с тем, что легкие крысы более сходны с легкими человека, чем у мыши. У крыс, в частности как у человека, в бронхах имеются слизистые железы, отсутствующие у мышей.However, as the authors themselves indicate, the success of the inoculation depends on the proper anesthesia of the mice. With insufficient anesthesia, the mice quickly wake up, stop drawing the applied liquid into the airways and begin to sneeze, which removes the applied suspension from the external airways. If the anesthesia is too deep, the mice poorly absorb the fluid and, often, a significant part of the ascitic fluid enters the esophagus. In addition, with too deep anesthesia, many mice die soon after inoculation. The second point that makes this method of reproducing a transplantable lung tumor practically unacceptable at present is the use of anesthetized medical air, which is included in the list of drugs that are specially registered. And finally, the only animal that can reproduce malignant lung tumors that are adequate to those in humans is a rat. This is due to the fact that lungs of rats are more similar to human lungs than in mice. In rats, in particular as in humans, there are mucous glands in the bronchi that are absent in mice.
Целью изобретения является упрощение способа получения перевивной опухоли, растущей в ткани легкого крыс.The aim of the invention is to simplify the method of obtaining an inoculant tumor growing in rat lung tissue.
Поставленная цель достигается тем, что на 14-21 сутки от момента традиционной перевивки саркомы С-45 самцам белых беспородных крыс, одно животное забивают, стерильными инструментами в боксе извлекают опухоль, соединительнотканную капсулу отделяют, выбирают кусочек жизнеспособной ткани, имеющей серовато-розовый цвет, и переносят в стерильную чашку Петри. Кусочек два-три раза ополаскивают физиологическим раствором и переносят в стерильный гомогенизатор. Опухоль измельчают, полученную опухолевую кашицу разводят стерильным физиологическим раствором в отношении 1:5 по объему и набирают в стерильный шприц. Введение опухолей взвеси производят самцам белых беспородных крыс, фиксированных на спине, с соблюдением правил асептики в подключичную вену в дозе 0,5 мл.This goal is achieved in that on days 14-21 from the moment of traditional transplantation of S-45 sarcoma to males of white outbred rats, one animal is killed, a tumor is removed with boxing tools, the connective tissue capsule is removed, a piece of viable tissue with a grayish-pink color is selected, and transferred to a sterile Petri dish. A piece is rinsed two to three times with saline and transferred to a sterile homogenizer. The tumor is ground, the resulting tumor slurry is diluted with sterile saline in a ratio of 1: 5 by volume and collected in a sterile syringe. Suspension tumors are administered to male white outbred rats fixed on the back, following the rules of asepsis in the subclavian vein at a dose of 0.5 ml.
Изобретение «Способ воспроизведения злокачественного процесса в эксперименте» является новым, так как оно неизвестно из уровня медицины, а именно в экспериментальной онкологии при получении злокачественной опухоли, растущей в ткани легкого.The invention "A method for reproducing a malignant process in an experiment" is new, since it is unknown from the level of medicine, namely in experimental oncology, when a malignant tumor grows in the lung tissue.
Анализ известных способов воспроизведения экспериментального злокачественного процесса в легких дает основания говорить о новизне предлагаемого способа, который представлен морфологически подтвержденной саркомой и 100% воспроизводимостью.Analysis of known methods for reproducing an experimental malignant process in the lungs gives reason to talk about the novelty of the proposed method, which is represented by morphologically confirmed sarcoma and 100% reproducibility.
Новизна изобретения заключается в том, что в отличие от прототипа предлагаемый «Способ воспроизведения злокачественного процесса в эксперименте» осуществляется без предварительной наркотизации животных, выполняется с использованием белых беспородных крыс и подчиняется требованиям, предъявляемым к экспериментальным опухолям, одно из которых постулирует, что опухолевые трансплантаты должны перевиваться в 100% случаев, расти и приводить животных к гибели.The novelty of the invention lies in the fact that, in contrast to the prototype, the proposed “Method for reproducing a malignant process in an experiment” is carried out without prior anesthesia of animals, is performed using white outbred rats and obeys the requirements for experimental tumors, one of which postulates that tumor transplants should interbreed in 100% of cases, grow and lead animals to death.
Разработанный способ обладает изобретательским уровнем, так как явным образом не следует для специалиста из известного уровня развития экспериментальной онкологии и воспроизведения перевивной злокачественной опухоли в легком крыс. В известных источниках информации России, стран СНГ и за рубежом подобный способ не обнаружен.The developed method has an inventive step, as it obviously does not follow for a specialist from the known level of development of experimental oncology and the reproduction of transplantable malignant tumors in rat lungs. In well-known sources of information in Russia, the CIS countries and abroad, a similar method was not found.
Изобретение является промышленно применимым, так как оно может быть многократно воспроизведено в научно-исследовательских учреждениях онкологического профиля, располагающих вивариями.The invention is industrially applicable, since it can be repeatedly reproduced in research institutions of oncological profile with vivariums.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
Перевивка производится в боксе. Инструменты, посуду, руки дезинфицируют общепринятым способом. Ассистент забивает животное с саркомой С-45, растущей традиционно, путем декапитации, фиксирует его, смазывает кожу над опухолью и прилежащую зону 70% этиловым спиртом с небольшим количеством настойки йода.Tailoring is made in boxing. Tools, dishes, hands are sanitized in the usual way. The assistant slaughter an animal with S-45 sarcoma, which has traditionally grown by decapitation, fixes it, lubricates the skin over the tumor and the adjacent area with 70% ethanol with a small amount of iodine tincture.
Экспериментатор стерильными инструментами, отступив на 1-2 см от опухоли, выполняет разрез почти на всю длину животного, и отсепаровывает кожу. Край кожного лоскута необходимо выворачивать таким образом, чтобы шерсть, которая плохо обеззараживается, не попадала на опухоль. Для этого край кожного лоскута захватывают 2-3 зажимами Кохера. Опухоль надрезают в продольном направлении, из ее периферической части, обращенной к мышцам брюшной стенки (а не к коже), вырезают кусочек жизнеспособной ткани, имеющей серовато-розовый цвет, и переносят его в стерильную чашку Петри. Соединительнотканную капсулу отделяют хирургическим пинцетом in situ. Кусочек опухоли ополаскивают стерильным хирургическим раствором и переносят в другую чашку Петри. Эту процедуру повторяют 2-3 раза для вымывания остатков крови и микроскопических очажков некроза. Опухоль переносят в стерильный гомогенизатор и измельчают, полученную опухолевую кашицу разводят стерильным физиологическим раствором в отношении 1:5 по объему и набирают в стерильный шприц, гомогенизируют, дважды пропускают через пресс и нейлон, разводят стерильным физиологическим раствором в соотношении 1:5, проверяют жизнеспособность клеток с помощью трипанового синего.The experimenter using sterile instruments, 1-2 cm away from the tumor, performs an incision almost the entire length of the animal, and separates the skin. The edge of the skin flap must be turned out so that the hair, which is poorly disinfected, does not fall on the tumor. To do this, the edge of the skin flap is captured with 2-3 Kocher clamps. A tumor is incised in the longitudinal direction, from its peripheral part facing the muscles of the abdominal wall (and not to the skin), a piece of viable tissue with a grayish-pink color is cut out and transferred to a sterile Petri dish. The connective tissue capsule is separated with surgical tweezers in situ. A piece of the tumor is rinsed with a sterile surgical solution and transferred to another Petri dish. This procedure is repeated 2-3 times to wash away the remnants of blood and microscopic lesions of necrosis. The tumor is transferred to a sterile homogenizer and crushed, the resulting tumor slurry is diluted with sterile saline in a ratio of 1: 5 by volume and put into a sterile syringe, homogenized, twice passed through a press and nylon, diluted with sterile saline in a ratio of 1: 5, and cell viability is checked. with trypan blue.
Крысу, которой производят перевивку, фиксируют в положении на спине, смазывают надключичную область 70% спиртом с небольшим содержанием раствора йода, затем в стерильных условиях взвесь опухолевых клеток вводят в подключичную вену в объеме 0,5 мл взвеси, содержащей 2 млн опухолевых клеток. Место прокола плотно зажимают ватным тампоном со спиртом и удерживают в течение 1 минуты.The rat being grafted is fixed in the supine position, the supraclavicular region is lubricated with 70% alcohol with a small iodine solution, then under sterile conditions a suspension of tumor cells is injected into the subclavian vein in a volume of 0.5 ml of suspension containing 2 million tumor cells. The puncture site is tightly clamped with a cotton swab with alcohol and held for 1 minute.
Процедура была проведена 350 животным, которые погибали в течение 35-42 дней от момента перевивки.The procedure was performed on 350 animals that died within 35-42 days from the moment of inoculation.
После вскрытия животных во всех случаях в легких был обнаружен многофокусный рост опухоли.After opening the animals, in all cases, multifocal tumor growth was detected in the lungs.
При микроскопическом исследовании, проведенном еженедельно вплоть до гибели животных, обнаружено следующее. В 1-2 недели: в ткани легкого значительно повышается кровенаполнение сосудов, механическое растяжение воздухоносных путей, прежде всего альвеол. Наблюдается развитие интерстициального и интраольвеалярного отека, развитие дистрофии альвеолоцитов и эндотелиоцитов кровеносных капилляров. Т.е. редукцию кровотока и кровоизлияния в ткань легкого также можно считать одним из пусковых механизмов развития в этом органе злокачественной опухоли. Вторым важным моментом является развитие мелких и крупных дистелектазов и перибронхиальное образование лимфоцитарных инфильтратов. К концу второй недели в отдельных местах можно видеть пролиферацию эпителия альвеол. При этом в соединительной ткани появляются альолоподобные и железистоподобные структуры, ложные бронхи, тяжи эпителиальных клеток, которые не дифференцируются в новые альвеолы и не обеспечивают их функции, а остаются в соединительной ткани, принимающей вид «аэрированного рубца». На таком структурном и метаболическом фоне, начиная с 3 недели от момента перевивки, наблюдается развитие истинного опухолевого процесса в виде формирования по периферии и в центре легких опухолевых очагов. Клетки имеют четкую веретеновидную форму. Такой активный захват территории легкого наблюдается в этот срок чаще в нижних, реже в верхних долях легких. Опухолевая инвазия обнаруживается не только в межальвеолярных перегородках, но и в основных респираторных структурах, в том числе и бронхиолах. В отдельных участках отмечается гиперплазия соединительной ткани, образующей многоядерный слой фибробластов и гистиоцитов, вероятно, это процесс построения опухолевыми клетками собственной стромы за счет материала органа-хозяина. На терминальной стадии (5-6 недели) наблюдается тотальное поражение легких опухолью. В центральной части легкого диффузный рост с очагами некроза. Помимо традиционной веретеновидной формы опухолевые клетки округлой и овальной формы с различными фигурами патологических митозов.A microscopic examination conducted weekly until the death of the animals revealed the following. In 1-2 weeks: the blood vessels in the lungs significantly increase blood pressure, mechanical stretching of the airways, especially the alveoli. The development of interstitial and intraolveolar edema, the development of dystrophy of alveolocytes and endotheliocytes of blood capillaries is observed. Those. reduction of blood flow and hemorrhage into the lung tissue can also be considered one of the triggers for the development of a malignant tumor in this organ. The second important point is the development of small and large distelectases and peribronchial formation of lymphocytic infiltrates. By the end of the second week, in some places, proliferation of the alveolar epithelium can be seen. At the same time, alol-like and glandular structures, false bronchi, strands of epithelial cells appear in the connective tissue, which do not differentiate into new alveoli and do not provide their functions, but remain in the connective tissue, which takes the form of an “aerated scar”. Against such a structural and metabolic background, starting from 3 weeks from the moment of inoculation, the development of a true tumor process is observed in the form of formation of tumor foci along the periphery and in the center of the lungs. The cells have a clear fusiform shape. Such active seizure of the lung territory is observed at this time more often in the lower, less often in the upper lobes of the lungs. Tumor invasion is found not only in the interalveolar septum, but also in the main respiratory structures, including bronchioles. In some areas, hyperplasia of the connective tissue, which forms a multinuclear layer of fibroblasts and histiocytes, is noted; this is probably the process of building tumor cells of their own stroma due to the material of the host organ. At the terminal stage (5-6 weeks), a total tumor of the lungs is observed. In the central part of the lung, diffuse growth with foci of necrosis. In addition to the traditional fusiform shape, the tumor cells are round and oval in shape with various figures of pathological mitoses.
Технико-экономическая эффективность «Способа воспроизведения злокачественного процесса в эксперименте» заключается в том, что опухолевые трансплантаты перевиваются в 100% случаев, обеспечивают 100% воспроизводимость, растут и приводят животных к гибели. Упрощен способ получения перевивной опухоли, растущей в ткани легкого крыс. Использование белых беспородных крыс без предварительной наркотизации имеет ряд преимуществ: возможность постановки массовых экспериментов за относительно короткий срок и в большом количестве, сходство легких крыс с легкими человека, относительное постоянство строения и биологических свойств опухолей.The technical and economic efficiency of the “Method for reproducing a malignant process in an experiment” lies in the fact that tumor grafts are transplanted in 100% of cases, provide 100% reproducibility, grow and lead animals to death. A simplified method for producing a transplantable tumor growing in rat lung tissue. The use of white outbred rats without prior anesthesia has several advantages: the possibility of staging mass experiments in a relatively short time and in large numbers, the similarity of rat lungs to human lungs, the relative constancy of the structure and biological properties of tumors.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008133088/14A RU2388064C1 (en) | 2008-08-11 | 2008-08-11 | Method for simulation of malignant process in experiment |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008133088/14A RU2388064C1 (en) | 2008-08-11 | 2008-08-11 | Method for simulation of malignant process in experiment |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2008133088A RU2008133088A (en) | 2010-02-20 |
RU2388064C1 true RU2388064C1 (en) | 2010-04-27 |
Family
ID=42126700
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008133088/14A RU2388064C1 (en) | 2008-08-11 | 2008-08-11 | Method for simulation of malignant process in experiment |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2388064C1 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2676641C1 (en) * | 2018-04-05 | 2019-01-09 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of stimulating chronic pain of malignant growth in lung rats |
RU2743960C1 (en) * | 2020-07-02 | 2021-03-01 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of modifying the development of adenocarcinoma experimentally |
RU2750127C1 (en) * | 2021-02-02 | 2021-06-22 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | A method for modeling the primary multiple growth of malignant tumors with the suppression of one tumor by another in the conditions of primary immunodeficiency |
RU2751930C1 (en) * | 2021-01-20 | 2021-07-20 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for creating polyneoplasia with stimulation of tumor growth in conditions of primary immunodeficiency in experiment |
-
2008
- 2008-08-11 RU RU2008133088/14A patent/RU2388064C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
ЛАЗАРЕВ Н.В. Воспроизведение заболеваний у животных для экспериментально-терапевтических исследований. «Медгиз», Ленинградское отделение, 1954. с.90-92. * |
ОЛЬШЕВСКАЯ Л.В. Индукция сарком небластомогенной формой инородного тела и глутаральдегидом. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1988, т.106, № 9, с.337-339. ЕВСТРАТОВА О.Ф. Влияние электростимуляции эмоциогенных структур мозга на морфофункциональное состояние щитовидной железы крыс с перевивной саркомой-45. Современные проблемы экспериментальной и клинической онкологии, 1991, с.46-50. SHINKARENKO VS. [Metastasis of sarcoma 45 and 536 following different methods of inoculation] Biull Eksp Biol Med. 1976 Mar; 81(3): 360-3. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2676641C1 (en) * | 2018-04-05 | 2019-01-09 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of stimulating chronic pain of malignant growth in lung rats |
RU2743960C1 (en) * | 2020-07-02 | 2021-03-01 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of modifying the development of adenocarcinoma experimentally |
RU2751930C1 (en) * | 2021-01-20 | 2021-07-20 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for creating polyneoplasia with stimulation of tumor growth in conditions of primary immunodeficiency in experiment |
RU2750127C1 (en) * | 2021-02-02 | 2021-06-22 | федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации | A method for modeling the primary multiple growth of malignant tumors with the suppression of one tumor by another in the conditions of primary immunodeficiency |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2008133088A (en) | 2010-02-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103212071B (en) | Stem cell fusion model of carcinogenesis | |
Miwa et al. | Tumor-targeting Salmonella typhimurium A1-R prevents experimental human breast cancer bone metastasis in nude mice | |
RU2388064C1 (en) | Method for simulation of malignant process in experiment | |
CN109432130A (en) | Application of the mescenchymal stem cell excretion body in the drug that preparation prevents and treats induced lung injury | |
CN101766644A (en) | Fungus polysaccharide composition with anticancer effect and preparation method thereof | |
RU2597320C1 (en) | Method of treating postradiation rectovaginal fistulas | |
CN108329381A (en) | A kind of ten hexapeptides from Eucheuma and its application in preparing prevention Malignant tumor of bonal metastasis drug | |
CN104823854A (en) | Primary culture medium special for panax notoginseng tissue culture seedlings | |
RU2650587C1 (en) | Method of the melanoma b16 malignant growth in mice modification with chronic pain | |
US20230338430A1 (en) | Technical method for treating vitiligo through hair follicle melanocyte stem cell transplantation | |
CN113875689A (en) | Establishment of nude mouse liver cancer orthotopic transplantation model | |
CN109197307A (en) | A kind of implantation methods improving silkwood survival rate | |
CN105251006B (en) | Purposes of the TLR3 inhibitor in the drug for preparing treatment cocaine habituation | |
CN113648100A (en) | Modeling method of mouse hypertensive cerebral hemorrhage model | |
CN109846903A (en) | A kind of set medicine of combination lung lavage treatment pulmonary fibrosis | |
Nunez-Olle et al. | In Vivo Assessment of Metastatic Cell Potential in Prostate Cancer | |
CN113143525A (en) | Construction method of novel brain metastasis tumor animal model | |
RU2676641C1 (en) | Method of stimulating chronic pain of malignant growth in lung rats | |
CN101513399B (en) | Application of T-2 toxin in the preparation of drugs for treating bone cancers and myeloproliferative disorder | |
CN105999416A (en) | Autologous fat and umbilical cord mesenchymal stem cell composition used for plastic filling | |
RU2616763C1 (en) | Method for surgical treatment of thyroid cancer with metastasis in neck lymph nodes | |
RU2301667C1 (en) | Method for treating the diseases of different etiology and traumas of different organs | |
CN110214747A (en) | A kind of novel mouse original position cholangiocarcinoma model and its method for building up | |
RU2725273C1 (en) | Method of human pancreatic neuroendocrine tumor fragment transplantation into immunodeficiency mice pancreatic gland | |
CN109394784A (en) | The screening model of anti-head-neck carcinoma tumour medicine |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20100812 |