RU2329639C2 - Method of potato microcloning - Google Patents

Method of potato microcloning Download PDF

Info

Publication number
RU2329639C2
RU2329639C2 RU2006113501/13A RU2006113501A RU2329639C2 RU 2329639 C2 RU2329639 C2 RU 2329639C2 RU 2006113501/13 A RU2006113501/13 A RU 2006113501/13A RU 2006113501 A RU2006113501 A RU 2006113501A RU 2329639 C2 RU2329639 C2 RU 2329639C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
plants
nutrient medium
potato
vitro
sucrose
Prior art date
Application number
RU2006113501/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2006113501A (en
Inventor
Светлана Александровна Паршина (RU)
Светлана Александровна Паршина
Александр Степанович Лукаткин (RU)
Александр Степанович Лукаткин
Original Assignee
Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева" filed Critical Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева"
Priority to RU2006113501/13A priority Critical patent/RU2329639C2/en
Publication of RU2006113501A publication Critical patent/RU2006113501A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2329639C2 publication Critical patent/RU2329639C2/en

Links

Landscapes

  • Cultivation Of Plants (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: agriculture.
SUBSTANCE: invention agricultural biotechnologies. Healthy potato plants are cultivated in vitro by micrografting into nutrient medium containing macro- and microelements according to Murashige&Skoog formula, Fe-chelate, agar, vitamins according to White subscription, and sucrose. The regenerated plants obtained are replanted out. Additionally 3 mg/l of glycine, 1000-2000 mg/l of activated carbon and 1-2 mg/l of ascorbic acid are introduced into the nutrient medium. Original plants undergo micrografting at the apical, middle and basal parts. Apical and middle parts are vegetated in nutrient medium with sucrose content of 20 g/l at the temperature of 23-25°C in daytime and 17-18°C at night. Further regenerated potato plants are bedded. Basal part is vegetated in nutrient medium with sucrose content of 80 g/l in darkness at the temperature of 8-10°C, with further growing of potato microtubers in vitro.
EFFECT: allows improving survival rate and accelerate explants growth, increasing reproduction rate of regenerated plants and quantity of in vitro microtubers, as well as improving survival rate for regenerated plants after replanting them out.
6 tbl

Description

Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии, картофелеводству, семеноводству картофеля, а именно к ускоренному размножению семенного картофеля на безвирусной основе.The invention relates to agricultural biotechnology, potato growing, seed production of potatoes, and in particular to accelerated propagation of seed potatoes on a virus-free basis.

Известен способ микроклонального размножения картофеля, включающий культивирование оздоровленных растений картофеля in vitro. Черенкование проводят на питательной среде, содержащей макро- и микроэлементы по Мурасиге-Скугу, сахарозу, Fe-хелата, глицерин, ИУК (гетероауксина), агар-агара, витамины по Уайту и коричную кислоту. Полученные растения высаживают в грунт (RU №2181942, МПК7 А01Н 4/00, С12N 5/02, опубл. 10.05.2002 г.).A known method of microclonal propagation of potatoes, including cultivating healthy potato plants in vitro. Cuttings are carried out on a nutrient medium containing macro- and microelements according to Murasige-Skoog, sucrose, Fe-chelate, glycerin, IAA (heteroauxin), agar-agar, White vitamins and cinnamic acid. The resulting plants are planted in the ground (RU No. 2181942, IPC 7 A01H 4/00, C12N 5/02, publ. 05/10/2002).

Недостатками данного способа являются низкая скорость роста растений in vitro, небольшой выход растений-регенерантов и микроклубней из одного исходного растения in vitro, кроме того, приживаемость растений, выращенных на питательной среде in vitro при пересадке в грунт, составляет всего 70-80%.The disadvantages of this method are the low growth rate of plants in vitro, the small yield of regenerated plants and micro-tubers from one source plant in vitro, in addition, the survival rate of plants grown on a nutrient medium in vitro when transplanted into the soil is only 70-80%.

Технический результат заключается в повышении жизнеспособности и ускорении роста эксплантов, увеличении коэффициента размножения растений-регенерантов и количества микроклубней in vitro, а также улучшении приживаемости растений-регенерантов при пересадки в грунт.The technical result consists in increasing the viability and accelerating the growth of explants, increasing the reproduction rate of regenerated plants and the number of micro-tubers in vitro, as well as improving the survival rate of regenerated plants during transplantation into the ground.

Сущность изобретения заключается в том, что в способе микроклонального размножения картофеля, включающем культивирование оздоровленных растений картофеля in vitro путем микрочеренкования на питательную среду, содержащую макро- и микроэлементы по прописи Мурасиге-Скуга, Fe-хелат, агар-агар, витамины по Уайту и сахарозу, получение растений-регенерантов и высадку растений-регенерантов в грунт, в питательную среду дополнительно вводят 3 мг/л глицина, 1000-2000 мг/л активированного угля и 1-2 мг/л аскорбиновой кислоты. Микрочеренкование исходных растений проводят на апикальную, среднюю и базальную части. Выращивание апикальной и средней частей осуществляют на питательной среде с содержанием сахарозы в количестве 20 г/л при температуре 23-25°С днем и 17-18°С ночью, с последующим высаживанием растений-регенерантов картофеля в грунт, а выращивание базальной части проводят на питательной среде с содержанием сахарозы в количестве 80 г/л в темноте при температуре 8-10°С, с последующим получением микроклубней картофеля in vitro.The essence of the invention lies in the fact that in the method of microclonal propagation of potatoes, including cultivating healthy potato plants in vitro by microcrossing on a nutrient medium containing macro- and micronutrients according to the prescription Murashige-Skoog, Fe-chelate, agar-agar, White vitamins and sucrose , obtaining regenerated plants and planting regenerated plants in the soil, 3 mg / l of glycine, 1000-2000 mg / l of activated carbon and 1-2 mg / l of ascorbic acid are additionally introduced into the nutrient medium. Microcutting of the initial plants is carried out on the apical, middle and basal parts. The apical and middle parts are grown on a nutrient medium with sucrose in an amount of 20 g / l at a temperature of 23-25 ° C during the day and 17-18 ° C at night, followed by planting potato regenerated plants in the ground, and the basal part is grown on a nutrient medium containing sucrose in an amount of 80 g / l in the dark at a temperature of 8-10 ° C, followed by obtaining potato micro-tubers in vitro.

Увеличение или уменьшение температуры выращивания растений-регенерантов от предлагаемой (23-25°С днем и 17-18°С ночью) и концентрации сахарозы в среде (20 г/л) приводит к снижению роста растений-регенерантов и уменьшению коэффициента их размножения.An increase or decrease in the temperature of growing regenerated plants from the proposed one (23-25 ° C during the day and 17-18 ° C at night) and the concentration of sucrose in the medium (20 g / l) leads to a decrease in the growth of regenerated plants and a decrease in their reproduction rate.

Изменение пределов температуры получения микроклубней, предлагаемой по данному способу (8-10°С), и концентрации сахарозы в среде (80 г/л) приводит к уменьшению выхода микроклубней и их массы.Changing the temperature limits of obtaining micro-tubers, proposed by this method (8-10 ° C), and the concentration of sucrose in the medium (80 g / l) leads to a decrease in the yield of micro-tubers and their mass.

При добавлении в питательную среду 1000-2000 мг/л активированного угля и 1-2 мг/л аскорбиновой кислоты происходят более быстрый рост стебля, формирование хорошо развитой корневой системы и образование большого числа междоузлий, что позволяет вести повторное микрочеренкование через 3-4 недели. В результате происходит повышение коэффициента размножения, в связи с чем увеличивается выход пробирочных растений через 3 месяца после посадки одного исходного до 1,5-2 тыс. штук, в зависимости от сорта. Корневая система растений-регенерантов картофеля in vitro, культивируемых на данной среде, более мощная, и такие растения лучше укореняют в грунте (процент выживания 90-98%).When 1000-2000 mg / L of activated carbon and 1-2 mg / L of ascorbic acid are added to the nutrient medium, the stem grows faster, a well-developed root system is formed and a large number of internodes are formed, which allows repeated micro-cutting in 3-4 weeks. As a result, there is an increase in the reproduction rate, in connection with which the yield of test plants increases 3 months after planting one source to 1.5-2 thousand units, depending on the variety. The root system of in vitro potato regenerated plants cultivated on this medium is more powerful, and such plants are better rooted in the soil (survival rate 90-98%).

Опыты проводились в лаборатории клеточной инженерии кафедры ботаники и физиологии растений ГОУВПО «Мордовский государственный университет имени Н.П.Огарева» с коллекционными безвирусными сортами картофеля. Питательная среда в контрольном варианте (табл.1) готовилась по прототипу, в опытном - с добавлением 1-2 мг/л аскорбиновой кислоты и 1000-2000 мг/л активированного угля.The experiments were carried out in the cell engineering laboratory of the Department of Botany and Plant Physiology of GOUVPO “Mordovian State University named after NP Ogarev” with collection of virus-free potato varieties. The nutrient medium in the control version (Table 1) was prepared according to the prototype, in the experimental one with the addition of 1-2 mg / l ascorbic acid and 1000-2000 mg / l activated carbon.

Таблица 1.Table 1. Состав питательной среды, мг/лThe composition of the nutrient medium, mg / l Контроль (прототипя)Control (prototype) Предлагаемое решениеProposed solution Аммоний азотнокислыйAmmonium nitrate 16501650 16501650 Калий азотнокислыйPotassium nitrate 19001900 19001900 Кальций хлористый двухводныйTwo-water calcium chloride 440440 440440 Магний сернокислый семиводныйMagnesium sulfate heptahydrate 370370 370370 Калий фосфорнокислый однозамещенныйPotassium phosphate monosubstituted 170170 170170 Борная кислотаBoric acid 6,26.2 6,26.2 Марганец сернокислый четырехводныйFour-manganese sulfate 27,727.7 27,727.7 Цинк сернокислый четырехводныйZinc sulfate four-water 8,68.6 8,6,8.6 Калий йодистыйPotassium iodide 0,830.83 0,830.83 Натрий молибденовокислый двухводныйTwo-water sodium molybdenum acid 0,250.25 0,250.25 Медь сернокислая пятиводнаяCopper sulfate pentahydrate 0,0250,025 0,0250,025 Кобальт хлористый шестиводныйCobalt chloride hexahydrate 0,0250,025 0,0250,025 Трилон БTrilon B 373373 373373 Железо сернокислое семиводноеIron sulphate heptahydrate 27,827.8 27,827.8 ГлицинGlycine 33 33 Коричная кислотаCinnamic acid 0,5-1,00.5-1.0 -- ГетероауксинHeteroauxin 1one -- ТиаминThiamine 1,01,0 0,50.5 ПиридоксинPyridoxine 0,20.2 0,50.5 Пантотенат кальцияCalcium pantothenate 0,20.2 -- Активированный угольActivated carbon -- 1000-20001000-2000 Аскорбиновая кислотаVitamin C -- 1-21-2 СахарозаSucrose 3000030000 20000-8000020000-80000 Агар-агарAgar agar 7000,07000.0 70007000 ВодаWater до 1 лup to 1 l до 1 лup to 1 l

Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.

В вымытые и высушенные пробирки (19×210 мм) наливают по 7-10 мл агаризированной среды, закрывают ватно-марлевыми пробками, составляют в медицинские бюксы, автоклавируют 20 мин при давлении 1 атм и температуре 120°С. Используют 2 варианта питательных сред, которые различают по содержанию сахарозы. Для выращивания растений-регенерантов используют питательную среду, содержащую макро- и микроэлементы по прописи Мурасиге-Скуга, Fe-хелат, сахарозу, глицин, агар-агар, витамины по Уайту, 20 г/л сахарозы и дополнительно 1000-2000 мг/л активированного угля и 1-2 мг/л аскорбиновой кислоты, а для получения микроклубней аналогичную питательную среду, содержащую 80 мг/л сахарозы.In washed and dried tubes (19 × 210 mm), 7-10 ml of agarized medium is poured, closed with cotton-gauze plugs, made up in medical bottles, autoclaved for 20 minutes at a pressure of 1 atm and a temperature of 120 ° C. Use 2 options of nutrient media, which are distinguished by the content of sucrose. For the growth of regenerated plants, a nutrient medium is used that contains macro- and microelements according to the prescription Murashige-Skoog, Fe-chelate, sucrose, glycine, agar-agar, White vitamins, 20 g / l of sucrose and an additional 1000-2000 mg / l of activated coal and 1-2 mg / l of ascorbic acid, and to obtain micro-tubers a similar nutrient medium containing 80 mg / l of sucrose.

Микрочеренкование исходных растений производят в ламинар-боксе. Пробирочные растения, имеющие 12-15 листьев, извлекают из пробирки и черенкуют на чашке Петри. В пробирки высаживают с помощью пинцета по 2 однопочковых черенка из апикальной (верхушечной) и средней частей растения на питательную среду, содержащую 20 г/л сахарозы. Пробирки с черенками подписывают и выставляют в штативах на стеллажи с освещением 4-5 тыс. люкс люминесцентными лампами, фотопериод 16 ч и поддерживают температуру ночью 17-18°С, днем - 23-25°С для дальнейшего получения растений-регенерантов. Пробирки с черенками базальной части (2-3 черенка прикорневой зоны), высаженными на питательную среду, содержащую 80 г /л сахарозы, помещают в темноту при температуре 8-10°С для дальнейшего клубнеобразования.Microcutting of the initial plants is carried out in a laminar box. Test plants with 12-15 leaves are removed from the test tube and cut in a petri dish. 2 single-kidney cuttings from the apical (apical) and middle parts of the plant are planted in tweezers using tweezers on a nutrient medium containing 20 g / l of sucrose. Test tubes with cuttings are signed and placed in racks on racks with illumination of 4-5 thousand lux with fluorescent lamps, a photoperiod of 16 hours and maintain the temperature at night 17-18 ° C, daytime - 23-25 ° C for further obtaining regenerated plants. Test tubes with cuttings of the basal part (2-3 cuttings of the basal zone), planted on a nutrient medium containing 80 g / l of sucrose, are placed in the dark at a temperature of 8-10 ° C for further tuberization.

В табл.2 представлена динамика развития растений-регенератов картофеля сорта Невский in vitro в зависимости от состава питательной среды по предлагаемому способу, (содержащей 20 г/л сахарозы).Table 2 presents the dynamics of the development of Nevsky potato plant regenerate plants in vitro depending on the composition of the nutrient medium according to the proposed method (containing 20 g / l sucrose).

Таблица 2.Table 2. Питательная средаCulture medium Возраст растения-регенеранта, сут.Age of the regenerant plant, days 1010 20twenty 30thirty Длина корня, ммRoot length mm ПрототипPrototype 10,1±0,510.1 ± 0.5 21,7±0,621.7 ± 0.6 36,4±0,836.4 ± 0.8 Среда 1Wednesday 1 11,7±0,411.7 ± 0.4 24,6±0,524.6 ± 0.5 40,1±0,740.1 ± 0.7 Среда 2Wednesday 2 12,3±0,312.3 ± 0.3 25,1±0,725.1 ± 0.7 49,7±0,849.7 ± 0.8 Среда 3Wednesday 3 14,3±0,414.3 ± 0.4 25,7±0,525.7 ± 0.5 48,3±0,748.3 ± 0.7 Среда 4Wednesday 4 12,5±0,812.5 ± 0.8 25,8±0,425.8 ± 0.4 47,1±0,547.1 ± 0.5 Длина побега, смShoot length, cm ПрототипPrototype 3,1±0,53.1 ± 0.5 5,7±0,65.7 ± 0.6 8,4±0,88.4 ± 0.8 Среда 1Wednesday 1 3,7±0,33.7 ± 0.3 6,6±0,26.6 ± 0.2 9,1±0,79.1 ± 0.7 Среда 2Wednesday 2 3,9±0,33.9 ± 0.3 7,1±0,77.1 ± 0.7 10,7±0,810.7 ± 0.8 Среда 3Wednesday 3 4,3±0,74.3 ± 0.7 7,7±0,37.7 ± 0.3 11,3±0,711.3 ± 0.7 Среда 4Wednesday 4 4,9±0,84.9 ± 0.8 8,8±0,48.8 ± 0.4 12,2±0,512.2 ± 0.5 Количество узлов/листьев, шт.Number of nodes / leaves ПрототипPrototype 3,0±0,13.0 ± 0.1 5,7±0,65.7 ± 0.6 8,1±1,78.1 ± 1.7 Среда 1Wednesday 1 3,2±0,23.2 ± 0.2 6,3±0,46.3 ± 0.4 9,1±0,79.1 ± 0.7 Среда 2Wednesday 2 3,4±0,33.4 ± 0.3 6,6±0,86.6 ± 0.8 9,7±0,69.7 ± 0.6 Среда 3Wednesday 3 3,3±0,73.3 ± 0.7 6,8±0,76.8 ± 0.7 10,3±0,710.3 ± 0.7 Среда 4Wednesday 4 4,1±0,84.1 ± 0.8 8,8±0,48.8 ± 0.4 11,2±0,511.2 ± 0.5 Примечания:Notes: Среда 1 - питательная среда, содержащая 1 мг/л аскорбиновой кислотыWednesday 1 - a nutrient medium containing 1 mg / l of ascorbic acid Среда 2 - питательная среда, содержащая 2 мг/л аскорбиновой кислотыWednesday 2 - a nutrient medium containing 2 mg / l of ascorbic acid Среда 3 - питательная среда, содержащая 1 мг/л аскорбиновой кислоты + 2 г/л активированного угляWednesday 3 - a nutrient medium containing 1 mg / l of ascorbic acid + 2 g / l of activated carbon Среда 4 - питательная среда, содержащая 2 мг/л аскорбиновой кислоты + 2 г/л активированного угляWednesday 4 - a nutrient medium containing 2 mg / l of ascorbic acid + 2 g / l of activated carbon

К концу первой недели растения-регенеранты из микрочеренков в варианте с активированным углем и аскорбиновой кислотой были на 0,5-1,5 см выше растений контрольного варианта и достигали 3,5-4,9 см. В условиях опытной среды растения раньше и быстрее формировали корневую систему: к концу второй недели длина корней растений-регенерантов достигла 1,1-1,5 см, а к концу третьей - 2,5-2,6 см, в то время как в контрольном варианте она составила лишь 0,5-1,0 см и 2,0-2,2 см. Интенсивное корнеобразование в дальнейшем обеспечивало более быстрый рост стебля у растений-регенерантов. В течение третьей недели максимальный ежедневный прирост у растений по предлагаемому способу составил 5-8 мм, у растений контрольной группы 3-6 мм. Растения контрольного варианта к концу третьей недели культивирования отставали в росте на 2,0-3,5 см. К повторному черенкованию в опытных вариантах растения были готовы к концу 3-й - началу 4-й недели. Количество черенков к этому сроку на опытных растениях было 8-11 против 6-8 на контрольных (табл.3).By the end of the first week, regenerated plants from microcherens in the variant with activated carbon and ascorbic acid were 0.5-1.5 cm higher than the plants of the control variant and reached 3.5-4.9 cm. Under experimental conditions, plants earlier and faster formed the root system: by the end of the second week, the length of the roots of regenerated plants reached 1.1-1.5 cm, and by the end of the third - 2.5-2.6 cm, while in the control it was only 0.5 -1.0 cm and 2.0-2.2 cm. Intensive root formation in the future ensured faster stem growth in reg nerantov. During the third week, the maximum daily increase in plants by the proposed method was 5-8 mm, in plants of the control group 3-6 mm. Plants of the control variant by the end of the third week of cultivation lagged behind in growth by 2.0-3.5 cm. Plants were ready for repeated cuttings in the experimental variants by the end of the 3rd - beginning of the 4th week. The number of cuttings by this time in the experimental plants was 8–11 against 6–8 in the control ones (Table 3).

Таблица 3Table 3 СортGrade Контроль (прототип)Control (prototype) Среда 1Wednesday 1 Среда 2Wednesday 2 Среда 3Wednesday 3 Среда 4Wednesday 4 Жуковский раннийZhukovsky early 10,3±0,410.3 ± 0.4 12,3±0,412.3 ± 0.4 12,2±0,112.2 ± 0.1 13,5±0,213.5 ± 0.2 15,2±0,115.2 ± 0.1 УдачаLuck 11,3±0,411.3 ± 0.4 12,3±0,412.3 ± 0.4 12,2±0,112.2 ± 0.1 13,5±0,213.5 ± 0.2 15,2±0,115.2 ± 0.1 НевскийNevsky 9±0,79 ± 0.7 9,1±0,29.1 ± 0.2 9,7±0,69.7 ± 0.6 10,3±0,710.3 ± 0.7 11,2±0,511.2 ± 0.5 НикулинскийNikulinsky 7,2±0,77.2 ± 0.7 7,5±0,27.5 ± 0.2 8,7±0,68.7 ± 0.6 9,3±0,39.3 ± 0.3 9,7±0,19.7 ± 0.1 Примечания:Notes: Среда 1 - питательная среда, содержащая 1 мг/л аскорбиновой кислотыWednesday 1 - a nutrient medium containing 1 mg / l of ascorbic acid Среда 2 - питательная среда, содержащая 2 мг/л аскорбиновой кислотыWednesday 2 - a nutrient medium containing 2 mg / l of ascorbic acid Среда 3 - питательная среда, содержащая 1 мг/л аскорбиновой кислоты + 2 г/л активированного угляWednesday 3 - a nutrient medium containing 1 mg / l of ascorbic acid + 2 g / l of activated carbon Среда 4 - питательная среда, содержащая 2 мг/л аскорбиновой кислоты + 2 г/л активированного угляWednesday 4 - a nutrient medium containing 2 mg / l of ascorbic acid + 2 g / l of activated carbon

В табл.4 представлены результаты исследований по динамике развития растений-регенерантов, полученных из различных типов черенков картофеля сорта Невский in vitro, по предлагаемому способу на среде №4, содержащей 20 г/л сахарозы и дополнительно 2000 мг/л активированного угля, 2 мг/л аскорбиновой кислоты.Table 4 presents the results of studies on the dynamics of the development of regenerated plants obtained from various types of Nevsky potato cuttings in vitro according to the proposed method on medium No. 4 containing 20 g / l sucrose and an additional 2000 mg / l activated carbon, 2 mg / l ascorbic acid.

Таблица 4Table 4 Тип эксплантаExplant Type Возраст растения-регенеранта, сут.Age of the regenerant plant, days 1010 20twenty 30thirty Длина корня, ммRoot length mm апикальныйapical 14,3±0,114.3 ± 0.1 25,7±0,525.7 ± 0.5 49,7±0,849.7 ± 0.8 среднийaverage 12,3±0,312.3 ± 0.3 25,1±0,725.1 ± 0.7 48,3±0,748.3 ± 0.7 базальныйbasal 11,7±0,211.7 ± 0.2 24,6±0,524.6 ± 0.5 40,1±0,740.1 ± 0.7 Длина побега, смShoot length, cm апикальныйapical 4,9±0,84.9 ± 0.8 8,8±0,48.8 ± 0.4 16,2±0,516.2 ± 0.5 среднийaverage 3,9±0,33.9 ± 0.3 7,1±0,77.1 ± 0.7 12,7±0,812.7 ± 0.8 базальныйbasal 3,1±0,53.1 ± 0.5 5,7±0,65.7 ± 0.6 10,4±0,810.4 ± 0.8 Количество узлов/листьев, шт.Number of nodes / leaves апикальныйapical 4,1±0,84.1 ± 0.8 8,8±0,48.8 ± 0.4 15,2±0,515.2 ± 0.5 среднийaverage 3,4±0,33.4 ± 0.3 6,6±0,86.6 ± 0.8 12,7±0,612.7 ± 0.6 базальныйbasal 3,3±0,43.3 ± 0.4 6,8±0,76.8 ± 0.7 10,3±0,710.3 ± 0.7

К концу первой недели растения-регенеранты, полученные из микрочеренков апикальной (верхушечной) и средней частей растения, были на 0,5-1,0 см выше растений, полученных из базальной части. Они раньше и быстрее формировали корневую систему. Интенсивное корнеобразование в дальнейшем обеспечивало более быстрый рост стебля у растений-регенерантов. Растения, полученные из черенков базальной части (2-3 черенка прикорневой зоны), к концу третьей недели культивирования отставали в росте на 1,5-3 см. К повторному черенкованию в опытном варианте черенки, полученные из апикальной и средней части растений, были готовы к концу 3-й недели, а базальной части - к 4-5-й неделе.By the end of the first week, regenerant plants obtained from microcranes of the apical (apical) and middle parts of the plant were 0.5-1.0 cm higher than plants obtained from the basal part. They formed the root system earlier and faster. Intensive root formation in the future ensured faster stem growth in regenerated plants. Plants obtained from cuttings of the basal part (2-3 cuttings of the basal zone) were 1.5-3 cm behind in growth by the end of the third week of cultivation. Cuttings obtained from the apical and middle parts of plants were ready for repeated cuttings in the experimental version by the end of the 3rd week, and the basal part - by the 4th-5th week.

Коэффициент размножения растений-регенерантов картофеля через 4 недели после черенкования представлен в табл.5.The reproduction rate of potato regenerant plants 4 weeks after the cuttings is presented in Table 5.

Таблица 5Table 5 СортGrade АпикальныеApical СредниеMedium БазальныеBasal Жуковский раннийZhukovsky early 15,2±0,115.2 ± 0.1 13,5±0,213.5 ± 0.2 12,3±0,412.3 ± 0.4 УдачаLuck 15,3±0,215.3 ± 0.2 12,2±0,112.2 ± 0.1 11,3±0,411.3 ± 0.4 НевскийNevsky 11,2±0,511.2 ± 0.5 9,7±0,69.7 ± 0.6 9,1±0,29.1 ± 0.2 НикулинскийNikulinsky 9,7±0,19.7 ± 0.1 9,3±0,39.3 ± 0.3 7,5±0,27.5 ± 0.2

В то же время способность к клубнеобразованию у черенков различных ярусов растения различна. Черенки апикальной части растения образуют незначительное количество мелких клубней, причем значительно позже, чем черенки из базальной части растения, которые образовывают крупные микроклубни. В опытах выявлено, что масса микроклубней, полученных на однопочковых микрочеренках картофеля in vitro, выше при использовании черенков базальной части (табл.6).At the same time, the ability to tuberize in cuttings of different tiers of the plant is different. Cuttings of the apical part of the plant form an insignificant number of small tubers, and much later than cuttings from the basal part of the plant, which form large micro-tubers. The experiments revealed that the mass of microclubs obtained on single-kidney potato micrograins in vitro is higher when using cuttings of the basal part (Table 6).

Полученные предлагаемым способом микроклубни были физиологически зрелыми, хорошо хранились и при последующим выращивании in vivo формировали здоровые растенияThe micro-tubers obtained by the proposed method were physiologically mature, were well stored, and during subsequent cultivation in vivo formed healthy plants

Таблица 6Table 6 СортGrade Масса микроклубня, мгThe mass of micro-tubers, mg Апикальная частьApical part Средняя частьmiddle part Базальная частьBasal part Жуковский раннийZhukovsky early 12,8±1,512.8 ± 1.5 36,8±2,136.8 ± 2.1 81,6±6,781.6 ± 6.7 УдачаLuck 19,8±1,419.8 ± 1.4 46,8±5,846.8 ± 5.8 95,8±5,795.8 ± 5.7 НевскийNevsky 17,2±2,717.2 ± 2.7 25,2±2,625.2 ± 2.6 90,3±3,490.3 ± 3.4 НикулинскийNikulinsky 25,2±2,625.2 ± 2.6 46,3±3,546.3 ± 3.5 100,8±3,5100.8 ± 3.5

Полученные растения-регенеранты картофеля с хорошо развитыми механическими и проводящими тканями стебля, обширной корневой системой и хорошо развитыми листьями при пересадке в грунт легко адаптировались к условиям in vivo, что обеспечивало их высокую приживаемость (90-98%) по сравнению с прототипом (70-80%).The obtained potato regenerant plants with well-developed mechanical and conductive stem tissues, an extensive root system, and well-developed leaves when transplanted into the soil easily adapted to in vivo conditions, which ensured their high survival rate (90-98%) compared to the prototype (70- 80%).

Отсюда следует, что предлагаемый способ позволяет повысить коэффициент размножения растений-регенерантов картофеля in vitro за 3 месяца последовательного черенкования на 0,2-1,5 тыс. штук от одного исходного за счет сокращения периода между повторными черенкованиями, увеличения выхода микрочеренков и пробирочных растений и их лучшей приживаемости в грунте, а также дополнительного получения микроклубней.It follows that the proposed method allows to increase the reproduction rate of potato regenerated plants in vitro for 3 months of sequential cuttings by 0.2-1.5 thousand pieces from one source by reducing the period between repeated cuttings, increasing the yield of micrograins and test plants and their best survival in the ground, as well as additional micro-tubers.

Claims (1)

Способ микроклонального размножения картофеля, включающий культивирование оздоровленных растений картофеля in vitro путем микрочеренкования на питательную среду, содержащую макро- и микроэлементы по прописи Мурасиге-Скуга, Fe-хелат, агар-агар, витамины по Уайту и сахарозу, получение растений-регенерантов и высадку растений-регенерантов в грунт, отличающийся тем, что в питательную среду дополнительно вводят 3 мг/л глицина, 1000-2000 мг/л активированного угля и 1-2 мг/л аскорбиновой кислоты, микрочеренкование исходных растений проводят на апикальную, среднюю и базальную части, причем выращивание апикальной и средней частей осуществляют на питательной среде с содержанием сахарозы в количестве 20 г/л при температуре 23-25°С днем и 17-18°С ночью с последующим высаживанием растений-регенерантов картофеля в грунт, а выращивание базальной части проводят на питательной среде с содержанием сахарозы в количестве 80 г/л в темноте при температуре 8-10°С с последующим получением микроклубней картофеля in vitro.A method of microclonal propagation of potatoes, including cultivating healthy potato plants in vitro by microcrossing onto a nutrient medium containing macro- and microelements according to the prescription Murashige-Skoog, Fe-chelate, agar-agar, White and sucrose vitamins, obtaining regenerated plants and planting plants regenerants into the soil, characterized in that 3 mg / l of glycine, 1000-2000 mg / l of activated carbon and 1-2 mg / l of ascorbic acid are additionally introduced into the nutrient medium; s, middle and basal parts, and the growing of the apical and middle parts is carried out on a nutrient medium with sucrose in an amount of 20 g / l at a temperature of 23-25 ° C during the day and 17-18 ° C at night, followed by planting potato regenerated plants in the ground and the cultivation of the basal part is carried out on a nutrient medium with a sucrose content of 80 g / l in the dark at a temperature of 8-10 ° C, followed by in vitro potato micro-tubers.
RU2006113501/13A 2006-04-20 2006-04-20 Method of potato microcloning RU2329639C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006113501/13A RU2329639C2 (en) 2006-04-20 2006-04-20 Method of potato microcloning

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006113501/13A RU2329639C2 (en) 2006-04-20 2006-04-20 Method of potato microcloning

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006113501A RU2006113501A (en) 2007-10-27
RU2329639C2 true RU2329639C2 (en) 2008-07-27

Family

ID=38955562

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006113501/13A RU2329639C2 (en) 2006-04-20 2006-04-20 Method of potato microcloning

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2329639C2 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2479983C1 (en) * 2011-10-27 2013-04-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Горский государственный аграрный университет" Method of increasing net reproduction of meristematic potato tubers
RU2632938C2 (en) * 2016-03-24 2017-10-11 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный технический университет" Method of potato microcloning in vitro of "ermak" potato variety
RU2637361C1 (en) * 2016-08-04 2017-12-04 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный технический университет" Method of potato microcloning in vitro of alena potato variety
RU2671102C1 (en) * 2017-12-29 2018-10-29 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Чеченский государственный университет" Method for producing potato microtubers in vitro
RU2716413C1 (en) * 2019-07-09 2020-03-11 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Сибирский институт физиологии и биохимии растений Сибирского отделения Российской академии наук" (СИФИБР СО РАН) Potato microtubers production method

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2479983C1 (en) * 2011-10-27 2013-04-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Горский государственный аграрный университет" Method of increasing net reproduction of meristematic potato tubers
RU2632938C2 (en) * 2016-03-24 2017-10-11 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный технический университет" Method of potato microcloning in vitro of "ermak" potato variety
RU2637361C1 (en) * 2016-08-04 2017-12-04 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный технический университет" Method of potato microcloning in vitro of alena potato variety
RU2671102C1 (en) * 2017-12-29 2018-10-29 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Чеченский государственный университет" Method for producing potato microtubers in vitro
RU2716413C1 (en) * 2019-07-09 2020-03-11 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Сибирский институт физиологии и биохимии растений Сибирского отделения Российской академии наук" (СИФИБР СО РАН) Potato microtubers production method

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006113501A (en) 2007-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101587707B1 (en) Producing method of orchid seedlings
Ghosh et al. Plant regeneration from alginate encapsulated somatic embryos of Asparagus cooperi Baker
Saxena et al. Regeneration and large-scale propagation of bamboo (Dendrocalamus strictus Nees) through somatic embryogenesis
CN101218894A (en) Embryogenesis and plant strain regeneration method for hybrid somatic cell of slash pine and cuban pine
Castro et al. Development of a germination protocol for blueberry seeds (Vaccinium meridionale Swartz)
Dave et al. Scaling-up production and field performance of micropropagated medicinal herb ‘Safed Musli’(Chlorophytum borivilianum)
RU2329639C2 (en) Method of potato microcloning
Saifullah et al. Cultivation of lilies (Lilium regale) for commercialization in Pakistan
CN101983557B (en) In vitro quick breeding method of seedling stem of santal seed embryo
JP7060228B2 (en) Peony strain, peony strain breeding method and peony cultivation method
KR0134140B1 (en) Garlic tissue cultivation
RU2302106C1 (en) Method for preparation of in vitro propagated strawberry (fragraria l) plants to ex vitro cultivation
CN105028192A (en) Culture medium series for rapidly breeding dendrobium nobile seedlings and tissue culture method
JPH0322934A (en) Production of plant seedling
CN115500252B (en) Hydroponic method for rapid rooting of reed leaves and reeds
CN1301053C (en) Seed selection of drought desert, Gobi dessert beach high yield large dates
Ombrello et al. Establishing Asparagus from Seedling Transplants1
CN108094207A (en) Wet-land pine tree somatic embryo occurs and the method for plant regeneration
KR100741816B1 (en) The orchid seed chip and the method of preparing it
JP3706085B2 (en) Medium for plants of the genus Camellia
CN110558130B (en) Cutting method of cauliflower
JP5263857B2 (en) A method of utilizing rare sugars for promoting or regulating the growth of plant shoots.
CN110150010B (en) Method for cultivating disease-free citrus reiculata container seedlings
CN112470926A (en) Rapid propagation method for mesona chinensis benth stem tip virus-free seedlings
Taha et al. Production of synthetic seeds from micro shoots and somatic embryos of Gerbera jamesonii bolus ex. hook f.

Legal Events

Date Code Title Description
QB4A Licence on use of patent

Effective date: 20090722

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20110421