RU2308485C1 - Штамм бактерий serratia species - продуцент липазы - Google Patents

Штамм бактерий serratia species - продуцент липазы Download PDF

Info

Publication number
RU2308485C1
RU2308485C1 RU2006107803/13A RU2006107803A RU2308485C1 RU 2308485 C1 RU2308485 C1 RU 2308485C1 RU 2006107803/13 A RU2006107803/13 A RU 2006107803/13A RU 2006107803 A RU2006107803 A RU 2006107803A RU 2308485 C1 RU2308485 C1 RU 2308485C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
lipase
biomass
species
producer
Prior art date
Application number
RU2006107803/13A
Other languages
English (en)
Inventor
Олег Николаевич Логинов (RU)
Олег Николаевич Логинов
Наталь Владимировна Паканещикова (RU)
Наталья Владимировна Паканещикова
Николай Николаевич Силищев (RU)
Николай Николаевич Силищев
нова Наил Фауатовна Галимз (RU)
Наиля Фауатовна Галимзянова
Таиси Филипповна Бойко (RU)
Таисия Филипповна Бойко
Original Assignee
Закрытое акционерное общество научно-производственное предприятие "Биомедхим" (ЗАО НПП "Биомедхим")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Закрытое акционерное общество научно-производственное предприятие "Биомедхим" (ЗАО НПП "Биомедхим") filed Critical Закрытое акционерное общество научно-производственное предприятие "Биомедхим" (ЗАО НПП "Биомедхим")
Priority to RU2006107803/13A priority Critical patent/RU2308485C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2308485C1 publication Critical patent/RU2308485C1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области микробиологии и биотехнологии и может быть использовано в пищевой промышленности, бытовой химии, косметике. Штамм выделен из образца сточных вод из аэротенка биологических очистных сооружений и поддерживается в коллекции микроорганизмов Института биологии Уфимского научного центра РАН под номером ИБ 3-1. Штамм образует при росте на питательной среде, содержащей соевую муку, дрожжевой экстракт и минеральные компоненты, липазу в количестве 1750 мкМ олеиновой кислоты/мг биомассы, что превосходит по уровню секретирования липазы известные штаммы. 1 табл.

Description

Изобретение относится к микробиологии и биотехнологии и касается штамма бактерий - продуцента фермента липазы. Липазы катализируют гидролиз триацилглицеридов с образованием жирных кислот и глицерина. Они находят применение в пищевой промышленности, бытовой химии, косметике. Поиск новых бактериальных штаммов - продуцентов липазы является актуальной задачей.
Основными продуцентами липаз являются штаммы грибов Rhizopus [1, 2], Fusarium [3], некоторые дрожжи (Jarrowia) [4]. Известен, например, штамм грибов Fusarium oxysporum - продуцент липазы [3]. Данный штамм выращивают при температуре 30°С в течение 150-200 часов на питательной среде, содержащей, г/л:
MgSO4·7H2O 0,5
КН2PO4 1,0
NaNO3 3,0
Пептон 30,0
Дрожжевой экстракт 1,0
Оливковое масло 10,0
Через 150 часов культивирования достигается максимальное накопление в культуральной жидкости специфической липазной активности - 150 ед акт./мг биомассы (по сухому весу). Недостатком известного штамма является длительность культивирования (6-7 суток), сложность питательной среды и трудоемкость процедуры получения культуральной жидкости (освобождение от грибного мицелия).
Использование бактерий-продуцентов липаз обладает по сравнению с грибами преимуществом, заключающимся в ускорении процесса культивирования. Это может сделать более выгодным технологический процесс получения липазы. Известен, например, штамм Serratia marcescens 345 [5], который выращивают при температуре 30°С на питательной среде (рН 7,0), содержащей, г/л:
Отвар соевой муки 50,0
Мочевина 0,1
MgSO4·7H2O 0,1
КН2PO4 0,2
Через 24 часа в культуральной жидкости накапливается максимальное количество липазы со специфической активностью 95 ед акт./мг биомассы (по сухому весу). Недостатком данного штамма является низкая специфическая активность продуцируемого фермента.
Наиболее близким к заявляемому штамму - прототипом является штамм Serratia marcescens В-10 L-1 [6], который выращивают при температуре 28-30°С на питательной среде (рН 7,0), содержащей, г/л:
MgSO4·7H2O 0,25
КН2PO4 3,0
Na2HPO4·2H2O 7,0
NH4Cl 1,0
CaCl2·2H2O 0,02
NaCl 0,5
Отвар соевой муки 50,0
Максимальное накопление липазы характеризуется величиной, составляющей 800 ед акт./мг биомассы (по сухому весу).
Недостатком данного штамма является сравнительно низкая специфическая активность продуцируемого фермента.
Технической задачей изобретения является получение нового бактериального штамма, обеспечивающего высокую специфическую активность липазы.
Поставленная задача достигается предлагаемым штаммом Serratia species ИБ 3-1, выделенным из образца сточных вод, отобранного в аэротенке биологических очистных сооружений пермского мясокомбината. Штамм поддерживается в коллекции микроорганизмов Института биологии Уфимского научного центра РАН. Штамм Serratia species ИБ 3-1 характеризуется следующими признаками.
Морфологические признаки. Клетки палочковидные, прямые, короткие, размером 0,5-0,8×0,8-2,0 мкм, подвижные, одиночные, парные или в цепочках, спор не образуют. Грамотрицательные.
Морфологию колонии определяли после 4-5 суток роста при 28°С. На мясопептонном агаре (МПА) - круглые с фестончатыми краями, гладкие, выпуклые, непрозрачные, блестящие, мягкой консистенции колонии, пигмент на МПА морковно-красный, на овсяном агаре темно-вишневый, не диффундирующий в среду, диаметр колонии 4-5 мм.
Физиологические и биохимические признаки. Штамм является факультативным анаэробом, обладает и дыхательным, и бродильным типами метаболизма, не требователен к факторам роста. Оптимальная температура роста 28-30°С, растут при 5°С. Разжижает желатин, пептонизирует и свертывает молоко, гидролизует лецитин. Способен расти на среде Симмонса с цитратом, реакция Фогеса-Проскауэра положительная. Проба с метиловым красным положительная. Дает отрицательный оксидазный, положительный каталазный тесты. Ферментирует с образованием кислоты глюкозу, арабинозу, маннозу, фруктозу, мальтозу, крахмал, сорбитол, ацетат, а галактозу, сахарозу и ксилозу ферментирует с образованием кислоты и газа. Растет на МПА с 8% NaCl.
Штамм хранится на косяках МПА в холодильнике с пересевом на свежие косяки через 2-4 месяца, а также в лиофильно-высушенном состоянии.
Штамм идентифицирован по определителю Bergey's Manual of Determinative Bacteriology. Анализ штамма путем секвенирования двух фрагментов гена 16S РНК и последующее сравнение этих фрагментов со всеми известными последовательностями, депонированными во Всемирной базе генов (GenBank), подтвердили достоверность идентификации.
Для культивирования штамма Serratia species ИБ 3-1 с целью получения липазы применяют питательную среду следующего состава, г/л: соевая мука - 25; дрожжевой экстракт - 40; К2HPO4 - 5,0; (NH4)2SO4 - 1,0. Процесс культивирования проводят при температуре 28°С на качалке при числе оборотов 160 об/мин.
Количество накапливаемой биомассы штамма ИБ 3-1 определяют путем подсчета числа жизнеспособных клеток в культуральной жидкости. Для этого определяют титр бактерий в 1 мл культуральной жидкости и пересчитывают его в мг биомассы (по сухому весу), исходя из того, что 109 клеток бактерий весит 0,28 мг [6].
Активность липазы определяют следующим образом. К реакционной смеси, содержащей 4,5 мл 0,05 М фосфатного буфера (рН 8,0) и 5 мл 40%-ной эмульсии оливкового масла в 2%-ном поливиниловом спирте приливают 0,5 мл супернатанта культуральной жидкости. Тест-пробу инкубируют в течение 30 мин при температуре 37°С, после чего добавляют 10 мл смеси этанол:ацетон (1:1). Степень расщепления оливкового масла определяют, оттитровывая продукты гидролиза раствором гидроокиси натрия (0,05 М NaOH), в присутствии 1%-ного тимолфталеина до возникновения голубой окраски. Контрольную пробу обрабатывают аналогично тест-пробе, но липазу вносят непосредственно перед титрованием. Специфическую активность липазы выражают в микромолях олеиновой кислоты, освобождающейся за 1 час при гидролизе субстрата 1 мл культуральной жидкости, в пересчете на количество биомассы, содержащейся в 1 мл культуральной жидкости. Расчет специфической липазной активности (ЛА), в ед акт./мг биомассы (по сухому весу), производят по формуле
ЛА=(V-Vk)·K/t·VE·C,
где V - количество 0,05 М NaOH, израсходованного на титрование тест-пробы, мл;
Vk - количество 0,05 М NaOH, израсходованного на титрование контрольной пробы, мл;
К - количество олеиновой кислоты, оттитровываемое 1 мл 0,05 М NaOH (К=50), мкмоль;
t - время реакции, час;
VE - объем культуральной жидкости, добавляемой к реакционной смеси, мл;
С - концентрация биомассы (по сухому весу), мг/мл.
Результаты определения липолитической активности культуральной жидкости, полученной при культивировании штамма Serratia species ИБ 3-1, приведены в таблице. Эти данные свидетельствуют о высокой активности липазы, продуцируемой предлагаемым штаммом микроорганизмов. Так, максимальная специфическая активность фермента штамма Serratia species ИБ 3-1 составляет 1750 мкМ олеиновой кислоты/мг биомассы, что в 2,2 раза превышает величину максимальной специфической активности (800 ед акт./мг биомассы) штамма по прототипу.
Дополнительным преимуществом предлагаемого штамма является то, что помимо высокой специфической активности липазы ферменты, секретируемые штаммом Serratia species ИБ 3-1, способны эффективно утилизировать жиры.
Способность липолитических ферментов, продуцируемых штаммом Serratia species ИБ 3-1, к деструкции твердых жиров животного происхождения определяли следующим образом.
Пример 1. Утилизацию кулинарного жира проводят путем периодического выращивания штамма Serratia species ИБ 3-1 в колбах на качалке (160 об/мин), объем среды 100 мл. Состав минеральной среды, г/л: соевая мука - 25; дрожжевой экстракт - 40; К2HPO4 - 5,0; (NH4)2SO4 - 1,0; рН среды 7,0; температура выращивания 28°С. Время выращивания 49 часов. Исходное содержание кулинарного жира составляет 1 мас.%. Оценку роста бактерий проводили микроскопированием на твердой (агаризованной) питательной среде. Степень деструкции твердых жиров определяли весовым методом с использованием процесса экстракции. По окончании процесса ферментации штамма Serratia species ИБ 3-1 титр бактерий в культуральной жидкости составил 3,0·109 КОЕ/мл, а деструкция кулинарного жира - 100%.
Пример 2. Аналогично примеру 1 утилизацию свиного жира проводят путем периодического выращивания штамма Serratia species ИБ 3-1 в колбах на качалке при параметрах процесса и составе питательной среды, приведенным в примере 1. Время выращивания 46 часов. Исходное содержание свиного жира составляет 1 мас.%. По окончании процесса ферментации штамма Serratia species ИБ 3-1 титр бактерий в культуральной жидкости составил 4,0·109 КОЕ/мл, а деструкция свиного жира - 100%.
Пример 3. Аналогично примеру 1 утилизацию говяжьего жира проводят путем периодического выращивания штамма Serratia species ИБ 3-1 в колбах на качалке при параметрах процесса и составе питательной среды, приведенным в примере 1. Время выращивания 92 часа. Исходное содержание говяжьего жира составляет 1 мас.%. По окончании процесса ферментации штамма Serratia species ИБ 3-1 титр бактерий в культуральной жидкости составил 3,0·109 КОЕ/мл, а деструкция говяжьего жира - 90%.
Результаты экспериментов, приведенные в примерах 1-3, свидетельствуют о высокой эффективности процесса биодеструкции твердых жиров животного и растительного происхождения под действием липолитических ферментов, продуцируемых штаммом Serratia species ИБ 3-1.
Таким образом, получен штамм Serratia species ИБ 3-1, обладающий высокой липолитической активностью, который может быть использован в качестве основы биопрепарата для биологической очистки сточных вод или канализационных систем от жиров.
Липолитическая активность штамма Serratia species ИБ 3-1
Время культивирования, ч Липолитическая активность, мкМ олеиновой кислоты/мг биомассы (по сухому весу)
Штамм Serratia species ИБ 3-1 Штамм Serratia marcescens В-10 L-1 (по прототипу)
5 0 91
10 7 800
15 535 300
20 982 160
25 1250 42
30 1750 31
35 1114 30
40 90 30
50 30 30
Список литературы
1. А.С. СССР 1581742 А1, опубл. 30.07.90.
2. А.С. СССР 1726513 А1, опубл. 15.04.92.
3. Р.Rapp. Production, regulation and some properties of lipase activity from Fusarium oxysporum f. sp. vasinfectum // Enzyme and Microbial Technology. - 1995. - V.17. - P.832-838.
4. A.C. СССР 1454852 А1, опубл. 30.01.89.
5. Башкатова Н.А., Северина Л.О. Влияние условий культивирования на биосинтез липазы у Serratia marcescens // Микробиология. - 1979. - Т.68, вып.5. - С.826.
6. Патент RU 2148645 С1, опубл. 10.05.2000.

Claims (1)

  1. Штамм бактерий Serratia species KM ИБ УНЦ РАН ИБ 3-1 - продуцент липазы.
RU2006107803/13A 2006-03-13 2006-03-13 Штамм бактерий serratia species - продуцент липазы RU2308485C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006107803/13A RU2308485C1 (ru) 2006-03-13 2006-03-13 Штамм бактерий serratia species - продуцент липазы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006107803/13A RU2308485C1 (ru) 2006-03-13 2006-03-13 Штамм бактерий serratia species - продуцент липазы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2308485C1 true RU2308485C1 (ru) 2007-10-20

Family

ID=38925288

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006107803/13A RU2308485C1 (ru) 2006-03-13 2006-03-13 Штамм бактерий serratia species - продуцент липазы

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2308485C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2549681C1 (ru) * 2014-07-25 2015-04-27 Государственное научное учреждение научно-исследовательский институт кондитерской промышленности Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ НИИКП Россельхозакадемии) Способ получения питательной среды для определения в кондитерских изделиях микроорганизмов, вырабатывающих липазы
RU2566561C1 (ru) * 2014-07-25 2015-10-27 Государственное научное учреждение научно-исследовательский институт кондитерской промышленности Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ НИИКП Россельхозакадемии) Способ определения в кондитерских изделиях микроорганизмов, вырабатывающих липазы

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2549681C1 (ru) * 2014-07-25 2015-04-27 Государственное научное учреждение научно-исследовательский институт кондитерской промышленности Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ НИИКП Россельхозакадемии) Способ получения питательной среды для определения в кондитерских изделиях микроорганизмов, вырабатывающих липазы
RU2566561C1 (ru) * 2014-07-25 2015-10-27 Государственное научное учреждение научно-исследовательский институт кондитерской промышленности Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ НИИКП Россельхозакадемии) Способ определения в кондитерских изделиях микроорганизмов, вырабатывающих липазы

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Malathi et al. Production of alkaline protease by a new Aspergillus flavus isolate under solid-substrate fermentation conditions for use as a depilation agent
Kashmiri et al. Production, purification and partial characterization of lipase from Trichoderma viride
WO2005098014A1 (fr) Procédé microbien de production de valiénamine et de validamine
CN114107139B (zh) 一株烟管菌f21及其在生产纤维素酶中的应用
Zakipour-Molkabadi et al. A new native source of Tannase producer, Penicillium sp. EZ-ZH190: characterization of the enzyme
CN104894034B (zh) 一种海洋来源小单孢菌scsio 01819、酶制剂溶液及其制备方法和应用
Zin et al. Purification and characterization of a carboxymethyl cellulase from Artemia salina
RU2308485C1 (ru) Штамм бактерий serratia species - продуцент липазы
RU2310685C1 (ru) Штамм бактерий serratia marcescens, продуцирующий липолитические ферменты, для получения препарата для очистки сточных вод от жиров
CN112940971A (zh) 一种调控群体感应淬灭的代尔夫特菌及其分离方法和应用
Ekka et al. Screening, isolation and characterization of amylase producing bacteria and optimization for production of amylase
Nadhman et al. Production of poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) depolymerase from Aspergillus sp. NA-25
RU2500811C1 (ru) Рекомбинантный штамм бактерий bacillus subtilis - продуцент фосфолипазы с
RU2397247C1 (ru) Способ биосинтеза липазы
CN113897319A (zh) 一株解淀粉芽孢杆菌及其应用
CN110423711B (zh) 南极来源的产低温几丁质酶菌株及其发酵方法
CN103275898A (zh) 一种脂肪酶高产菌株、其筛选方法及用该菌株发酵生产脂肪酶的方法
CA2671797C (en) Microbial process for production of enzymes
CN106244505B (zh) 吡咯伯克霍尔德氏菌的应用及其产脂肪酶的方法
Olaniyi et al. Isolation and screening of bacteria associated with fermented cassava peels for linamarase production
Abbas et al. Lipase Production from Bacillus subtilis using various Agricultural waste
Mohammed Isolation and characterization of tannic acid hydrolysing bacteria from soil
JP2008142042A (ja) 混合微生物,製剤および油脂含有物質の処理方法
Javeed et al. Effect of Different Operational Parameters on Bio-degradation of Chicken Feathers by Aspergillus niger: Investigation Under Submerged Fermentation Process: Parameters on Bio-degradation of Chicken Feathers
CN116286557B (zh) 一株产纤维素酶的耐盐贝莱斯芽孢杆菌及其培养方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20130314