RU2246316C1 - Mixed inactivated aluminum hydroxide-containing vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis in pigs and method for it preparing - Google Patents
Mixed inactivated aluminum hydroxide-containing vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis in pigs and method for it preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2246316C1 RU2246316C1 RU2003118281/13A RU2003118281A RU2246316C1 RU 2246316 C1 RU2246316 C1 RU 2246316C1 RU 2003118281/13 A RU2003118281/13 A RU 2003118281/13A RU 2003118281 A RU2003118281 A RU 2003118281A RU 2246316 C1 RU2246316 C1 RU 2246316C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- salmonella
- bacterial mass
- vaccine
- hemophilic
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии и ветеринарии и может быть использовано при промышленном производстве ассоциированной инактивированной гидроокисьалюминиевой вакцины против инфекционных пневмоний и сальмонеллеза свиней и в животноводстве для профилактики у свиней инфекционных пневмоний, вызываемых пастереллами, гемофильными бактериями и стрептококками, а также желудочно-кишечных болезней, вызываемых сальмонеллами.The invention relates to biotechnology and veterinary medicine and can be used in the industrial production of the associated inactivated aluminum hydroxide vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis in pigs and in livestock for the prevention in pigs of infectious pneumonia caused by pasteurellas, hemophilic bacteria and streptococci, as well as gastrointestinal diseases caused by salmon .
Известна вакцина ассоциированная гидроокисьалюминиевая против инфекционных пневмоний свиней бактериальной этиологии и способ ее изготовления [1] - прототип.A known vaccine is associated with aluminum hydroxide against infectious pneumonia of pigs of bacterial etiology and a method for its manufacture [1] is a prototype.
Известен также препарат на основе лизат-антигенов сальмонелл против сальмонеллеза свиней [2, 3].Also known is a preparation based on lysate antigens of salmonella against pig salmonellosis [2, 3].
Применение ассоциированной гидроокисьалюминиевой вакцины против инфекционных пневмоний бактериальной этиологии и препарата на основе лизат-антигенов из штаммов сальмонелл для специфической профилактики болезней свиней проводится в одни и те же сроки. Это позволяет создать единый препарат для вакцинации свиней против инфекционных пневмоний бактериальной этиологии и сальмонеллеза.The use of the associated hydroxide-aluminum vaccine against infectious pneumonia of bacterial etiology and a preparation based on lysate antigens from Salmonella strains for specific prophylaxis of pig diseases is carried out at the same time. This allows you to create a single drug for vaccination of pigs against infectious pneumonia of bacterial etiology and salmonellosis.
Известен способ изготовления вакцины против гемофилезной плевропневмонии свиней [4]. Однако он обладает рядом недостатков: процесс культивирования бактерий проводится в неуправляемом режиме, а процесс инактивации - длительное время при повышенном содержании формальдегида в культуре.A known method of manufacturing a vaccine against hemophilic pleuropneumonia of pigs [4]. However, it has several drawbacks: the process of bacterial cultivation is carried out in an uncontrolled mode, and the inactivation process is carried out for a long time with an increased formaldehyde content in the culture.
Известны также способы изготовления вакцин против пастереллеза [5] и сальмонеллеза животных [6].Also known are methods of manufacturing vaccines against pasteurellosis [5] and animal salmonellosis [6].
Целью заявляемого изобретения является создание высокоиммуногенной ассоциированной инактивированной гидроокисьалюминиевой вакцины, обеспечивающей надежную защиту не только от инфекционных пневмоний бактериальной этиологии, вызываемых пастереллами, стрептококками и гемофильными бактериями, но и от желудочно-кишечных заболеваний, вызываемых сальмонеллами, а также повышение качества и стандартности биологических свойств ассоциированной вакцины.The aim of the invention is the creation of a highly immunogenic associated inactivated aluminum hydroxide vaccine that provides reliable protection not only against bacterial etiology of pneumonia caused by pasteurellas, streptococci and hemophilic bacteria, but also from gastrointestinal diseases caused by salmonella, as well as improving the quality and standardization of the biological properties of the associated vaccines.
Эта цель достигается введением в состав известной вакцины [1] лизат-антигенов из штаммов сальмонелл и оптимальным количественным соотношением всех антигенов, входящих в состав вакцины, а также осуществлением управляемого периодического процесса культивирования и щадящих режимов инактивации гемофильных бактерий.This goal is achieved by the introduction of the known vaccine [1] lysate antigens from Salmonella strains and the optimal quantitative ratio of all antigens that make up the vaccine, as well as the implementation of a controlled periodic cultivation process and gentle modes of inactivation of hemophilic bacteria.
Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.
В стерильный ферментер загружают жидкую питательную среду на основе перевара Хоттингера с ростовыми добавками.A liquid nutrient medium based on a Hottinger digest with growth additives is loaded into a sterile fermenter.
Питательную среду в ферментере засевают культурой гемофильных бактерий (Haemophilus (Actinobacillus) pleuropneumoniae серогрупп 1 или 2), выращенной в жидкой питательной среде на основе бульона Хоттингера с ростовыми добавками, и выращивают при 37±1°С в течение 6-8 часов.The nutrient medium in the fermenter is seeded with a culture of hemophilic bacteria (Haemophilus (Actinobacillus) pleuropneumoniae serogroups 1 or 2) grown in a liquid nutrient medium based on Hottinger broth with growth additives and grown at 37 ± 1 ° C for 6-8 hours.
После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до (-80)-(-130) мВ, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают рО2 в культуральной жидкости на уровне 15-25% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,1-7,3 ед. рН, а дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,1-0,2% при лимитировании роста гемофильных бактерий глюкозой, характеризующемся резким повышением рО2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения рН культуральной жидкости.After inoculation of the fermenter, the redox potential of the culture fluid is reduced to (-80) - (- 130) mV, after which pO 2 in the culture fluid is maintained at a level of 15-25% of atmospheric oxygen saturation until the cultivation process, the pH of the culture fluid is adjusted to the level of 7.1-7.3 units. pH, and fractional supply of glucose is carried out in doses up to a concentration of 0.1-0.2% while limiting the growth of hemophilic bacteria with glucose, which is characterized by a sharp increase in pO 2 with constant air flow and stirrer revolutions and stopping the decrease in pH of the culture fluid.
Полученную бактериальную культуру двух производственных штаммов гемофильных бактерий с измеренной концентрацией перекачивают в отдельные, заранее приготовленные стерильные реакторы (или стеклянные баллоны) и добавляют при постоянном перемешивании дробно формальдегид (фА) до его конечной концентрации 0,02-0,08%, доводят рН до 7,1-7,2 ед. рН добавлением 10%-ного раствора гидроокиси натрия, перемешивают 15-20 мин и выдерживают при 36-48°С в течение 24-72 часов.The resulting bacterial culture of two production strains of hemophilic bacteria with a measured concentration is pumped into separate pre-prepared sterile reactors (or glass cylinders) and fractional formaldehyde (fA) is added with constant stirring to its final concentration of 0.02-0.08%, the pH is adjusted to 7.1-7.2 units pH by adding 10% sodium hydroxide solution, stirred for 15-20 minutes and kept at 36-48 ° C for 24-72 hours.
Выращивание сальмонелл проводят следующим образом [6].Salmonella cultivation is carried out as follows [6].
Среду засевают культурой сальмонелл, выращенной в питательной среде на основе перевара Хоттингера. Культивируют при 37±1°С в течение 6-8 часов. После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до (-110)-(-130) мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха на аэрацию и выключенной мешалки, после чего до конца процесса культивирования с помощью изменений расхода воздуха на аэрацию и скорости вращения мешалки поддерживают парциальное давление растворенного в культуральной жидкости кислорода на уровне 15-25% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости поддерживают на уровне 7,6-7,8 ед. рН с помощью подачи 10%-ного раствора NaOH, а дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,05-0,15% при лимитировании роста сальмонелл глюкозой, характеризующемся резким повышением рО2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения рН культуральной жидкости.The medium is inoculated with a Salmonella culture grown in a nutrient medium based on the Hottinger pass. Cultivate at 37 ± 1 ° C for 6-8 hours. After inoculation of the fermenter, the redox potential of the culture fluid is reduced to (-110) - (- 130) mV by holding the culture without supplying air to the aeration and the agitator turned off, and then until the end of the cultivation process by changing the air flow to aeration and the speed of rotation of the agitator they maintain the partial pressure of oxygen dissolved in the culture fluid at a level of 15-25% of the oxygen saturation of the air, the pH of the culture fluid is maintained at 7.6-7.8 units. pH by supplying a 10% solution of NaOH, and fractional glucose delivery is carried out in doses up to a concentration of 0.05-0.15% while limiting the growth of salmonella glucose, characterized by a sharp increase in pO 2 at constant air flow and stirrer speed and stopping the decrease in pH of the culture liquids.
Полученную бактериальную культуру двух производственных штаммов сальмонелл с измеренной концентрацией бактерий перекачивают в отдельные, заранее подготовленные реакторы (или стеклянные баллоны) и добавляют гидроксиламин солянокислый из расчета создания концентрации 0,5-0,6%.The resulting bacterial culture of two production Salmonella strains with a measured concentration of bacteria is pumped into separate, pre-prepared reactors (or glass cylinders) and hydrochloramine hydrochloride is added at a concentration of 0.5-0.6%.
После проверки на стерильность и полноту инактивации к инактивированной солянокислым гидроксиламином культуре каждого штамма, содержащей измеренное количество микробных тел в 1 см3, добавляют 4%-ную взвесь гидрата окиси алюминия рН 7,2±0,1 из расчета 130 см3 на каждый дм3 культуры, перемешивают 15-20 мин и выдерживают при 18-20°С в течение 2-3 сут, ежедневно перемешивая 2-3 раза, а затем без перемешивания 2 суток.After testing for sterility and inactivation completeness of hydroxylamine hydrochloride to the inactivated culture of each strain containing a measured amount of microbial cells in 1 cm 3, A 4% added alumina hydrate slurry was pH 7.2 ± 0.1 at the rate of 130 cm 3 per dm 3 cultures, stirred for 15-20 minutes and kept at 18-20 ° C for 2-3 days, mixing 2-3 times daily, and then without stirring for 2 days.
После отстоя адсорбированной на гидрате окиси алюминия культуры проводят декантирование прозрачной надосадочной жидкости с таким расчетом, чтобы в осадке получить лизат сальмонелл из бактериальной суспензии с концентрацией, равной 17,5-25,5 млрд м.т./см3.After sedimentation of the culture adsorbed on alumina is carried out, a transparent supernatant is decanted so as to obtain a salmonella lysate from the bacterial suspension in a sediment with a concentration of 17.5-25.5 billion mt / cm 3 .
Инактивированные и адсорбированные на гидрате окиси алюминия культуры стрептококков и пастерелл для вакцины готовят следующим образом [1, 7].Streptococcus and pasteurella cultures inactivated and adsorbed on alumina hydrate for vaccines are prepared as follows [1, 7].
Процесс инактивации штаммов стрептококков проводят формальдегидом при 43°С в течение 12 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,02%.The process of inactivation of streptococcus strains is carried out with formaldehyde at 43 ° C for 12 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.02%.
Процесс инактивации штаммов пастерелл проводят формальдегидом при 45°С в течение 18-24 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,14%.The process of inactivation of pasteurellum strains is carried out with formaldehyde at 45 ° C for 18-24 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.14%.
После проверки на стерильность и полноту инактивации к инактивированной культуре каждого штамма, содержащей измеренное количество микробных клеток в 1 см3, добавляют 4%-ную взвесь гидрата окиси алюминия рН 7,2±0,1 из расчета 130 см3 на каждый дм3 культуры, перемешивают 15-20 мин и выдерживают при 18-20°С в течение 2-3 сут, ежедневно перемешивая 2-3 раза, а затем без перемешивания 2 суток.After checking the sterility and completeness of inactivation, a 4% suspension of alumina hydrate, pH 7.2 ± 0.1, based on 130 cm 3 for each dm 3 of culture, is added to the inactivated culture of each strain containing the measured number of microbial cells in 1 cm 3 , stirred for 15-20 minutes and kept at 18-20 ° C for 2-3 days, stirring daily for 2-3 times, and then without stirring for 2 days.
После отстоя адсорбированной на гидрате окиси алюминия культуры проводят декантирование прозрачной надосадочной жидкости с таким расчетом, чтобы получить в осадке концентрацию микробных тел 17,5-25,5 млрд м.т./см3.After sediment adsorbed on the alumina hydrate, the culture is decanted transparent supernatant in such a way as to obtain in the sediment concentration of microbial bodies of 17.5-25.5 billion mt / cm 3 .
К культурам пастерелл, стрептококков и гемофильных бактерий, смешанных в вакцине в равных объемах при исходных концентрациях 17,5-25,5 млрд м.т./см3 пастерелл и стрептококков и 10,5-17,5 млрд м.т./см3 гемофильных бактерий каждого штамма, дополнительно добавляют лизат-антигены сальмонелл в равных объемах при следующих исходных концентрациях, млрд м.т./см3:To the cultures of pasteurell, streptococci and hemophilic bacteria mixed in equal amounts in the vaccine at initial concentrations of 17.5-25.5 billion mt / cm 3 of pasteurell and streptococci and 10.5-17.5 billion mt / cm 3 hemophilic bacteria of each strain, additionally add salmonella lysate antigens in equal volumes at the following initial concentrations, billion mt / cm 3 :
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта А-№1231 17,5-25,5;serovariant A-No 1231 17.5-25.5;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта В-№681 17,5-25,5;serovariant B-No. 681 17.5-25.5;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта Д-Т-80 17,5-25,5;serovariant D-T-80 17.5-25.5;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 1 - №5870 10,5-17,5;serogroup 1 - No. 5870 10.5-17.5;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 2 - ГУ-19 10,5-17,5;serogroup 2 - GU-19 10.5-17.5;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus- bacterial mass from a strain of Streptococcus
zooepidemicus серогруппы С-П-2082 17,5-25,5;zooepidemicus serogroup C-P-2082 17.5-25.5;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus suis- bacterial mass from a strain of Streptococcus suis
серогруппы R - “Касли” 17,5-25,5;serogroups R - “Castle” 17.5-25.5;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
choleraesuis №370 17,5-25,5;choleraesuis No. 370 17.5-25.5;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
typhimurium №415 17,5-25,5.typhimurium No. 415 17.5-25.5.
После перемешивания вакцину расфасовывают с соблюдением условий асептики при постоянном перемешивании в стерильные флаконы.After mixing, the vaccine is packaged under aseptic conditions with constant stirring in sterile vials.
Пример 1Example 1
Способ изготовления вакцины с минимальными значениями параметровA method of manufacturing a vaccine with minimum parameter values
Для культивирования гемофильных бактерий используют жидкую питательную среду на основе перевара Хоттингера с ростовыми добавками.For the cultivation of hemophilic bacteria, a liquid nutrient medium based on a Hottinger pass with growth additives is used.
Среду засевают культурой гемофильных бактерий, выращенной в жидкой питательной среде аналогичного состава. Культивируют при 37±1°С в течение 6-8 часов. После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до -130 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают рO2 в культуральной жидкости на уровне 15% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,1 ед. рН с помощью подачи 10%-ного раствора NaOH, a дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,1% при лимитировании роста гемофильных бактерий глюкозой, характеризующемся резким повышением рO2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения рН культуральной жидкости.The medium is inoculated with a culture of hemophilic bacteria grown in a liquid nutrient medium of a similar composition. Cultivate at 37 ± 1 ° C for 6-8 hours. After inoculation of the fermenter, the redox potential of the culture fluid is reduced to -130 mV by holding the culture without air supply, after which pO 2 in the culture fluid is maintained at a level of 15% of atmospheric oxygen saturation until the cultivation process, the pH of the culture fluid is adjusted at 7, 1 unit pH by supplying a 10% solution of NaOH, and a fractional supply of glucose is carried out in doses up to a concentration of 0.1% while limiting the growth of hemophilic bacteria with glucose, which is characterized by a sharp increase in pO 2 at constant air flow and revolutions of the mixer and stopping the decrease in pH of the culture fluid.
Процесс инактивации штаммов гемофильных бактерий проводят формальдегидом при 36°С в течение 24 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,02%.The process of inactivation of hemophilic bacteria strains is carried out with formaldehyde at 36 ° C for 24 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.02%.
К культурам пастерелл, стрептококков и гемофильных бактерий, смешанных в вакцине в равных объемах при исходных концентрациях 17,5 млрд м.т./см3 пастерелл и стрептококков и 10,5 млрд м.т./см3 гемофильных бактерий каждого штамма, дополнительно добавляют лизат-антигены сальмонелл в равных объемах при следующих исходных концентрациях, млрд м.т./см3:The cultures of pasteurell, streptococci and hemophilic bacteria mixed in equal volumes in the vaccine at initial concentrations of 17.5 billion mt / cm 3 of pasteurell and streptococcus and 10.5 billion mt / cm 3 of hemophilic bacteria of each strain, in addition add salmonella lysate antigens in equal volumes at the following initial concentrations, billion mt / cm 3 :
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта А-№1231 17,5;serovariant A-No 1231 17.5;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта В-№681 17,5;serovariant B-No 681 17.5;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта Д-Т-80 17,5;serovariant D-T-80 17.5;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 1 -№5870 10,5;serogroup 1 -№5870 10.5;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 2 - ГУ-19 10,5;serogroup 2 - GU-19 10.5;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus- bacterial mass from a strain of Streptococcus
zooepidemicus серогруппы С - П -2082 17,5;zooepidemicus serogroup C - P -2082 17.5;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus suis- bacterial mass from a strain of Streptococcus suis
серогруппы R - “Касли” 17,5;serogroups R - “Castle” 17.5;
- лизат-антиген из штамма Salmonella cholerae-suis №370 17,5;- lysate antigen from strain Salmonella cholerae-suis No. 370 17.5;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
typhimurium №415 17,5.typhimurium No. 415 17.5.
Пример 2Example 2
Способ изготовления вакцины с оптимальными значениями параметровA method of manufacturing a vaccine with optimal values of the parameters
Для культивирования гемофильных бактерий используют жидкую питательную среду на основе перевара Хоттингера с ростовыми добавками.For the cultivation of hemophilic bacteria, a liquid nutrient medium based on a Hottinger pass with growth additives is used.
Среду засевают культурой гемофильных бактерий, выращенной в жидкой питательной среде аналогичного состава. Культивируют при 37±1°С в течение 6-8 часов. После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до -105 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают рO2 в культуральной жидкости на уровне 20% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,2 ед. рН с помощью подачи 10%-ного раствора NaOH, a дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,15% при лимитировании роста гемофильных бактерий глюкозой, характеризующемся резким повышением рO2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения рН культуральной жидкости.The medium is inoculated with a culture of hemophilic bacteria grown in a liquid nutrient medium of a similar composition. Cultivate at 37 ± 1 ° C for 6-8 hours. After inoculation of the fermenter, the redox potential of the culture fluid is reduced to -105 mV by holding the culture without air supply, and then until the end of the cultivation process, the pO 2 in the culture fluid is maintained at 20% of atmospheric oxygen saturation, the pH of the culture fluid is adjusted at 7, 2 units pH by supplying a 10% solution of NaOH, and a fractional supply of glucose is carried out in doses up to a concentration of 0.15% while limiting the growth of hemophilic bacteria with glucose, which is characterized by a sharp increase in pO 2 with constant air flow and revolutions of the mixer and stopping the decrease in pH of the culture fluid.
Процесс инактивации штаммов гемофильных бактерий проводят формальдегидом при 42°С в течение 48 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,05%.The process of inactivation of hemophilic bacteria strains is carried out with formaldehyde at 42 ° C for 48 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.05%.
К культурам пастерелл, стрептококков и гемофильных бактерий, смешанных в вакцине в равных объемах при исходных концентрациях 21,0 млрд м.т./см3 пастерелл и стрептококков и 14,0 млрд м.т./см3 гемофильных бактерий каждого штамма, дополнительно добавляют лизат-антигены сальмонелл в равных объемах при следующих исходных концентрациях, млрд м.т./см3:The cultures of pasteurell, streptococci and hemophilic bacteria mixed in equal volumes in the vaccine at initial concentrations of 21.0 billion metric tons / cm 3 of pasteurell and streptococci and 14.0 billion metric tons / cm 3 of hemophilic bacteria of each strain, in addition add salmonella lysate antigens in equal volumes at the following initial concentrations, billion mt / cm 3 :
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта А-№1231 21,0;serovariant A-No 1231 21.0;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта В-№681 21,0;serovariant B-No. 681 21.0;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта Д-Т-80 21,0;serovariant D-T-80 21.0;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus- bacterial mass from a strain of Haemophilus
pleuropneumoniae серогруппы 1 - №5870 14,0;pleuropneumoniae serogroup 1 - No. 5870 14.0;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 2 - ГУ-19 14,0;serogroup 2 - GU-19 14.0;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus- bacterial mass from a strain of Streptococcus
zooepidemicus серогруппы С - П -2082 21,0;zooepidemicus serogroup C - P -2082 21.0;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus suis- bacterial mass from a strain of Streptococcus suis
серогруппы R - “Касли” 21,0;serogroups R - “Castle” 21.0;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
cholerae-suis №370 21,0;cholerae-suis No. 370 21.0;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
typhimurium №415 21,0.typhimurium No. 415 21.0.
Пример 3Example 3
Способ изготовления вакцины с максимальными значениями параметровA method of manufacturing a vaccine with maximum values of the parameters
Для культивирования гемофильных бактерий используют жидкую питательную среду на основе перевара Хоттингера с ростовыми добавками.For the cultivation of hemophilic bacteria, a liquid nutrient medium based on a Hottinger pass with growth additives is used.
Среду засевают культурой гемофильных бактерий, выращенной в жидкой питательной среде аналогичного состава. Культивируют при 37±1°С в течение 6-8 часов. После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до -80 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают pО2 в культуральной жидкости на уровне 25% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,3 ед. рН с помощью подачи 10%-ного раствора NaOH, a дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,2% при лимитировании роста гемофильных бактерий глюкозой, характеризующемся резким повышением pO2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения рН культуральной жидкости.The medium is inoculated with a culture of hemophilic bacteria grown in a liquid nutrient medium of a similar composition. Cultivate at 37 ± 1 ° C for 6-8 hours. After inoculation of the fermenter, the redox potential of the culture fluid is reduced to -80 mV by holding the culture without air supply, after which pO 2 in the culture fluid is maintained at a level of 25% of atmospheric oxygen saturation until the cultivation process, the pH of the culture fluid is adjusted at 7, 3 units pH by supplying a 10% solution of NaOH, and a fractional supply of glucose is carried out in doses up to a concentration of 0.2% while limiting the growth of hemophilic bacteria with glucose, which is characterized by a sharp increase in pO 2 with constant air flow and stirrer speed and stopping the decrease in pH of the culture fluid.
Процесс инактивации штаммов гемофильных бактерий проводят формальдегидом при 48°С в течение 72 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,08%.The process of inactivation of hemophilic bacteria strains is carried out with formaldehyde at 48 ° C for 72 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.08%.
К культурам пастерелл, стрептококков и гемофильных бактерий, смешанных в вакцине в равных объемах при исходных концентрациях 25,5 млрд м.т./см3 пастерелл и стрептококков и 17,5 млрд м.т./см3 гемофильных бактерий каждого штамма, дополнительно добавляют лизат-антигены сальмонелл в равных объемах при следующих исходных концентрациях, млрд м.т./см3:The cultures of pasteurell, streptococci and hemophilic bacteria mixed in equal amounts in the vaccine at initial concentrations of 25.5 billion mt / cm 3 of pasteurell and streptococci and 17.5 billion mt / cm 3 of hemophilic bacteria of each strain, in addition add salmonella lysate antigens in equal volumes at the following initial concentrations, billion mt / cm 3 :
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта А-№1231 25,5;serovariant A-No 1231 25.5;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта В-№681 25,5;serovariant B-No. 681 25.5;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта Д-Т-80 25,5;serovariant D-T-80 25.5;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 1 -№ 5870 17,5;serogroup 1 -№ 5870 17.5;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 2 - ГУ-19 17,5;serogroup 2 - GU-19 17.5;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus- bacterial mass from a strain of Streptococcus
zooepidemicus серогруппы С-П-2082 25,5zooepidemicus serogroup SP-2082 25.5
- бактериальная масса из штамма Streptococcus suis- bacterial mass from a strain of Streptococcus suis
серогруппы R - “Касли” 25,5;serogroups R - “Castle” 25.5;
лизат-антиген из штамма Salmonellalysate antigen from Salmonella strain
cholerae-suis №370 25,5;cholerae-suis No. 370 25.5;
- лизат-антиген из штамма- lysate antigen from strain
Salmonella typhimurium №415 25,5.Salmonella typhimurium No. 415 25.5.
Пример 4Example 4
Способ изготовления вакцины со значениями параметров ниже минимальныхA method of manufacturing a vaccine with parameter values below the minimum
Для культивирования гемофильных бактерий используют жидкую питательную среду на основе перевара Хоттингера с ростовыми добавками.For the cultivation of hemophilic bacteria, a liquid nutrient medium based on a Hottinger pass with growth additives is used.
Среду засевают культурой гемофильных бактерий, выращенной в жидкой питательной среде аналогичного состава. Культивируют при 37±1°С в течение 6-8 часов. После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до -140 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают рO2 в культуральной жидкости на уровне 10% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,0 ед. рН с помощью подачи 10%-ного раствора NaOH, a дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,05% при лимитировании роста гемофильных бактерий глюкозой, характеризующемся резким повышением рО2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения рН культуральной жидкости.The medium is inoculated with a culture of hemophilic bacteria grown in a liquid nutrient medium of a similar composition. Cultivate at 37 ± 1 ° C for 6-8 hours. After inoculation of the fermenter, the redox potential of the culture fluid is reduced to -140 mV by holding the culture without air supply, after which pO 2 in the culture fluid is maintained at a level of 10% of atmospheric oxygen saturation until the cultivation process, the pH of the culture fluid is adjusted at 7, 0 units pH by supplying a 10% solution of NaOH, and a fractional supply of glucose is carried out in doses up to a concentration of 0.05% while limiting the growth of hemophilic bacteria with glucose, which is characterized by a sharp increase in pO 2 with constant air flow and stirrer speed and stopping the decrease in pH of the culture fluid.
Процесс инактивации штаммов гемофильных бактерий проводят формальдегидом при 30°С в течение 12 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,01%.The process of inactivation of hemophilic bacteria strains is carried out with formaldehyde at 30 ° C for 12 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.01%.
К культурам пастерелл, стрептококков и гемофильных бактерий, смешанных в вакцине в равных объемах при исходных концентрациях 14,0 млрд м.т./см3 пастерелл и стрептококков и 7,0 млрд м.т./см3 гемофильных бактерий каждого штамма, дополнительно добавляют лизат-антигены сальмонелл в равных объемах при следующих исходных концентрациях, млрд м.т./см3:The cultures of pasteurell, streptococci and hemophilic bacteria mixed in equal amounts in the vaccine at initial concentrations of 14.0 billion mt / cm 3 of pasteurell and streptococci and 7.0 billion mt / cm 3 of hemophilic bacteria of each strain, in addition add salmonella lysate antigens in equal volumes at the following initial concentrations, billion mt / cm 3 :
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта А-№1231 14,0;serovariant A-No 1231 14.0;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта В-№681 14,0;serovariant B-No. 681 14.0;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта Д-Т-80 14,0;serovariant D-T-80 14.0;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 1 - №5870 7,0;serogroup 1 - No. 5870 7.0;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 2 - ГУ-19 7,0;serogroup 2 - GU-19 7.0;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus- bacterial mass from a strain of Streptococcus
zooepidemicus серогруппы С-П-2082 14,0;zooepidemicus serogroup C-P-2082 14.0;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus suis- bacterial mass from a strain of Streptococcus suis
серогруппы К-“Касли” 14,0;serogroup K- “Castle” 14.0;
- лизат-антиген из штамма Salmonella cholerae-- lysate antigen from a strain of Salmonella cholerae-
suis №370 15,0;suis No. 370 15.0;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
typhimurium №415 15,0.typhimurium No. 415 15.0.
Пример 5Example 5
Способ изготовления вакцины со значениями параметров выше максимальныхA method of manufacturing a vaccine with parameter values above the maximum
Для культивирования гемофильных бактерий используют жидкую питательную среду на основе перевара Хоттингера с ростовыми добавками.For the cultivation of hemophilic bacteria, a liquid nutrient medium based on a Hottinger pass with growth additives is used.
Среду засевают культурой гемофильных бактерий, выращенной в жидкой питательной среде аналогичного состава. Культивируют при 37±1°С в течение 6-8 часов. После засева ферментера окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до -70 мВ путем выдержки культуры без подачи воздуха, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают рО2 в культуральной жидкости на уровне 30% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 7,4 ед. рН с помощью подачи 10%-ного раствора NaOH, a дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,25% при лимитировании роста гемофильных бактерий глюкозой, характеризующемся резким повышением рО2 при неизменных расходе воздуха и оборотах мешалки и прекращением снижения рН культуральной жидкости.The medium is inoculated with a culture of hemophilic bacteria grown in a liquid nutrient medium of a similar composition. Cultivate at 37 ± 1 ° C for 6-8 hours. After inoculation of the fermenter, the redox potential of the culture fluid is reduced to -70 mV by holding the culture without air supply, after which pO 2 in the culture fluid is maintained at a level of 30% of atmospheric oxygen saturation until the cultivation process, the pH of the culture fluid is adjusted at 7, 4 units pH by supplying a 10% solution of NaOH, and a fractional supply of glucose is carried out in doses up to a concentration of 0.25% while limiting the growth of hemophilic bacteria with glucose, characterized by a sharp increase in pO 2 with constant air flow and stirrer speed and stopping the decrease in pH of the culture fluid.
Процесс инактивации штаммов гемофильных бактерий проводят формальдегидом при 54°С в течение 84 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,09%.The process of inactivation of hemophilic bacteria strains is carried out with formaldehyde at 54 ° C for 84 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.09%.
К культурам пастерелл, стрептококков и гемофильных бактерий, смешанных в вакцине в равных объемах при исходных концентрациях 28,0 млрд м.т./см3 пастерелл и стрептококков и 21,5 млрд м.т./см3 гемофильных бактерий каждого штамма, дополнительно добавляют лизат-антигены сальмонелл в равных объемах при следующих исходных концентрациях, млрд м.т./см3:The cultures of pasteurell, streptococci and hemophilic bacteria mixed in equal volumes in the vaccine at initial concentrations of 28.0 billion metric tons / cm 3 of pasteurell and streptococci and 21.5 billion metric tons / cm 3 of hemophilic bacteria of each strain, in addition add salmonella lysate antigens in equal volumes at the following initial concentrations, billion mt / cm 3 :
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта А-№1231 28,0;serovariant A-No 1231 28.0;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта В-№681 28,0;serovariant B-No 681 28.0;
- бактериальная масса из штамма Pasteurella multocida- bacterial mass from the strain Pasteurella multocida
сероварианта Д-Т-80 28,0;serovariant D-T-80 28.0;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 1 - №5870 21,5;serogroup 1 - No. 5870 21.5;
- бактериальная масса из штамма Haemophilus pleuropneumoniae- bacterial mass from a strain of Haemophilus pleuropneumoniae
серогруппы 2 - ГУ-19 21,5;serogroup 2 - GU-19 21.5;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus- bacterial mass from a strain of Streptococcus
zooepidemicus серогруппы С-П-2082 28,0;zooepidemicus serogroup C-P-2082 28.0;
- бактериальная масса из штамма Streptococcus suis- bacterial mass from a strain of Streptococcus suis
серогруппы R - “Касли” 28,0;serogroups R - “Castle” 28.0;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
cholerae-suis №370 28,0;cholerae-suis No. 370 28.0;
- лизат-антиген из штамма Salmonella- lysate antigen from strain Salmonella
fyphimurium №415 28,0.fyphimurium No. 415 28.0.
Технологические параметры изготовления ассоциированной инактивированной гидроокисьалюминиевой вакцины против инфекционных пневмоний и сальмонеллеза свиней, указанные в примерах, приведены в таблице.The technological parameters of the manufacture of the associated inactivated aluminum hydroxide vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis of pigs, indicated in the examples, are given in the table.
Вакцина, приготовленная по примерам 1-3, обладает высокой иммуногенной активностью и соответствует требованиям технических условий, тогда как вакцина, приготовленная по примеру 4, не обладает достаточной иммуногенной активностью, а вакцина, приготовленная по примеру 5, обладает повышенной реактогенностью.The vaccine prepared according to examples 1-3 has a high immunogenic activity and meets the requirements of technical conditions, while the vaccine prepared according to example 4 does not have sufficient immunogenic activity, and the vaccine prepared according to example 5 has increased reactogenicity.
Источники информацииSources of information
1. Патент РФ №2191598 от 27 октября 2002 г., А 61 К 39/102 “Вакцина ассоциированная гидроокисьалюминиевая против инфекционных пневмоний свиней бактериальной этиологии и способ ее изготовления”1. RF patent No. 2191598 of October 27, 2002, A 61 K 39/102 “Aluminum hydroxide associated vaccine against infectious pneumonia of pigs of bacterial etiology and a method for its manufacture”
2. Кудрявцев В.В. Иммуногенные свойства лизат-антигенов из сальмонелл, эшерихий и стафилококков. // Автореферат дис. канд. ветнаук, Москва. 1993.2. Kudryavtsev VV Immunogenic properties of lysate antigens from salmonella, Escherichia and staphylococci. // Abstract of thesis. Cand. Vetnauk, Moscow. 1993.
3. Субботин В.В., Сидоров М.А. Иммуногенные свойства лизат-антигенов из сальмонелл, эширихий и стафилококка. // Ветеринария, 1996. №4.3. Subbotin V.V., Sidorov M.A. Immunogenic properties of lysate antigens from salmonella, eschirichia and staphylococcus. // Veterinary medicine, 1996. No. 4.
4. Инструкция по изготовлению и контролю вакцины против гемофилезной плевропневмонии свиней эмульгированной, утв. 11.07.90.4. Instructions for the manufacture and control of a vaccine against hemophilic pleuropneumonia of pigs emulsified, approved. 07/11/90.
5. Патент РФ №1566533 от 7 апреля 1993 г., А 61 К 39/102 “Способ изготовления вакцины против пастереллеза птиц”.5. RF patent No. 1566533 dated April 7, 1993, A 61 K 39/102 “Method for the manufacture of a vaccine against bird pasteurellosis”.
6. Патент РФ №2129016 от 20 апреля 1999 г., А 61 К 39/112 “Способ изготовления вакцины против сальмонеллеза сельскохозяйственных животных”.6. RF patent No. 2129016 dated April 20, 1999, A 61 K 39/112 “Method for the manufacture of a vaccine against salmonellosis of farm animals”.
7. Авторское свидетельство РФ №1792708 от 8 октября 1992 г., А 61 К 39/102 “Способ получения сывороток для лечения и профилактики пастереллеза сельскохозяйственных животных, преимущественно свиней, пушных зверей и кроликов”.7. Copyright certificate of the Russian Federation No. 1792708 dated October 8, 1992, A 61 K 39/102 “Method for the production of sera for the treatment and prevention of pasteurellosis of farm animals, mainly pigs, fur animals and rabbits”.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003118281/13A RU2246316C1 (en) | 2003-06-20 | 2003-06-20 | Mixed inactivated aluminum hydroxide-containing vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis in pigs and method for it preparing |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003118281/13A RU2246316C1 (en) | 2003-06-20 | 2003-06-20 | Mixed inactivated aluminum hydroxide-containing vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis in pigs and method for it preparing |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2003118281A RU2003118281A (en) | 2004-12-10 |
RU2246316C1 true RU2246316C1 (en) | 2005-02-20 |
Family
ID=35218672
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2003118281/13A RU2246316C1 (en) | 2003-06-20 | 2003-06-20 | Mixed inactivated aluminum hydroxide-containing vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis in pigs and method for it preparing |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2246316C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2470663C1 (en) * | 2011-09-19 | 2012-12-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко (ВИЭВ) | Swine salmonellosis vaccine, method for preparing, method for preventing swine salmonellosis |
RU2649754C2 (en) * | 2016-08-31 | 2018-04-04 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности" | Method of manufacture of formolvaccine of hydrooxyaluminum polystammal against streptococcal diseases of large cattle |
-
2003
- 2003-06-20 RU RU2003118281/13A patent/RU2246316C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2470663C1 (en) * | 2011-09-19 | 2012-12-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко (ВИЭВ) | Swine salmonellosis vaccine, method for preparing, method for preventing swine salmonellosis |
RU2649754C2 (en) * | 2016-08-31 | 2018-04-04 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности" | Method of manufacture of formolvaccine of hydrooxyaluminum polystammal against streptococcal diseases of large cattle |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2246316C1 (en) | Mixed inactivated aluminum hydroxide-containing vaccine against infectious pneumonia and salmonellosis in pigs and method for it preparing | |
RU2649754C2 (en) | Method of manufacture of formolvaccine of hydrooxyaluminum polystammal against streptococcal diseases of large cattle | |
CN110643522A (en) | Culture medium, culture method and application of pasteurella multocida | |
RU2388489C1 (en) | Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias | |
RU2764118C1 (en) | Polyvalent vaccine against salmonellosis of productive animals | |
RU2191598C2 (en) | Associated aluminium hydroxide vaccine against infectious pneumonia of bacterial etiology in pigs and method for its manufacturing | |
RU2432174C1 (en) | Method for producing colibacillosis anatoxin | |
RU2538158C1 (en) | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2723711C1 (en) | Method for preparing vaccine with aluminium hydroxide against mastitis of cows streptococcal aetiology | |
RU2722668C1 (en) | Method of producing inactivated vaccine against pulmonary diseases of young animals of productive animals | |
RU2309767C1 (en) | Method for manufacturing vaccine against pseudomonosis in swine | |
RU2288002C1 (en) | Method for preparing vaccine against enterococcus infection in nutrias | |
RU2405567C1 (en) | Method of obtaining vaccine against animal pasteurellosis | |
RU2124366C1 (en) | Method of preparing vaccine against salmonellosis in agriculture animals and poultry | |
RU2311199C1 (en) | Vaccine against pasteurellosis in animals | |
RU2707289C1 (en) | Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals | |
RU2541454C1 (en) | Nutrient culture medium for swine erysipelas strain erysipelothrix rhuisipathie | |
RU2414929C1 (en) | Animal's pasteurellosis vaccine | |
RU2803269C1 (en) | Nutrient medium for the cultivation of pasteurella in industrial bioreactors | |
RU2003118281A (en) | ASSOCIATED INACTIVATED HYDROXYALUMINIA VACCINE AGAINST INFECTIOUS PNEUMONIA AND PIG SALMONELLOSIS AND METHOD FOR ITS MANUFACTURE | |
RU2053294C1 (en) | Method of cultivation of bifidobacteria | |
RU2687373C2 (en) | Method of obtaining brucellar biomass of vaccine strains at deep cultivation using a minimally invasive liquid nutrient medium | |
RU1566532C (en) | Method for producing animal anthrax vaccine | |
RU2429880C1 (en) | Method to manufacture vaccine associated against streptococcosis and virus haemorrhagic disease of rabbits | |
RU2220743C2 (en) | Method for manufacturing associated vaccine against salmonellosis, pasteurellosis and enterococcal infection in piglets |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20100621 |