RU2088665C1 - Штамм гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты - Google Patents

Штамм гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты Download PDF

Info

Publication number
RU2088665C1
RU2088665C1 RU95113067A RU95113067A RU2088665C1 RU 2088665 C1 RU2088665 C1 RU 2088665C1 RU 95113067 A RU95113067 A RU 95113067A RU 95113067 A RU95113067 A RU 95113067A RU 2088665 C1 RU2088665 C1 RU 2088665C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
citric acid
fermentation
sugar
molasses
Prior art date
Application number
RU95113067A
Other languages
English (en)
Other versions
RU95113067A (ru
Inventor
В.П. Ермакова
В.М. Голубцова
Е.Е. Саксон
В.В. Аюков
Л.А. Сергеева
А.А. Веселова
Original Assignee
Товарищество с ограниченной ответственностью Санкт-Петербургского завода лимонной кислоты
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Товарищество с ограниченной ответственностью Санкт-Петербургского завода лимонной кислоты filed Critical Товарищество с ограниченной ответственностью Санкт-Петербургского завода лимонной кислоты
Priority to RU95113067A priority Critical patent/RU2088665C1/ru
Publication of RU95113067A publication Critical patent/RU95113067A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2088665C1 publication Critical patent/RU2088665C1/ru

Links

Images

Abstract

Использование: микробиологическая промышленность, производство лимонной кислоты. Сущность изобретения: новый штамм Aspergillus niger ВКПМ F-713 - продуцент лимонной кислоты, способный ферментировать сахарсодержащее сырье как в условиях поверхностного, так и глубинного культивирования. Штамм синтезирует лимонную кислоту как из мелассы, пищевого сахара, сахара-сырца глюкозы, так и их смесей. Новый штамм превосходит родительский штамм по продуктивности на 9 - 41% в зависимости от используемого сырья и способа ферментации. 4 табл.

Description

Изобретение относится к микробиологической промышленности и касается получения штамма гриба Aspergillus niger продуцента лимонной кислоты. Селекционированный штамм Asp. nider ВКМП F-713 является активным кислотообразователем в условиях глубинной ферментации сахарсодержащих субстратов. Удельная продуктивность по лимонной кислоте и выход от сахара увеличены за счет существенного изменения морфолого-культуральных и физиолого-биохимических свойств нового штамма.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому положительному эффекту является штамм гриба Asp. nider ВКМП F-326 продуцент лимонной кислоты, обладающий высокой биосинтетической активностью по лимонной кислоте при глубинной ферментации мелассных сред, продуцируя до 9,9 кг с 1 м3 в сут лимонной кислоты. При этом конверсия сахаров в лимонную кислоту достигает 88,2% Однако этот наиболее продуктивный по лимонной кислоте штамм F-326 по своим технико-экономическим показателям уступает предлагаемому штамму [1]
Высокая биосинтетическая активность селекционированного штамма связана с вновь приобретенными морфолого-биохимическими свойствами. Селекционированный штамм F-713 отличается от всех известных промышленных штаммов способностью при глубинном культивировании формировать очень мелкие гранулы. Так, на 1 см3 культуральной среды у штамма F-713 их формируется в два раза больше, чем у штамма F-326. Такая структура мицелия за счет увеличения поверхности контакта с питательной средой и улучшения условий аэрации позволяет повысить конверсию сахаров в лимонную кислоту и усилить биосинтетическую деятельность гриба.
Цель изобретения получение суперштамма Aspergillus niger с высоким уровнем кислотообразования и способного формировать гранулированный мицелий при глубинном культивировании.
Новый штамм Aspergillus niger F-713 селекционирован с помощью УФ-лучей из промышленного штамма Aspergillus niger F-326 с последующим закреплением вновь приобретенных свойств искусственным отбором спонтанно возникающих вариантов.
Штамм F-713 депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) ВНИИГенетика.
Штамм F-713 характеризуется следующими культурально-морфологическими и физиолого-биохимическими признаками.
Культурально-морфологические признаки.
Штамм F-713 по своим морфологическим признакам существенно отличается от всех ранее известных промышленных штаммов. На сусло-агаре штамм F-713 через 5 сут выращивания при 32oC образует колонии диаметром в среднем 4,3-0,2 см. Воздушный мицелий развит слабо, поэтому опушенность колонии низкая. Окраска колонии желто-бежевая, в центре диаметром 2,8-0,1 см более темная зона, окаймленная полосой лимонного цвета шириной 2 3 мм. В центре диаметром 3 мм складчатый участок колонии, возвышающийся над остальными. Конидиеношение обильное. Обратная сторона колонии гладкая. Конидиальные головки круглые, диаметром 92-8 мкм. Вздутия конидиеносцев эллипсоидно вытянутые размером (22-4) x (15-3) мкм. Стеригмы двуслойные. Размер стеригм первого порядка - (15-3) x (6,6-0,3) мкм, второго (11,3-0,9) x (2,6-0,4) мкм. Диаметр конидий 3,66-0,04 мкм. Оболочка конидий желто-бежевой окраски. Конидиеносцы прямые, бесцветные длиной от 20 до 500 мкм, шириной 11,2-0,1 мкм.
Физиолого-биохимические свойства.
Физиологические особенности штамма F-713:
Аэроб.
Температурный диапазон роста 18-40oC. Оптимальная температура роста 32-2oC.
Развивается при pH 2,5-7,2.
Отношение к источникам азота: усваивает азот органических соединений, например, пептон, белок, аминокислоты, дрожжевой автолизат, мочевину, а также ассимилирует азот минеральных солей, предпочтительнее соли аммония, нитраты.
Отношение к источникам углерода: хорошо усваивает и растет на мальтозе, глюкозе, сахарозе, фруктозе, D-ксилозе, D-маннозе, в меньшей степени усваивает декстрин, сорбит, крахмал, D-раффинозу и плохо растет в лактозе.
Хорошо хранится в виде высушенных колоний (до 5-10% остаточной влажности) или в виде культуры, выращенной на сусло-агаре.
Генетические особенности (ауксотрофность) прототроф.
Штамм F-713 идентифицирован по Определителю грибов рода Aspergillus [2]
Штамм F-713 фенотипически отличается от штамма прототипа Aspergillus niger ВКПМ F-326, а именно, предлагаемый штамм на сусло-агаре образует компактные колонии диаметром в 2 раза меньше, чем у прототипа и других штаммов, селекционированных на более ранних ступенях селекции. Морфологические отличия нового штамма следующие: вздутия конидиеносцев в отличие от шаровидных в прототипе эллипсоидно вытянутые и в два раза меньше по размеру, в два раза длиннее стеригмы второго порядка и в четыре раза короче конидиеносцы. Эти отличительные особенности нового штамма, в частности, образование более компактных колоний на сусло-агаре и более мелких мицелиальных гранул в ферментационной среде при культивировании на качалке сохраняются и в условиях производства, в которых предлагаемый штамм также формирует мелкие гранулы, что способствует увеличению поверхности активного кислотообразования на единицу объема среды и удельной его продуктивности.
Сущность изобретения поясняется следующим конкретными примерами использования штамма F-713.
Пример 1. Ферментацию мелассных сред с помощью нового штамма осуществляли в лабораторных условиях на качалке с числом качаний 165-5 мин-1 в колбах Эрленмейера емкостью 700 см3 при 32-1oC. Инокулюм выращивали на мелассной среде следующего состава, г/дм3:
Свекловичная меласса 60,0
Оксалат аммония, дигидрат 2,14
Сульфат аммония, 7-водный 0,25
Дигидроортофосфат калия 0,16
Вода водопроводная до 1 дм3
pH 6,2
Используемая меласса содержала 50 г ферментируемых сахаров и 1,41 кальция (в пересчете на CaO) на 100 г.
Ферментационная среда приготавливалась по выше приведенной прописи и дополнительно содержала гексацианоферроат калия 0,2 г/дм3 и сульфат цинка, 7-водный 0,005 г/дм3. Сульфат магния исключен.
Состав среды для подпитки г/дм3:
Свекловичная меласса 500
Гексацианоферроат калия 1,67
Подращивание инокулюма осуществляли путем засева 50 см3 питательной среды гомогенной суспензией конидий штамма F-713 из расчета 0,001 г конидий на 1 см3 среды. Длительность выращивания инокулюма составляла 24 ч. На стадии ферментации 50 см3 питательной среды засевали 10 см3 инокулюма. В процессе ферментации проводили подпитку культуры в два этапа: первую через 24 ч, вторую через 30 ч ферментации от начала посева, вводя по 10 см3 питательной среды на каждом этапе.
В качестве контроля взят штамм Aspergillus niger ВКПМ F-326, условия культивирования аналогичны условиям культивирования селекционированного штамма F-713. Результаты эксперимента представлены в табл. 1. Сравнительные данные таблицы показывают, что селекционированный штамм F-713 формирует примерно в 5 раз больше мицелиальных гранул на 1 см3 среды, чем штамм-прототип. Мицелиальные гранулы штамма F-713 более мелкие и площадь их поверхности в 2 раза больше. Это вновь приобретенное свойство штамма способствует лучшему контакту мицелия с питательной средой, улучшает условия аэрации и повышает продуктивность единицы биомассы. Кроме того, у селекционированного штамма возрастает на 12,7% содержание лимонной кислоты в сумме синтезируемых кислот. Все выше изложенные преимущества штамма F-713 позволили повысить продуктивность процесса по лимонной кислоте на 21,4% а конверсию сахаров на 12,1% по сравнению с показателями, достигнутыми в этих же условиях штаммом прототипа.
Пример 2. Условия проведения эксперимента как в примере 1. Отличие состоит в том, что в процессе ферментации исключается дополнительная подпитка культуры мелассным раствором, а вместо этого в ферментационную среду перед засевом инокулюм вводят 20 см3 раствора пищевого кристаллического сахара с концентрацией 250 г/дм3. Это позволяет упростить технологию ведения процесса и исключить возможность инфицирования культуры при подпитке. Кроме того, замена части мелассы на пищевой кристаллический сахар ведет к значительной активации процесса. Так, по данным, представленным в табл.1 (пример 2) при таком способе ведения процесса сохраняются все преимущества штамма F-713 по сравнению со штаммом F-326 и значительно возрастают абсолютные показатели процесса по сравнению с достигнутыми в примере 1. Масса лимонной кислоты, полученная за цикл, возрастает у штамма F-713 с 4,09 до 5,70 г, а конверсия сахаров с 62,9 до 83,8% Эти же показатели при использовании прототипа возросли с 3,39 до 5,22 г и с 50,8 до 76,8% соответственно.
Пример 3. Условия проведения эксперимента как в примере 2. Отличие состоит в том, что вместо пищевого сахара использовали сахар-сырец. Результаты эксперимента представлены в табл.1. Преимущества предлагаемого штамма также очевидны и не уступают результатам примера 2.
Пример 4. Условия проведения эксперимента как в примере 1. Отличие состоит в том, что вместо свекловичной мелассы использовали тростниковую. Образец тростниковой мелассы содержал, г/100 г: ферментируемый сахар 37,6 кальций в пересчете на CaO 1,3; pH 5,2.
Полученные результаты, представленные в табл. 1, показывают, что при ферментации тростниковой мелассы биосинтетическая активность штаммов снижается по сравнению с показателями, полученными при применении свекловичной мелассы. Тем не менее и в этих условиях новый штамм продуцирует за цикл на 20,7% больше лимонной кислоты, чем известный штамм и на 7,4% повышает конверсию сахаров за счет вновь приобретенных полезных свойств.
Пример 5. Условия проведения эксперимента как в примере 2. Отличие состоит в том, что вместо свекловичной мелассы использовали тростниковую. При таком способе ведения процесса массовая доля лимонной кислоты в сумме синтезированных кислот возросла у штамма F-713 с 70,6% (пример 4) до 83,1% (пример 5), конверсия сахаров с 43,3 до 58,2% соответственно (табл.1). Удельная продуктивность предлагаемого штамма по лимонной кислоте в этих условиях составила 11,8 мг/см3•сут), что превышает продуктивность прототипа на 16,8
Пример 6. Условия опыта как в примере 5. Отличие в замене пищевого сахара на сахар-сырец полупродукт в производстве сахара из тростника. В данном примере показатели снижаются по сравнению с предыдущим примером, однако они значительно выше показателей, полученных при ферментации только тростниковой мелассы (пример 4) и сравнимы с показателями при применении в качестве сырья свекловичной мелассы (пример 1).
Таким образом, селекционированный штамм F-713 позволяет получать высокие технико-экономические показатели при ферментации различных сахарсодержащих сред, что делает его перспективным продуцентом не только для отечественной промышленности, но и для стран, обладающих большими запасами тростниковой мелассы, но не использующих ее для производства лимонной кислоты из-за отсутствия высокопродуктивного штамма.
Пример 7. Ферментацию проводили в условиях поверхностного культивирования в химических стаканах с площадь дна 0,4 дм2. Высота слоя ферментируемого раствора 9 см (объем 330 см3). Длительность ферментации 8 сут. Температура окружающего воздуха в период ферментации 32-1oC. Наряду со штаммами F-236 и F-713 испытывали штамм F-204 [3] применяемый в промышленности при поверхностном культивировании.
Состав ферментируемых сред г/дм3 (табл.1).
Результаты ферментации этих сред, оптимальных по составу для максимального проявления кислотообразующей способности прототипа, предлагаемого штамма и штамма F-204, представлены в табл.2 (пример 7). Показано, что селекционированный штамм F-713 превосходит штаммы F-326 и F-204 как по удельной продуктивности, так и по способности к конверсии сахаров в лимонную кислоту, причем при меньшей биомассе у предлагаемого штамма. Таким образом, штамм F-713 эффективен и при поверхностном культивировании, что подтверждается последующими примерами.
Пример 8. Условия ферментации как в примере 7. Отличие в замене пищевого сахара на глюкозу. Это привело к снижению кислотообразования у обоих штаммов, но и в условиях примера 8 предлагаемый штамм активнее прототипа на 20,1% при этом выход кислоты от сахара у нового штамма повысился на 9,6% (абсолютных). У обоих продуцентов наблюдалось замедление роста биомассы в первые сутки ферментации.
Пример 9. Условия ферментации как в примере 8. Отличие в том, что с целью ликвидации замедленного роста мицелиальной пленки в первые сутки ферментации часть глюкозы в количестве 30 г/дм3 заменена на пищевой кристаллический сахар. Эта замена способствовала нормальному формированию мицелиальной пленки и привела к увеличению удельной продуктивности по лимонной кислоте с 908 (пример 8) до 1000 (пример 9) у прототипа и с 1091 до 1293 мг/м3•сут соответственно у предлагаемого штамма, т.е. новый штамм оказался продуктивнее прототипа на 29,3%
Пример 10. Условия ферментации как в примере 7. Отличие состоит в том, что в качестве сахарсодержащего сырья использовалась свекловичная меласса образца примера 1 для штаммов F-236 и F-713 и образца мелассы для штамма F-204, на которых они проявляли максимум активности.
Состав ферментационной среды для штаммов F-236 и F-713, г/дм3:
Свекловичная меласса 300,0
Гексацианоферроат калия гидрат 1,0
Оксалат аммония, гидрат 11,7
Трилон Б 0,2
Сульфат цинка, гидрат 0,005
Дигидроортофосфат калия 0,1
Вода водопроводная до 1 дм3
pH 6,8
Состав образца мелассы для штамма F-204, г/100 г: ферментируемый сахар 48,5, в т.ч. инвертный 1,4; CaO 0,85; pH 6,0.
Состав ферментационной среды, г/дм3:
Меласса свекловичная 310
Гексацианоферроат калия гидрат 1,2
Трилон Б 0,2
Дигидроортофосфат калия 0,1
Сульфат цинка, гидрат до 0,005
pH 7,0
Длительность ферментации для всех трех штаммов 7 сут.
Результаты, представленные в табл.2, показывают, что вновь селекционированный штамм в этих условиях уступает штамму F-204, используемому при промышленном производстве лимонной кислоты из свекловичной мелассы поверхностным способом ферментации, по массовой доле лимонной кислоты в составе синтезируемых кислот. Однако, за счет значительного повышения биосинтетической активности у нового штамма увеличивается продуктивность по лимонной кислоте на 21,1% и на 14,2% (абсолютных) возрастает конверсия сахаров в лимонную кислоту. По этим же показателям штамм F-713 превосходит и прототип.
Пример 11. Условия ферментации как в примере 10. Отличие в том, что в качестве сахарсодержащего сырья использована тростниковая меласса, характеристика образца которой дана в примере 4.
Состав ферментационной среды, г/дм3:
Меласса тростниковая 400,0
Гексацианоферроат калия гидрат 2,03
Оксалат аммония, гидрат 11,1
Трилон Б 0,075
Сульфат цинка, гидрат 0,005
Дигидроортофосфат калия 0,08
Вода водопроводная до 1 дм3
pH 7,0
Результаты ферментации, представленные в табл.2, показывают, что селекционированный штамм F-713 эффективно ферментирует тростниковую мелассу, причем показатели по продуктивности сравнимы с полученными при ферментации свекловичной мелассы.
В данном примере и во всех выше приведенных штамм F-713 по окончании ферментации имеет более высокую массовую долю лимонной кислоты в общей сумме синтезируемых кислот. К концу ферментации предлагаемый штамм, как правило, накапливал меньшую или равную биомассу по сравнению с прототипом, что способствовало снижению затрат на сырье.
Таким образом, приведенные примеры 1-11 показывают, что новый штамм эффективен как в условиях глубинного, так и поверхностного культивирования при ферментации свекловичной и тростниковой меласс, пищевого сахара, сахара-сырца, глюкозы и их смесей.
Пример 12. Выращивание посевного инокулюма и ферментацию мелассных сред осуществляли методом погруженной культуры в производственных условиях. Питательные среды приготавливали на основе свекловичной мелассы по рецептам примера 1.
Инокулюм выращивали в посевных ферментаторах емкостью 5 м3. Объем мелассной среды 3 м3, длительность выращивания 24 ч. Подготовленный инокулюм переводили в ферментатор емкостью 50 м3 с 27 м3 ферментационной мелассной среды. Через 24 ч ферментации начинали основную подпитку культуры, вводя по 1 м3 среды через каждые 1,5 ч. Суммарное количество сахара, введенное в ферментатор с подпиткой, 2000 кг. На пятые-шестые сутки ферментации производили отъем сферментированного раствора в объеме 5 м3, а для подпитки культуры и продления цикла вводили концентрированный по сахару 200 г/дм3 мелассный раствор в том же объеме. Длительность ферментации 8,7 9 сут.
Результаты испытаний, отображенные в табл.3, показывают, что предлагаемый производству штамм F-713 обладает рядом преимуществ: при практически одинаковой длительности процесса ферментации удельная продуктивность превышает прототип на 14,7% причем снижается удельный расход сырья на 10,9% конверсия сахаров в лимонную кислоту увеличивается на 8,6% В условиях производства, как и в лабораторных новый штамм синтезировал мицелий, отличающийся по своей структуре от прототипа, в виде очень мелких гранул. Штамм F-326 в условиях производства образовывал диффузный мицелий.
Таким образом, новый штамм за счет существенных отличительных морфолого-культуральных и физиолого-биохимических признаков имеет преимущество перед производственным. Штамм F-713 универсален, эффективно синтезирует лимонную кислоту из свекловичной и тростниковой меласс, пищевого сахара, сахар-сырца, глюкозы и их смесей. Предлагаемый штамм одинаково продуктивен как при глубинном, так и при поверхностном способах ферментации. Высокие технико-экономические показатели его при ферментации различных сахарсодержащих субстратов делает предлагаемый штамм перспективным не только для отечественной промышленности, но и зарубежной, в частности для стран, обладающих большими запасами тростниковой мелассы, отходов сельскохозяйственной и пищевой промышленности и не использующих их из-за отсутствия высокорентабельного продуцента.

Claims (1)

  1. Штамм гриба Aspergillus niger ВКПМ F 713 продуцент лимонной кислоты.
RU95113067A 1995-07-24 1995-07-24 Штамм гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты RU2088665C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95113067A RU2088665C1 (ru) 1995-07-24 1995-07-24 Штамм гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95113067A RU2088665C1 (ru) 1995-07-24 1995-07-24 Штамм гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU95113067A RU95113067A (ru) 1997-06-20
RU2088665C1 true RU2088665C1 (ru) 1997-08-27

Family

ID=20170599

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU95113067A RU2088665C1 (ru) 1995-07-24 1995-07-24 Штамм гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2088665C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Авторское свидетельство СССР N 1315472, кл. C 12 N 1/14, 1987. 2. Билай В.И., Коваль Э.З. Аспергиллы. The genus Aspergilli. - Киев: Наукова думка, 198, с. 203. 3. Авторское свидетельство СССР N 1063832, кл. C 12 N 15/00, 1984. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU95113067A (ru) 1997-06-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ishizuka et al. Breeding of a mutant of Aureobasidium sp. with high erythritol production
Park et al. Production of erythritol in fed-batch cultures of Trichosporon sp.
Veelken et al. Production of tylosin and nikkomycin by immobilized Streptomyces cells
Hayashida et al. High concentration-ethanol fermentation of raw ground corn
EP1616018B1 (en) Method of producing 1,2-propanediol using klebsiella pneumoniae
KR100271137B1 (ko) 신규 미생물 트리코스포로노이데스 마디다 디에스911 및 이 균주를 이용한 에리스리톨의 제조방법
RU2088665C1 (ru) Штамм гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты
US5962287A (en) Process for producing erythritol using mutant Trichosporonoides
KR19980074068A (ko) 천연으로부터 분리한 신균주 캔디다 트롭피칼리스에 의한 자일리톨의 제조방법
NO147927B (no) Anordning for aa skille fra hverandre to medier som befinner seg i hvert sitt rom paa hver sin side av en ringformet aapning mellom to deler som er bevegelige i forhold til hverandre
KR101576183B1 (ko) 부산물을 이용한 에리스리톨 제조 방법, 에리스리톨 생산성이 우수한 모닐리엘라 폴리니스 변이 균주 및 이의 이용
KR100416637B1 (ko) 만니톨 생성균주 캔디다 매그노리아 및 이를 이용한만니톨의 발효 제조방법
RU2096461C1 (ru) Штамм дрожжей yarrowia lipolytica - продуцент лимонной кислоты и способ получения лимонной кислоты
KR100541578B1 (ko) 에리트리톨 생산방법
RU2080372C1 (ru) Штамм гриба aspergillus niger - продуцент лимонной кислоты
RU2036230C1 (ru) Штамм дрожжей saccharomyces vini раса "дербентская яблочная" для производства плодово-ягодных вин
EP2287324A2 (en) Fermentation processes with low concentrations of carbon- and nitrogen-containing nutrients
KR100299544B1 (ko) 피키아속신균주에의한에리쓰리톨의제조방법
KR100490280B1 (ko) 바실러스 서브틸리스 변이주를 이용한 자일로스로부터 라이보스의 생물학적 생산 방법
KR100434518B1 (ko) 신균주 슈도지마 츄쿠밴시스에 의한 에리스리톨의 발효제조방법
RU2088666C1 (ru) Штамм микроскопического гриба aspergillus niger-продуцент лимонной кислоты
RU2077573C1 (ru) Штамм дрожжей hansenula species - продуцент кормовой биомассы
JP4066287B2 (ja) 新規微生物およびそれを用いたエリスリトールの製造方法
KR100248870B1 (ko) 돌연변이주 캔디다 트로피칼리스 에스디비-101 및 이에 의한자일리톨의 제조 방법
RU2001949C1 (ru) Штамм гриба TRICHODERMA REESEI - продуцент целлюлолитических ферментов