RU2080327C1 - Method of preparing mucopolysaccharide - keratosulfate - Google Patents
Method of preparing mucopolysaccharide - keratosulfate Download PDFInfo
- Publication number
- RU2080327C1 RU2080327C1 RU93051606A RU93051606A RU2080327C1 RU 2080327 C1 RU2080327 C1 RU 2080327C1 RU 93051606 A RU93051606 A RU 93051606A RU 93051606 A RU93051606 A RU 93051606A RU 2080327 C1 RU2080327 C1 RU 2080327C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- keratosulfate
- extract
- volumes
- solution
- hours
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области химии полисахаридов, конкретно к способу получения кератосульфата высокомолекулярного полисахарида, выполняющего роль скользящего и связующего материала в организме и используемого в биохимических исследованиях и в офтальмологической практике. The invention relates to the field of polysaccharide chemistry, and specifically to a method for producing high molecular weight polysaccharide keratosulfate, which acts as a moving and bonding material in the body and used in biochemical studies and in ophthalmic practice.
Известны способы получения кератосульфата из роговицы быка и из межреберного хряща больных людей с нарушениями функций скелета (J.Biol.Chem. - 1953, v. 205. pp. 611-635, а также Biochim. Biophys. Acta. 1958. v. 30. р. 184). Выход целевого продукта составляет, однако, не более 0,08 0,1% от исходной массы сырья. Known methods for producing keratosulfate from the cornea of the bull and from the intercostal cartilage of sick people with impaired skeleton functions (J. Biol. Chem. - 1953, v. 205. pp. 611-635, as well as Biochim. Biophys. Acta. 1958. v. 30 p. 184). The yield of the target product, however, is not more than 0.08 0.1% of the initial mass of raw materials.
Известен также способ получения кератосульфата согласно источнику (Acta Chem. Scand. 1957. v.11.р.р. 668-674), в соответствии с которыми животное сырье центральную часть межпозвоночных хрящей человеке гомогенизируют, лиофилизируют, экстрагируют кипящей водой, экстракт отделяют, депротеинизируют инкубацией с экстрактом поджелудочной железы, кератосульфат осаждают 50-60% -ным этиловым спиртом, осадок растворяют в 0,3%-ном растворе ацетата бария, очищают хроматографией на колонке с целлюлозой при использовании в качестве элюента раствора этилового спирта с последующей сушкой элюата сублимацией. Недостаток этого способа заключается в низком выходе целевого продукта (0,12-0,32% от исходной массы сырья). There is also known a method of producing keratosulfate according to the source (Acta Chem. Scand. 1957. v.11.r. R. 668-674), in accordance with which the animal raw material is homogenized in the central part of the intervertebral cartilage of a person, lyophilized, extracted with boiling water, the extract is separated, deproteinized by incubation with pancreatic extract, keratosulfate precipitated with 50-60% ethanol, the precipitate was dissolved in a 0.3% solution of barium acetate, purified by chromatography on a cellulose column using ethyl alcohol with osleduyuschey drying the eluate freeze. The disadvantage of this method is the low yield of the target product (0.12-0.32% of the initial mass of raw materials).
Согласно принятому за прототип, наиболее близкому к заявляемому техническому решению по (авт. свид. СССР N 918294), терапевтически активный сложный полиэфир серной кислоты с мукополисахаридом из трахей крупного рогатого скота (кератосульфат) выделяют путем фракционирования низшим алифатическим спиртом (этиловым спиртом) сырой мукополисахаридной смеси, полученной экстракцией трахей; последующим осаждением при pH 1-2 и температуре 20o 30-34 об. -ным раствором этилового спирта, а затем 70-74 об. этиловым спиртом, гидролизом осадка соляной кислотой и сульфатированием хлорсульфоновой кислотой в диметилфомамиде, диализом 5%-ного раствора продукта при pH 9-10 и температуре 4-25o через полые волоконные мембраны с границей исключения ≅ 5000, очисткой на сильнокислотной катионообменной смоле и обесцвечиванием H2O2. Из 10 кг трахей получают 71,5 г продукта. Недостаток описанного выше способа состоит в его сложности, в необходимости использования опасного и агрессивного химического соединения хлорсульфоновой кислоты, а также длительности процесса очистки диализом. Изобретение решает задачу упрощения процесса выделения кератосульфата из трахей крупного рогатого скота при сохранении высокого выхода целевого продукта.According to the prototype adopted, closest to the claimed technical solution according to (ed. Certificate of the USSR N 918294), the therapeutically active polyester of sulfuric acid with mucopolysaccharide from cattle trachea (keratosulfate) is isolated by fractionation with lower aliphatic alcohol (ethyl alcohol) crude mucopolysaccharide a mixture obtained by extraction of the trachea; subsequent precipitation at pH 1-2 and a temperature of 20 o 30-34 about. solution of ethyl alcohol, and then 70-74 vol. ethyl alcohol, hydrolysis of the precipitate with hydrochloric acid and sulfation with chlorosulfonic acid in dimethylfamamide, dialysis of a 5% solution of the product at pH 9-10 and a temperature of 4-25 o through hollow fiber membranes with an exclusion limit of ≅ 5000, purification on a strongly acidic cation exchange resin and discoloration of H 2 O 2 . 71.5 g of product are obtained from 10 kg of trachea. The disadvantage of the above method is its complexity, the need to use a dangerous and aggressive chemical compound of chlorosulfonic acid, as well as the duration of the dialysis purification process. The invention solves the problem of simplifying the process of isolating keratosulfate from cattle trachea while maintaining a high yield of the target product.
Поставленная цель достигается тем, что в способе получения кератосульфата из трахей крупного рогатого скота, включающем их обезжиривание ацетоном и гомогенизацию, экстракцию водным раствором щелочи, обработку щелочного экстракта водным раствором этилового спирта с выделением осадка, гидролиз полученного осадка соляной кислотой с последующей хроматографической очисткой целевого мукополисахарида, экстракцию обезжиренных и гомогенизированных трахей крупного рогатого скота проводят 5-6 частями 0,5-1%-ного водного раствора едкого натра при 40-60o в течение 3-4 ч, экстракт дополнительно депротеинизируют встряхиванием с 3-4-мя объемами хлороформа в течение 1-2 ч, депротеинизированный экстракт обрабатывают 50-60% -ным этиловым спиртом, гидролиз полученного осадка осуществляют в 1-2 частях 0,2-0,4%-ного раствора соляной кислоты, а хроматографическую очистку целевого продукта - кератосульфата проводят хроматографированием полученного солянокислого раствора на колонке, заполненной целлюлозой, с 1-2%-ным водным раствором цетилпиридинийхлорида в качестве элюента, с последующей лиофильной сушкой.This goal is achieved by the fact that in the method for producing keratosulfate from cattle trachea, including their degreasing with acetone and homogenization, extraction with an aqueous solution of alkali, treatment of the alkaline extract with an aqueous solution of ethyl alcohol with a precipitate, hydrolysis of the obtained precipitate with hydrochloric acid, followed by chromatographic purification of the target mucopolysaccharide , fat-free and homogenized trachea cattle extraction is carried out with 5-6 parts of 0.5-1% aqueous solution of caustic soda p and 40-60 o for 3-4 hours, extract further deproteiniziruyut shaking-ring with 3-4 volumes of chloroform for 1-2 hours, deproteinized extract is treated with 50-60% ethyl alcohol, the hydrolysis is carried out in the resulting precipitate of 1- 2 parts of a 0.2-0.4% hydrochloric acid solution, and the chromatographic purification of the target product keratosulfate is carried out by chromatography of the obtained hydrochloric acid solution on a column filled with cellulose, with a 1-2% aqueous solution of cetylpyridinium chloride as an eluent, followed by lyophilic with shkoy.
Выход кератосульфата по заявленному способу составляет 0,58-0,62% исходной массы сырья, что почти не уступает величине выхода по известному способу (0,715%), однако заявленный способ проще в исполнении, безопаснее и не столь продолжителен (благодаря исключению ClSO3H и стадии диализа).The yield of keratosulfate according to the claimed method is 0.58-0.62% of the initial mass of raw materials, which is almost not inferior to the yield according to the known method (0.715%), however, the claimed method is simpler to perform, safer and not so long (due to the exclusion of ClSO 3 H and stage dialysis).
Изобретение поясняется примерами 1-3. The invention is illustrated by examples 1-3.
Пример 1: 1 кг трахей телят измельчают на мясорубке, гомогенизируют в микроизмельчителе тканей, фарш обезжиривают обработкой ацетоном (4 х 4л) в течение 6 ч, сушат до удаления запаха ацетона и порошок экстрагируют 5 л (5 объемов) 0,5% -ного водного раствора NaCH при 40oC в течение 3 ч. Смесь охлаждают до 20o, экстракт отделяют фильтрованием на нутч-фильтре, к 4,6 л раствора добавляют 13,3 л хлороформа (3 объема) и встряхивают на шуттель-аппарате в течение 1 ч. Водную фазу отделяют от хлороформа, содержащего белки, на делительной воронке и добавляют 4 объема 50%-ного этилового спирта. Через 1 ч. образовавшийся осадок отделяют фильтрованием и растворяют в 1 л 0,2%-ного раствора HCl (1 объем от массы исходного сырья), раствор пропускают через колонку (5х35 см) с порошком целлюлозы со скоростью 15 мл/мин. колонку вымывают 1% -ным водным раствором цетилпиридинийхлорида, элюат сушат сублимацией и получают 5,3 г (выход 0,38%) очищенного кератосульфата.Example 1: 1 kg of calf trachea is minced in a meat grinder, homogenized in a tissue micro-grinder, minced meat is treated with acetone (4 x 4 L) for 6 hours, dried to remove the smell of acetone and the powder is extracted with 5 L (5 volumes) of 0.5% aqueous NaCH at 40 o C for 3 h. The mixture is cooled to 20 o , the extract is separated by filtration on a suction filter, 13.3 l of chloroform (3 volumes) are added to 4.6 L of the solution and shaken on a shuttle machine for 1 h. The aqueous phase is separated from the chloroform containing proteins on a separatory funnel and 4 volumes of 50% are added. ethyl alcohol. After 1 h, the precipitate formed is filtered off and dissolved in 1 L of a 0.2% HCl solution (1 volume by weight of the feedstock), the solution is passed through a column (5x35 cm) with cellulose powder at a rate of 15 ml / min. the column is washed with a 1% aqueous solution of cetylpyridinium chloride, the eluate is freeze-dried and 5.3 g (0.38% yield) of purified keratosulfate are obtained.
Пример 2: 1 кг измельченных и гомогенизированных трахей телят обезжиривают ацетоном (4 х 4 л), сушат и порошок экстрагируют 5,5 л (5,5 объемов) 0,75% -ного водного раствора NaCH при 50oC в течение 3,5 ч. Смесь охлаждают до 20oC, экстракт отделяют фильтрованием, к 5 л раствора добавляют 17,5 л хлороформа (3,5 объема и встряхивают в течение 1,5 ч. Водную фазу отделяют, добавляют 4 объема 55%-ного этилового спирта, через 1 ч. осадок отфильтровывают, растворяют в 1,5 л 0,3%-ного раствора HCl (1,5 объема от массы исходного вещества-сырья), раствор пропускают через колонку (35 х 5 см) с порошком целлюлозы со скоростью 15 мл/мин, колонку вымывают 1,5%-ным водным раствором цетилпиридинийхлорида, элюат сушат сублимацией и получают 6 г (выход 0,6%) очищенного кератосульфата.Example 2: 1 kg of crushed and homogenized trachea of calves is degreased with acetone (4 x 4 L), dried and the powder is extracted with 5.5 L (5.5 volumes) of a 0.75% aqueous solution of NaCH at 50 o C for 3, 5 hours. The mixture is cooled to 20 ° C., the extract is filtered off, 17.5 liters of chloroform are added to 5 liters of solution (3.5 volumes and shaken for 1.5 hours. The aqueous phase is separated, 4 volumes of 55% ethyl are added). alcohol, after 1 h, the precipitate is filtered off, dissolved in 1.5 l of a 0.3% HCl solution (1.5 volumes by weight of the starting material), the solution is passed through a column (35 x 5 cm) s cellulose powder at a speed of 15 ml / min, the column is washed with a 1.5% aqueous solution of cetylpyridinium chloride, the eluate is freeze-dried and 6 g (yield 0.6%) of purified keratosulfate are obtained.
Пример 3:
1кг измельченных и гомогенизированных трахей телят обезжиривают обработкой ацетоном, сушат порошок экстрагируют 6 л (6 объемов) 1%-ного водного раствора NaOH при 60oC в течение 4 ч. Смесь охлаждают до 20oC, экстракт отделяют фильтрованием, к 5,6 л раствора добавляют 22,4 л хлороформа (4 объема) и встряхивают 2 ч. Водную фазу отделяют, добавляют 4 объема 60%-ного этилового спирта, через 1 ч. осадок отфильтровывают, растворяют в 2 л 0,4%-ного раствора HCl (2 объема от массы исходного сырья), раствор пропускают через колонку (5 х 35 см) с порошком целлюлозы со скоростью 15 мл/мин. колонку вымывают 2%-ным водным раствором цетилпиридинийхлорида, элюат сушат сублимацией и получают 6,2 г (выход 0,62%) очищенного кератосульфата.Example 3:
1 kg of crushed and homogenized trachea of calves is degreased with acetone, the powder is dried, extracted with 6 l (6 volumes) of 1% aqueous NaOH solution at 60 ° C for 4 hours. The mixture is cooled to 20 ° C, the extract is filtered off to 5.6 L of the solution add 22.4 L of chloroform (4 volumes) and shake for 2 hours. The aqueous phase is separated, 4 volumes of 60% ethanol are added, after 1 h, the precipitate is filtered off, dissolved in 2 L of a 0.4% HCl solution. (2 volumes by weight of the feedstock), the solution is passed through a column (5 x 35 cm) with cellulose powder at a speed 15 ml / min. the column is washed with a 2% aqueous solution of cetylpyridinium chloride, the eluate is freeze-dried and 6.2 g (0.62% yield) of purified keratosulfate are obtained.
Продукт не содержит примесей других полисахаридов, о чем свидетельствует наличие одного единственного пятна с RF 0,73 при хроматографии образца на бумаге (метод восходящей хроматографии на бумаге в системе растворителей н-бутиловый спирт концентрированный аммиак вода, 4:1:5).The product does not contain impurities of other polysaccharides, as evidenced by the presence of a single spot with R F 0.73 during the chromatography of a sample on paper (upward chromatography on paper in a solvent system n-butyl alcohol concentrated ammonia water, 4: 1: 5).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93051606A RU2080327C1 (en) | 1993-11-26 | 1993-11-26 | Method of preparing mucopolysaccharide - keratosulfate |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93051606A RU2080327C1 (en) | 1993-11-26 | 1993-11-26 | Method of preparing mucopolysaccharide - keratosulfate |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU93051606A RU93051606A (en) | 1996-09-10 |
RU2080327C1 true RU2080327C1 (en) | 1997-05-27 |
Family
ID=20149143
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU93051606A RU2080327C1 (en) | 1993-11-26 | 1993-11-26 | Method of preparing mucopolysaccharide - keratosulfate |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2080327C1 (en) |
-
1993
- 1993-11-26 RU RU93051606A patent/RU2080327C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 918294, кл. С 08 В 37/08, 1982. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5233033A (en) | Method for production of sialic acid | |
RU2080327C1 (en) | Method of preparing mucopolysaccharide - keratosulfate | |
US3936351A (en) | Method for preparing glucoronyl-glucosamino-glycan sulphates exhibiting antilipasaemic activity | |
KR102055628B1 (en) | Method for producing heparin sodium using pig by-products | |
US3262854A (en) | Method for the recovery of heparin | |
FI81582C (en) | Procedure for purifying hemin, new hemin derivative and method for preparing it | |
KR910009162B1 (en) | Preparation process for immunostimulating acylglycoproteins extracted from kleosiella pneumonial | |
KR20030003503A (en) | An aguiring method of keratoid lactide which is mucous polysaccharide | |
RU2049472C1 (en) | Method of preparing brain tissue hydrolyzate "cerebrolyzate" | |
RU2115662C1 (en) | Method of preparing hyaluronic acid | |
SU539507A3 (en) | Method for producing glycopeptide | |
US3308026A (en) | Process for the production and recovery of the kallikrein-inacti-vator from proteinaceous hormone wastes | |
RU2017496C1 (en) | Method of dna sodium salt isolation | |
RU2049471C1 (en) | Method of preparing brain tissue hydrolyzate "cerebrolyzate" | |
RU2061485C1 (en) | Method of isolation of chondroitine sulfate from animal tissues | |
JP2004189825A (en) | Method for producing sodium chondroitin sulfate | |
RU2040262C1 (en) | Method for obtaining protein hydrolysate from immunologically immature tissues | |
SU377159A1 (en) | METHOD OF OBTAINING PROTEAS INHIBITOR | |
KR20190061322A (en) | Method for producing unfractionated heparin | |
RU2074196C1 (en) | Method of hyaluronic acid preparing | |
RU2096038C1 (en) | Method of preparing proteoglycan aggregate from animal connective tissue (variants) | |
RU2748071C1 (en) | Method for obtaining individual fractions of matrix hyaluronate of various molecular weights of high fractional and chemical purity in a single technological cycle | |
SU1227199A1 (en) | Method of producing pustulan | |
US2085768A (en) | Method of separating and isolating the thyreotropic and the gonadotropic hormone of the anterior lobe of the hypophysis | |
RU2091073C1 (en) | Method of immunostimulating agent preparing |