RU2044052C1 - Штамм культивируемых клеток растений eritrichium incanum (turcz.) a.dc.ssp. sichotense (m.pop.) starchenko, используемый для получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью - Google Patents
Штамм культивируемых клеток растений eritrichium incanum (turcz.) a.dc.ssp. sichotense (m.pop.) starchenko, используемый для получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью Download PDFInfo
- Publication number
- RU2044052C1 RU2044052C1 RU93033302A RU93033302A RU2044052C1 RU 2044052 C1 RU2044052 C1 RU 2044052C1 RU 93033302 A RU93033302 A RU 93033302A RU 93033302 A RU93033302 A RU 93033302A RU 2044052 C1 RU2044052 C1 RU 2044052C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- activity
- chitinase
- strain
- ersr
- eritrichium
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Использование: биотехнология, сельское хозяйство и медицина. Сущность изобретения: штамм ErSR получен из дикорастущего растения незабудочника сихотинского в фазе цветения. Ростовой индекс культуры 10± 3. Штамм культивируемых клеток растений ErSR является новым источником для биотехнологического получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью. Препарат представляет собой белковую фракцию, выделенную из биомассы клеток штамма ErSR, и имеет следующие характеристики ( из расчета на 1 г сырых клеток ): концентрация белка 2,05 мг, суммарная хитиназная активность 4210 мкМ, суммарная хитозаназная активность 585 мкМ, удельная хитиназная активность 2050 мкМ/мг, удельная хитозаназная активность 285 мк/мг. 3 табл.
Description
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано в сельском хозяйстве и медицине. Штамм культивируемых клеток растений Eritrichium incanum (Turcz. ) A.DC. ssp. sichotense (M.Pop.) Starchenko (ErSR) является новым доступным источником ферментов углеводного обмена хитиназы и хитозаназы, которые расщепляют β -1,4-гликозидные связи в широко распространенных в природе биополимерах хитине и хитозане. В результате реакций расщепления хитина и хитозана образуются полисахариды низкой молекулярной массы, смесь олигосахаридов, аминосахаров. Хитиназа и хитозаназа распространены в растениях и необходимы для борьбы с фитопатогенами, грибными и вирусными инфекциями с насекомыми [1] В свою очередь продукты, получаемые из хитина и хитозана с помощью ферментативной деградации, сами являются ингибиторами фитопатогенов, увеличивают устойчивость растений к грибковым заболеваниям, проявляют элиситорную активность, обладают противоопухолевой и иммуностимулирующей активностью.
До недавнего времени хитиназы и хитозаназы выделяли из микроорганизмов и только в последние годы в качестве источников этих ферментов были использованы клеточные культуры риса [2] Данные по использованию незабудочника сихотинского, как источника получения хитиназы и хитозаназы в литературе отсутствуют.
Поиск доступных источников хитиназ и хитозаназ имеет научный и практический интерес, так как позволит получать не только высокоактивные ферментные препараты, но и с их помощью модифицированные производные хитина и хитозана, широко используемые в сельском хозяйстве и медицине природные биологически активные вещества.
Целью изобретения является получение активно растущего штамма клеток незабудочника сихотинского Eritrichium sichotense (M.Pop.) Starchenko, являющегося продуцентом хитиназы и хитозаназы.
Штамм Eritrichium sichotense (ErSR) получен и находится на депонировании во Всероссийской коллекции клеточных культур, а именно в специализированной коллекции клеток высших растений Института физиологии растений им. К.А.Тимирязева Российской Академии Наук под коллекционным номером 50.
Описание и сходного материала. Исходным материалом для получения штамма ErSR было дикорастущее растение незабудочника сихотинского в фазе цветения, найденное в Приморском крае, Партизанском районе на южном склоне известнякового хребта Чандалаз (Лазовый) в мае 1990 года. Эксплантом служили кусочки поперечного среза корней размером 3-4 мм.
Культуральные свойства. Растущая каллусная культура представляет собой мягкую ткань рыхлой консистенции светло-серого цвета без запаха. Ростовой индекс 10±3 для каллусов начальной массой 200 мг. Живых клеток 91-95% в середине стадии экспоненциального роста, содержание сухого вещества 2,7% Штамм ErSR выращивают при температуре 25 ± 1оС, относительной влажности воздуха 60 ± 10% в темноте на питательной среде следующего состава, мг/л воды: NH4NO3 1300-1950 KNO3 1500-2300 KH2PO4 150-190 CaCl2 x 6H2O 600-730 MgSO4 x 7H2O 350-390 H3BO3 4,2-8,0 MnSO4 x 4H2O 15,6-26,7 CuSO4 x 5H2O 0,02-0,03 CoCl2 x 2H2O 0,02-0,03 ZnSO4 x 7H2O 6,0-10,3 Na2MoO4 x 2H2O 0,2-0,3 KI 0,52-0,90 FeSO4 x 7H2O 25,0-30,6 Na2EDTA x 2H2O 33,6-41,0 Мезо-инозит 80-120 Никотиновая кислота 0,4-0,6 Пиридоксина гидрохлорид 0,4-0,6 Тиамин хлорид 0,15-0,25 Глицин 1-3 6-Бензиламинопурин 0,25-0,75 α -нафтилуксусная кислота (АНУ) 1-3 Казеина гидролизат 40-60 Сахароза 25000-35000 Агар 5800-6200 Вода До 1 л
рН среды 5,2-5,6 до автоклавирования.
рН среды 5,2-5,6 до автоклавирования.
Ткань культивируется в пробирках емкостью 50 мл, содержащих 15 мл питательной среды или в колбах Эрленмейера емкостью 100 мл 30 мл питательной среды. Продолжительность цикла выращивания 28 сут. Номер пассажа 34.
Цитологические и кариологические характеристики штамма ErSR.
Ткань представляет собой гетерогенную популяцию, состоящую из двух групп клеток. Первая группа клетки меристематического типа овальной или удлиненной формы, имеющие средние размеры 50 х 64 мкм, содержание которых в популяции 36-91% Вторая группа клетки паренхимного типа тоже овальной или удлиненной формы, но более крупные, средние размеры 94-145 мкм, содержание их в популяции 9-64%
Максимум митотической активности наблюдается на 24 и 30 сут культивирования, митотический индекс 10,4 и 10,6% соответственно.
Максимум митотической активности наблюдается на 24 и 30 сут культивирования, митотический индекс 10,4 и 10,6% соответственно.
Распределение клеток по числу хромосом штамма ErSR дано в табл.1
Способность к морфогенезу отсутствует.
Способность к морфогенезу отсутствует.
Характеристика хитиназной и хитозаназной активности препарата, полученного из биомассы штамма ErSR незубудочника сихотинского.
После окончания цикла культивирования (28 сут) сырую биомассу клеток собирают, белки экстрагируют 0,03 М трис-HCl буфером рН 7,0 и концентрируют сульфатом аммония. Полученная белковая фракция представляет собой препарат, обладающий хитиназной и хитозаназной активностью. Ферментативную активность препаратов из биомассы штамма ErSR определяют по методу Нельсона, используя в качестве субстратов 1%-ную суспензию коллоидного хитина и 5%-ный раствор хитозана. Препарат, полученный из штамма ErSR, имеет следующие характеристики из расчета на 1 г сырых клеток биомассы: концентрация белка 2,05 мг
суммарная хитиназная активность 4210 мкМ
суммарная хитозаназная активность 585 мкМ
удельная хитиназная активность 2050 мкМ/мг
удельная хитозаназная активность 285 мкМ/мг
В табл. 2 приведены характеристики препаратов, полученных из биомассы клеток в процессе долговременного культивирования штамма.
суммарная хитиназная активность 4210 мкМ
суммарная хитозаназная активность 585 мкМ
удельная хитиназная активность 2050 мкМ/мг
удельная хитозаназная активность 285 мкМ/мг
В табл. 2 приведены характеристики препаратов, полученных из биомассы клеток в процессе долговременного культивирования штамма.
Использование штамма иллюстрируется следующим примером.
В пробирки емкостью 50 мл наливают по 15 мл питательной среды следующего состава, мг/л воды: NH4NO3 1650 KNO3 1900 KH2PO4 170 CaCl2 x 6H2O 665 MgSO4 x 7H2O 370 H3BO3 6,2 MnSO4 x 4H2O 22,3 CuSO4 x 5H2O 0,025 CoCl2 x 2H2O 0,025
ZnSO4 x 7H2O 8,6 Na2MoO4 x 2H2O 0,25 KI 0,83 FeSO4 x 7H2O 27,8 Na2EDTA x 2H2O 37,3 Мезо-инозит 100 Никотиновая кислота 0,5 Пиридоксина гидрохлорид 0,5 Тиамин хлорид 0,2 Глицин 2,0 6-Бензиламинопурин 0,5 α-нафтилуксусная кислота (АНУ) 2,0 Казеина гидролизат 50 Сахароза 30000 Агар 6000
рН среды 5,5 до автоклавирования
Пробирки со средой стерилизуют при 117оС в течение 20 мин, а затем в асептических условиях в каждую пробирку помещают по 200 мг клеточной биомассы штамма ErSR. Культивирование проводят в темноте при 24оС и относительной влажности воздуха 60% в течение 28 сут. Затем биомассу снимают с поверхности питательной среды, взвешивают. В каждой пробирке накапливается по 2,5-3,0 г сырой биомассы. Сырую биомассу собирают с поверхности питательной среды, экстрагируют 0,03 М трис-HCl буфером рН 7,0, содержащим 0,9% NaCl, гомогенизируют и выдерживают при 4оС в течение 12 ч. Супернатант сливают, а осадок экстрагируют дважды. Из объединенного супернатанта выделяют белковую фракцию путем высаливания сульфатом аммония (60% насыщение). Сформированный осадок отделяют центрифугированием при 3000 об/мин в течение 30 мин при 4оС. Осадок растворяют в небольшом объеме 0,03 М трис-HCl буфера рН 7,0 и диализуют против буфера до удаления сульфата аммония.
ZnSO4 x 7H2O 8,6 Na2MoO4 x 2H2O 0,25 KI 0,83 FeSO4 x 7H2O 27,8 Na2EDTA x 2H2O 37,3 Мезо-инозит 100 Никотиновая кислота 0,5 Пиридоксина гидрохлорид 0,5 Тиамин хлорид 0,2 Глицин 2,0 6-Бензиламинопурин 0,5 α-нафтилуксусная кислота (АНУ) 2,0 Казеина гидролизат 50 Сахароза 30000 Агар 6000
рН среды 5,5 до автоклавирования
Пробирки со средой стерилизуют при 117оС в течение 20 мин, а затем в асептических условиях в каждую пробирку помещают по 200 мг клеточной биомассы штамма ErSR. Культивирование проводят в темноте при 24оС и относительной влажности воздуха 60% в течение 28 сут. Затем биомассу снимают с поверхности питательной среды, взвешивают. В каждой пробирке накапливается по 2,5-3,0 г сырой биомассы. Сырую биомассу собирают с поверхности питательной среды, экстрагируют 0,03 М трис-HCl буфером рН 7,0, содержащим 0,9% NaCl, гомогенизируют и выдерживают при 4оС в течение 12 ч. Супернатант сливают, а осадок экстрагируют дважды. Из объединенного супернатанта выделяют белковую фракцию путем высаливания сульфатом аммония (60% насыщение). Сформированный осадок отделяют центрифугированием при 3000 об/мин в течение 30 мин при 4оС. Осадок растворяют в небольшом объеме 0,03 М трис-HCl буфера рН 7,0 и диализуют против буфера до удаления сульфата аммония.
Белковая фракция представляет собой препарат, обладающий хитиназной и хитозаназной активностью.
Оценка хитиназной и хитозаназной активности препарата.
Для определения хитаназной активности белкового препарата в пробу добавляют 2 мл буфера рН 5,0, 50 мкл 1%-ной суспензии хитина и 0,1-0,2 мл белковой фракции. Реакционную смесь инкубируют в течение 12 ч при 37оС. Нерастворившийся хитин отделяют центрифугированием. Хитиназную активность определяют по количеству образовавшихся при ферментолизе восстанавливающих сахаров по методу Нельсона. За единицу активности хитиназы принимают такое количество фермента, которое освобождает при ферментолизе 1 мкМ восстанавливающих углеводных групп. За эквивалент в случае хитиназы принимают N-ацетилглюкозамин.
Для определения хитозаназной активности белкового препарата в пробу добавляют 2 мл трис-HCl буфера рН 7,0, 50 мкл 5%-ного раствора хитозана и 0,1-0,2 мл белковой фракции. Реакционную смесь инкубируют также, как и в случае определения хитиназной активности, в течение 12 ч при 37оС. За эквивалент в этом случае принимают глюкозамин. Количество белка определяют спектрофотометрическим методом. Одна оптическая единица принимается равной 1 мг белка. Удельная активность фермента определяется как количество единиц активности в 1 мг белка.
Хитиназная и хитозаназная активность препарата, полученного из штамма ErSR.
Ферментативная активность всех препаратов определена из расчета на 1 г сырых клеток биомассы штамма ErSR (табл.3).
Из данных табл.3 максимальная удельная активность хитиназы приходится на 28 сут, а хитозаназы на 14 сут культивирования.
Таким образом, штамм ErSR культивируемых клеток растений Eritrichium sichotense является высокопродуктивным и возобновимым источником для биотехнологического получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью.
Claims (1)
- Штамм культивируемых клеток растений Eritrichium incanum (Turcz) A.DC. ssp. sichotense (M. Pop.) Starchenko ErSR ВККК (ВР) N 50, используемый для получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93033302A RU2044052C1 (ru) | 1993-06-25 | 1993-06-25 | Штамм культивируемых клеток растений eritrichium incanum (turcz.) a.dc.ssp. sichotense (m.pop.) starchenko, используемый для получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93033302A RU2044052C1 (ru) | 1993-06-25 | 1993-06-25 | Штамм культивируемых клеток растений eritrichium incanum (turcz.) a.dc.ssp. sichotense (m.pop.) starchenko, используемый для получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2044052C1 true RU2044052C1 (ru) | 1995-09-20 |
RU93033302A RU93033302A (ru) | 1996-03-10 |
Family
ID=20143977
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU93033302A RU2044052C1 (ru) | 1993-06-25 | 1993-06-25 | Штамм культивируемых клеток растений eritrichium incanum (turcz.) a.dc.ssp. sichotense (m.pop.) starchenko, используемый для получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2044052C1 (ru) |
-
1993
- 1993-06-25 RU RU93033302A patent/RU2044052C1/ru not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
1. Л.И.Ильницкая, О.Л.Озерецковская. Итоги науки и техники, с.4-78, 1991. * |
2. Agr. Biol Chem. v.55, N 12, p.3107-3109, 1991. * |
3. Biosci Biotech. Biochem. v.52, N 2, p.186-189, 1992. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Koepsell et al. | Enzymatic synthesis of dextran | |
KR20010023494A (ko) | 벼 도열병 방제제 및 밀 적청병 방제제 | |
EP0049632B1 (en) | Cell culture method | |
US4431738A (en) | Method of plant tissue and cell culture | |
EP0181562B1 (de) | Bakterienlysierendes Enzymprodukt aus Streptomyceten, Verfahren zu seiner Herstellung und dafür geeigneter Stamm | |
DE2167078C2 (en) | Amylase prepn - for prodn of maltose from starch | |
Sheridan | Tissue culture of maize I. Callus induction and growth | |
DE3527649C2 (ru) | ||
RU2044052C1 (ru) | Штамм культивируемых клеток растений eritrichium incanum (turcz.) a.dc.ssp. sichotense (m.pop.) starchenko, используемый для получения препарата, обладающего хитиназной и хитозаназной активностью | |
Pindel | Optimization of isolation conditions of Cymbidium protoplasts | |
DE3539702C2 (ru) | ||
CN113046249A (zh) | 一株蜡蚧轮枝菌ll-01及其生防应用 | |
DE4316646B4 (de) | Lävansucraseenzym, Verfahren zu dessen Herstellung, Mikroorganismen, die es produzieren und Zusammensetzungen, die es enthalten | |
JPH01291793A (ja) | キチナーゼの製造方法 | |
EP0249772A2 (en) | Method and composition for plant tissue and cell culture | |
JPS63209595A (ja) | β−1,4−マンノビオ−スの製造法 | |
Pegg | The occurrence of 1, 3-β-glucanase in healthy and Verticillium-infected, resistant and susceptible tomato plants | |
CN114424776B (zh) | 一种防治南方根结线虫的复合微生物菌剂及制备方法 | |
SU1036053A1 (ru) | Способ культивировани каллусной ткани жень-шен - продуцента биологически активных веществ | |
RU2026348C1 (ru) | Штамм бактерий serratia marcescens - продуцент хитиназы | |
RU1804479C (ru) | Способ получени культуральной жидкости SеRRатIа маRсеSсеNS, обладающей хитиназной активностью | |
SU1730146A1 (ru) | Штамм бактерий SеRRатIа маRсеSсеNS - продуцент хитиназы | |
Myat et al. | Extraction and characterization of chi‑tosanase enzyme from Bacillus megaterium under liquid state fermenta‑tion | |
RU2031940C1 (ru) | Штамм культивируемых клеток растений cnidium monnieri (l.) cuss, используемый для получения препарата, обладающего рибонуклеазной активностью | |
SU1705347A1 (ru) | Штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI, предназначенный дл получени 2Ъ-дезоксиаденозина |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20090626 |