RU2001132075A - Способ повышенной стабилизации белков и получения клеточных линий, применимых для получения таких стабилизированных белков - Google Patents

Способ повышенной стабилизации белков и получения клеточных линий, применимых для получения таких стабилизированных белков

Info

Publication number
RU2001132075A
RU2001132075A RU2001132075/13A RU2001132075A RU2001132075A RU 2001132075 A RU2001132075 A RU 2001132075A RU 2001132075/13 A RU2001132075/13 A RU 2001132075/13A RU 2001132075 A RU2001132075 A RU 2001132075A RU 2001132075 A RU2001132075 A RU 2001132075A
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cell line
stress
cells
eukaryotic
expression vector
Prior art date
Application number
RU2001132075/13A
Other languages
English (en)
Inventor
Х. Крейг ДИС
Джон СМОЛИК
Original Assignee
Фотоджен, Инк.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Фотоджен, Инк. filed Critical Фотоджен, Инк.
Publication of RU2001132075A publication Critical patent/RU2001132075A/ru

Links

Claims (68)

1. Способ увеличенного получения вирусного агента, включающий следующие стадии: отбор и размножение пермиссивных эукариотических клеток, временное подвергание стрессу указанных клеток в течение периода времени для получения подвергнутых стрессу эукариотических клеток, проявляющих увеличенное продуцирование по меньшей мере одного стрессового белка, введение исходного вирусного материала для инфицирования указанных подвергнутых стрессу эукариотических клеток, инкубирование указанных подвергнутых стрессу эукариотических клеток; и сбор полученного вирусного агента, продуцируемого указанными инфицированными подвергнутыми стрессу эукариотическими клетками.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанная стадия временного подвергания стрессу индуцируется стрессом, выбранным из группы, состоящей из теплового стресса, химического стресса, стресса окислительного уровня, модификации питания и стресса токсичности.
3. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанную стадию временного подвергания стрессу указанных клеток осуществляют подверганием указанных клеток стрессу при 43°С в отсутствие CO2.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанную стадию временного подвергания стрессу указанных клеток осуществляют в течение периода времени между приблизительно 1 и 5 ч.
5. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанную стадию временного подвергания стрессу указанных клеток осуществляют для клеток Vero в течение периода времени между приблизительно 1 и 3 ч при приблизительно 43°С с приблизительно 0% CO2.
6. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанные стрессовые белки выбраны из группы, состоящей из hsp27, hsp40, hsp60, hsp70, hsp72, hsp73, hsp90, GroEL, GroES, GrpE, grp 78, grp 94, DnaJ и Dnak.
7. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанные пермиссивные эукариотические клетки являются клетками Vero.
8. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанный исходный вирусный материал вводят при множественности инфицирования между 0,001 и 1000 вирионов на клетку.
9. Способ по п.8, отличающийся тем, что указанный исходный вирусный материал вводят при множественности инфицирования между 1 и 4 вирионами на клетку.
10. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанную стадию введения исходного вирусного материала осуществляют в течение периода до приблизительно 24 ч после указанной стадии временного подвергания стрессу указанных клеток.
11. Способ по п.10, отличающийся тем, что указанную стадию введения исходного вирусного материала осуществляют сразу же после временного подверганию стрессу указанных клеток.
12. Способ по п.1, отличающийся тем, что полученный вирусный агент собирают приблизительно через 1-21 дня после инфицирования.
13. Способ по п.1, отличающийся тем, что полученный вирусный агент собирают приблизительно через 5 дней после инфицирования.
14. Способ по п.1, отличающийся тем, что оптимальные условия для сбора полученного вирусного агента определяют измерением титра вируса как функции от времени сбора.
15. Способ по п.1, отличающийся тем, что указанные вирусные агенты выбраны из группы, состоящей из вируса чумы собак, вируса чумы норки, вируса кори человека, вируса бешенства, парврвируса, агента Марека, ВИЧ, HTLV, HSV, коронавируса и вируса коровьего лейкоза.
16. Способ получения клеточных линий, проявляющих постоянную генетическую модификацию, включающий следующие стадии: отбор и размножение пермиссивных эукариотических клеток, введение реагента трансфекции в указанные пермиссивные эукариотические клетки для получения трансфецированных эукариотических клеток, инкубирование указанных трансфецированных эукариотических клеток, и отбор из указанных трансфецированных эукариотических клеток по меньшей мере одной первой клеточной линии, проявляющий высокий выход белка, экспрессируемого в результате трансфекции указанным реагентом трансфекции.
17. Способ по п.16, отличающийся тем, что, по меньшей мере, одну вторую клеточную линию получают из по меньшей мере одной первой клеточной линии отбором части указанной первой клеточной линии, проявляющей спонтанную рекомбинацию экспрессирующего вектора стрессового белка в ДНК хозяина.
18. Способ по п.16, отличающийся тем, что указанный реагент трансфекции представляет собой реагент трансфекции ДНК.
19. Способ по п.16, отличающийся тем, что указанный реагент трансфекции образуется из экспрессирующего вектора стрессового белка и, по меньшей мере, одного липида или фосфолипида.
20. Способ по п.16, отличающийся тем, что указанный реагент трансфекции имеет концентрацию приблизительно 0,01-100 мкг вектора на 104-106 клеток-мишеней.
21. Способ по п.16, отличающийся тем, что указанный экспрессирующий вектор стрессового белка выбран из группы, состоящей из вируса, космиды, плазмиды, фага, транспозона и другой нуклеиновой кислоты, которая способна встраиваться в эукариотическую клеточную ДНК.
22. Способ по п.19, отличающийся тем, что указанный липид или фосфолипид включает липид, выбранный из группы, состоящей из катионных липидов и фосфолипидов.
23. Способ по п.19, отличающийся тем, что указанный липид или фосфолипид включает диолеоилфосфатидилэтаноламин.
24. Способ по п.16, отличающийся тем, что указанные трансфецированные эукариотические клетки инкубируют в течение периода времени приблизительно 10-60 мин.
25. Способ по п.16, дополнительно включающий стадии удаления супернатанта из указанных трансфецированных эукариотических клеток и добавления свежей культуральной среды и дополнительного инкубирования указанных трансфецированных эукариотических клеток.
26. Способ по п.25, отличающийся тем, что указанная свежая культуральная среда является фетальной телячьей сывороткой в концентрации приблизительно 10% об./об.
27. Способ по п.25, отличающийся тем, что указанное дополнительное инкубирование проводят в течение нескольких часов.
28. Способ по п.16, отличающийся тем, что указанную стадию введения реагента трансфекции повторяют.
29. Способ по п.19, отличающийся тем, что указанный экспрессирующий вектор стрессового белка выбран из группы, состоящей из hsp70, hsp72, hsp73, hsp90, GroEL, GroES, GrpE, grp 78, grp 94, DnaJ и Dnak.
30. Способ получения пермиссивных эукариотических клеточных линий, включающий следующие стадии: встраивание экспрессирующего вектора стрессового белка в непермиссивную эукариотическую клеточную линию для образования по меньшей мере одной пермиссивной эукариотической клеточной линии; и отбор по меньшей мере одной первой клеточной линии из указанной пермиссивной эукариотической клеточной линии.
31. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанную по меньшей мере одну первую выбранную клеточную линию используют для получения вирусного агента, причем указанный способ дополнительно включает следующие стадии: введение инфекционного материала в указанную выбранную клеточную линию для получения по меньшей мере одной инфицированной пермиссивной эукариотической клеточной линии, инкубирование указанной по меньшей мере одной инфицированной клеточной линии, и сбора по меньшей мере одного полученного вирусного агента из указанной инфицированной клеточной линии.
32. Способ по п.31, отличающийся тем, что указанное получение проводят для обнаружения по меньшей мере одного неизвестного вирусного агента.
33. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанную непермиссивную эукариотическую клеточную линию выбирают из группы, состоящей из клеточных линий нейробластомы, астроцитомы и ретинобластомы.
34. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанная стадия встраивания осуществляется трансфекцией.
35. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанный экспрессирующий вектор стрессового белка выбран из группы, состоящей из hsp70, hsp72, hsp73, hsp90, GroEL, GroES, GrpE, grp 78, grp 94, DnaJ и Dnak.
36. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанная по меньшей мере одна пермиссивная эукариотическая клеточная линия является рекомбинантной в отношении указанного экспрессирующего вектора стрессового белка.
37. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанная по меньшей мере одна пермиссивная эукариотическая клеточная линия является клональной в отношении указанного экспрессирующего вектора стрессового белка.
38. Способ по п.31, отличающийся тем, что указанный инфекционный материал является потрохами животного происхождения, содержащими инфекционный агент.
39. Способ увеличения выхода функционального рекомбинантного продукта, где генетический материал был предварительно введен в прокариотическую клеточную линию для образования указанного рекомбинантного продукта, включающий следующие стадии: встраивание по меньшей мере одного экспрессирующего вектора стрессового белка в указанную прокариотическую клеточную линию таким образом, чтобы образовать модифицированную клеточную линию, и отбора из указанной модифицированной клеточной линии по меньшей мере одной первой клеточной линии, проявляющей увеличенный выход желательного функционального рекомбинантного продукта.
40. Способ по п.39, отличающийся тем, что по меньшей мере одну вторую клеточную линию получают из указанной первой клеточной линии отбором части указанной первой клеточной линии, проявляющей спонтанную рекомбинацию экспрессирующего вектора стрессового белка в ДНК хозяина.
41. Способ по п.39, отличающийся тем, что указанный по меньшей мере один экспрессирующий вектор стрессового белка включает по меньшей мере один индуцибельный промотор.
42. Способ по п.41, отличающийся тем, что указанный индуцибельный промотор выбран из группы, состоящей из промотора β-галактозы, ретровирусных чувствительных к стероидам промоторов и индуцибельных промоторов тяжелых металлов.
43. Способ по п.39, отличающийся тем, что указанный по меньшей мере один экспрессирующий вектор стрессового белка включает конститутивный промотор.
44. Способ по п.39, отличающийся тем, что указанную стадию встраивания осуществляют способом, выбранным из группы, состоящей из трансфекции, электропорации и способа с использованием вирусного инсерционного вектора.
45. Способ по п.39, отличающийся тем, что указанный экспрессирующий вектор стрессового белка выбран из группы, состоящей из hsp70, hsp72, hsp73, hsp90, GroEL, GroES, GrpE, grp78, grp94, DnaJ и Dnak.
46. Способ по п.39, отличающийся тем, что прокариотическая клеточная линия является линией Escherichia coli.
47. Способ по п.39, отличающийся тем, что по меньшей мере одну вторую клеточную линию получают из указанной первой клеточной линии отбором части указанной первой клеточной линии, проявляющей эписомное встраивание экспрессирующего вектора стрессового белка в хозяина.
48. Способ увеличения выхода функционального рекомбинантного продукта, где генетический материал, кодирующий такой продукт, вводят в прокариотическую клеточную линию, проявляющую увеличенную экспрессию стрессовых белков.
49. Способ по п.48, отличающийся тем, что указанная экспрессия является индуцибельной.
50. Способ по п.48, отличающийся тем, что указанная прокариотическая клеточная линия включает экспрессирующий вектор, который включает по меньшей мере один индуцибельный промотор.
51. Способ по п.48, отличающийся тем, что указанная экспрессия является конститутивной.
52. Способ по п.48, отличающийся тем, что указанная прокариотическая клеточная линия включает экспрессирующий вектор, который включает по меньшей мере один конститутивный промотор.
53. Способ увеличения выхода функционального рекомбинантного продукта, включающий следующие стадии: встраивание по меньшей мере одного экспрессирующего вектора стрессового белка в указанную эукариотическую клеточную линию таким образом, чтобы образовать модифицированную клеточную линию; отбор из указанной модифицированной клеточной линии по меньшей мере одной первой клеточной линии, проявляющей увеличенный выход желательного функционального рекомбинантного продукта, причем генетический материал добавляют к указанной эукариотической клеточной линии для образования указанного рекомбинантного продукта.
54. Способ по п.53, отличающийся тем, что указанная стадия встраивания по меньшей мере одного экспрессирующего вектора стрессового белка в эукариотическую клеточную линию имеет место после того, как указанный генетический материал был добавлен к указанной эукариотической клеточной линии.
55. Способ по п.53, отличающийся тем, что указанная стадия встраивания по меньшей мере одного экспрессирующего вектора стрессового белка в эукариотическую клеточную линию имеет место перед тем, как указанный генетический материал был добавлен к указанной эукариотической клеточной линии.
56. Способ по п.53, отличающийся тем, что по меньшей мере одну вторую клеточную линию получают из указанной первой клеточной линии отбором части указанной первой клеточной линии, проявляющей спонтанную рекомбинацию экспрессирующего вектора стрессового белка в ДНК хозяина.
57. Способ по п.53, отличающийся там, что указанный экспрессирующий вектор стрессового белка включает по меньшей мере один индуцибельный промотор.
58. Способ по п.53, отличающийся тем, что указанный экспрессирующий вектор стрессового белка включает конститутивный промотор.
59. Способ по п.53, отличающийся тем, что указанная эукариотическая клеточная линия выбрана из группы, состоящей из клеточных линий млекопитающего и насекомого.
60. Способ по п.53, отличающийся тем, что указанный экспрессирующий вектор стрессового белка выбран из группы, состоящей из hsp70, hsp72, hsp73, hsp90, GroEL, GroES, GrpE, grp78, grp94, DnaJ и Dnak.
61. Способ по п.53, отличающийся тем, что указанный способ используют для получения выходов функциональных рекомбинантных продуктов, выбранных из группы, состоящей из пептидов, белков, диагностических зондов нуклеиновых кислот, вакцин, антигенов, ферментов, гормонов, факторов роста, структурных белков, агентов ингибирования опухолей, антибиотиков, липидов, нуклеиновых кислот, простых углеводов, сложных углеводов, спиртов и растворителей.
62. Вирусный агент, получаемый посредством следующих стадий: отбор и размножение пермиссивных эукариотических клеток, временное подвергание стрессу указанных клеток в течение периода времени для получения подвергнутых стрессу эукариотических клеток, проявляющих увеличенное продуцирование по меньшей мере одного стрессового белка, введение исходного вирусного материала для инфицирования указанных подвергнутых стрессу эукариотических клеток, инкубирование указанных инфицированных подвергнутых стрессу эукариотических клеток, и сбор полученного вирусного агента, продуцируемого указанными инфицированными подвергнутыми стрессу эукариотическими клетками.
63. Клеточная линия, выбранная для проявления постоянной генетической модификации, включающая: пермиссивную эукариотическую клеточную линию, проявляющую высокий выход трансфицированного стрессового белка как результат трансфекции одним или более векторами для экспрессии такого белка.
64. Клеточная линия, проявляющая перманентную генетическую модификацию, полученная посредством следующих стадий: отбор и размножение пермиссивных эукариотических клеток, введение реагента трансфекции в указанные пермиссивные эукариотические клетки для получения трансфецированных эукариотических клеток, инкубирование указанных трансфецированных эукариотических клеток и отбор из указанных трансфицированных эукариотических клеток по меньшей мере одной первой клеточной линии, проявляющей высокий выход стрессового белка как результат указанной трансфекции.
65. Пермиссивная эукариотическая клеточная линия, включающая: непермиссивную эукариотическую клеточную линию, в которую был встроен экспрессирующий вектор стрессового белка.
66. Пермиссивная эукариотическая клеточная линия, полученная посредством следующих стадий: встраивание экспрессирующего вектора стрессового белка в непермиссивную эукариотическую клеточную линию с образованием по меньшей мере одной пермиссивной эукариотической клеточной линии, и отбор указанной пермиссивной эукариотической клеточной линии.
67. Функциональный рекомбинантный продукт, полученный посредством следующих стадий: введение генетического материала в прокариотическую клеточную линию, кодирующую экспрессию указанного рекомбинантного продукта, встраивание по меньшей мере одного экспрессирующего вектора стрессового белка в указанную прокариотическую клеточную линию таким образом, чтобы образовать модифицированную клеточную линию, отбор из указанной модифицированной клеточной линии по меньшей мере одной первой клеточной линии, проявляющей увеличенный выход желательного функционального рекомбинантного продукта, размножение указанной первой клеточной линии, и сбор функционального рекомбинантного продукта, продуцируемого указанной размноженной первой клеточной линией.
68. Функциональный рекомбинантный продукт, полученный посредством следующих стадий: встраивание по меньшей мере одного экспрессирующего вектора стрессового белка в указанную эукариотическую клеточную линию, чтобы образовать модифицированную клеточную линию, отбор из указанной модифицированной клеточной линии по меньшей мере одной первой клеточной линии, проявляющей увеличенный выход желательного функционального рекомбинантного продукта, размножение указанной первой клеточной линии, и сбор функционального рекомбинантного продукта, продуцируемого указанной размноженной первой клеточной линией.
RU2001132075/13A 1999-05-28 2000-05-18 Способ повышенной стабилизации белков и получения клеточных линий, применимых для получения таких стабилизированных белков RU2001132075A (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US60/136,676 1999-05-28
US09/543,479 2000-04-06

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2001132075A true RU2001132075A (ru) 2003-06-20

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR0179994B1 (ko) 칠면조의 재조합 포진바이러스 및 이로부터 유도된 생존상태의 벡터 백신
JPH08510325A (ja) 生物学的に活性なペプチド配列の選択方法
NO20022500L (no) Fremgangsmåte ved fremstilling av virus eller viralproteiner til anvendelse i vaksiner
JPH02109985A (ja) 細菌染色体上ヘの目的遺伝子の組み込み方法及び該方法によって得られた細菌
US10513542B2 (en) Minicircle DNA vector vaccine platform for foot-and-mouth disease and methods thereof
Flaegstad et al. Inoculation with BK virus may break immunological tolerance to histone and DNA antigens.
JPS62501537A (ja) リンパ球細胞を電気的に不滅化するための方法
RU94046095A (ru) Векторы, плазмида, клетка млекопитающего, клетка человека, система вектор-хозяин, способ снижения токсических эффектов, способы введения селектируемого маркера, способы отбора клеток, нуклеиновые кислоты, способы обнаружения экспрессии, способы продукции полинентида, антитела, способы иммуноанализа, трамегенные животные
Dickson Assembly of bacteriophage T4 tail fibers: IV. Subunit composition of tail fibers and fiber precursors
US6541223B2 (en) Method for enhanced protein stabilization and for production of cell lines useful for production of such stabilized proteins
RU2001132075A (ru) Способ повышенной стабилизации белков и получения клеточных линий, применимых для получения таких стабилизированных белков
Karlsson et al. Delivery and expression of heterologous genes in mammalian cells using self-replicating alphavirus vectors
Sari‐Ak et al. VLP‐factory™ and ADDomer©: Self‐assembling Virus‐Like Particle (VLP) Technologies for Multiple Protein and Peptide Epitope Display
JPH06506357A (ja) トランスジェニック哺乳動物またはトランスジェニック哺乳動物細胞の変異検出方法、および変異特性に対する作用剤または条件の試験方法
Schleef et al. Production of plasmid DNA as pharmaceutical
RU2812347C1 (ru) Способ получения бактериального продуцента рекомбинантного белка нуклеокапсида nc вируса sars-cov-2
WO1997027742B1 (en) Method of protein production using mitochondrial translation system
Apinda Novel insertion site in duck enteritis virus genome for generation of the DEV-OmpH recombinant virus using CRISPR/Cas9 editing
Nogueira-Dantas et al. Cloning and expression of chicken anemia virus VP3 protein in Escherichia coli
Tremblay et al. Immunocytochemical localization of nuclear antigens in the unicellular green alga, Chlamydomonas reinhardtii, processed by cryofixation and freeze-substitution
KR0142210B1 (ko) 돼지파보바이러스 vp2 단백질의 대량 생산방법 및 돼지파보바이러스 감염증용 백신용 백신의 제조방법
KR100267750B1 (ko) 사람 아데노바이러스 2형으로부터 제작한 재조합 발현벡터 및 그를 이용한 돼지 오제스키병 바이러스 gp50 유전자 재조합 사람아데노바이러스를 선발하는 방법
CN113564165A (zh) 一种胞内编辑伪狂犬病毒关键基因的细胞株及其构建方法和应用
CN117603921A (zh) 一种重组腺相关病毒及轻链型淀粉样变动物模型的构建方法
CN114990078A (zh) 带有His标签的重组新城疫病毒的构建方法及用途