RU1609153C - Способ получения пептона - Google Patents
Способ получения пептона Download PDFInfo
- Publication number
- RU1609153C RU1609153C SU4674397A RU1609153C RU 1609153 C RU1609153 C RU 1609153C SU 4674397 A SU4674397 A SU 4674397A RU 1609153 C RU1609153 C RU 1609153C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cake
- hydrolysis
- dry matter
- peptone
- suspension
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способам получения пептона. Цель изобретения унификация и упрощение способа, увеличение выхода целевого продукта, улучшение его качества за счет повышения доли среднемолекулярных пептидов с мол. м. 500 1500 Д. Способ заключается в проведении гидролиза внутренних органов сельскохозяйственных животных, их слизистых оболочек или вторичных жмыхов органов и тканей после извлечения биологически активных веществ щелочной и нейтральной протеазой Bacillus subtilis Г 3х и Г 10х при гидромодуле из расчета содержания сухого вещества в суспензии 10 24% до максимального накопления полипептидов. При этом оптимум pH устанавливают гидроксидом кальция и фосфорной кислотой. 3 табл. 2 з. п. ф-лы.
Description
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способам получения пептона.
Цель изобретения унификация и упрощение способа, увеличение выхода целевого продукта, улучшение его качества за счет повышения доли среднемолекулярных пептидов с мол.м. 500-1500 Д.
Способ заключается в том, что в качестве ферментного препарата для гидролиза внутренних органов сельскохозяйственных животных, их слизистых оболочек или вторичных жмыхов этих органов и тканей после извлечения биологически активных веществ используют щелочную и нейтральную протеазы Bacillus subtilis Г 3х, Г 10х, при этом гидролиз проводят при гидромодуле из расчета содержания сухого вещества и суспензии 10-24% до максимального накопления полипептидов. При этом оптимум величин рН устанавливают гидроксидом кальция и фосфорной кислотой.
Щелочная протеаза B. subtilis (продуцент шт.72) имеет оптимум действия при рН 8,5-10,5 и 50оС, активность ПС 100 ед ед/г в соответствии с ТУ 5901.003.74-8.
Нейтральная протеаза B. subtilis (продуцент шт.103) имеет оптимум рН 6,5-7,5 в интервале температур 48-52оС, протеолитическая активность 70 ед/г соответствует ГОСТ 23636-79.
Определение суммарного содержания пептидов проводят по биуретовой реакции в соответствии с ГОСТ 13805-76. Определение фракций пептидов проводят по данным гель-фильтрации в сефадексе G-15. Содержание свободных аминокислот определяют на автоматических анализаторах фирм "Хитачи" КЛА-5 и "Дуррум" (США).
П р и м е р 1. К жмыху поджелудочной железы после извлечения инсулина (влажность 64%) добавляют воду и получают гидромодуль из расчета содержания сухого вещества в суспензии 18% Устанавливают рН смеси гидроксидом кальция до 10,5, вносят при перемешивании 30 г щелочной протеазы Г 10х. Гидролиз ведут при 50 ± 0,5оС и рН 10,5-9,0 до максимального содержания истинных пептонов (полипептидов) 7,0% при отрицательной реакции на белок с 20%-ной трихлоруксусной кислотой. По окончании гидролиза рН смеси доводят концентрированной ортофосфорной кислотой до 7,0, прогревают при 100оС в течение 20 мин, фильтруют в горячем состоянии. Осадок на фильтре промывают 150 мл горячей воды. Фильтрат высушивают методом распыления. Осадок на фильтре высушивают при 105оС для определения отходов исходного материала при гидролизе в качестве теста на полноту использования сырья. Процент отходов рассчитывают обычным способом.
Количество отходов составляет 108 г (31), выход пептона после высушивания 140 г (40% от массы исходного сырья в пересчете на сухое вещество). Общая продолжительность процесса 16 ч.
П р и м е р 2. Готовят суспензию того же сырья с гидромодулем из расчета содержания сухого вещества 24% Гидролиз и последующие стадии проводят так же, как в примере 1. Количество отходов составляет 140 г (40% от массы сухого сырья), выход пептона 105 г (32%).
П р и м е р 3. К тому же сырью добавляют воду до содержания сухого вещества в суспензии 12% Гидролиз и последующие операции проводят так же, как в примере 1. Количество отходов 98 г (28% от массы сухого сырья).
П р и м е р 4. К жмыху легких после извлечения гепарина (влажность 80%) после предварительной подготовки (отмывки избытка хлорида натрия водой) добавляют воду и получают гидромодуль из расчета содержания сухого вещества в суспензии 10% Доводят рН смеси до 9,5 суспензией гидроксида кальция, вносят 25 г щелочной протеазы Г 10х, перемешивают и проводят операции, как в примере 1. Содержание истинных пептонов (полипептидов) в гидролизате 7,2% при отрицательной реакции на белок. Выход пептона после высушивания 40% из расчета содержания сухого вещества в сырье, содержание полипептидов в пептоне 90,2%
П р и м е р 5. К жмыху печени после извлечения витогепата (влажность 78% ) добавляют воду. Гидролиз проводят при гидромодуле из расчета содержания сухого вещества в суспензии 11% в присутствии щелочной протеазы Г 10х, взятой в количестве 20 г. Все операции проводят, как в примере 1. Содержание истинных пептонов 6,9% в гидролизате. Выход пептона после высушивания 77 г (35% от массы исходного сырья в пересчете на сухое вещество).
П р и м е р 5. К жмыху печени после извлечения витогепата (влажность 78% ) добавляют воду. Гидролиз проводят при гидромодуле из расчета содержания сухого вещества в суспензии 11% в присутствии щелочной протеазы Г 10х, взятой в количестве 20 г. Все операции проводят, как в примере 1. Содержание истинных пептонов 6,9% в гидролизате. Выход пептона после высушивания 77 г (35% от массы исходного сырья в пересчете на сухое вещество).
П р и м е р 6. Для получения пептона используют жмых мукозы (влажность 58% ) после извлечения гепарина, который предварительно подвергают отмывке водой от хлорида натрия. Гидролиз и все последующие операции, как в примере 1. Гидромодуль соответствует 21% содержания сухого вещества в суспензии. Гидролиз ведут до содержания полипептидов (истинных пептонов) 10,8%
Выход сухого пептона на 1 кг сырья составляет 126 г (30% в пересчете на сухое вещество).
Выход сухого пептона на 1 кг сырья составляет 126 г (30% в пересчете на сухое вещество).
П р и м е р 7. 300 г шляма кишечника крупного рогатого скота (содержание сухого вещества 14%) кипятят 20 мин, добавляют гидроксид кальция до рН 10,2 и 3% щелочной протеазы Г 10х. Гидролиз проводят при 37оС. Гидромодуль соответствует 14% содержания сухого вещества. Все операции проводят, как в примере 1. Содержание полипептидов в гидролизате 7,55% Выход сухого пептона 27,3 г (65% по сухому веществу).
П р и м е р 8. К высушенному шляму (влажность 16%) добавляют воду из расчета содержания сухого вещества в суспензии 14% гидроксид кальция до рН 7,65 и 2% нейтральной протеазы Г 3х. Гидролиз ведут при 37оС и рН 7,65-6,85. Гидролизат по окончании гидролиза (отрицательная реакция на белок, содержание полипептидов 7,65%) прогревают при 90оС в течение 10 мин и центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин для отделения осадка. Полученный супернатант высушивают методом лиофилизации. Выход пептона 19 г (45,2% в пересчете на сухое вещество).
Как показывают приведенные данные, выбранный гидромодуль из расчета содержания сухого вещества в суспензии 10-24% позволяет получать достаточно высокий выход готового продукта (от 30 до 65% в пересчете на сухое вещество).
Полученные по предлагаемому способу образцы пептона по содержанию пептидов и аминокислот существенно отличаются от образцов известных пептонов (см.табл.1 и 2).
Как видно из табл.1 и 2, при изготовлении пептона из разного сырья унифицированным способом общее количество полипептидов возрастает в сравнении с базовым вариантом до 83-95% из них доля среднемолекулярных пептидов увеличивается до 89-100% Содержание низкомолекулярных пептидов и аминокислот в препаратах пептона, изготовленных по предлагаемому способу, достоверно ниже, чем по способам-аналогам, при этом со щелочной протеазой оно меньше, чем с нейтральной.
Приведенные данные позволяют предполагать, что добавление такого пептона к аминокислотной основе питательной среды должно наиболее полно удовлетворять потребности микроорганизмов как в аминокислотах, так и в пептидах.
Определение ростобеспечивающей способности полученных образцов пептона проводят в средах на основе перевара Хоттингера. С этой целью используют 5-суточный панкреатический гидролизат мяса с аминным азотом 790 мг% и разводят его до содержания аминного азота 190 мг% добавляют 0,5% хлорида натрия. Из полученного разведения готовят четыре среды с использованием образцов пептона по предлагаемому способу в соответствии с примерами 1, 4 и 7, а также с производственной серией пептона Семипалатинского мясокомбината (базового образца). С этой целью добавляют 1% пептона, доводят рН до 7,4-7,6. Среды разливают в пробирки по 8 мл и стерилизуют 30 мин при 0,5 атм. Засев проводят из 24-часовых бульонных культур тест-штаммов микроорганизмов, по 0,2 мл. Пробы культивируют при 37оС в течение 20-24 ч. Интенсивность роста определяют турбидиметрически на фотоэлектроколориметре при длине волны 670 нм. Полученные результаты отражены в табл.3.
Как видно из табл.3, рост тест-штаммов на испытуемых питательных средах в большинстве случаев был более обильным, чем на контрольной среде с производственной серией пептона (базовый образец).
Таким образом, использование предлагаемого способа позволяет унифицировать получение пептона из разного сырья, упростить технологию изготовления стандартного целевого продукта, отвечающего требованиям НТД (ГОСТ 13805-76 и ТУ 49-278-74), с увеличением его выхода и улучшением качества за счет повышения доли среднемолекулярных пептидов и с мол.м. 500-1500 Д. Выход целевого продукта увеличивается с 12-16% по сухому веществу сырья до 30-40% время гидролиза сокращается с 12-15 ч до 7-8 ч.
Claims (3)
1. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПЕПТОНА, включающий гидролиз внутренних органов сельскохозяйственных животных, их слизистых оболочек или вторичных жмыхов этих органов и тканей после извлечения биологически активных веществ ферментным препаратом при оптимальных значениях его концентрации, температуры и рН, коагуляцию негидролизованного белка и инактивацию фермента нагреванием с последующим отделением продуктов гидролиза и сушкой, отличающийся тем, что, с целью унификации и упрощения способа, увеличения выхода целевого продукта, улучшения его качества за счет повышения доли среднемолекулярных пептидов с мол. м. 500 1500 Д, в качестве ферментных препаратов используют щелочную или нейтральную протеазы Bacillus subtilis Г 3х и Г 10х, при этом гидролиз проводят при гидромодуле из расчета содержания сухого вещества в суспензии 10 24% до максимального накопления полипептидов.
2. Способ получения пептона по п.1, отличающийся тем, что в качестве белкового сырья дополнительно используют жмых печени и жмых мукозы.
3. Способ получения пептона по п.1, отличающийся тем, что оптимум величины рН для действия бактериальных протеаз устанавливают гидроксидом кальция и фосфорной кислотой.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4674397 RU1609153C (ru) | 1989-04-05 | 1989-04-05 | Способ получения пептона |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4674397 RU1609153C (ru) | 1989-04-05 | 1989-04-05 | Способ получения пептона |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU1609153C true RU1609153C (ru) | 1995-12-20 |
Family
ID=30441314
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU4674397 RU1609153C (ru) | 1989-04-05 | 1989-04-05 | Способ получения пептона |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU1609153C (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2847256A1 (fr) * | 2002-11-15 | 2004-05-21 | Biochimie Appliquee Soc | Nouveau procede d'obtention d'acide chondroitine sulfurique et ses utilisations |
CN108467820A (zh) * | 2018-06-21 | 2018-08-31 | 吴忠市王国旗生物科技有限公司 | 一种动物性蛋白胨的生物酶解制备生产线 |
-
1989
- 1989-04-05 RU SU4674397 patent/RU1609153C/ru active
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
Колесов С.Г. Физико-химические методы контроля ингредиентов, питательных сред и биопрепаратов. М., 1970, с.63-64. * |
Опытно-промышленный регламент на получение пептона ферментативного марки Д. М.: Минмедпром, 1977. * |
Опытно-промышленный регламент на получение пептона ферментативного марки Т. М.: Минмедпром, 1976. * |
Патент ФРГ N 3313330, кл. C 12P 21/06, 1984. * |
Телищевская Л.Я., Зинченко А.В., Цыганкова С.И., Ткачев А.Ф., Лысенко Е.А. Получение гидролизатов из отходов производства пищевого пепсина. Труды ВГНКИ. М., 1984, с.88-90. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2847256A1 (fr) * | 2002-11-15 | 2004-05-21 | Biochimie Appliquee Soc | Nouveau procede d'obtention d'acide chondroitine sulfurique et ses utilisations |
WO2004046199A3 (fr) * | 2002-11-15 | 2004-07-01 | Biochimie Appliquee Sa Soc | Procede d'obtention d'acide chondroitine sulfurique et ses utilisations |
CN108467820A (zh) * | 2018-06-21 | 2018-08-31 | 吴忠市王国旗生物科技有限公司 | 一种动物性蛋白胨的生物酶解制备生产线 |
CN108467820B (zh) * | 2018-06-21 | 2023-08-01 | 吴忠市王国旗生物科技有限公司 | 一种动物性蛋白胨的生物酶解制备生产线 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US7396912B2 (en) | Collagen production method | |
US3930954A (en) | Neutral protease useful for animal tissue and cell culture | |
EP0082395A2 (de) | Verfahren zur Herstellung saurer Protease und diese bildende Mutanten von Pilzen der Gattung Aspergillus | |
RU1609153C (ru) | Способ получения пептона | |
EP0072978B1 (de) | Verfahren zur Herstellung saurer Protease | |
WO2010044688A1 (en) | A method of producing peptide preparations for oral administration | |
DE2417265A1 (de) | Traegergebundene enzyme | |
US3948725A (en) | Neutral protease useful for animal tissue and cell culture | |
Butler et al. | The action of trypsin on insulin | |
RU2103360C1 (ru) | Питательная среда для культивирования клеток эукариотов и способ получения основы питательной среды - протеолитического гидролизата | |
RU2325814C2 (ru) | Способ производства белкового препарата из субпродуктов ii категории | |
SU1699401A1 (ru) | Способ получени белкового гидролизата из отходов мехового и кожевенного производства | |
RU2103345C1 (ru) | Способ получения гидролизатов и использование их при изготовлении питательных сред для культивирования микроорганизмов | |
RU2096965C1 (ru) | Способ получения белкового гидролизата из крови | |
RU2812484C1 (ru) | Штамм бактерий Bacillus licheniformis - продуцент кератиназы | |
DE2044866C3 (de) | Verfahren zur biotechnischen Herstellung von Peptidoglutaminase I und/oder II und ihre Verwendung in proteinhaltigen Getränken und Nahrungsmitteln | |
RU2181548C1 (ru) | Способ получения ферментативного гидролизата | |
RU2068879C1 (ru) | Способ получения ферментативного гидролизата и питательная среда "эпидермат-2" для культивирования клеток эукариотов | |
RU2266014C2 (ru) | Способ получения пептона | |
RU2020153C1 (ru) | Способ получения ферментативного гидролизата и питательная среда для культивирования клеток эукариотов | |
JPS60164496A (ja) | 低分子ペプチドの製造方法 | |
RU2215425C2 (ru) | Способ получения ферментативных белковых гидролизатов из морских гидробионтов для микробиологических и/или кормовых целей | |
RU2054479C1 (ru) | Способ получения комплекса амилолитических и протеолитических ферментов | |
RU2074249C1 (ru) | Способ получения ферментативного гидролизата из мышечной ткани ластоногих и питательная среда "целат" для культивирования клеток эукариотов | |
KR19980061479A (ko) | 미생물 배양용 효모 엑기스의 제조방법 |