RU2812484C1 - Штамм бактерий Bacillus licheniformis - продуцент кератиназы - Google Patents

Штамм бактерий Bacillus licheniformis - продуцент кератиназы Download PDF

Info

Publication number
RU2812484C1
RU2812484C1 RU2023123400A RU2023123400A RU2812484C1 RU 2812484 C1 RU2812484 C1 RU 2812484C1 RU 2023123400 A RU2023123400 A RU 2023123400A RU 2023123400 A RU2023123400 A RU 2023123400A RU 2812484 C1 RU2812484 C1 RU 2812484C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bacillus licheniformis
keratinase
strain
keratin
producer
Prior art date
Application number
RU2023123400A
Other languages
English (en)
Inventor
Кирилл Эдуардович Бетехтин
Наталья Геннадьевна Машенцева
Олеся Ивановна Сазонова
Сергей Львович Соколов
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский биотехнологический университет (РОСБИОТЕХ)"
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский биотехнологический университет (РОСБИОТЕХ)" filed Critical федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Российский биотехнологический университет (РОСБИОТЕХ)"
Application granted granted Critical
Publication of RU2812484C1 publication Critical patent/RU2812484C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в микробиологической промышленности для переработки кератинсодержащего сырья, преимущественно кератина пера, полученного от птицеперерабатывающей промышленности. Предложен штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2 ВКПМ В-14244 - продуцент кератиназы. Штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2 является природным изолятом, выделен из естественных условий - воды Балтийского залива. Технический результат предлагаемого изобретения состоит в получении нового штамма Bacillus licheniformis - продуцента кератиназы, способного ферментировать перо до аминокислот и пептидов в среде с единственным источником углерода в виде пера сельскохозяйственной птицы. 3 ил.

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в микробиологической промышленности для переработки кератинсодержащего сырья, преимущественно кератина пера, полученного от птицеперерабатывающей промышленности.
Кератин представляет собой волокнистый и нерастворимый структурный белок, сильно сшитый дисульфидными, водородными и гидрофобными связями, что обеспечивает механическую стабильность и устойчивость к действию распространенных протеолитических ферментов, таких как пепсин, трипсин и папаин. Кератинолитические ферменты имеют важное применение в биотехнологических процессах для разработки экологически чистых процессов и для обработки кератинсодержащих отходов птицеводческой и кожевенной промышленности. После гидролиза перья можно использовать в качестве удобрения, кормовой добавки, обогащенной такими аминокислотами, как серии, цистеин и пролин. Процесс обработки кератиназой заменяет использование сульфида натрия в процессе удаления волос в кожевенной промышленности [Radha, S., & Gunasekaran, P. (2007). Cloning and expression of keratinase gene in Bacillus megateriumand optimization of fermentation conditions for the production of keratinase by recombinant strain. Journal of Applied Microbiology, 103(4), 1301-1310. doi: 10.1111/j.1365-2672.2007.03372.x].
Известен способ получения кератинового монопродукта, предназначенного для использования в ветеринарии, медицине, косметологии, биотехнологии, пищевой промышленности, а также в качестве белковой кормовой добавки к основному рациону животных и птиц, заключающийся в том, что исходный кератинсодержащий материал обрабатывают раствором соляной кислоты и пероксида водорода (см. RU 2679884 С1, опубл. 14.02.2019, Бюл. №5, МПК С08Н 1/06, A23K 10/26).
Однако представленный образец разрушает кератин пера в экстремальных условиях химического гидролиза, которые могут привести к потере незаменимых аминокислот, таких как лизин, метионин и триптофан; между тем, эти условия могут вызывать образование непитательных аминокислот, таких как лизиноаланин, лантионин и др. Указанный недостаток решается благодаря обработки пера ферментами, а также микроорганизмами, включая бактерии, актиномицеты, грибы.
Благодаря широкому спектру активности кератиназы считаются эффективной альтернативой химическим и термическим способам обработки вторичных отходов различных промышленных производств, богатых белком [Akram, F., ul Haq, I., & Jabbar, Z. Production and characterization of a novel thermo-and detergent stable keratinase from Bacillus sp. NKSP-7 with perceptible applications in leather processing and laundry industries. International Journal of Biological Macromolecules, 2020, 164: 371-383. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2020.07.146]. Микробные кератинолитические ферменты позволяют расщеплять кератин в мягких условиях, в результате чего образуются гидролизаты кератина, содержащие неповрежденные аминокислоты и пептиды [Holkar, С.R., Jain, S.S., Jadhav, A.J., & Pinjari, D.V. Valorization of keratin-based waste. Process Safety and Environmental Protection, 2018, 115: 85-98. doi: 10.1016/j.psep.2017.08.045].
Bacillus licheniformis BBE 11-1 и Stenotrophomonas maltophilia BBE 11-1 были использованы для разложения 50 г/л отходов куриного пера. Скорость разложения составила 35,4% и 22,8% за 96 ч, соответственно. Скорость деградации при совместном использовании культур достигла 55,2% из-за более высокой активности кератиназы и протеазы. При совместном культивировании в ферментере объемом 3 л при контроле растворенного кислорода и температуры скорость деградации была значительно увеличена до 81,8%, а коэффициент конверсии составил 70,0% за 48 ч. Гидролизаты проявляли антиоксидантную активность и содержали большое количество аминокислот (895,89 мг/дл3) и растворимых пептидов [Peng, Z., Мао, X., Zhang, J., Du, G., & Chen, J. Effective biodegradation of chicken feather waste by co-cultivation of keratinase producing strains. Microbial cell factories, 2019, 18(1), 84. doi: 10.1186/s12934-019-1134-9].
Известен штамм бактерий Bacillus licheniformis-60 BKM B-2366 Д - продуцент щелочной протеазы (см. RU 2303066 С1, опубл. 20.07.2007, Бюл. №20, МПК C12N 9/56, C12N 1/20, C12R 1/66). Однако штамм Bacillus licheniformis-60 обладает высокой продуктивностью преимущественно в отношении комплекса щелочных протеаз, необходимых для гидролиза растительных белков, и гораздо в меньшей степени в отношении фермента кератиназы, специфично гидролизующего кератиноподобные белки которые отличаются устойчивостью к деградации обычными протеолитическими ферментами.
Известен штамм Bacillus licheniformis BKM В-2220Д - продуцент кератиназы (сериновой протеазы), раскрытый в патенте RU 2177994 С2, опубл. 10.01.2002, Бюл. №1, МПК C12N 1/20, C12N 9/56, C12R 1/10, который может быть использован в микробиологической промышленности для производства ферментных препаратов, применяемых в легкой промышленности и в сельском хозяйстве, где требуется гидролиз нативного кератина. Штамм Bacillus licheniformis BKM В-222ОД обладает повышенной способностью к биосинтезу кератиназы и продуцирует не менее шести внеклеточных ферментов, в том числе щелочную протеазу и а-амилазу, которые усиливают гидролизующий эффект кератиназного препарата. Культивирование штамма осуществляют в аэробных условиях при температуре 40°С в течение 48-72 ч, рН среды 7,5-7,8.
Однако для штамма Bacillus licheniformis BKM В-2220Д нет информации о возможности его роста на питательной среде с единственным источником углерода в виде пера птицы.
Были выделены четыре микроорганизма Bacillus licheniformis В-740, Bacillus pumilus В-508, Bacillus subtilis АТСС 6051 и Streptomyces albidoflavus АТСС 25422, обладающие максимально выраженными производственными признаками: концентрация биомассы при культивировании данных штаммов равнялась 335,0 1×10-3 КОЕ/г, уровень кератинолитической активности продуцируемых штаммами ферментов - в среднем 30 Е/мг белка, показатель накопления белка в биомассе от 65,2 до 76,5% и степень гидролиза белка от 78,4 до 79,4% [Дмитриева А.И. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. №4 С. 602-615].
Однако для данных штаммов Bacillus licheniformis В-740, Bacillus pumilus В-508, Bacillus subtilis АТСС 6051 и Streptomyces albidoflavus АТСС 25422 не предоставлена информации о возможности их культивировать на питательной среде с единственным источником углерода в виде пера птицы.
Известны штаммы Bacillus licheniformis O.W.U. 138В и 88В, а также другие штаммы, способные разлагать перо диких птиц. Например, штаммы и кератиназы, продуцируемые этими штаммами, полезны для деградации отходов пера, полученных при промышленной переработке домашней птицы; производства кормов для животных, удобрений или природного газа из отходов птицеводства; и чистки некоторых тканей (см. US 5877000 А, опубл. 02.03.1999, МПК C12N 9/56, US 6214576 В1, опубл. 10.04.2001, МПК C12N 9/56).
Однако представленные образцы штаммов Bacillus licheniformis О. W.U. 138В и 88В не могут расти на питательной среде с единственным источником углерода в виде пера птицы.
Наиболее близким аналогом к заявляемому штамму по совокупности существенных признаков и достигаемому техническому результату является штамм Bacillus licheniformis БАЛ-1, депонированный в Биоресурсный Центр Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов (БРЦ ВКГТМ) НИЦ Курчатовский институт под номером В-14243, дата депонирования 30 мая 2022 года.
При выращивании на питательной среде с внесением единственного источника углерода в виде пера птицы конечная концентрация клеток достигает 1×106 КОЕ/мл. При ферментации пера в течение 72 ч при 28°С и постоянном перемешивании имеет кератиназную активность 16,2 KU/мл.
Штамм Bacillus licheniformis БАЛ-1 не обладает достаточной кератиназной активностью и спектром выделяемых кератиназ для разрушения свободных кератинов в культуральной жидкости, имеет большое количество фенотипов, появляющихся в процессе ферментации.
Задача, на решение которой направлено данное изобретение, состоит в получении нового штамма Bacillus licheniformis, продуцирующего кератиназу, способную перерабатывать перо сельскохозяйственной птицы.
Согласно ГОСТ 18473-88 Птицеводство. Термины и определения: к сельскохозяйственной птице относится птица, разводимая с целью получения от нее яиц, мяса, пера, пуха. Так, к сельскохозяйственной птице относятся: куры, индейки, цесарки, утки, гуси, перепела и голуби.
Технический результат предлагаемого изобретения состоит в получении нового штамма Bacillus licheniformis - продуцента кератиназы, способного ферментировать перо до аминокислот и пептидов в среде с единственным источником углерода в виде пера сельскохозяйственной птицы.
Штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2 депонирован в Биоресурсном Центре Всероссийской Коллекция Промышленных Микроорганизмов (БРЦ ВКПМ) НИЦ Курчатовский институт под номером В-14244, дата депонирования 30 мая 2022 года. Штамм способен храниться в лиофильном виде при температуре 4-6°С.
Условия хранения штамма.
Полученный из коллекции штамм высевают в условиях асептики на триптиказеино-соевый агар (г/л): триптон - 17; соевый пептон - 3; хлорид натрия - 5; фосфат калия двузамещенный - 2,5; глюкоза - 2,5; вода очищенная - до 1000 мл; агар - 12. Среду автоклавируют при 121°С 15 мин.
На данной питательной среде штамм способен храниться в течении одного месяца при температуре 2-8°С.
Характеристика штамма.
Штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2 является природным изолятом, выделен из естественных условий - воды Балтийского залива.
Факультативный анаэроб. Температурный диапазон роста - 10-55°С, колонии на триптиказеино-соевом агаре слабовыпуклые, сухие, непрозрачные, белесые, полиморфные, диаметром 5-7 мм, врастающие в питательную среду.
Клетки представляют собой грамположительные одиночные подвижные палочки размером 0,6-0,8 и 0,2-0,3 мкм, спорообразующие. Оптимальная температура роста 28°С. В логарифмической фазе роста образуются цепочки из 2-3-х клеток более вытянутой формы. В стационарной фазе роста цепочки распадаются, клетки утолщаются, появляются споры, имеющие центральное положение и овальную форму. Штамм гидролизует казеин и крахмал, разжижает желатин.
Идентификация штамма Bacillus licheniformis БАЛ-2 была проведена на основании морфологических и физиолого-биохимических характеристик. Также была определенна нуклеотидная последовательность гена 16S рРНК. Гомология с нуклеотидной последовательностью гена 16S рРНК штамма Bacillus licheniformis QT445 составила 97,06%.
Вид Bacillus licheniformis одобрен Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (FDA) как GRAS (Generally Recognized As Safe), что означает, что штаммы этого вида, как и продуцируемые ими протеазы, могут безопасно и без ограничений применяться для пищевых биотехнологий [URL: https://www.cfsanappsexternal.fda.gov/scripts/fdcc/?set=GRASNotices&sort=GRN_No&order=DESC&startrow=1&type=basic&search=Bacillus%201icheniformis (дата обращения 01.08.2023)].
Штамм способен расти на среде с единственным источником углерода в виде пера сельскохозяйственной птицы. В колбу, содержащую 100 мл минерально-питательной среды (состав среды в г/л: фосфат калия однозамещенный - 2, сульфат аммония - 2, сульфат магния семиводный - 0,125, хлорид натрия - 0,5, сульфат железа (II) семиводный - 0,002, вода очищенная - до 100 мл, рН среды 7,5) вносили 5 г измельченного пера сельскохозяйственной птицы, а также штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2. Инокулят штамма Bacillus licheniformis вносился до конечной концентрации 1×106 КОЕ/мл. Ферментация пера проводилась в течение 72 ч при температуре 28°С при постоянном перемешивании. По окончании процесса ферментации визуально наблюдалось изменение оптической плотности (помутнение среды), что свидетельствовало об увеличении количества микроорганизмов в культуральной среде. Кроме того, было замечено изменение консистенции перьевого сырья в сторону повышения пластичности (размягчения), что представлено на фиг. 1.
Штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2 не заменяется фенотипами, появляющимися во время ферментации, является продуцентом кератиназ. Кератиназная активность штамма составляет 18,3 KU/мл.
Кератиназную активность штамма определяли следующим образом: раствор кератина готовили по Grywnowicz et al., 1989. Образец перьев сельскохозяйственной птицы весом 10 г нагревали в обратном холодильнике при температуре 100°С в течение 2 ч с 500 мл диметилсульфоксида (ДМСО). Кератин, экстрагированный ДМСО, содержал 1-2% белка. Солюбилизированный кератин осаждали добавлением двух объемов холодного ацетона с температурой - 90°С на объем раствора кератина. Эту смесь оставляли в холодильнике на 2 ч, чтобы обеспечить максимальное осаждение кератина. По истечении этого времени смесь центрифугировали при 6000 g, а затем осадок промывали четырьмя объемами воды на объем осадка. Затем осадок суспендировали в 0,1 М фосфатном буфере с рН 6,0 или рН 8,0.
Протеолитическую активность субстрата из кератина перьев (KS) измеряли с использованием суспензии кератина, содержащей 2% белка в 0,1 М фосфатном буфере, рН 7,0, с 0,01 М MgCl2. Порцию 1 мл раствора фермента добавляли к 1 мл суспензии KS в реакционном буфере. После 1 ч инкубации при 37°С реакцию останавливали добавлением 2 мл 5% раствора трихлоруксусной кислоты, после чего раствор фильтровали. Одна единица протеолитической активности определялась как количество фермента, которое вызывало увеличение поглощения на 0,01 между образцом и контролем при 280 нм. Контроль: 1 мл суспензии KS в реакционном буфере после 1 ч инкубации с добавлением 2 мл 5% раствора трихлоруксусной кислоты и 1 мл раствора фермента.
Штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2 способен разлагать кератин пера до незаменимых аминокислот, что подтверждается данными тонкослойной бумажной хроматографии (фиг. 2). Было выявлено присутствие следующих аминокислот в культуральной жидкости ферментированного сырья: лизин, метионин, треонин, валин, фенилаланин. Наблюдалась большая цветовая насыщенность пятен аминокислот в культуральной жидкости штамма Bacillus licheniformis БАЛ-2, указывающая на большую степень деградации кератина до аминокислот.
Штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2 способен переводить неусвояемый кератин в перевариваемые пептиды, что подтверждено методом двумерного электрофореза с масс-спектрометрией ферментированного пера (фиг. 3).
Преимущество нового ферментного концентрата заключается в эффективном воздействия на перо сельскохозяйственной птицы с целью деградации пера до перевариваемых белков и незаменимых аминокислот.
Применение нового ферментного концентрата существенно повысит степень рентабельности производства за счет снижения себестоимости кормового сырья, полученного от деградации измельченного пера сельскохозяйственной птицы, и обогащения незаменимых аминокислотами, появившимися в процессе деградации.
Пример 1.
В колбу, содержащую 100 мл минерально-питательной среды (состав среды в г/л: фосфат калия однозамещенный - 2, сульфат аммония - 2, сульфат магния семиводный - 0,125, хлорид натрия - 0,5, сульфат железа (II) семиводный - 0,002, рН 7,5) вносили 5 г измельченного пера сельскохозяйственной птицы, а также штамм Bacillus licheniformis БАЛ-2. Посевной материал штамма Bacillus licheniformis вносился до конечной концентрации 1×106 КОЕ/мл. Ферментация пера проводилась в течение 72 ч при 28°С.
Последующий пересев в колбы на 750 мл со средой, состоящей из следующих компонентов сухих веществ (г/л): измельченное перо - 50; фосфат калия однозамещенный - 2,0; сульфат аммония - 2,0; сульфат магния семиводный - 0,125; хлорид натрия - 0,5; сульфат железа (2) семиводный - 0,002; вода очищенная - до 250 мл.
Пересев осуществляют при рН, равном 7,5; температуре 26-28°С; при скорости вращения мешалки - 160-180 об/мин. Кератиназная активность через 72 ч культивирования составила 23,6 KU/мл.
Пример 2.
Культивирование осуществляется в промышленном ферментере. Перо сельскохозяйственной птицы измельчается в промышленной мясорубке до фракции 1-2 мм.
Перед внесением инокулята происходит мойка и стерилизации ферментера - пустой ферментер наполняют горячей водой 90-95°С, мойка проходит в течение 30 минут. Затем в течение 30 минут аппараты промывают 3-5% раствором кальцинированной соды, после их ополаскивают горячей водой с температурой 70-85°С.
Состав среды для накопления инокулята (г/л): измельченное перо сельскохозяйственной птицы - 50; фосфат калия однозамещенный - 2,0; сульфат аммония - 2,0; сульфат магния семиводный - 0,125; хлорид натрия - 0,5; сульфат железа (2) семиводный - 0,002. Посевной материал получают как описано в примере 1. Посевной материал вносят до конечной концентрации 1×106 КОЕ/мл; время выращивания посевного материала - 36,5 ч; при рН 7,5; температуре 28°С; скорость работы мешалки 39,5 об/ч. Кератиназная активность определялась через 36,5 ч культивирования и составила 32,4 KU/мл.
Пример 3.
Культивирование осуществляется в промышленном ферментере. Получали посевной материал как описано в примере 2, расход посевного материала для ферментера рассчитывается к полезному объему ферментера и составляет 5%, время ферментации 72 ч при скорости мешалки 80 об/ч, при избыточном давлении 40 кПа, непрерывной аэрации среды стерильным воздухом (расход воздуха 60 м3/л среды в час). Посевная линия и штуцер отбора проб в течение всего периода ферментации должен находится под паром. При нормальных условиях роста конечное значение рН среды должно быть 6,9-7,2 при температуре 28°С.
Питательная среда для ферментера компонуется в реактор-смеситель, подается через нагревательную колонку и выдерживатель. Состав среды сухих веществ (г/л): пера сельскохозяйственной птицы - 50; фосфат калия однозамещенный - 2,0; сульфат аммония - 2,0; сульфат магния семиводный - 0,125; хлорид натрия - 0,5; сульфат железа (2) семиводный - 0,002. Куриное перо измельчалось аналогично примеру 2.
Количество вносимого измельченного сырья рассчитывается как содержание абсолютно сухого вещества (измельченного сырья), умноженного на фактическую влажность и внесенного в ферментер в двойном количестве, - при влажности сырья в 65,7% и содержании абсолютно сухих веществ 50 г/л будет вноситься: 171,6 г/л.
Кератиназная активность определялась через 72 ч культивирования и составила 48,6 KU/мл.
Пример 4.
Полученную культуральную среду, как описано в примере 3, очищают от компонентов среды и бактериальной биомассы методом фильтр-пресса для последующего концентрирования в вакуум-выпарных установках при температуре 50-55°С до 1/4 объема содержания сухих веществ. Полученный данным способом концентрат обладает кератиназной активность 291,6 KU/мл.

Claims (1)

  1. Штамм бактерий Bacillus licheniformis БАЛ-2 ВКПМ В-14244 - продуцент кератиназы.
RU2023123400A 2023-09-08 Штамм бактерий Bacillus licheniformis - продуцент кератиназы RU2812484C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2812484C1 true RU2812484C1 (ru) 2024-01-30

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2177994C2 (ru) * 2000-01-17 2002-01-10 Общество с ограниченной ответственностью Научно-производственная компания "Фермтек" Штамм бактерий bacillus licheniformis - продуцент кератиназы
RU2303066C1 (ru) * 2005-11-14 2007-07-20 Общество с ограниченной ответственностью Научно-производственная компания "Фермтек" Штамм бактерий bacillus licheniformis-продуцент щелочной протеазы

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2177994C2 (ru) * 2000-01-17 2002-01-10 Общество с ограниченной ответственностью Научно-производственная компания "Фермтек" Штамм бактерий bacillus licheniformis - продуцент кератиназы
RU2303066C1 (ru) * 2005-11-14 2007-07-20 Общество с ограниченной ответственностью Научно-производственная компания "Фермтек" Штамм бактерий bacillus licheniformis-продуцент щелочной протеазы

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
PFLEIDER, E., et al. Microorganisms in processing of leather, 1988 p. 730-739, In H. J. Rehm (ed. ), Biotechnology, vol. 6b. Special microbial processes. VCH Verlagsgeselschaft mbH, Weinheim, Germany. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Park et al. Keratinolytic activity of Bacillus megaterium F7-1, a feather-degrading mesophilic bacterium
El-Refai et al. Improvement of the newly isolated Bacillus pumilus FH9 keratinolytic activity
CN108004169B (zh) 地衣芽孢杆菌zl-1及其应用
Lo et al. Production of keratinolytic enzyme by an indigenous feather–degrading strain Bacillus cereus Wu2
CN1800358A (zh) 一种角蛋白酶的产生菌及其制备方法
Pandian et al. Isolation, identification and characterization of feather degrading bacteria
CN113862169B (zh) 一株贝莱斯芽孢杆菌及其在羽毛降解中的应用
TW201915165A (zh) 製備醱酵羽毛粉的枯草桿菌菌株及其用途
CN114921385B (zh) 一种枯草芽孢杆菌及其在饲料添加和无抗养殖中的应用
CN105733999B (zh) 一种枯草芽孢杆菌Bacillus subtilis FJ-3-16及其应用
CN110317748A (zh) 一株链霉菌菌株及其在降解羽毛中的应用
US6214576B1 (en) Bacteria useful for degrading keratin
CN117603889B (zh) 饲用产酸性蛋白酶的枯草芽孢杆菌及其应用
Tarrant et al. Proteolytic enzyme preparation from Pseudomonas fragi: its action on pig muscle
Nurkhasanah Preliminary study on keratinase fermentation by Bacillus sp. MD24 under solid state fermentation
RU2812484C1 (ru) Штамм бактерий Bacillus licheniformis - продуцент кератиназы
CN117106676A (zh) 一株枯草芽孢杆菌及其在饲料生产中的应用
Rahayu et al. Quality of chicken feather processed in different conditions
CN104560817A (zh) 一株产植酸酶的嗜热地衣芽孢杆菌utm102 及其应用
Pissuwan et al. Production of keratinase by Bacillus sp. FK 28 isolated in Thailand
Tamilmani et al. Production of an extra cellular feather degrading enzyme by Bacillus licheniformis isolated from poultry farm soil in Namakkal district (Tamilnadu)
CN115772482A (zh) 一株多功能贝莱斯芽孢杆菌、菌剂及其应用
Jahan et al. Screening of keratinolytic bacteria from poultry wastes
Coello et al. Kocuria rosea as a new feather degrading bacteria
Mukhtar et al. Isolation and screening of keratinase producing bacteria from soil