RO127523A2 - Tulpină de drojdie cu activitate antagonistă şi fermentativă - Google Patents

Tulpină de drojdie cu activitate antagonistă şi fermentativă Download PDF

Info

Publication number
RO127523A2
RO127523A2 ROA201001382A RO201001382A RO127523A2 RO 127523 A2 RO127523 A2 RO 127523A2 RO A201001382 A ROA201001382 A RO A201001382A RO 201001382 A RO201001382 A RO 201001382A RO 127523 A2 RO127523 A2 RO 127523A2
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
strain
yeast
fermentation
fungi
suspension
Prior art date
Application number
ROA201001382A
Other languages
English (en)
Other versions
RO127523B1 (ro
Inventor
Florin Oancea
Aurora Liliana Ştefan
Carmen Lupu
Original Assignee
Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor filed Critical Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority to ROA201001382A priority Critical patent/RO127523B1/ro
Publication of RO127523A2 publication Critical patent/RO127523A2/ro
Publication of RO127523B1 publication Critical patent/RO127523B1/ro

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Prezenta invenţie se referă la o tulpină de drojdieL30b, cu număr de depozit DSM 23648 la DSZM, destinată producerii concomitente de bioetanol şi bioproduse pentru protecţia plantelor din cereale contaminate cu micotoxine. Tulpina este puternic antagonistă faţă de mai multe ciuperci producătoare de micotoxine, în special cele care produc înroşirea grâului şi contaminează recolta cu fusariotoxine, are o capacitate ridicată de fermentare a hidrolizatelor de cereale, este eficientă în reducerea dezvoltării şi sporulării ciupercilor fitopatogene şi toxigene, şi îşi păstrează aceste caracteristici şi după realizarea fermentaţiei alcoolice.

Description

Invenția se refera la o tulpina de drojdie Saccharomyces cerevisiae, depozitată cu numărul DSM 23648, care prezintă și activitate antagonistă față de agenții fitopatogeni producători de micotoxine și capacitate de fermentare alcoolică, și care este destinată producerii concomitente de bioetanol și bioproduse pentru protecția plantelor din cereale contaminate cu micotoxine.
Sunt cunoscute mai multe tipuri de drojdii antagoniste ciupercilor fitopatogene și toxigene, care infectează cerealele în timpul vegetației și contaminează recolta cu micotoxine. Brevetul SUA 6562337 descrie diferite tulpini de drojdii, Torula aurea (NRRL Y-30213), o drojdie neidentificată (NRRL Y-30214), Torula sp. (NRRL Y-30215) și Cryptococcus nodaensis (NRRL Y-30216) antagoniste față de ciupercile fitopatogene și toxigene din grupul Fusarium graminearum care produc înroșirea spicului. Autorii au revenit și au reclasificat tulpinile ca Cryptococcus aureus (NRRL Y-30213 și NRRL Y30215) și Cryptococcus flavescens (NRRL Y-30216) (Durilap et a/., 2007, FEMS Yeast Res. 7:449-458). Brevetul SUA7570193 descrie tulpina WRL-076 de Pichia anomala (număr de depozit NRRL Y-30842), care are acțiune antagonistă față de ciupercile toxigene din grupul Aspergillus flavus, care pot infecta porumbul în timpul vegetației contaminând recolta cu aflatoxine. Brevetul SUA 7601346 descrie tulpina AS55.2 de Aureobasidium pullulans (NRLL Y-50291) care este antagonistă față de Fusarium graminearum.
Nu s-au descris până în prezent tulpini de drojdii care să prezinte concomitent antagonism față de ciupercile fitopatogene și toxigene, rezistență la micotoxinele produse de aceste ciuperci, capacitate de a fermenta hidrolizatele de cereale contaminate cu micotoxine și rezistență bună la șocurile osmotice. Astfel de tulpini ar fi utile pentru valorificarea complexă a cerealelor contaminate cu micotoxine în timpul vegetației peste limita maximă admisibilă, prin fermentarea plămezilor obținute prin solubilizarea / fluidificarea și zaharificarea măcinișului de cereale contaminate cu micotoxine. Biomasa de drojdii antagoniste co-produsă în astfel de sisteme de fermentație alcoolică ar reprezintă o materie primă valoroasă pentru biopesticide / amelioratori de sol active față de speciile toxigene de ciuperci fitopatogene și toxigene.
Tulpina L30b de Saccharomyces cerevisiae, depozitată cu numărul DSM 23648 la Autoritatea de Depozit Internațională DSMZ (Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen, Braunschweig - Germania), este antagonistă față de o serie de ciuperci fitopatogene și toxigene, inclusiv față de cele care produc boli ale
OHCIUL oe STAT PENTRU INVENȚII Șl MĂRClI
Cerere de brevet de invenție
Nr. .....
Data depozit |
Cy-2 O 1 O - o 1 3 8 2 ’ 2 1 Ί2- 2010 cerealelor și are capacitate de a produce fermentație alcoolică prin cultivare anaerobă pe hidrolizatele de cereale, inclusiv pe cele contaminate cu micotoxine.
Tulpina L30b de Saccharomyces cerevisiae, depozitată cu numărul DSM 23648, prezintă următoarele avantaje:
- creștere bogată pe mediile uzuale utilizate pentru cultivarea drojdiilor;
- rezistență mare la uscare și la concentrații ridicate de alcool, ca urmare a selecției prin șoc osmotic;
- randament de fermentare alcoolică și poductivitate orară corespunzătoare utilizării practice.
In continuare se da un exemplu de realizare a invenției.
Tulpina de drojdie antagonista Saccharomyces cerevisiae L30b a fost izolată de pe struguri din zona Prahova, Romania. Pentru izolarea primară s-a utilizat mediul de cultura: glucoza 5%, acid tartaric 0,5% (pH puternic acid 2,5), agar 2%. Coloniile cu aspect de drojdie au fost apoi supuse șocului osmotic. S-au folosit diferite concentrații de glicerol în apă pentru a se obține soluții cu activitatea apei de 0,881, 0,780, 0,648; activitatea apei în aceste soluții a fost verificată cu un aparat Aqualab (Decagon Service, SUA). Din coloniile cu aspect de drojdie s-au realizat suspensii țn tampon fiziologic salin, care au fost echilibrate cu soluțiile de șoc osmotic prin echilibrare pe baie de apă la 25°C. Socul osmotic a fost realizat prin injectarea rapidă a 50 μΙ de suspensie de drojdie în 950 μΙ de soluție de soc osmotic. După 3 min s-au reluat 100 μΙ din suspensia supusă șocului osmotic care au fost trecute pe o soluție de glicerol 0,51% (aw = 0,993). Microorganismele care au supraviețuit șocului osmotic au fost cultivate pe mediul YPGA (glucoza 20g; peptona 10g; extract de drojdie 5g; agar 20g; apa distilata sterila 1000 ml) și purificate prin reluarea pe mediu YPGA a coloniilor izolate. Pentru identificarea tulpinii L30b s-au folosit caracteristici morfologice, fiziologice și moleculare (secvența 26S rDNA D1/D2).
Tulpina de drojdie antagonistă L30b se prezintă sub forma de colonii alungite, fara bordura, de culoare crem, aderente, cremoase, iar pe mediul nutritiv se asigura obținerea unei densități celulare de peste 7,5x109 ufc / ml. Caracterele morfologice ale tulpinii L30b. Colonia: forma: alungită, fara bordura; aspectul suprafeței: neteda, aderenta; transparenta: translucida; consistenta: cremoasa; culoarea: crem. Celule; forma: ovale-rotunde; aranjament: in perechi; culoarea pe agar. crem; suprafața pe agar: strălucitoare; textura pe agar. moale. Diviziunea celulara: înmugurire: multipolara; fisiunea: absenta. Creșterea filamentelor: pseudomiceliu: absent; miceliul: absent; conexiuni de fixare: absente. Spori asexuali: balistospori: absenți; artrospori: absenți; clamidospori: absenți. Spori sexuali: ascospori: presenti; forma ascospori: rotunda;
Cr2 Ο 1 Ο - Ο 1 3 8 2 - 2 1 -12- 2010 pereți ascospori: netezi; forma asca: ovala; conjugarea: presenta; teliospori: absenți. In conformitate cu cheia de determinare morfologica la nivel de specie adaptata după
Stelling-Dekker tulpina L30b a fost identificată ca fiind Saccharomyces cerevisiae.
Caracterele fiziologice ale tulpinii de drojdie antagoniste L30b sunt: Temperatura de dezvoltare: optima 30° C; minima 6°C; maxima: 40° C. Fermentația semi-anaeroba: glucoza, galactoza, sucroza, maltoza, rafinoza = utilizare pozitiva (+); lactoza, melinioza, amidon solubil = nu se dezvolta cultura (-). Utilizarea aeroba si creșterea (ca singura sursa de azot): NH4 2SO4: utilizare pozitiva (+). KNO3, etilamina: nu se dezvolta cultura (-). Utilizarea aeroba si creșterea: glucoza; galactoza; sucroza; maltoza, trehaloza, melizitoza, etanol; glicerol = utilizare pozitiva (+); celobioza, lactoza; melibioza, inulina, amidon solubil, xyloza; D arabinoza; riboza, eritritol; manitol; sorbitol, acid succinic= nu se dezvolta cultura (-). Caracteristicile fiziologice sunt specifice tulpinilor de Saccharomyces cerevisiae.
Identificarea pe baza secvenței 26S rDNA D1/D2 s-a realizat prin aplicarea unui protocol de lucru caracterizat prin următoarele etape: obținerea de culturi pure - colonii izolate, tehnica însămânțării prin epuizarea ansei; extracția ADN-ului din drojdii; electroforeză în gel pentru detectarea ADN-ului; amplificarea secvenței 26S rDNA D1/D2 prin tehnica PCR și electroforeză în gel; purificarea ADN-ului care codifică pentru 26S rDNA D1/D2; amplificare enzimatică a acizilor nucleici înainte de secvențializare; precipitarea și uscarea ADN-ului codificând pentru 26S rDNA D1/D2. Secvențierea nucleotidică a fost realizată cu metoda Dye Terminator Cycle Sequencing (Perkin Elmer, 1998), folosind un secvențiator automat de tip ABI PRISM 310 (Perkin Elmer). Secvențele au fost analizate folosind programul CHROMAS 2.33 (Technelysium Pty Ltd). Compararea secvențelor 26S rDNA D1/D2 obținute cu secvențele existente în Banca de gene NCBI (Național Center for Biotechnology Information), s-a realizat cu ajutorul programului BLAST (Basic Local Alignment Search Tool).
Secvența D1/D2 pentru L30b: AAGCGGAGGAAAAGAAACCAACCGGGATTGCCTTAGTAACGGCGAGTGAAGCGG CAAAAGCTCAAATTTGAAATCTGGTACCTTCGGTGCCCGAGTTGTAATTTGGAGAG GGCAACTTTGGGGCCGTTCCTTGTCTATGTTCCTTGGAACAGGACGTCATAGAGG GTGAGAATCCCGTGTGGCGAGGAGTGCGGTTCTTTGTAAAGTGCCTTCGAAGAGT CGAGTTGTTTGGGAATGCAGCTCTAAGTGGGTGGTAAATTCCATCTAAAGCTAAAT ATTGGCGAGAGACCGATAGCGAACAAGTACAGTGATGGAAAGATGAAAAGAACTT TGAAAAGAGAGTGAAAAAGTACGTGAAATTGTTGAAAGGGAAGGGCATTTGATCA GACATGGTGTTTTGTGCCCTCTGCTCCTTGTGGGTAGGGGAATCTCGCATTTCAC
Ο Μ - 0 1 J Ρ 2 - 2 1 -12- 2311)
TGGGCCAGCATCAGTTTTGGTGGCAGGATAAATCCATAGGAATGTAGCTTGCCTC
GGTAAGTATTATAGCCTGTGGGAATACTGCCAGCTGGGACTGAGGACTGCGACGT
AAGTCAAGGATGCTGGCATAATGGTTATATGCCGCCCGTCTTGA
Identificare specie: Saccharomyces cerevisiae (100% secvența D1/D2).
Identificarea tulpinii de drojdie antagonista L30b la nivel de specie ca fiind Saccharomyces cerevisiae a fost confirmată cu numărul D4481 de către serviciul de identificare de la Național Collection of Yeast Cultures din Norwich - Marea Britanie
Condițiile pentru depozitare pe termen lung petnru tulpina L30b sunt liofilizare sau crioprezervare (păstrare in azot lichid sau înghețare mecanica la temperaturi cuprinse intre -80° si -135°C). Pentru testarea viabilității, celulele de drojdie dintr-o eprubeta sunt repicate pe mediul YPGA si sunt cultivate timp de 3 zile la temperatura de 30°C. Alternativ, o suspensie provenita dintr-o eprubeta cu drojdie este testata microscopic in vederea cuantificării viabilității celulelor (hemacitometru + violet metil/albastru de metilen) si se considera viabile daca mai mult de 90% dintre celule nu sunt colorate).
Tulpina L30b prezintă antagonism semnificativ in vitro față de mai multe ciuperci producătoare de micotoxine (tab.1), și în special față de cele care produc înroșirea grâului și contaminează recolta cu fusariotoxine, inclusiv deoxinivalenol.
Tab. 1. Antagonismul tulpinii de drojdie Saccharomyces cerevisiae L30b numărul DSM 23648 față de ciuperci fitopatogene producătoare de micotoxine.
Fitopatogen / micotoxine coef. x4 zile* coef. x 8 zile* Comportare la 8 zile
Fusarium graminearum DSM 4527/ fusariotoxine - trichotecene - DON 0,1 0,2 Puternic antagonist (PA)
Fusarium graminearum DSM 67638 / fusariotoxine - trichotecene - DON 0,1 0,1 Puternic antagonist (PA)
Fusarium culmorum, CBS 250.52 / fusariotoxine - trichotecene - DON 0,1 J 0,2 Puternic antagonist (PA)
Fusarium verticiloides CBS 119825 / Fusariotoxine - fumonisine 0,2 0,2 Puternic antagonist (PA)
Fusarium verticiloides ATCC 38932 / Fusariotoxine - fumonisine 0,1 0,2 Puternic antagonist (PA)
Aspergillus flavus F.00048 / aflatoxine 0,3 0,4 Antagonist (A)
Peniclium expansum F.00601 / patulina 0,2 0,2 Puternic antagonist (PA)
* Antagonism (A) cu atât mai puternic (PA) cu cât valorile coeficientului x sunt mai apropiate de valoarea 0; calcularea coeficientului x s-a realizat pe baza raportului dintre razele interne (i) și externe (e) ale ciupercii test (A) și a drojdiei (B), după formula : x = iA/iB x eB/Ea.
^-2 0 1 0 - 0 1 3 8 2 -2 1 -12- 2010
Capacitatea de fermentare a hidrolizatelor de cereale contaminate cu micotoxine a fost testată pe un hidrolizat realizat din făină de grâu contaminată cu deoxinivalenol (DON) la un nivel de 1400 pg/kg, nivel peste limita admisibilă de 1,2 ppm. Intr-un vas de reacție din inox, prevăzut cu manta rezistentă la abur 1 bar, 121°C, de 10 I, s-au adus 1360 g făină de grâu, conținând circa 818 g amidon, care au fost dispersate cu 3 I apă distilată, amestecându-se până la formarea unei paste. Vasul de reacție conținând pasta de făină de grâu a fost menținut timp de 5 min la 105 °C pentru a se produce gelatinizarea amidonului. După autoclavare flaconul a fost răcit la 95°C și incubat la această temperatură. In pasta de făină de grâu la 95°C s-au adăugat 5 g de a-amilază bacteriană (activitate enzimatică > 1500 U / kg), 3 ml soluție dintr-o soluție 1 mM de clorură de calciu (conținând 1 μΜ de Ca2+ per ml, respectiv 4 mg de ioni de calciu pentru 100 g de pastă de amidon = 40 mg/kg = 40 ppm Ca2+). Suspensia gelifiată a fost incubată la 95°C timp de 2 ore. La sfârșitul perioadei de incubare s-a verificat solubilizarea amidonului, adăugând peste 2..3 ml suspensie fluidizată, răcită la temperatura camerei, 0,1 ml soluție de iod în iodură de potasiu (preparată prin dizolvarea 2 g iod și 5 g iodura de potasiu în 100 ml apă distilată). Cu această soluție de iod amidonul formează o culoare albastră specifică, iar maltodextrinele rezultate prin solubilizarea amidonului / fluidificarea suspensiei de făină gelifiate generează o culoare roșiatică, a cărei intensitate descrește cu gradul de hidroliză. Soluția rezultată prin fluidificarea făinii de grâu a fost răcită la 55°C și s-au adăugat 7,5 ml de amiloglucozidază fungică (activitate enzimatică > 2000 U/kg). S-a incubat timp de 8 ore pentru zaharificare; la final s-au prelevat probe de 1 ml în care s-au determinat grupările reducătoare cu reactiv DNS. Soluția de zaharuri fermentescibile rezultată a fost adusă la 6000 ml cu apă distilată, pentru a se obține o soluție conținând 150 g/l. Peste cei 6000 ml apă distilată s-au adus 300 ml Saccharomyces cerevisiae L30b, suspensie conținând 107 ufc/ml. S-a procedat la fermentare timp de 42 de ore, după care drojdiile au fost separate și retestate din punct de vedee al antagonismului față de o tulpină de Fusarium graminearum DSM 4527 producătoare de deoxinivalenol DON.
S-a constatat că tulpina de drojdie și-a menținut capacitatea antagonistă in vitro. In cursul fermentației au fost monitorizați principalii parametri specifici, respectiv concentrația de etanol (și parametrii derivați precum randamentul și productivitatea volumetrică) și concentrația de glucoză (determinată prin lichid cromatografie) și numărul de drojdii încapsulate, determinate prin tehnica unităților formatoare de colonii, după realizarea primei diluții în soluție 2% de citrat de sodiu, pentru a dizolva gelul de alginat de calciu. Condițiile analizei lichid cromatografice prin care s-au determinat simultan concentrația de alcool și de glucoză au fost: Sistem Agilent 1290 Infinity LC,
^“2010-01382-2 1 -12- 2010 coloana Hi-Plex H 8 pm, 300 x 7,7 mm, p/n: PL1170-6830; eluent: acid sulfuric 5 mM;
gradient isocratic; flux de 0,7 ml/min., volum injectat 20 pi, temperatură 60°C, presiune
4.6 MPa (46 bari), detector cu indice de refracție, menținut la 55°C. Rezultatele sunt prezentate în tab. 2.
Tab.2. Evoluția unor parametri specifici fermentației hidrolizatului de făină de grâu contaminat cu DON prin utilizarea drojdiilor antagoniste L30b
Timp fermentație 25 40
Concentrație etanol (%g/g) 7,64 9,05
Randament etanol (g/g) 0,42 0,53
Productivitate volumetrică (g/l/h) 3,03 0,51
Concentrație glucoză 89,2 3,64
Număr celule drojdie (x109 ufc) 0,52 7,25
Aceste rezultate din tab. 2 arată o capacitatea ridicată de fermentare a hidrolizatelor de cereale contaminate cu micotoxine de către drojdiile antagoniste în paralel cu o multiplicare semnificativă. A fost testată capacitatea drojdiei recuperate după fermentare, de a limita producerea de ascospori de către ciuperca Fusarium graminearum Schw. DSM 4527 (teleomorfa Gibberella zea Schw. Petch) pe substrate solide. Ciuperca toxigenă, forma conidială, F. graminearum, a fost cultivată pe mediu înclinat cartof - glucoză - agar. După 7 zile de creștere cultura a fost reluată în tampon fosfat salin, pH 7,2, adusă la 105 ufc/ml și inoculată (0,1 ml / g) peste paie de grâu sterilizate prin autoclavare. Același tratament a fost aplicat și unor variante experimentale tratate aseptic (anterior, concomitent sau ulterior) cu drojdii recuperate după fermentație (0,1 ml dintr-o suspensie 105 ufc/ml pentru 1 g de paie) și cu inocul de reluat de pe mediu YEM agarizat, înclinat (inoculare 0,1 ml suspensie 105 ufc/ml per g de paie).
Paiele au fost trecute apoi aseptic pe plăci Roux, închise cu dopuri de vată, care conțineau câte 5 g de vermiculit steril, umectat cu câte 5 ml de apă sterilă. Plăcile au fost incubate timp de 21 zile, la 25°C, și în lumină fluorescentă cu dominantă în UV apropiat (2 lămpi F40 BLB, două lămpi F40 CWX, Philips). Vermiculitul a fost reumectat de două ori pe săptămâna. Captarea ascosporilor s-a realizat cu ajutorul unor lamele de microscop 25 x 75 mm, tratate cu silicon și plasate la 10 mm de gâtul plăcii Roux. După 21 de zile s-a lăsat vermiculitul să se usuce timp de 5 zile, după care a fost reumectat abundent cu 7 ml de apă sterilă. Această alternanță a favorizat ejectarea sporilor din apoteci. Spori captați în uleiul siliconi au fost numărați la microscop, pe 25% din suprafața lamelei. Fiecare variantă experimentală a fost realizată în trei
£\” 2010-01382’
1 -12- 2010 repetiții, iar întregul experimentul a fost repetat o dată. Datele au fost interpretate pe baza testului Friedman pentru măsurări repetate. Rezultatele sunt prezentate în tab.3.
de mai jos.
Tab.3. Influența aplicării suspensiilor de drojdie antagonistă S. cerevisiae L30b asupra producerii de ascospori de către Fusarium graminearum DSM 4527 (teleomorfa Gibberella zea).
Varianta experimentală Ascospori (χ105) per cm2 de substrat* % față de martor
Martor, paie de grâu neinoculate cu microorganisme antagoniste, inoculare Fusarium graminearum DSM5427, 0,1 ml suspensie 105 ufc/ml per g de paie 14,8 a -
Pre-inoculat cu drojdii L30b recuperate după fermentație 0,1 ml suspensie 105 ufc/ml per g de paie, inoculare 0,1 ml suspensie Fusarium graminearum DSM5427 105 ufc/ml per g de paie 1,91 c 12,91%
Inoculat concomitent cu drojdii L30b recuperate după fermentație 0,1 ml suspensie 105 ufc/ml perg de paie, inoculare 0,1 ml suspensie Fusarium graminearum DSM5427 1 05 ufc/ml per g de paie 2,88 bc 19,46%
Post-inoculat cu drojdii L30b recuperate după fermentație 0,1 ml suspensie 105 ufc/ml per g de paie, inoculare 0,1 ml suspensie Fusarium graminearum DSM5427105 ufc/ml per g de paie 5,17 b 34,93%
Pre-inoculat cu 0,1 ml suspensie L30b 10bufc/ml perg de paie, inoculare 0,1 ml suspensie Fusarium graminearum DSM5427105 ufc/ml per g de paie 1,82 c 12,30%
Inoculat concomitent cu 0,1 ml suspensie L30b 105 ufc/ml per g de paie, inoculare 0,1 ml suspensie Fusarium graminearum DSM5427 1 05 ufc/ml per g de paie 2,44 bc 16,49%
Post-inoculat cu 0,1 ml suspensie L30b 105ufc/ml perg de paie, inoculare 0,1 ml suspensie Fusarium graminearum DSM5427 105 ufc/ml per g de paie 4,52 b 30,54%
* valorile urmate de aceeași literă nu diferă semnificativ pentru testul Friedman la 0,05 nivel de încredere.
Rezultatele din tab.3. demonstrează că drojdie L30b este eficientă în reducerea dezvoltării și sporulării ciupercilor fitopatogene și toxigene F. graminearum, și că își păstrează aceste caracteristici și după fermentația alcoolică.

Claims (1)

  1. Revendicare
    Tulpina L30b de Saccharomyces cerevisiae, depozitată cu numărul DSM 23648 la Autoritatea de Depozit Internațională DSMZ, caracterizată prin aceea că este puternic antagonistă față de mai multe ciuperci producătoare de micotoxine, și în special față de cele care produc înroșirea grâului și contaminează recolta cu fusariotoxine, are o ridicată capacitate de fermentare a hidrolizatelor de cereale, inclusiv a celor care sunt contaminate cu micotoxine, și în particular fusariotoxine, este eficientă în reducerea dezvoltării și sporulării ciupercilor fitopatogene și toxigene și își păstrează aceste caracteristici și după ce realizează fermentația alcoolică.
ROA201001382A 2010-12-21 2010-12-21 Tulpină de saccharomyces cerevisiae cu activitate antagonistă şi fermentativă RO127523B1 (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201001382A RO127523B1 (ro) 2010-12-21 2010-12-21 Tulpină de saccharomyces cerevisiae cu activitate antagonistă şi fermentativă

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201001382A RO127523B1 (ro) 2010-12-21 2010-12-21 Tulpină de saccharomyces cerevisiae cu activitate antagonistă şi fermentativă

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RO127523A2 true RO127523A2 (ro) 2012-06-29
RO127523B1 RO127523B1 (ro) 2015-02-27

Family

ID=46319373

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ROA201001382A RO127523B1 (ro) 2010-12-21 2010-12-21 Tulpină de saccharomyces cerevisiae cu activitate antagonistă şi fermentativă

Country Status (1)

Country Link
RO (1) RO127523B1 (ro)

Also Published As

Publication number Publication date
RO127523B1 (ro) 2015-02-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103451128B (zh) 一株解淀粉芽孢杆菌及其在防治桃流胶病中的应用
CN107099467B (zh) 一株铜绿假单胞菌xcs007及其在防治烟草黑胫病中的应用
CN104403962B (zh) 一株特基拉芽孢杆菌及其防治禾谷镰刀菌方面的应用
Lane et al. Endogenous reserves and survival of blastospores of Beauveria bassiana harvested from carbon-and nitrogen-limited batch cultures
CN114480222B (zh) 一株克里本类芽孢杆菌航天突变体及其应用
CN108148794A (zh) 一种广谱抑菌活性的枯草芽孢杆菌DYr3.3及制备方法和应用
CN105385609A (zh) 一株高产葡萄糖氧化酶的黑曲霉及其应用
CN109321500B (zh) 一株解淀粉芽孢杆菌菌株及其在防治油茶炭疽病害中的应用
CN117229952A (zh) 一株广谱抗病的伯克霍尔德氏菌及其应用
CN110172429A (zh) 一种提高生防芽孢杆菌对植物病原真菌抑菌活性的培养基及培养方法
CN105316265A (zh) 一株生防用解淀粉芽孢杆菌及其应用
CN104946574A (zh) 一株抑制植物病原真菌的枯草芽孢杆菌Baisha2C
Chong-Rodríguez et al. Study of Beauveria bassiana growth, blastospore yield, desiccation-tolerance, viability and toxic activity using different liquid media
CN118956636A (zh) 一种贝莱斯芽孢杆菌lmy3-5及其应用
Elabbasy et al. Antifungal activity of Streptomyces canescens MH7 isolated from mangrove sediment against some dermatophytes
CN103468579B (zh) 一种对柑橘木虱具致病力的蜡蚧菌属真菌新种
CN102492629B (zh) 一种海洋真菌汤姆青霉及其提取物和应用
CN116555110A (zh) 一种对葡萄灰霉病有防效的萎缩芽孢杆菌、生物菌剂及应用
CN113604376B (zh) 一株甘蔗内生枯草芽孢杆菌及其应用
de Farias et al. Comparison of Aspergillus niger spore production on Potato Dextrose Agar (PDA) and crushed corncob medium
CN118325793B (zh) 一株橡胶树内生贝莱斯芽孢杆菌wsr1及其应用
CN110577904A (zh) 一株短小芽孢杆菌及其在制备葡萄灰霉病杀菌剂中的应用
CN102018000A (zh) Bz6-1菌株在制备治疗植物花生青枯病药物中的应用
CN114214209B (zh) 一株可产乳糖酶的裂褶菌变种及其应用
CN106085880B (zh) 一种黑粉菌的分离方法及所用培养基