PL93436B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL93436B1
PL93436B1 PL18577973A PL18577973A PL93436B1 PL 93436 B1 PL93436 B1 PL 93436B1 PL 18577973 A PL18577973 A PL 18577973A PL 18577973 A PL18577973 A PL 18577973A PL 93436 B1 PL93436 B1 PL 93436B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
polifungin
production
medium
mutant
culture
Prior art date
Application number
PL18577973A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to PL18577973A priority Critical patent/PL93436B1/pl
Publication of PL93436B1 publication Critical patent/PL93436B1/pl

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Opis patentowy opublikowano: 30.11.1977 93436 MKPC12d»/14 Int. 01.a C12D 9/14 CZYTELNIA Twórcy wynalazku: Danuta Kotiuszko, Halina Morawska, Krystyna Strzezek, Mieczyslaw Pikala, Andrzej Rafalski, Kaizimierz Czarny, Zygmunt Zaczynski Uprawniony z patentu: Instytut Przemyslu Farmaceutycznego, Warszawa (Polska) Sposób wytwarzania polifunginy Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania polifunginy* antybiotyku przeciwgrzybowego, przy uzyciu mutanta Streptomyces noursei var, polisungmi ATCC £1581 o zwie¬ kszonej zdolnosci do biosyntótyzewaiua antybiotyku.W dotychczas opisanych sposobach wytwarzania poli¬ funginy (opis patentowy nr 71259 oraz opis patentowy nr Si600) stosowano szczep macierzysty (dziki) Streptomyces noursei var. polifungini ATCC 215S1 lub jego klony.W opisie patentowym nr 87664 opisany zostal sporób otrzymywania mutantów Streptomyces noursei var. poli¬ fungini o wielokrotnie zwiekszonej zdolnosci wytwarzania polifunginy. Stwierdzono, ze mutant nr R 851/26/77 tego promieniowca, otrzymany w sposób opisany w w/w opisie patentowym jest szczepem produkcyjnym, rózniacym sie od szczepu macierzystego wieloma wlasciwosciami. Wlasci¬ wosci te zestawiono w ponizszych tabelach 1 i 2.W biosyntezie makrolidowych antybiotyków polienowych jednostkami budulcowymi pierscienia makrolidowego zwiaz¬ ków jest octan i propionian. Za kondensacje jednostek octa¬ nowych odpowiedzialny jest malonylo-CoAj natomiast wlaczanie jednostki trójweglowej (propionianu) odbywa sie po uprzedniej jego aktywacji do propionylo-CoA i karbo- isylacji do metylomalonylo-CoA, Stad wysokoaktywne mutanty powinny posiadac odpo¬ wiednio wysoka czynnosc enzymów aktywujacych octan i propionan oraz wysoka czynnosc enzymów, odpowiedzial¬ nych za wydajnosc procesu polimeryzacji. Mutanta produk¬ cyjnego powinna równiez charakteryzowac niska aktywnosc enzymów odpowiedzialnych za wykorzystanie jednostek 33 budulcowych antybiotyku do innych procesów biochemicz* nych.Aktywnosc enzymatyczna mutanta nr R 851 /2Ó/77 odpe* wiada kryterium biech&nicznym dla mutantów o zwiekszo¬ nej zdolnosci wytwarzania antybiotyku (Raczynska -**• Bc^anowaka K, — Post. Hig. Med, Dosw. 28/1974/499).Wlasciwoacia mutanta R 851/26/77 jest równiez brak zdolnosc wytwarzania aktydionu, co ma wplyw na zwie* kazenie syntezy polifunginy. Brak zdolnosci wytwarzania aktydionu* antybiotyku o wlasciwosciach cytostatycznych, jest istotny równiez z punktu widzenia ochrony zdrowia pracowników, zatrudnionych przy produkcji polifunginy.Obecnie stwierdzono, ze mutant R 851/26/77 dla wy¬ twarzania wysokich stezen polifunginy wymaga obecnosci tluszczów roslinnych lub zwierzecych. Wedlug wynalazku jako jedyne zródlo wegla w pozywce stosuje sie olej sojowy w ilosci co najmniej 5% w stosunku do objetosci pozywki.Sposób wedlug wynalazku wyjasniaja ponizsze przy¬ klady.Przyklad I. Wytwarzanie polifunginy w skali labo¬ ratoryjnej. 1. Hodowla podpowierzchniowa etapu posiewowego.Hodowle podpowierzchniowa etapu posiewowego prowadzi sie na pozywce plynnej w kolbach stozkowych o objetosci 500 ml, zawierajacych po 50 ml pozywek o nastepujacym skladzie: glukoza czysta — 2%, azotan amonowy czysty — 0,5%, WNK (wyciag namokowy kukurydzy) 50% suchej masy — 2%, weglan wapniowy techniczny — 0,5%, woda wodociagowa do 100%. Pozywke wyjalawia sie w auto- 93 4369S436 Tablica 1 Aktywnosc enzymatyczna badanych szczepów Szczep Streptomyces noursei var. polifungini ATCC21581 Mutant nr R 851/26/ /77 Aktywnosc enzymów | Syntetaza cytrynianowa wysoka niska Dehydrogenaza jablczanowa wysoka niska Karboksylotransferaza metylomalonylo-CoA niska wysoka PEP-karboksylaza niska wysoka Tablica 2 Wytwarzanie antybiotyków przeciwgrzybowych Badany szczep Streptomyces noursei var. polifun¬ gini ATCC 21581 Mutant nr R 851/26/77 Wytwarzanie aktydionu Wytwarza Nie wytwarza Wytwarzanie polifunginy 1 Skala laboratoryjna w jednostkach w 1 ml 16569—20760 srednio 64000 Wydajnosc szarzy (fermentory 150 1) w giga jednostkach 0,95—1,75 srednio 7,0 | klawie w ciagu 30 minut w temperaturze 117°C, po ostu¬ dzeniu szczepi sie-zarodnikami mutanta nr R 851/26/77 z hodowli na skosach agarowych z pozywka z wyciagiem ziemniaczanym i glukoza. Hodowle podpowierzchniowa etapu posiewowego prowadzi sie na trzesawce obrotowej o 220 obrotach/minute, w pomieszczeniu termostatowym o temperaturze 28°C w ciagu 30 godzin. 2. Hodowla podpowierzchniowa etapu produkcyjnego.Hodowle podpowierzchniowa etapu produkcyjnego pro¬ wadzi sie na pozywce plynnej w kolbach stozkowych o ob¬ jetosci 500 ml, zawierajacych po 30 ml pozywki o nastepuja¬ cym skladzie: olej sojowy surowy — 5%, WNK (50% suchej masy) — 1%, drozdze suszone browarnicze — 0,25%, azotan amonowy techniczny — 0,5%, weglan wapniowy — 1%, woda wodociagowa do 100%. Pozywke wyjalawia sie w autoklawie przez 30 minut w temperaturze 117 °C, a po ostudzeniu pozywki do kazdej kolby dodaje sie, w spo¬ sób jalowy, material posiewowy z hodowli podpowierz- chniowej etapu posiewowego w ilosci 5% w stosunku do ilosci pozywki w kolbie. Hodowle etapu produkcyjnego prowadzi sie na trzesawce obrotowej o 230 obrotach/minute w pomieszczeniu termostatowym o temperaturze 30 °C w ciagu 120 godzin. Stezenie antybiotyku w koncowej godzinie hodowli wynosilo 64 000 jednostek/ml polifunginy wedlug oznaczen metoda mikrobiologiczna.Przyklad II. Wytwarzanie polifunginy w fermento- rach. 1. Hodowla podpowierzchniowa etapu posiewowego w kolbach. Jako material szczepienny dla etapu posiewowe¬ go w hodowli podpowierzchniowej w kolbach stosowano zarodniki mutanta produkcyjnego R 851/26/77, postepujac jak w przykladzie I. Materialem z podpowierzchniowej hodowli posiewowej w kolbach szczepiono pozywke etapu posiewowego w fermentorach. 2. Hodowla podpowierzchniowa etapu posiewowego w fermentorach. W fermentorze o objetosci calkowitej 150 1, zaopatrzonym w uklad mieszania i napowietrzania, przygotowano pozywke posiewowa. Do fermentora wprowa¬ dzono okolo 90 1 wody wodociagowej, a nastepnie skladniki 40 45 50 55 pozywki: WNK (50% suchej masy) — 2 kg; azotan amo¬ nowy techniczny — 0,5 kg; weglan wapniowy techniczny, stracany — 0,5 kg; olej sojowy, surowy, wyjalowiony — 1,5 kg. Po wymieszaniu pozywke wyjalowiono para wodna o cisnieniu 2,5 do 2,8 atm. utrzymujaca temperature 117 ° — 120 °C przez 60 minut, po czym ochlodzono i szczepiono materialem szczepiennym z kolb, wlewajac w sposób jalowy do fermentora 1 litr hodowli etapu posiewowego. Hodowle podpowierzchniowa etapu posiewowego w fermentorze prowadzono w ciagu 18—24 godzin, utrzymujac tempera¬ ture w granicach 28°—30 °C, podajac do fermentora jalowe powietrze w ilosci 110N1/min i utrzymujac prace mieszadla na poziomie 300 obrotów/minute. Brzeczka hodowlana, otrzymana w tak prowadzonym procesie, stanowila material szczepienny dla hodowli podpowierzchniowej etapu pro¬ dukcyjnego w fermentorze. 3. Hodowla podpowierzchniowa etapu produkcyjnego w fermentorach. Do fermentora o objetosci calkowitej 150 1 wprowadzono okolo 90 1 wody wodociagowej, a na¬ stepnie skladniki pozywki: drozdze paszowe suszone — 0,4 kg; azotan amonowy techniczny — 0,6 kg; weglan wapniowy techniczny stracany — 1,2 kg; WNK (50% suchej masy) — 1,2 kg; olej sojowy, surowy, niejalowy — 6,0 kg. Po wymieszaniu pozywke wyjalowiono analogicznie, jak w przypadku pozywki posiewowej. Po schlodzeniu do temperatury 28°—30°C pozywke etapu produkcyjnego szczepiono 10 litrami hodowli etapu posiewowego.' Hodowle podpowierzchniowa etapu produkcyjnego pro¬ wadzono w ciagu 100 godzin w temperaturze 28°—30 °C, podajac do fermentora jalowe powietrze w ilosci 140— —150N1/minute i utrzymujac prace mieszadla na poziomie 360 obrotów/minute.W wyniku tak prowadzonego procesu uzyskano 100 li¬ trów brzeczki, zawierajacej srednio 70000 j/ml polifunginy wedlug oznaczen mikrobiologicznych, co stanowilo 7,0 giga jednostek na 1 szarze. PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób wytwarzania polifunginy przy zastosowaniu mutantów Streptomyces noursei var. polifungini ATCC93 436 5 6 21581 o zwiekszonej zdolnosci wytwarzania polifunginy, ne zródla azotu oraz olej sojowy jako jedyne zródlo wegla, znamienny tym, ze proces biosyntezy prowadzi sie przy w ilosci co najmniej 5%, w czasie potrzebnym do wytwarza- uzyciu mutanta nr R 851/26/77 vr tlenowej hodowli pod- nia maksymalnej ilosci antybiotyku, który izoluje sie zna- powierzchniowej na pozywkach, zawierajacych przyswajal- nymi sposobami. PL
PL18577973A 1973-06-22 1973-06-22 PL93436B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL18577973A PL93436B1 (pl) 1973-06-22 1973-06-22

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL18577973A PL93436B1 (pl) 1973-06-22 1973-06-22

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL93436B1 true PL93436B1 (pl) 1977-05-30

Family

ID=19974827

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL18577973A PL93436B1 (pl) 1973-06-22 1973-06-22

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL93436B1 (pl)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4794080A (en) Microbial co-culture production of propionic acid
EP4317415A1 (en) Bacillus natto for producing menaquinone-7 and use thereof
JP2008054688A (ja) アカルボースの製造のためのオスモル濃度制御発酵方法
CA2347908A1 (en) Method of producing .gamma.-decalactone
van der Sluis et al. Immobilized salt-tolerant yeasts: application of a new polyethylene-oxide support in a continuous stirred-tank reactor for flavour production
RU2381270C1 (ru) ШТАММ БАКТЕРИЙ Clostridium acetobutylicum - ПРОДУЦЕНТ БУТАНОЛА, АЦЕТОНА И ЭТАНОЛА
FI85502B (fi) Foerfarande foer framstaellning av polyoler genom pao industriell skala baserad fermentation av socker.
Hellenbroich et al. Cultivation of Tetrahymena thermophila in a 1.5-m3 airlift bioreactor
US5273891A (en) Process for the production of microbial cellulose
KR100204982B1 (ko) 담자균류의 액체종균 배양방법 및 그 방법에 의한 액체종균
PL93436B1 (pl)
CN103114053B (zh) 产高光学纯度d-乳酸的棒状乳杆菌陕西亚种及其应用
EP0323717B1 (en) Process for the production of microbial cellulose
KR100800530B1 (ko) 만니톨 생산능을 갖는 류코노스톡 시트리움 및 이를이용하여 만니톨을 생산하는 방법
RU2112035C1 (ru) Способ получения протеолитических ферментов из бактерий рода bacillus
SU539538A3 (ru) Способ получени метаболита "а 27 106
US3843445A (en) Asparaginase production
SU594769A1 (ru) Штамм васIвLUS SUвтILIS
RU2142509C1 (ru) Штамм saccharopolyspora erythraea 52 - продуцент антибиотика эритромицина
SU1094346A1 (ru) Штамм @ @ ВУД @ -2 N @ 203-продуцент амилолитических ферментов,используемых дл осахаривани крахмалсодержащего сырь при производстве спирта и способ получени амилолитических ферментов дл осахаривани
JPH01144988A (ja) 化合物uk−61,689の製法及び該化合物産生菌
KR0162725B1 (ko) 스트렙토키나제 및 스트렙토도르나제의 동시 제조방법
SU1711788A1 (ru) Способ культивировани молочнокислых или пропионовокислых бактерий
CA1276576C (en) Microbial co-culture production of propionic acid
SU1631079A1 (ru) Штамм бактерий ВRеVIвастеRIUм SтатIоNIS - продуцент NAD-киназы