PL82808B1 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- PL82808B1 PL82808B1 PL1971146385A PL14638571A PL82808B1 PL 82808 B1 PL82808 B1 PL 82808B1 PL 1971146385 A PL1971146385 A PL 1971146385A PL 14638571 A PL14638571 A PL 14638571A PL 82808 B1 PL82808 B1 PL 82808B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- dextranase
- weight
- solution
- value
- enzyme
- Prior art date
Links
- 108010001682 Dextranase Proteins 0.000 claims description 42
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 18
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 5
- 241000294619 Brevibacterium fuscum var. dextranlyticum Species 0.000 claims description 2
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 24
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 18
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 18
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 18
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 description 15
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 15
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 11
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 10
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 10
- 239000000047 product Substances 0.000 description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 8
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 241000218649 Brevibacterium fuscum Species 0.000 description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 7
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical class OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 6
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 5
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 5
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 5
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 5
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 5
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- SIKJAQJRHWYJAI-UHFFFAOYSA-N Indole Chemical compound C1=CC=C2NC=CC2=C1 SIKJAQJRHWYJAI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 3
- GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N Maltose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N 0.000 description 3
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 3
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 3
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N citric acid Chemical compound OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000009833 condensation Methods 0.000 description 3
- 230000005494 condensation Effects 0.000 description 3
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 3
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 description 3
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 3
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 3
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 3
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 3
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 3
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 229920001592 potato starch Polymers 0.000 description 3
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 3
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 3
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000186146 Brevibacterium Species 0.000 description 2
- 229920001353 Dextrin Polymers 0.000 description 2
- 239000004375 Dextrin Substances 0.000 description 2
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 2
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 2
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 2
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 description 2
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 description 2
- 239000007836 KH2PO4 Substances 0.000 description 2
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229910002651 NO3 Inorganic materials 0.000 description 2
- NHNBFGGVMKEFGY-UHFFFAOYSA-N Nitrate Chemical compound [O-][N+]([O-])=O NHNBFGGVMKEFGY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 2
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 2
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 2
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 2
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 2
- 239000003463 adsorbent Substances 0.000 description 2
- 150000003863 ammonium salts Chemical class 0.000 description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 2
- KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N boric acid Chemical compound OB(O)O KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960002645 boric acid Drugs 0.000 description 2
- 235000010338 boric acid Nutrition 0.000 description 2
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 2
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 2
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 2
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 2
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 2
- 238000004440 column chromatography Methods 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 235000019425 dextrin Nutrition 0.000 description 2
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 2
- 235000013350 formula milk Nutrition 0.000 description 2
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 2
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 2
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 2
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 description 2
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 2
- PZOUSPYUWWUPPK-UHFFFAOYSA-N indole Natural products CC1=CC=CC2=C1C=CN2 PZOUSPYUWWUPPK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- RKJUIXBNRJVNHR-UHFFFAOYSA-N indolenine Natural products C1=CC=C2CC=NC2=C1 RKJUIXBNRJVNHR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 description 2
- 238000009630 liquid culture Methods 0.000 description 2
- SQQMAOCOWKFBNP-UHFFFAOYSA-L manganese(II) sulfate Chemical compound [Mn+2].[O-]S([O-])(=O)=O SQQMAOCOWKFBNP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229910000357 manganese(II) sulfate Inorganic materials 0.000 description 2
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 description 2
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 2
- 230000001766 physiological effect Effects 0.000 description 2
- GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M potassium dihydrogen phosphate Chemical compound [K+].OP(O)([O-])=O GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 2
- 230000008569 process Effects 0.000 description 2
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 2
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 2
- PVKZAQYUEVYDGV-CGOOJBRSSA-N (2r,3s,4r,5r)-3,4,5,6-tetrahydroxy-2-[(3r,4s,5r)-3,4,5-trihydroxyoxan-2-yl]oxyhexanal Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](C=O)OC1OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O PVKZAQYUEVYDGV-CGOOJBRSSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N Alpha-Lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 1
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O Ammonium Chemical compound [NH4+] QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 108010004032 Bromelains Proteins 0.000 description 1
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 102000016938 Catalase Human genes 0.000 description 1
- 108010053835 Catalase Proteins 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 1
- RWSOTUBLDIXVET-UHFFFAOYSA-N Dihydrogen sulfide Chemical compound S RWSOTUBLDIXVET-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000001828 Gelatine Substances 0.000 description 1
- 238000003794 Gram staining Methods 0.000 description 1
- AYRXSINWFIIFAE-SCLMCMATSA-N Isomaltose Natural products OC[C@H]1O[C@H](OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C=O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O AYRXSINWFIIFAE-SCLMCMATSA-N 0.000 description 1
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 1
- 102000004316 Oxidoreductases Human genes 0.000 description 1
- 108090000854 Oxidoreductases Proteins 0.000 description 1
- 208000037062 Polyps Diseases 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N Raffinose Natural products O(C[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O[C@@]2(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O1)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- 244000061456 Solanum tuberosum Species 0.000 description 1
- 235000002595 Solanum tuberosum Nutrition 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-UHFFFAOYSA-N UNPD196149 Natural products OC1C(O)C(CO)OC1(CO)OC1C(O)C(O)C(O)C(COC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 240000008042 Zea mays Species 0.000 description 1
- 235000005824 Zea mays ssp. parviglumis Nutrition 0.000 description 1
- 235000002017 Zea mays subsp mays Nutrition 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 238000005377 adsorption chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 1
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N arabinose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N arabinose Natural products OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N beta-D-Pyranose-Lyxose Natural products OC1COC(O)C(O)C1O SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N beta-maltose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 235000014121 butter Nutrition 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 1
- 235000011148 calcium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 description 1
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 235000005822 corn Nutrition 0.000 description 1
- 235000012343 cottonseed oil Nutrition 0.000 description 1
- 208000002925 dental caries Diseases 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 238000000921 elemental analysis Methods 0.000 description 1
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 1
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 235000019534 high fructose corn syrup Nutrition 0.000 description 1
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- DLRVVLDZNNYCBX-RTPHMHGBSA-N isomaltose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1OC[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O1 DLRVVLDZNNYCBX-RTPHMHGBSA-N 0.000 description 1
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 1
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 1
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 229910000372 mercury(II) sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000029052 metamorphosis Effects 0.000 description 1
- CEQFOVLGLXCDCX-WUKNDPDISA-N methyl red Chemical compound C1=CC(N(C)C)=CC=C1\N=N\C1=CC=CC=C1C(O)=O CEQFOVLGLXCDCX-WUKNDPDISA-N 0.000 description 1
- 239000010445 mica Substances 0.000 description 1
- 229910052618 mica group Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 1
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 1
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 description 1
- 235000013379 molasses Nutrition 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 231100000989 no adverse effect Toxicity 0.000 description 1
- 230000000050 nutritive effect Effects 0.000 description 1
- 239000001053 orange pigment Substances 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 239000003058 plasma substitute Substances 0.000 description 1
- XAEFZNCEHLXOMS-UHFFFAOYSA-M potassium benzoate Chemical compound [K+].[O-]C(=O)C1=CC=CC=C1 XAEFZNCEHLXOMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N raffinose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N 0.000 description 1
- 238000007670 refining Methods 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 230000019086 sulfide ion homeostasis Effects 0.000 description 1
- 238000003828 vacuum filtration Methods 0.000 description 1
- 239000001052 yellow pigment Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2451—Glucanases acting on alpha-1,6-glucosidic bonds
- C12N9/2454—Dextranase (3.2.1.11)
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
- Y10S435/815—Enzyme separation or purification by sorption
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
- Y10S435/816—Enzyme separation or purification by solubility
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/84—Brevibacterium
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
Sposób wytwarzania nowej dekstranazy Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia nowej dekstranazy, to jest enzymu zdolnego do rozkladania wiazania a-l,6- w dekstranie.Stwierdzono, ze wszystkie z wytworzonych znany¬ mi sposobami dekstrynaz wykazuja optymalna wartosc pH w strefie kwasowej, a ich trwalosc nie jest zadowalajaca.Celem wynalazku jest opracowanie sposobu wy¬ twarzania nowej dekstranazy stosowanej zwlaszcza w dentystyce, która by wykazywala optymalna wartosc pH w strefie obojetnej lub slabo alkali¬ cznej oraz wieksza trwalosc.Nieoczekiwanie stwierdzono, ze dekstranaze o optymalnej wartosci pH w strefie slabo alka¬ licznej otrzymuje sie na drodze hodowli Brevibac- terium fuscum var. dextranlyticum. Drobnoustrój ten otrzymano z gleby w poblizu Kakegawa-mura, Shizuoka-ken w Japonii.Sposób wedlug wynalazku, jego cechy i zalety opisano nizej i zilustrowano na zalaczonych ry¬ sunkach, na których fig. 1 przedstawia wykres optymalnej krzywej wartosci pH, fig. 2 przedsta¬ wia wykres optymalnej krzywej temperatury, fig. 3 przedstawia wykres trwalosci pH, a fig. 4 przed¬ stawia wykres termicznej trwalosci dekstranazy wytworzonej sposobem wedlug wynalazku.Ponizej opisano wlasciwosci taksonomiczne tego grzyba. Badanie mikroskopowe wykazalo, ze dro¬ bnoustrój ma wymiary 0,5—0,7X1,2—1,5 mikronów, ma ksztalt prostej, krótkiej laseczki bez rozgaie- 10 15 20 25 30 zien. Nie porusza sie, nie wytwarza zarodników i nie wykazuje metamorfozy. Powierzchnia kolonii jest okragla i wypukla, o wygladzie szklisto-wil- gotnym. Grzyb ma barwe zólta i wytwarza pig¬ ment o zabarwieniu zóltym.Badanie wzrostu wykazalo wzrost dobry na po¬ zywce bulionowej, bulionowo-agarowej i buliono- wo-glukozowo-agarowej; wzrost sredni na pozywce zelatynowej, cieklej pozywce peptonowej, pozywce ziemniaczanej. Na pozywce mlekowej wystepuje wzrost tworzacy najpierw kwas, a nastepnie za¬ sade. Wlasciwosci fizjologiczne sa nastepujace: (1) warunki rozwoju: pH 7,0^8,0, temperatura 25°C, warunki aero- bowe (2) warunki wzrostu: pH 5,5—10,0, temperatura 5^-37°C, warunki aerobowe (3) barwienie wedlug Grama — dodatnie (4) kwasoodpornosc — ujemna (5) próba na czerwien metylowa — ujemna (6) reakcja Voges Proskauera — ujemna (7) wytwarzanie indolu — ujemne (8) wytwarzanie siarkowodoru — ujemne (9) wytwarzanie amoniaku — ujemne (10) redukcja azotanowa — dodatnia (11) wytwarzanie katalazy — dodatnie (12) wytwarzanie oksydazy — ujemne (13) skraplanie zelatyny i kazeiny — dodatnie (14) hydroliza skrobi — dodatnia 82 808'¦.-.-_" :,'¦¦ : : 3 , ^ ¦ - ; (15) wykorzystanie kwasu cytrynowego — ujemne (16) koagulacja mleka — ujemna (17) wykorzystanie soli amoniowej i mocznika — dodatnie.Wykorzystanie zródel wegla jest nastepujace: arabinoza ksyloza glikoza fruktoza laktoza sacharoza rafinoza mannit gliceryna skrobia — ujemne — dodatnie —¦ dodatnie —- dodatnie — ujemne — dodatnie — dodatnie — dodatnie — dodatnie — dodatnie Biorac pod uwage wyzej podane wlasciwosci 'taksonomiczne mikroorganizmu zbadano go w kla¬ syfikacji wedlug Manual of Determinative Bacte- nology (wyd. II) Bergeya. Ze wzgledu na to, ze ustrój jest Gram-dodatni, ma ksztalt krótkiej la¬ seczki pozbawionej rozgalezien i nie zmieniajacej swej struktury oraz nie wytwarzajacej zarodników, jak równiez ze wzgledu na to, ze ustrój ten roz¬ wija sie korzystnie na powietrzu, nie fermentuje w glukozie w warunkach aerobowych, natomiast fermentuje w warunkach aerobowych w laktozie, zalicza sie go do rodzaju Brevibacterium. Ponad¬ to, ze wzgledu na taksonomiczne wlasciwosci takie jak objetosc, statecznosc, wytwarzanie zóltawo-po- maranczowego pigmentu, dodatnia redukcje azota¬ nowa, skraplanie zelatyny i niezdolnosc do wy¬ twarzania indolu, ustrój ten jest bardzo podobny do Brevibacterium fuscum.Porównanie nowego Brevibacterium z typowym ustrojem Brevibacterium fuscum IFO 12127 otrzy¬ manym z Instytutu Fermentacyjnego Osaka Japo¬ nia wykazalo, ze ustrój wytwarzajacy dekstranaze nalezy do rodzaju Brevibacterium fuscum nie wy¬ twarzajacego dekstranazy, nie powodujacego wy¬ twarzania sie kwasu i Gram-ujemnego.Jednakze obydwa szczepy maja podobne inne wlasciwosci taksonomiczne, takie jak charaktery¬ styki w wielu srodowiskach i wlasciwosci fizjolo¬ giczne. Dlatego szczepy te nie moga byc róznymi gatunkami Brevibacterium fuscum. Zgodnie z wla¬ sciwosciami tego szczepu do wytwarzania dekstra¬ nazy, szczep ten nazwano Brewbacterium fuscum var. dextranlyticum i zlozono w Instytucie Prze¬ myslu Mikrobiologicznego i Technologii, Dzialu Nauk Przemyslowych i Technologii Ministerstwa Handlu i Przemyslu Japonii pod numerem FERM-P513.Sposób wedlug wynalazku polega na tym, ze dekstranazotwórczy ustrój Brevibacterium fuscum var. dextranlyticum hoduje sie na odpowiedniej pozywce, po czym wyosabnia wytworzona dekstra¬ naze.Jako odzywcze zródlo wegla stosuje sie jeden ze zwiazków zawierajacych przyswajalny wegiel, taki jak glikoza, sacharoza, laktoza, maltoza, rozpu¬ szczalna skrobia, skrobia normalna, dekstryna, dekstran, melasa i/lub tym podobne. W przypadku stosowania dekstranu otrzymuje sie 10-krotnie wieksza ilosc dekstranazy niz w przypadku stoso¬ wania innego zródla wegla. Jako zródlo azotu sto- 4 suje sie na przyklad soje, odtluszczona maaczke so¬ jowa, maczke z nasion bawelny, - pepton, ekstrakt miesny, ekstrakt drozdzowy, sproszkowane suszone drozdze, roztwór namokowy kukurydzy, hydrolizat 5 kazeiny, mocznik, sól amoniowa Hub tym podobne.Do pozywki dodaje sie nieorganiczne sole kwasu fosforowego, na przyklad sól magnezowa, wapnio¬ wa lub potasowa, a takze rózne substancje orga¬ niczne i nieorganiczne, potrzebne do rozwoju bak- 10 terii oraz do wytworzenia pozadanego, enzymu.W procesie prowadzonym sposobem wedlug wy¬ nalazku stosuje sie pozywke stala lub ciekla, przy czym • do celów przemyslowych korzystnie stosuje sie pozywke ciekla z napowietrzaniem, podpo- 15 wierzchniowym.Hodowle prowadzi sie w ciagu 2—4 dni w tem¬ peraturze 20^3'0°C, korzystnie 24—27°C. Proces ten przerywa sie w momencie, gdy wydajnosc wytwa¬ rzanej dekstranazy osiagnie wartosc maksymalna. 20 Mimo obnizenia wartosci pH, w momencie rozpo¬ czynania hodowli, nie podwyzsza sie ja, natomiast korzystnie utrzymuje sie wartosc pH okolo 8—9.Jezeli wydajnosc produktu osiagnie wartosc ma¬ ksymalna, wyosabnia sie dekstranaze z roztworu 25 fermentacyjnego metoda stosowana do wyosabnia- nia enzymów. Rafinacje produktu prowadzi sie ty¬ powa metoda, na przyklad przez filtrowanie pod zmniejszonym cisnieniem, odwirowanie itp. Otrzy¬ many filtrat lub ekstrakt kondensuje sie lub po- 30 woduje wytracenie produktu przez dodanie rozpu¬ szczalnej soli, na przyklad soli kuchennej lub siar¬ czynu amonowego, lub przez dodanie dajacego sie mieszac z woda rozpuszczalnika organicznego, ta¬ kiego jak metanol, etanol, aceton itp., a nastepnie 35 rozpuszcza sie otrzymany zwiazek w wodzie i usu¬ wa z roztworu domieszki niskoczasteczkowe droga dializy, chromatografii adsorpcyjnej, chromato¬ grafii jonowymiennej albo filtrowania przez zel.Roztwór enzymu poddaje sie nastepnie dalszej 40 obróbce, na przyklad filtrowaniu pod zmniejszo¬ nym cisnieniem, liofilizowaniu itp., otrzymujac su¬ rowa dekstranaze.Otrzymana w postaci stalej lub w roztworze su¬ rowa dekstranaze rafinuje sie przez dodanie adsor- 45 bentu i/lub srodka albo srodków do filtracji zelo¬ wej, stosowanych zwykle do rafinacji protein, en¬ zymów itp., na przyklad do wodnego roztworu surowej dekstranazy dodaje sie srodek filtracyjny, taki jak „Biogel" w celu wyosobnienia z roztworu 50 oczyszczonej dekstranazy albo dodaje sie don ad¬ sorbent, taki jak C.N. — celuloza lub D.E.A.E. — celuloza i oddzielnie eluuje stosownie do gradientu stezenia, a nastepnie dializuje.Wytworzona i wyosobniona surowa dekstranaze 55 rafinuje sie takimi metodami jak rozpuszczanie, adsorbowanie, eluowanie, filtrowanie zelowe, plu¬ kanie, dializowanie, liofilizowanie, adsorpcja jono¬ wymienna, kondensowanie itp., przy czym metode te stosuje sie osobno lub lacznie. 60 Sposobem wedlug wynalazku wytwarza sie rafi¬ nowana dekstranaze o nastepujacych wlasciwo¬ sciach fizycznych i chemicznych. Analiza elemen¬ tarna wykazala, ze otrzymana dekstranaza zawie¬ ra, w procentach wagowych, 35,9°/o C, 4,61 a/o H «5 i 6,70% N. Ciezar czasteczkowy, wyznaczony me- i$2*0$ lada chromatografii kolumnowej z zastosowaniem Biogel P-30, wynosi okolo 43.000.Dekstranaza rozklada wiazanie «-il,6-glikozydowe dekstranu tworzac izomaltoze. Fakt ten stwierdzo¬ no po dokladnym zmieszaniu dekstranazy z dek¬ stranem i ciaglym mierzeniu lepkosci mieszaniny.Krzywa lekkosci wykazuje nagly spadek w miare uplywu czasu* przy czym równoczesnie mierzona wielkosc tworzenia sie cukru wykazuje tendencje liniowa.Enzym rozklada dekstran, lecz nie oddzialywuje na polisacharydy, takie jak dekstryna, o wiazaniu a-l ,4. Optymalna wartosc pH wynosi 8,0.Ponizsze próby przedstawiaja dzialanie dekstra¬ nazy otrzymanej sposobem wedlug wynalazku*1 Próba I. Próba ta obrazuje dzialanie scukrzajace.Sproszkowany enzym o mocy 30 jednostek/mg roz¬ puszcza sie w wodzie destylowanej w stezeniu 1 mg/ml, po czym do wytworzonego roztworu do¬ daje sie 1 ml buforowego roztworu 0,05 m kwasu octowego o wartosci pH 5,0, buforowego roztworu kwasu fosforowego o wartosci pH od 6,0-—7,5, bu¬ forowego roztworu tri o wartosci pH od 7,0—8,5 lub kwasu ortoborowego o wartosci pH od 0,0'—10,0 z zawartoscia 1% wagowego dekstranu i w ciagu 20 minut te mieszanine utrzymuje sie w tempera¬ turze 37°C. W celu oznaczenia aktywnosci doko¬ nuje sie pomiaru wytworzonego cukru metoda DNS.Próba II. Próba ta przedstawia dzialanie skrap¬ lajace 5 ml 0,05 m roztworu buforowego, otrzyma¬ nego w próbie I, zawierajacego 1% wagowy dek¬ stranu. Roztwór ten wprowadza sie do lepkoscio¬ mierza Ostwalda, przy czym czas kropienia wody destylowanej w temperaturze 37°C wynosi 8,3 se¬ kund i podgrzewa do temperatury 37°C. Nastepnie dodaje sie 0,3 ml roztworu sproszkowanego enzy¬ mu, o mocy 30 jednostek/mg, w wodzie destylowa¬ nej i o stezeniu 4 mg/ml. Czas kropienia mierzy sie co minute.Do obliczenia mocy stosuje sie wzór Sp = t —10 to w którym t oznacza czas kropienia, a t© oznacza czas kropienia rozpuszczalnika w tych samych wa¬ runkach.Wykres odwrotnosci 1/SP w funkcji czasu ma przebieg liniowy. Moc wyznacza sie na podstawie wprost proporcjonalnego stosunku nachylenia krzy¬ wej liniowej do stopnia aktywnosci dekstranazy.Rezultaty przedstawiono na fig. 1, z którego wy¬ nika, ze optymalna wartosc pH dla enzymatycznej aktywnosci dekstranazy wynosi 8,0.Próba III. Próba ta obrazuje optymalna tempe¬ rature dzialania enzymu. Do 0,5 ml roztworu spro¬ szkowanego enzymu o mocy 30 jednostek/mg w 0,05 m buforowego roztworu tri o pH 7,5 i stezeniu 1 mg/ml dodaje sie 1 ml roztworu buforowego za¬ wierajacego 1% dekstranu i poddaje reakcji w cia¬ gu 20 minut w temperaturze 37°C, 45°C, 53°C i 60°C, po czym metoda DNS bada sie moc odpo¬ wiednich porcji otrzymanego cukru redukujacego.Z rezultatów przedstawionych na fig. 2 wynika* i3 optymalna temperatura dla enzymatycznej akty¬ wnosci dekstranazy wobec dekstranu wynosi oko¬ lo 53°C. 5 Próba IV. Próba ta przedstawia stabilizowany zakres wartosci pH enzymu. Sproszkowany enzym 0 mocy 30 jednostek/mg rozpuszcza sie destylowanej w stezeniu 1 mg/ml, po czym dodaje sie do tego roztworu taka sama ilosc toforowego io roztworu 0,05 m kwasu octowego o wartosci pH 5,0, kwasu fosforowego o wartosci pH od 6,0—7,5, bu¬ forowego roztworu tri o wartosci pH od 7,0^8,5 lub kwasu ortoborowego o wartosci pH od 9,0—ilO^O i utrzymuje sie mieszanine reakcyjna w ciagu 24 15 godzin w temperaturze 37°C, a nastepnie doprowa¬ dza wartosó pH do okolo 7,5 przez dodanie NaOH lub HC1. Po rozcienczeniu mieszaniny do objetosci 5-krotnej przez dodanie 0,05 m buforowego roz¬ tworu tri, oznacza sie aktywnosc roztworu meto- 20 daDNS. . ; . . Z wykresu przedstawionego na fig. 3 wynika, ze aktywnosc roztworu wynosi ponad 80% przy war¬ tosci pH 4,3^11,0 i 100% przy wartosci pH 7—Q.Próba V. Próba ta przedstawia trwalosc cieplna 25 dekstranazy. Sproszkowany enzym o mocy 30 jed¬ nostek/mg rozpuszcza sie w wodzie destylowanej w stezeniu 1 mg/ml. Po czym 0,5 ml tego roztworu utrzymuje sie w stalej, termostatycznej regulowa¬ nej temperaturze wynoszacej 40°C, 50°C, 60°C, 30 63°C, 65°C, 68°C i 70°C, a nastepnie roztwór na¬ tychmiast chlodzi sie i dodaje don 1 ml 0,05 m bu¬ forowego roztworu tri o wartosci pH 7,5 zawiera¬ jacego 1% wagowy dekstranu. W ciagu 20 minut utrzymuje sie mieszanine reakcyjna w tempera- 35 turze 37°C, po czym dokonuje sie pomiarów akty¬ wnosci metoda DNS.Z przedstawionych na fig. 4 rezultatów wynika, ze po uplywie 20 minut w temperaturze 70°C na¬ stepuje utrata trwalosci cieplnej dekstranazy, na- 40 tomiast w temperaturze nizszej od 57°C trwalosc ta zostaje zachowana. Obecnosc jonów Zn,. Hg i/lub Cu nie wywiera szkodliwego wplywu na enzym.Próba VI. Próba ta dotyczy pomiaru mocy enzy¬ mu. Do 0,5 ml roztworu enzymu dodaje sie 1 ml 45 0,05 m buforowego roztworu tri o pH 7,5, zawiera¬ jacego 1% wagowy dekstranu, o ciezarze czastecz¬ kowym od 5.OO0.0O0—'20.000.000 i utrzymuje sie mieszanine reakcyjna w ciagu 20 minut w tempe¬ raturze 37°C, a nastepnie dokonuje sie pomiarów 50 aktywnosci wytworzonego cukru metoda DNS. Za jednostke mocy U utrzymuje sie ilosc cukru odpo¬ wiadajaca 1 mg maltozy, wytworzona w ciagu 1 godziny.Wytworzona sposobem wedlug wynalazku dek- 55 stranaza wykazuje optymalna wartosc pH w stre¬ fie slabo alkalicznej, a mianowicie 8,0, podczas gdy optymalna wartosc pH dekstranazy wytwarzanej znanymi sposobami miesci sie w strefie kwasowej.Wlasciwosc ta umozliwia stosowanie dekstranazy 60 wytworzonej sposobem wedlug wynalazku w den- tystyce, zwlaszcza w celu zapobiegania próchnicy zebów. Poza tym dekstranaza wytworzona sposo¬ bem wedlug wynalazku ma zastosowanie przy wy¬ twarzaniu substytutu plazmy. 65 Sposób wytwarzania dekstranazy wedlug wyna-$2808 Uzku wyjasniono szczególowo w ponizszych przy¬ kladach.Ptz y kl a d I. W kolbie Sakaguchi umieszcza sie 50 ml cieklej pozywki o wartosci pH 8,5 zawiera¬ jacej 1% wagowy dekstranu, 1% wagowy polipep- tonu, 0,05% wagowego ekstraktu drozdzowego, 0,l°/t wagowego KH2P04, 0,1% wagowego K2HP04, 0,1% wagowego HgS04 • 7H20, 0,005% wagowego MnS04 • 6H20 i 0,002% wagowego CaCl2 i otrzy¬ mana pozywke sterylizuje sie w ciagu 20 minut ogrzewajac pod para w temperaturze 120°C. Do pozywki tej dodaje sie nastepnie w sterylnych wa¬ runkach 3°/o podobnej cieklej pozywki, w której w ciagu 20 godzin hodowano ustrój Brevibacterium fuscum var. dextranlyticum w temperaturze 30°C, po czym hodowle prowadzi sie w ciagu dalszych 60 godzin w temperaturze 26°C we wstrzasarce mechanicznej drgajacej z predkoscia 130 drgan/ /minute i przy amplitudzie drgan 7 cm. 10 przygotowanych w ten sposób pozywek mie¬ sza sie i odwirowuje przy 3000 G, otrzymujac 450 ml filtratu, który wykazuje moc dekstranazy wy¬ noszaca 200 jednostek/ml.Filtrat ten kondensuje sie nastepnie do 1/5 obje¬ tosci pod obnizonym cisnieniem w temperaturze 40°C, po czym dodaje sie aceton w ilosci równej polowie ilosci otrzymanego kondensatu i odwiro¬ wuje mieszanine. Po dodaniu 1,5-krotnej ilosci ace¬ tonu odwirowuje sie dalej górna faze mieszaniny o zawartosci acetonu 33—66%, otrzymujac produkt w postaci osadu. Po odwodnieniu produktu aceto¬ nem i wysuszeniu, otrzymuje sie 2,40 g sproszko¬ wanego enzymu z wydajnoscia 75% wydajnosci tecretycznej. Moc otrzymanej dekstranazy wynosi 30 jednostek/mg.Przyklad II. Postepujac w sposób analogicz¬ ny do opisanego w przykladzie I z ta róznica, ze stosuje sie pozywke zawierajaca polowe dekstranu otrzymanego w przykladzie I i po dodaniu 0,5% wagowego skrobi, prowadzi sie hodowle w sposób analogiczny do opisanego w przykladzie I. Otrzy¬ muje sie produkt, w którym moc dekstranazy wy¬ nosi 140 jednostek/mg.Przyklad III. Postepujac w sposób analogicz¬ ny do opisanego w przykladzie I z ta róznica, ze do pozywki dodaje sie 1% wagowy osadu skrobi ziemniaczanej, otrzymuje sie produkt, w którym moc dekstranazy wynosi 250 jednostek/ml.Przyklad IV. W naczyniu fermentacyjnym umieszcza sie 20 litrów cieklej pozywki o wartosci pH 8,5 zawierajacej 1% wagowy dekstranu, 1% wagowy osadu skrobi ziemniaczanej, 1% wagowy polipeptonu, 0,05% wagowego ekstraktu . drozdzo¬ wego, 0,1% wagowego KH2P04, 0,1% wagowego K2HP04, 0,1% wagowego K2HP04, 0,1% wagowe¬ go MgS04 • 7H20, 0,005% wagowego MnS04 • 6H20 i 0,^02% wagowego CaCl2 i otrzymana pozywke sterylizuje sie w ciagu 30 minut w temperaturze 5 1209C. Nastepnie do pozywki tej dodaje sie w wa¬ runkach sterylnych 1 litr pozywki, w której w ciagu 20 godzin w temperaturze 26°C hodowano ustrój Brevibacterium fuscum var. dextranlyticunu Po czym mieszanine miesza sie w ciagu 60 godzin 10 w temperaturze 260°C we wstrzasarce o predkosci 300 obrotów na minute, napowietrzajac ja z pred¬ koscia 20 litrów na minute. Po odwirowaniu mie¬ szaniny w wirówce typu Sherples, otrzymuje sie 18,2 litra przesaczu, w którym moc dekstranazy 15 wynosi 220 jednostek/ml.Otrzymany przesacz kondensuje sie pod obnizo¬ nym cisnieniem, odparowujac w ciagu 1 godziny 10 litrów: Do otrzymanych 3,6 litrów kondensatu dodaje sie aceton i z fazy zawierajacej od 33^-66% 20 acetonu wyosabnia sie produkt w postaci osadu.Po odwodnieniu produktu acetonem i wysuszeniu, otrzymuje sie 96 g sproszkowanej dekstranazy o mocy 32 jednostek/mg.Przyklad V. Do 80 g Biogel P-30 dodaje sie 23 wody destylowanej i wprowadza do kolumny 0 srednicy wewnetrznej 3,2 cm.Do kolumny tej wlewa sie nastepnie wodny roz¬ twór 1 g enzymu wytworzonego w przykladzie 1 w 10 ml wody destylowanej i przeprowadza 30 typowa chromatografie kolumnowa, frakcjonujac odciek na porcje po 5 ml. Pomiary mocy wykazuja obecnosc dekstranazy we frakcjach o numerach 33—42. Liofilizujac enzym wyosobniony z tych frakcji, otrzymuje sie 63 mg sproszkowanej dek- 35 stranazy o mocy 455 jednostek/mg, przy czym wy¬ dajnosc wynosi 95,5% wydajnosci teoretycznej.P r z y kl a d VI. Postepujac w sposób analogicz¬ ny do opisanego w przykladzie I, z ta róznica, ze zamiast dekstranu stosuje sie skrobie ziemniacza- 40 na, otrzymuje sie produkt, w którym moc dekstra¬ nazy wynosi 11 jednostek/ml.P r z y kl a d VII. Postepujac w sposób analo¬ giczny do opisanego w przykladzie I, z ta róznica, ze zamiast dekstranu stosuje sie maltoze, otrzy- 45 muje sie produkt, w którym moc dekstranazy wy¬ nosi 10 jednostek/ml. 50 PL PL PL
Claims (3)
1. Zastrzezenie patentowe Sposób wytwarzania nowej dekstranazy, zna¬ mienny tym, ze hoduje sie ustrój rodzaju Brevi- bacterium fuscum var. dextranlyticum na pozywce, po czym z pozywki wyosabnia sie dekstranaze. j82808 FIG. % nIOO d § 80 ~tr al 60 TJ :« 40 O CI 1. - 20 S 0 a"' 5 Optimum / / / / / / / / / / // // // // // Sp / S 6 7~ nH PH /^V 8~ k% \\ ~9~ h ~~io .... - FIG.
2. Optimum temperatury KI 100 80 a CO |5 60 •§ 40 I- 20 35 40 45 50 55 60 °C82808 o FIG.4 100 ¦« 80 Trwalosc termiczna •CJ O C 60 40 20 O1 «- 40 50 60 °C 70 FIG.
3. Trwatosc pH Druk. Nar. Z.-3, zam. 629/76 Cena 10 zl PL PL PL
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1505770 | 1970-02-20 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL82808B1 true PL82808B1 (pl) | 1975-10-31 |
Family
ID=11878194
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL1971146385A PL82808B1 (pl) | 1970-02-20 | 1971-02-22 |
Country Status (16)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US3737383A (pl) |
| AT (1) | AT299859B (pl) |
| BE (1) | BE763243A (pl) |
| CA (1) | CA943483A (pl) |
| CH (1) | CH559775A5 (pl) |
| CS (1) | CS155967B2 (pl) |
| DE (1) | DE2107461A1 (pl) |
| DK (1) | DK127792B (pl) |
| FR (1) | FR2078752A5 (pl) |
| GB (1) | GB1298427A (pl) |
| HU (1) | HU164918B (pl) |
| NL (1) | NL7102246A (pl) |
| PL (1) | PL82808B1 (pl) |
| SE (1) | SE371840B (pl) |
| SU (1) | SU388408A3 (pl) |
| ZA (1) | ZA711043B (pl) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU5830373A (en) * | 1972-07-28 | 1975-01-23 | Kenneth Trevor Glasziou | Biological products |
| US3981989A (en) * | 1973-11-26 | 1976-09-21 | The Lion Dentifrice Co., Ltd. | Oral preparation |
| US3991177A (en) * | 1973-11-27 | 1976-11-09 | Colgate-Palmolive Company | Oral compositions containing dextranase |
| US6492572B2 (en) | 1995-08-29 | 2002-12-10 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Method for remediating contaminated soils |
-
1971
- 1971-02-17 DE DE19712107461 patent/DE2107461A1/de active Pending
- 1971-02-18 AT AT142071A patent/AT299859B/de not_active IP Right Cessation
- 1971-02-18 ZA ZA711043A patent/ZA711043B/xx unknown
- 1971-02-18 FR FR7105505A patent/FR2078752A5/fr not_active Expired
- 1971-02-18 SE SE7102074A patent/SE371840B/xx unknown
- 1971-02-18 CH CH238871A patent/CH559775A5/xx not_active IP Right Cessation
- 1971-02-19 HU HUKA1283A patent/HU164918B/hu unknown
- 1971-02-19 CA CA105,998A patent/CA943483A/en not_active Expired
- 1971-02-19 CS CS128471A patent/CS155967B2/cs unknown
- 1971-02-19 DK DK75971AA patent/DK127792B/da unknown
- 1971-02-19 NL NL7102246A patent/NL7102246A/xx unknown
- 1971-02-19 SU SU1625616A patent/SU388408A3/ru active
- 1971-02-22 US US00117623A patent/US3737383A/en not_active Expired - Lifetime
- 1971-02-22 BE BE763243A patent/BE763243A/xx unknown
- 1971-02-22 PL PL1971146385A patent/PL82808B1/pl unknown
- 1971-04-19 GB GB22943/71A patent/GB1298427A/en not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| BE763243A (fr) | 1971-07-16 |
| DK127792B (da) | 1974-01-07 |
| CA943483A (en) | 1974-03-12 |
| HU164918B (pl) | 1974-05-28 |
| CS155967B2 (pl) | 1974-06-24 |
| CH559775A5 (pl) | 1975-03-14 |
| FR2078752A5 (pl) | 1971-11-05 |
| GB1298427A (en) | 1972-12-06 |
| AT299859B (de) | 1972-07-10 |
| DE2107461A1 (de) | 1971-09-02 |
| NL7102246A (pl) | 1971-08-24 |
| SE371840B (pl) | 1974-12-02 |
| ZA711043B (en) | 1971-10-27 |
| US3737383A (en) | 1973-06-05 |
| SU388408A3 (pl) | 1973-06-22 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US3806420A (en) | Process for the preparation of creatinine amidohydrolase | |
| JPS6320520B2 (pl) | ||
| Tanaka et al. | Enzymic formation of difructose anhydride IV from bacterial levan | |
| EP0201039B1 (en) | L-aminoacylases | |
| PL82808B1 (pl) | ||
| Yoshida et al. | Production and application of maltose phosphorylase and trehalose phosphorylase by a strain of Plesiomonas | |
| JP5314955B2 (ja) | 新規微生物、イヌリナーゼ、イヌリン分解剤、イヌロオリゴ糖の製造方法及びイヌリナーゼの製造方法 | |
| JPH04169190A (ja) | トレハルロースおよびパラチノースの製造法 | |
| JP3635133B2 (ja) | トレハロースホスホリラーゼおよびその調製法 | |
| US5234828A (en) | Process for producing novel heat-resistant β-galactosyltransferase | |
| US5153128A (en) | Heat-resistant β-galactosyltransferase, its production process and its use | |
| BE1007064A3 (fr) | Enzyme de levane saccharase, procede pour sa preparation, micro-organismes qui le produisent et compositions le contenant. | |
| JPWO1990010010A1 (ja) | 新規物質トレハロスタチンおよびその製造方法 | |
| JPH02257888A (ja) | 微生物によるパラチノース、トレハルロースの製造方法 | |
| JP2970932B2 (ja) | 新規耐熱性β―ガラクトシル基転移酵素、その製造法及びその用途 | |
| JPH03160995A (ja) | トレハルロースの製造法 | |
| US5593869A (en) | Method of manufacturing sugars by trehalase | |
| CA1156570A (en) | Glucose-6-phosphate dehydrogenase and process for preparation thereof | |
| JPH04200386A (ja) | β―フラクトフラノシダーゼ及びその製造方法 | |
| JPH03277292A (ja) | 光学活性な2―ヒドロキシカルボン酸の製造法 | |
| JP3529173B2 (ja) | 新規な寒天分解酵素及びそれを用いるネオアガロビオースの製造法 | |
| JPS58212783A (ja) | 発酵法によるホスホリパ−ゼaの製造法 | |
| JPS61236790A (ja) | ガラクトオリゴ糖の製造法 | |
| JPS6098982A (ja) | ポリアミン測定用酵素の製造法 | |
| KR840000893B1 (ko) | 모라노린 유도체의 제조방법 |