PL82808B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL82808B1
PL82808B1 PL1971146385A PL14638571A PL82808B1 PL 82808 B1 PL82808 B1 PL 82808B1 PL 1971146385 A PL1971146385 A PL 1971146385A PL 14638571 A PL14638571 A PL 14638571A PL 82808 B1 PL82808 B1 PL 82808B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
dextranase
weight
solution
value
enzyme
Prior art date
Application number
PL1971146385A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL82808B1 publication Critical patent/PL82808B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2451Glucanases acting on alpha-1,6-glucosidic bonds
    • C12N9/2454Dextranase (3.2.1.11)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/815Enzyme separation or purification by sorption
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/816Enzyme separation or purification by solubility
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/84Brevibacterium

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Sposób wytwarzania nowej dekstranazy Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia nowej dekstranazy, to jest enzymu zdolnego do rozkladania wiazania a-l,6- w dekstranie.Stwierdzono, ze wszystkie z wytworzonych znany¬ mi sposobami dekstrynaz wykazuja optymalna wartosc pH w strefie kwasowej, a ich trwalosc nie jest zadowalajaca.Celem wynalazku jest opracowanie sposobu wy¬ twarzania nowej dekstranazy stosowanej zwlaszcza w dentystyce, która by wykazywala optymalna wartosc pH w strefie obojetnej lub slabo alkali¬ cznej oraz wieksza trwalosc.Nieoczekiwanie stwierdzono, ze dekstranaze o optymalnej wartosci pH w strefie slabo alka¬ licznej otrzymuje sie na drodze hodowli Brevibac- terium fuscum var. dextranlyticum. Drobnoustrój ten otrzymano z gleby w poblizu Kakegawa-mura, Shizuoka-ken w Japonii.Sposób wedlug wynalazku, jego cechy i zalety opisano nizej i zilustrowano na zalaczonych ry¬ sunkach, na których fig. 1 przedstawia wykres optymalnej krzywej wartosci pH, fig. 2 przedsta¬ wia wykres optymalnej krzywej temperatury, fig. 3 przedstawia wykres trwalosci pH, a fig. 4 przed¬ stawia wykres termicznej trwalosci dekstranazy wytworzonej sposobem wedlug wynalazku.Ponizej opisano wlasciwosci taksonomiczne tego grzyba. Badanie mikroskopowe wykazalo, ze dro¬ bnoustrój ma wymiary 0,5—0,7X1,2—1,5 mikronów, ma ksztalt prostej, krótkiej laseczki bez rozgaie- 10 15 20 25 30 zien. Nie porusza sie, nie wytwarza zarodników i nie wykazuje metamorfozy. Powierzchnia kolonii jest okragla i wypukla, o wygladzie szklisto-wil- gotnym. Grzyb ma barwe zólta i wytwarza pig¬ ment o zabarwieniu zóltym.Badanie wzrostu wykazalo wzrost dobry na po¬ zywce bulionowej, bulionowo-agarowej i buliono- wo-glukozowo-agarowej; wzrost sredni na pozywce zelatynowej, cieklej pozywce peptonowej, pozywce ziemniaczanej. Na pozywce mlekowej wystepuje wzrost tworzacy najpierw kwas, a nastepnie za¬ sade. Wlasciwosci fizjologiczne sa nastepujace: (1) warunki rozwoju: pH 7,0^8,0, temperatura 25°C, warunki aero- bowe (2) warunki wzrostu: pH 5,5—10,0, temperatura 5^-37°C, warunki aerobowe (3) barwienie wedlug Grama — dodatnie (4) kwasoodpornosc — ujemna (5) próba na czerwien metylowa — ujemna (6) reakcja Voges Proskauera — ujemna (7) wytwarzanie indolu — ujemne (8) wytwarzanie siarkowodoru — ujemne (9) wytwarzanie amoniaku — ujemne (10) redukcja azotanowa — dodatnia (11) wytwarzanie katalazy — dodatnie (12) wytwarzanie oksydazy — ujemne (13) skraplanie zelatyny i kazeiny — dodatnie (14) hydroliza skrobi — dodatnia 82 808'¦.-.-_" :,'¦¦ : : 3 , ^ ¦ - ; (15) wykorzystanie kwasu cytrynowego — ujemne (16) koagulacja mleka — ujemna (17) wykorzystanie soli amoniowej i mocznika — dodatnie.Wykorzystanie zródel wegla jest nastepujace: arabinoza ksyloza glikoza fruktoza laktoza sacharoza rafinoza mannit gliceryna skrobia — ujemne — dodatnie —¦ dodatnie —- dodatnie — ujemne — dodatnie — dodatnie — dodatnie — dodatnie — dodatnie Biorac pod uwage wyzej podane wlasciwosci 'taksonomiczne mikroorganizmu zbadano go w kla¬ syfikacji wedlug Manual of Determinative Bacte- nology (wyd. II) Bergeya. Ze wzgledu na to, ze ustrój jest Gram-dodatni, ma ksztalt krótkiej la¬ seczki pozbawionej rozgalezien i nie zmieniajacej swej struktury oraz nie wytwarzajacej zarodników, jak równiez ze wzgledu na to, ze ustrój ten roz¬ wija sie korzystnie na powietrzu, nie fermentuje w glukozie w warunkach aerobowych, natomiast fermentuje w warunkach aerobowych w laktozie, zalicza sie go do rodzaju Brevibacterium. Ponad¬ to, ze wzgledu na taksonomiczne wlasciwosci takie jak objetosc, statecznosc, wytwarzanie zóltawo-po- maranczowego pigmentu, dodatnia redukcje azota¬ nowa, skraplanie zelatyny i niezdolnosc do wy¬ twarzania indolu, ustrój ten jest bardzo podobny do Brevibacterium fuscum.Porównanie nowego Brevibacterium z typowym ustrojem Brevibacterium fuscum IFO 12127 otrzy¬ manym z Instytutu Fermentacyjnego Osaka Japo¬ nia wykazalo, ze ustrój wytwarzajacy dekstranaze nalezy do rodzaju Brevibacterium fuscum nie wy¬ twarzajacego dekstranazy, nie powodujacego wy¬ twarzania sie kwasu i Gram-ujemnego.Jednakze obydwa szczepy maja podobne inne wlasciwosci taksonomiczne, takie jak charaktery¬ styki w wielu srodowiskach i wlasciwosci fizjolo¬ giczne. Dlatego szczepy te nie moga byc róznymi gatunkami Brevibacterium fuscum. Zgodnie z wla¬ sciwosciami tego szczepu do wytwarzania dekstra¬ nazy, szczep ten nazwano Brewbacterium fuscum var. dextranlyticum i zlozono w Instytucie Prze¬ myslu Mikrobiologicznego i Technologii, Dzialu Nauk Przemyslowych i Technologii Ministerstwa Handlu i Przemyslu Japonii pod numerem FERM-P513.Sposób wedlug wynalazku polega na tym, ze dekstranazotwórczy ustrój Brevibacterium fuscum var. dextranlyticum hoduje sie na odpowiedniej pozywce, po czym wyosabnia wytworzona dekstra¬ naze.Jako odzywcze zródlo wegla stosuje sie jeden ze zwiazków zawierajacych przyswajalny wegiel, taki jak glikoza, sacharoza, laktoza, maltoza, rozpu¬ szczalna skrobia, skrobia normalna, dekstryna, dekstran, melasa i/lub tym podobne. W przypadku stosowania dekstranu otrzymuje sie 10-krotnie wieksza ilosc dekstranazy niz w przypadku stoso¬ wania innego zródla wegla. Jako zródlo azotu sto- 4 suje sie na przyklad soje, odtluszczona maaczke so¬ jowa, maczke z nasion bawelny, - pepton, ekstrakt miesny, ekstrakt drozdzowy, sproszkowane suszone drozdze, roztwór namokowy kukurydzy, hydrolizat 5 kazeiny, mocznik, sól amoniowa Hub tym podobne.Do pozywki dodaje sie nieorganiczne sole kwasu fosforowego, na przyklad sól magnezowa, wapnio¬ wa lub potasowa, a takze rózne substancje orga¬ niczne i nieorganiczne, potrzebne do rozwoju bak- 10 terii oraz do wytworzenia pozadanego, enzymu.W procesie prowadzonym sposobem wedlug wy¬ nalazku stosuje sie pozywke stala lub ciekla, przy czym • do celów przemyslowych korzystnie stosuje sie pozywke ciekla z napowietrzaniem, podpo- 15 wierzchniowym.Hodowle prowadzi sie w ciagu 2—4 dni w tem¬ peraturze 20^3'0°C, korzystnie 24—27°C. Proces ten przerywa sie w momencie, gdy wydajnosc wytwa¬ rzanej dekstranazy osiagnie wartosc maksymalna. 20 Mimo obnizenia wartosci pH, w momencie rozpo¬ czynania hodowli, nie podwyzsza sie ja, natomiast korzystnie utrzymuje sie wartosc pH okolo 8—9.Jezeli wydajnosc produktu osiagnie wartosc ma¬ ksymalna, wyosabnia sie dekstranaze z roztworu 25 fermentacyjnego metoda stosowana do wyosabnia- nia enzymów. Rafinacje produktu prowadzi sie ty¬ powa metoda, na przyklad przez filtrowanie pod zmniejszonym cisnieniem, odwirowanie itp. Otrzy¬ many filtrat lub ekstrakt kondensuje sie lub po- 30 woduje wytracenie produktu przez dodanie rozpu¬ szczalnej soli, na przyklad soli kuchennej lub siar¬ czynu amonowego, lub przez dodanie dajacego sie mieszac z woda rozpuszczalnika organicznego, ta¬ kiego jak metanol, etanol, aceton itp., a nastepnie 35 rozpuszcza sie otrzymany zwiazek w wodzie i usu¬ wa z roztworu domieszki niskoczasteczkowe droga dializy, chromatografii adsorpcyjnej, chromato¬ grafii jonowymiennej albo filtrowania przez zel.Roztwór enzymu poddaje sie nastepnie dalszej 40 obróbce, na przyklad filtrowaniu pod zmniejszo¬ nym cisnieniem, liofilizowaniu itp., otrzymujac su¬ rowa dekstranaze.Otrzymana w postaci stalej lub w roztworze su¬ rowa dekstranaze rafinuje sie przez dodanie adsor- 45 bentu i/lub srodka albo srodków do filtracji zelo¬ wej, stosowanych zwykle do rafinacji protein, en¬ zymów itp., na przyklad do wodnego roztworu surowej dekstranazy dodaje sie srodek filtracyjny, taki jak „Biogel" w celu wyosobnienia z roztworu 50 oczyszczonej dekstranazy albo dodaje sie don ad¬ sorbent, taki jak C.N. — celuloza lub D.E.A.E. — celuloza i oddzielnie eluuje stosownie do gradientu stezenia, a nastepnie dializuje.Wytworzona i wyosobniona surowa dekstranaze 55 rafinuje sie takimi metodami jak rozpuszczanie, adsorbowanie, eluowanie, filtrowanie zelowe, plu¬ kanie, dializowanie, liofilizowanie, adsorpcja jono¬ wymienna, kondensowanie itp., przy czym metode te stosuje sie osobno lub lacznie. 60 Sposobem wedlug wynalazku wytwarza sie rafi¬ nowana dekstranaze o nastepujacych wlasciwo¬ sciach fizycznych i chemicznych. Analiza elemen¬ tarna wykazala, ze otrzymana dekstranaza zawie¬ ra, w procentach wagowych, 35,9°/o C, 4,61 a/o H «5 i 6,70% N. Ciezar czasteczkowy, wyznaczony me- i$2*0$ lada chromatografii kolumnowej z zastosowaniem Biogel P-30, wynosi okolo 43.000.Dekstranaza rozklada wiazanie «-il,6-glikozydowe dekstranu tworzac izomaltoze. Fakt ten stwierdzo¬ no po dokladnym zmieszaniu dekstranazy z dek¬ stranem i ciaglym mierzeniu lepkosci mieszaniny.Krzywa lekkosci wykazuje nagly spadek w miare uplywu czasu* przy czym równoczesnie mierzona wielkosc tworzenia sie cukru wykazuje tendencje liniowa.Enzym rozklada dekstran, lecz nie oddzialywuje na polisacharydy, takie jak dekstryna, o wiazaniu a-l ,4. Optymalna wartosc pH wynosi 8,0.Ponizsze próby przedstawiaja dzialanie dekstra¬ nazy otrzymanej sposobem wedlug wynalazku*1 Próba I. Próba ta obrazuje dzialanie scukrzajace.Sproszkowany enzym o mocy 30 jednostek/mg roz¬ puszcza sie w wodzie destylowanej w stezeniu 1 mg/ml, po czym do wytworzonego roztworu do¬ daje sie 1 ml buforowego roztworu 0,05 m kwasu octowego o wartosci pH 5,0, buforowego roztworu kwasu fosforowego o wartosci pH od 6,0-—7,5, bu¬ forowego roztworu tri o wartosci pH od 7,0—8,5 lub kwasu ortoborowego o wartosci pH od 0,0'—10,0 z zawartoscia 1% wagowego dekstranu i w ciagu 20 minut te mieszanine utrzymuje sie w tempera¬ turze 37°C. W celu oznaczenia aktywnosci doko¬ nuje sie pomiaru wytworzonego cukru metoda DNS.Próba II. Próba ta przedstawia dzialanie skrap¬ lajace 5 ml 0,05 m roztworu buforowego, otrzyma¬ nego w próbie I, zawierajacego 1% wagowy dek¬ stranu. Roztwór ten wprowadza sie do lepkoscio¬ mierza Ostwalda, przy czym czas kropienia wody destylowanej w temperaturze 37°C wynosi 8,3 se¬ kund i podgrzewa do temperatury 37°C. Nastepnie dodaje sie 0,3 ml roztworu sproszkowanego enzy¬ mu, o mocy 30 jednostek/mg, w wodzie destylowa¬ nej i o stezeniu 4 mg/ml. Czas kropienia mierzy sie co minute.Do obliczenia mocy stosuje sie wzór Sp = t —10 to w którym t oznacza czas kropienia, a t© oznacza czas kropienia rozpuszczalnika w tych samych wa¬ runkach.Wykres odwrotnosci 1/SP w funkcji czasu ma przebieg liniowy. Moc wyznacza sie na podstawie wprost proporcjonalnego stosunku nachylenia krzy¬ wej liniowej do stopnia aktywnosci dekstranazy.Rezultaty przedstawiono na fig. 1, z którego wy¬ nika, ze optymalna wartosc pH dla enzymatycznej aktywnosci dekstranazy wynosi 8,0.Próba III. Próba ta obrazuje optymalna tempe¬ rature dzialania enzymu. Do 0,5 ml roztworu spro¬ szkowanego enzymu o mocy 30 jednostek/mg w 0,05 m buforowego roztworu tri o pH 7,5 i stezeniu 1 mg/ml dodaje sie 1 ml roztworu buforowego za¬ wierajacego 1% dekstranu i poddaje reakcji w cia¬ gu 20 minut w temperaturze 37°C, 45°C, 53°C i 60°C, po czym metoda DNS bada sie moc odpo¬ wiednich porcji otrzymanego cukru redukujacego.Z rezultatów przedstawionych na fig. 2 wynika* i3 optymalna temperatura dla enzymatycznej akty¬ wnosci dekstranazy wobec dekstranu wynosi oko¬ lo 53°C. 5 Próba IV. Próba ta przedstawia stabilizowany zakres wartosci pH enzymu. Sproszkowany enzym 0 mocy 30 jednostek/mg rozpuszcza sie destylowanej w stezeniu 1 mg/ml, po czym dodaje sie do tego roztworu taka sama ilosc toforowego io roztworu 0,05 m kwasu octowego o wartosci pH 5,0, kwasu fosforowego o wartosci pH od 6,0—7,5, bu¬ forowego roztworu tri o wartosci pH od 7,0^8,5 lub kwasu ortoborowego o wartosci pH od 9,0—ilO^O i utrzymuje sie mieszanine reakcyjna w ciagu 24 15 godzin w temperaturze 37°C, a nastepnie doprowa¬ dza wartosó pH do okolo 7,5 przez dodanie NaOH lub HC1. Po rozcienczeniu mieszaniny do objetosci 5-krotnej przez dodanie 0,05 m buforowego roz¬ tworu tri, oznacza sie aktywnosc roztworu meto- 20 daDNS. . ; . . Z wykresu przedstawionego na fig. 3 wynika, ze aktywnosc roztworu wynosi ponad 80% przy war¬ tosci pH 4,3^11,0 i 100% przy wartosci pH 7—Q.Próba V. Próba ta przedstawia trwalosc cieplna 25 dekstranazy. Sproszkowany enzym o mocy 30 jed¬ nostek/mg rozpuszcza sie w wodzie destylowanej w stezeniu 1 mg/ml. Po czym 0,5 ml tego roztworu utrzymuje sie w stalej, termostatycznej regulowa¬ nej temperaturze wynoszacej 40°C, 50°C, 60°C, 30 63°C, 65°C, 68°C i 70°C, a nastepnie roztwór na¬ tychmiast chlodzi sie i dodaje don 1 ml 0,05 m bu¬ forowego roztworu tri o wartosci pH 7,5 zawiera¬ jacego 1% wagowy dekstranu. W ciagu 20 minut utrzymuje sie mieszanine reakcyjna w tempera- 35 turze 37°C, po czym dokonuje sie pomiarów akty¬ wnosci metoda DNS.Z przedstawionych na fig. 4 rezultatów wynika, ze po uplywie 20 minut w temperaturze 70°C na¬ stepuje utrata trwalosci cieplnej dekstranazy, na- 40 tomiast w temperaturze nizszej od 57°C trwalosc ta zostaje zachowana. Obecnosc jonów Zn,. Hg i/lub Cu nie wywiera szkodliwego wplywu na enzym.Próba VI. Próba ta dotyczy pomiaru mocy enzy¬ mu. Do 0,5 ml roztworu enzymu dodaje sie 1 ml 45 0,05 m buforowego roztworu tri o pH 7,5, zawiera¬ jacego 1% wagowy dekstranu, o ciezarze czastecz¬ kowym od 5.OO0.0O0—'20.000.000 i utrzymuje sie mieszanine reakcyjna w ciagu 20 minut w tempe¬ raturze 37°C, a nastepnie dokonuje sie pomiarów 50 aktywnosci wytworzonego cukru metoda DNS. Za jednostke mocy U utrzymuje sie ilosc cukru odpo¬ wiadajaca 1 mg maltozy, wytworzona w ciagu 1 godziny.Wytworzona sposobem wedlug wynalazku dek- 55 stranaza wykazuje optymalna wartosc pH w stre¬ fie slabo alkalicznej, a mianowicie 8,0, podczas gdy optymalna wartosc pH dekstranazy wytwarzanej znanymi sposobami miesci sie w strefie kwasowej.Wlasciwosc ta umozliwia stosowanie dekstranazy 60 wytworzonej sposobem wedlug wynalazku w den- tystyce, zwlaszcza w celu zapobiegania próchnicy zebów. Poza tym dekstranaza wytworzona sposo¬ bem wedlug wynalazku ma zastosowanie przy wy¬ twarzaniu substytutu plazmy. 65 Sposób wytwarzania dekstranazy wedlug wyna-$2808 Uzku wyjasniono szczególowo w ponizszych przy¬ kladach.Ptz y kl a d I. W kolbie Sakaguchi umieszcza sie 50 ml cieklej pozywki o wartosci pH 8,5 zawiera¬ jacej 1% wagowy dekstranu, 1% wagowy polipep- tonu, 0,05% wagowego ekstraktu drozdzowego, 0,l°/t wagowego KH2P04, 0,1% wagowego K2HP04, 0,1% wagowego HgS04 • 7H20, 0,005% wagowego MnS04 • 6H20 i 0,002% wagowego CaCl2 i otrzy¬ mana pozywke sterylizuje sie w ciagu 20 minut ogrzewajac pod para w temperaturze 120°C. Do pozywki tej dodaje sie nastepnie w sterylnych wa¬ runkach 3°/o podobnej cieklej pozywki, w której w ciagu 20 godzin hodowano ustrój Brevibacterium fuscum var. dextranlyticum w temperaturze 30°C, po czym hodowle prowadzi sie w ciagu dalszych 60 godzin w temperaturze 26°C we wstrzasarce mechanicznej drgajacej z predkoscia 130 drgan/ /minute i przy amplitudzie drgan 7 cm. 10 przygotowanych w ten sposób pozywek mie¬ sza sie i odwirowuje przy 3000 G, otrzymujac 450 ml filtratu, który wykazuje moc dekstranazy wy¬ noszaca 200 jednostek/ml.Filtrat ten kondensuje sie nastepnie do 1/5 obje¬ tosci pod obnizonym cisnieniem w temperaturze 40°C, po czym dodaje sie aceton w ilosci równej polowie ilosci otrzymanego kondensatu i odwiro¬ wuje mieszanine. Po dodaniu 1,5-krotnej ilosci ace¬ tonu odwirowuje sie dalej górna faze mieszaniny o zawartosci acetonu 33—66%, otrzymujac produkt w postaci osadu. Po odwodnieniu produktu aceto¬ nem i wysuszeniu, otrzymuje sie 2,40 g sproszko¬ wanego enzymu z wydajnoscia 75% wydajnosci tecretycznej. Moc otrzymanej dekstranazy wynosi 30 jednostek/mg.Przyklad II. Postepujac w sposób analogicz¬ ny do opisanego w przykladzie I z ta róznica, ze stosuje sie pozywke zawierajaca polowe dekstranu otrzymanego w przykladzie I i po dodaniu 0,5% wagowego skrobi, prowadzi sie hodowle w sposób analogiczny do opisanego w przykladzie I. Otrzy¬ muje sie produkt, w którym moc dekstranazy wy¬ nosi 140 jednostek/mg.Przyklad III. Postepujac w sposób analogicz¬ ny do opisanego w przykladzie I z ta róznica, ze do pozywki dodaje sie 1% wagowy osadu skrobi ziemniaczanej, otrzymuje sie produkt, w którym moc dekstranazy wynosi 250 jednostek/ml.Przyklad IV. W naczyniu fermentacyjnym umieszcza sie 20 litrów cieklej pozywki o wartosci pH 8,5 zawierajacej 1% wagowy dekstranu, 1% wagowy osadu skrobi ziemniaczanej, 1% wagowy polipeptonu, 0,05% wagowego ekstraktu . drozdzo¬ wego, 0,1% wagowego KH2P04, 0,1% wagowego K2HP04, 0,1% wagowego K2HP04, 0,1% wagowe¬ go MgS04 • 7H20, 0,005% wagowego MnS04 • 6H20 i 0,^02% wagowego CaCl2 i otrzymana pozywke sterylizuje sie w ciagu 30 minut w temperaturze 5 1209C. Nastepnie do pozywki tej dodaje sie w wa¬ runkach sterylnych 1 litr pozywki, w której w ciagu 20 godzin w temperaturze 26°C hodowano ustrój Brevibacterium fuscum var. dextranlyticunu Po czym mieszanine miesza sie w ciagu 60 godzin 10 w temperaturze 260°C we wstrzasarce o predkosci 300 obrotów na minute, napowietrzajac ja z pred¬ koscia 20 litrów na minute. Po odwirowaniu mie¬ szaniny w wirówce typu Sherples, otrzymuje sie 18,2 litra przesaczu, w którym moc dekstranazy 15 wynosi 220 jednostek/ml.Otrzymany przesacz kondensuje sie pod obnizo¬ nym cisnieniem, odparowujac w ciagu 1 godziny 10 litrów: Do otrzymanych 3,6 litrów kondensatu dodaje sie aceton i z fazy zawierajacej od 33^-66% 20 acetonu wyosabnia sie produkt w postaci osadu.Po odwodnieniu produktu acetonem i wysuszeniu, otrzymuje sie 96 g sproszkowanej dekstranazy o mocy 32 jednostek/mg.Przyklad V. Do 80 g Biogel P-30 dodaje sie 23 wody destylowanej i wprowadza do kolumny 0 srednicy wewnetrznej 3,2 cm.Do kolumny tej wlewa sie nastepnie wodny roz¬ twór 1 g enzymu wytworzonego w przykladzie 1 w 10 ml wody destylowanej i przeprowadza 30 typowa chromatografie kolumnowa, frakcjonujac odciek na porcje po 5 ml. Pomiary mocy wykazuja obecnosc dekstranazy we frakcjach o numerach 33—42. Liofilizujac enzym wyosobniony z tych frakcji, otrzymuje sie 63 mg sproszkowanej dek- 35 stranazy o mocy 455 jednostek/mg, przy czym wy¬ dajnosc wynosi 95,5% wydajnosci teoretycznej.P r z y kl a d VI. Postepujac w sposób analogicz¬ ny do opisanego w przykladzie I, z ta róznica, ze zamiast dekstranu stosuje sie skrobie ziemniacza- 40 na, otrzymuje sie produkt, w którym moc dekstra¬ nazy wynosi 11 jednostek/ml.P r z y kl a d VII. Postepujac w sposób analo¬ giczny do opisanego w przykladzie I, z ta róznica, ze zamiast dekstranu stosuje sie maltoze, otrzy- 45 muje sie produkt, w którym moc dekstranazy wy¬ nosi 10 jednostek/ml. 50 PL PL PL

Claims (3)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób wytwarzania nowej dekstranazy, zna¬ mienny tym, ze hoduje sie ustrój rodzaju Brevi- bacterium fuscum var. dextranlyticum na pozywce, po czym z pozywki wyosabnia sie dekstranaze. j82808 FIG. % nIOO d § 80 ~tr al 60 TJ :« 40 O CI 1. - 20 S 0 a"' 5 Optimum / / / / / / / / / / // // // // // Sp / S 6 7~ nH PH /^V 8~ k% \\ ~9~ h ~~io .... - FIG.
2. Optimum temperatury KI 100 80 a CO |5 60 •§ 40 I- 20 35 40 45 50 55 60 °C82808 o FIG.4 100 ¦« 80 Trwalosc termiczna •CJ O C 60 40 20 O1 «- 40 50 60 °C 70 FIG.
3. Trwatosc pH Druk. Nar. Z.-3, zam. 629/76 Cena 10 zl PL PL PL
PL1971146385A 1970-02-20 1971-02-22 PL82808B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP1505770 1970-02-20

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL82808B1 true PL82808B1 (pl) 1975-10-31

Family

ID=11878194

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1971146385A PL82808B1 (pl) 1970-02-20 1971-02-22

Country Status (16)

Country Link
US (1) US3737383A (pl)
AT (1) AT299859B (pl)
BE (1) BE763243A (pl)
CA (1) CA943483A (pl)
CH (1) CH559775A5 (pl)
CS (1) CS155967B2 (pl)
DE (1) DE2107461A1 (pl)
DK (1) DK127792B (pl)
FR (1) FR2078752A5 (pl)
GB (1) GB1298427A (pl)
HU (1) HU164918B (pl)
NL (1) NL7102246A (pl)
PL (1) PL82808B1 (pl)
SE (1) SE371840B (pl)
SU (1) SU388408A3 (pl)
ZA (1) ZA711043B (pl)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU5830373A (en) * 1972-07-28 1975-01-23 Kenneth Trevor Glasziou Biological products
US3981989A (en) * 1973-11-26 1976-09-21 The Lion Dentifrice Co., Ltd. Oral preparation
US3991177A (en) * 1973-11-27 1976-11-09 Colgate-Palmolive Company Oral compositions containing dextranase
US6492572B2 (en) 1995-08-29 2002-12-10 E. I. Du Pont De Nemours And Company Method for remediating contaminated soils

Also Published As

Publication number Publication date
BE763243A (fr) 1971-07-16
DK127792B (da) 1974-01-07
CA943483A (en) 1974-03-12
HU164918B (pl) 1974-05-28
CS155967B2 (pl) 1974-06-24
CH559775A5 (pl) 1975-03-14
FR2078752A5 (pl) 1971-11-05
GB1298427A (en) 1972-12-06
AT299859B (de) 1972-07-10
DE2107461A1 (de) 1971-09-02
NL7102246A (pl) 1971-08-24
SE371840B (pl) 1974-12-02
ZA711043B (en) 1971-10-27
US3737383A (en) 1973-06-05
SU388408A3 (pl) 1973-06-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3806420A (en) Process for the preparation of creatinine amidohydrolase
JPS6320520B2 (pl)
Tanaka et al. Enzymic formation of difructose anhydride IV from bacterial levan
EP0201039B1 (en) L-aminoacylases
PL82808B1 (pl)
Yoshida et al. Production and application of maltose phosphorylase and trehalose phosphorylase by a strain of Plesiomonas
JP5314955B2 (ja) 新規微生物、イヌリナーゼ、イヌリン分解剤、イヌロオリゴ糖の製造方法及びイヌリナーゼの製造方法
JPH04169190A (ja) トレハルロースおよびパラチノースの製造法
JP3635133B2 (ja) トレハロースホスホリラーゼおよびその調製法
US5234828A (en) Process for producing novel heat-resistant β-galactosyltransferase
US5153128A (en) Heat-resistant β-galactosyltransferase, its production process and its use
BE1007064A3 (fr) Enzyme de levane saccharase, procede pour sa preparation, micro-organismes qui le produisent et compositions le contenant.
JPWO1990010010A1 (ja) 新規物質トレハロスタチンおよびその製造方法
JPH02257888A (ja) 微生物によるパラチノース、トレハルロースの製造方法
JP2970932B2 (ja) 新規耐熱性β―ガラクトシル基転移酵素、その製造法及びその用途
JPH03160995A (ja) トレハルロースの製造法
US5593869A (en) Method of manufacturing sugars by trehalase
CA1156570A (en) Glucose-6-phosphate dehydrogenase and process for preparation thereof
JPH04200386A (ja) β―フラクトフラノシダーゼ及びその製造方法
JPH03277292A (ja) 光学活性な2―ヒドロキシカルボン酸の製造法
JP3529173B2 (ja) 新規な寒天分解酵素及びそれを用いるネオアガロビオースの製造法
JPS58212783A (ja) 発酵法によるホスホリパ−ゼaの製造法
JPS61236790A (ja) ガラクトオリゴ糖の製造法
JPS6098982A (ja) ポリアミン測定用酵素の製造法
KR840000893B1 (ko) 모라노린 유도체의 제조방법