PL69885B1 - Antibiotic production utilizing streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens [us3627641a] - Google Patents

Antibiotic production utilizing streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens [us3627641a] Download PDF

Info

Publication number
PL69885B1
PL69885B1 PL1968127815A PL12781568A PL69885B1 PL 69885 B1 PL69885 B1 PL 69885B1 PL 1968127815 A PL1968127815 A PL 1968127815A PL 12781568 A PL12781568 A PL 12781568A PL 69885 B1 PL69885 B1 PL 69885B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
var
antibiotic
fulvofurvescens
brown
agar
Prior art date
Application number
PL1968127815A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from FR112713A external-priority patent/FR93954E/fr
Application filed filed Critical
Publication of PL69885B1 publication Critical patent/PL69885B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/06Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using actinomycetales
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/465Streptomyces
    • C12R2001/61Streptomyces venezuelae
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/886Streptomyces
    • Y10S435/906Streptomyces venezuelae

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Sposób wytwarzania antybiotyku 11.837 RP Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania antybiotyku, oznaczonego dalej symbolem 11.837 RP. W opisie patentowym nr 58131 opisano sposób wytwarzania antybiotyku 11.837 RP, polegajacy na hodowaniu szczepu Streptomyces viridans DS 9466 5 (NRRL 3.087) na podlozu sztucznym.Poslugujac sie metoda chromatografii bibulowej, cienkowarstwowej i elektroforezy przy wywolywa¬ niu mikrobiologicznym stwierdzono, ze antybiotyk 11.837 RP jest mieszanina róznych skladników 10 o podobnych wlasciwosciach biologicznych i fizy¬ ko-chemicznych.Sposobem wedlug wynalazku antybiotyk 11.837 RP wytwarza sie przez dwa nowe drobnoustroje, których blizsza charakterystyke podano dalej, ho¬ dujac je w warunkach tlenowych.Drobnoustroje, o których mowa maja bardzo podobne cechy i naleza do rodzaju Streptomyces, gatunku Streiptomyces yenezuelae, tworzac odmia- 20 ne, która nazwano Streptomyces yenezuelae, var. fulvofurvescens. Zostaly one nazwane odpowiednio „S. yenezuelae, var. fulvofurvescens DS 7.103" (NRRL 3354) i „S yenezuelae, var fulvofurvescens DS 11.355 (NRRL 3355). „Streptomyces yenezuelae, 25 var, fulvofurvescens DS 7.103" wydzielono z próbek ziemi pochodzacych z Algerii, a „Streptomyces yenezuelae, var fulvofurvescens DS 11.355" wydzie¬ lone z próbki ziemi pochodzacej z okolic Gloucester (Anglia). 30 Wyodrebnianie tych dwóch szczepów przeprowa¬ dzono metoda klasyczna, postepujac w sposób na¬ stepujacy: Próbke ziemi zawieszono w wyjalowio¬ nej wodzie destylowanej, a nastepnie sporzadzono rózne rozcienczenia tej zawiesiny. Niewielkie ilosci kazdego z rozcienczen wprowadzano na plytki Petriego, zawierajace jako pozywke agar. Po kil¬ kudniowej inkubacji w temperaturze 26°C kolenie mikroorganizmów przeznaczonych do wyizolowania przenoszono na swieze podloze w celu zintensyfi¬ kowania ich wzrostu.Oba drobnoustroje, produkujace antybiotyk 11..837 RP, zaliczone zostaly do rodzaju Strepto¬ myces, gatunku S. yenezuelae, bowiem wykazuja one cechy charakterystyczne dla tego gatunku.Wiekszosc cech omawianych drobnoustrojów od¬ powiada ogólnie przyjetym kryteriom, okreslaja¬ cym ten gatunek (S. A. Waksman The Actinomy- cetes, vol. 2, The Williams and Wilkins Co., Balti¬ more, 1961, 280—181; Bergey's Manual of Determi- native Bacteriology, 7th edition, The Williams and Wilkins Co., Baltimore, 1957, 780—781). Do cech tych naleza: wytwarzanie pigmentu melaninowego na podlozu tyrozynowym, wytwarzanie rozpusz¬ czalnego brazowo-czarnego barwnika na niemal wszystkich podlozach organicznych, zólto-brazowe do ciemno-brazowego zabarwienie grzybni wege¬ tatywnej kultur; rózowe zabarwienie grzybni po¬ wietrznej, zarodnikujacej, budowa aparatu zarod- 69 88569 885 3 nikujacego o sporoforach wydluzonych, prostych, badz lekko wygietych.Róznice w stosunku do S. venezuelae uwidacz¬ niaja sie w mozliwosciach wykorzystania roz¬ maitych substancji jako zródla wegla niezbednego dla wzrostu- drobnoustroju w wytwarzaniu anty¬ biotyku 11.837 RP zamiast chloramfenikolu, a zwlaszcza polegaja one na wytwarzaniu przez omawiane drobnoustroje duzych ilosci rozpuszczal¬ nego ciemnego pigmentu barwy pomaranczowo- brazowej, który predko ciemnieje przechodzac w czern, zdolnego do zabarwienia zarówno grzybni wegetatywnej, jak równiez samego podloza.S. venezuelae tworzy w niektórych przypadkach podobny barwnik, lecz zazwyczaj w ilosciach umiarkowanych badz tez nie tworzy go wcale w warunkach, w których nowe organizmy produkuja go (dotyczy to zwlaszcza podlozy sztucznych).Z cech tych wywodzi sie nazwa nowych drobno¬ ustrojów — Streptomyces S. venezuelae, var. ful- vofurvescens.Warunki hodowli oraz wlasciwosci biochemiczne S. venezuelae, var. fulvofurvesoens, szczep DS 7.103 sprawdzono na rozmaitych podlozach agarowych i bulionowych, stosowanych zwykle do badania szczepów rodzaju Streptomyces. Wyniki obserwacji podano w tablicy 1. Dotycza one (jezeli nie zazna¬ czono inaczej) dobrze rozwinietych hodowli 2— 4 tygodniowych, inkubowanych w temperaturze 26°C.Niektóre z zastosowanych podlozy sporzadzono wedlug przepisów pochodzacych z podrecznika S. A.Waksmana „The Actinomycetes" Chronoca Botani- ca Company, Waltham, Mass., USA, 1950, 193— 197. Podloza te zostaly oznaczone litera W, jak 10 20 30 35 równiez numerem, którymi zostaly opatrzone w cytowanej ksiazce.Literatura, na której sie opierano, badz sklad pozostalych podlozy przedstawia sie nastepujaco: A) K. L. Jones, Jurnal of Bacteriology 57,142 (1949) B) Podloze wedlug W. 23-=-2°/o agaru C) T. G. Pridham i wspólpraca „Hickey and Tres- ner's Agar", Antibiotics Annual, 1956—57, str. 950 D) T. G. Pridham i wspólpraca „Yeast Extract Agar", Antibiotics Annual, 1956—57, str. 950 E) T. G. Pridham i wspólpraca „Tomato Paste Oatmeal Agar", Antibiotics Annual 1956—57, str. 950 F) S. A. Waksman, The Actinomycetes t. 2, str. 393, Nr 42 The Williams and Wilkins Company, Bal¬ timore, 1961 G) W. E. Grundy i wspólpraca „Antibiotics and Chem." 2, 401, 1952 H) T. G. Pridham i wspólpraca „Inorgenic Stals- Starch Agar" Antibiotics Annual, 1956—57, str. 951 I) Wedlug W 1, z tym, ze 30 g sacharozy zastapio¬ no 15 g glukozy J) Wedlug W 1, z tym, ze 30 g sacharozy zastapio¬ no 15 g gliceryny K) „Plain Gelatin" wedlug „Manual of Methods for Pure Culture Studdy of Bacteria", Society of Amer. Bacterid. Geneva, N. Y. 11—1850 L) Wedlug W 18, z tym, ze sacharoze zastapiono paskami bibuly filtracyjnej zanurzonej czescio¬ wo w roztworze M) H. D. Tresner, F. Danga, Jurnal of Bacteriology, 76, 239^4 (1958) N) Odtluszczone, sproszkowane mleko, rekonsty- towane wedlug zalecen producenta Podloze Agar Bennetta Ref. A Agar Emersona Ref. B Agar Hiekeya i Tresnera Ref. C Agar na ekstrak¬ cie dro¬ zdzowym Pridhama Ref. D Wzrost hodowli dobry dobry b. dobry b. dobry Tablica I Grzybnia wegetatywna.Zabarwienie hodowli Intensywne zabarwie¬ nie pomaranczowo- brazowe az do brazo- wo-czarnego Grzybnia zólto-brazo- wa, gesta, pofaldowa¬ na, dobrze rozwinieta Zabarwienie brazowo- -czarne Zabarwienie czarne Grzybnia powie¬ trzna (barwa, spo- rulacja Rózowa Dobrze roz¬ winieta Biala, skapa Rózowa B. dobrze roz¬ winieta Rózowa B. dobrze roz¬ winieta 1 Rozpuszczalny barwnik Pomaranczowo- brazowy prze¬ chodzacy w czarny Pomaranczowo- brazowy b. in¬ tensywny prze¬ chodzacy w bra- zowo-czarny Czarny Czarny Cechy zewnetrzne.Wlasciwosci bioche¬ miczne Sprofory proste lub lekko zgiete, dosc dlugie. Spory cy¬ lindryczne, o zao¬ kraglonych kon¬ cach, o wymiarach 0,3—0,5^/0,8—1,2|L6$ 885 S 6 cd. tabl. i Fodloze Agar z ek¬ straktem z owsa i po¬ midorów Pridhama Ref. E Agar glukozo- peptonowy W-7 Agar odzywczy W-5 Agar tyro- zynowy z ekstraktem drozdzo¬ wym na wytwarza¬ nie mela- niny Ref. F Agar z jablczanem wapnia Kransk'ye- go Ref. G Agargluko- zoasparagi- nowy W-2 Agar gli- cerynowo- asparagi- nowy W-3 Agar ze skrobia Pridhama Ref. H Agar syn¬ tetyczny.Czapka z sacharoza W-1 Agar syn¬ tetyczny Czapka z glukoza | Ref. 1 Wzrost hodowli b. dobry dosc dobry umiar¬ kowany dosc dobry dosc dobry dobry dobry dobry dobry dobry Grzybnia wegetatywna.Zabarwienie hodowli Zabarwienie zóltobra- zowe b. intensywne Zabarwienie pomaran¬ czowo brazowe, b, in¬ tensywne prawie czarne Grzybnia zólto-brazo- wa-szarawa. Dosc do¬ brze rozwinieta Grzybnia czarna.Zabarwienie hodowli czarne Zabarwienie zólto- brazowe, jasne Zabarwienie czarne | Zabarwienie poma¬ ranczowo brazowe przechodzace w bra- zowo-czarne Zabarwienie zólto- | brazowe Zabarwienie czarne.Grzybnia gesta, dobrze rozwinieta Zabarwienie inten¬ sywne, pomaranczo- wobrazowe. Grzybnia gesta dobrze roz¬ winieta Grzybnia powie¬ trzna (barwa, sporulacja) Jasno rózowa, dobrze rozwi¬ nieta Bialo-szara.Umiarkowanie rozwinieta Brak Bialo-rózowa do szarej.Ilosci sladowe Blado rózowa.Umiarkowanie rozwinieta Jasno-rózowa.Umiarkowanie rozwinieta Biala do jasno rózowej. Umiar¬ kowanie rozwi¬ nieta Blado rózowa.Dobrze rozwi¬ nieta Bialo-szara Umiarkowanie rozwinieta Bialo-szara.Umiarkowanie rozwinieta Rozpuszczalny barwnik Brazowawo- czarny Brazowo- czarny Zólto-brazowy Intensywnie czarny Szarobrazowy slaby Brazowo-czarny Intensywnie pomaranczowo- brazowy prawie brazowo-czarny Szaro-brunatny, slaby Intensywnie pomaranczowo- brazowy, pra¬ wie czarny Intensywnie pomaranczowo- brazowy Cechy zewnetrzne.Wlasciwosci bioche¬ miczne Wytwarzanie mela- niny po 48 godz. hodowli Rozkladanie jabl- czanu — dobre Sporofory proste badz lekko zgiete, dosc dlugie. Spory cylindryczne o za¬ okraglonych kon¬ cach, o wymiarach 0,3—0,5 ^jl/0,8—1,2 \i Test hydrolizy skrobi — dodatni69 885 7 8 dok. tabl. 1 Podloze Agar syn¬ tetyczny.Czapka z gliceryna Ref. J" Hodowla na ziem¬ niaku W-27 Zelatyna 12 % Ref. K Bulion- skrobia azotowa W-19 Bulion.Czapka z celuloza Ref. L Podloze Tresnera i Danga Ref. M Mleko odtluszczo¬ ne Ref, M | Wzrost hodowli dobry b. dobry dobry dobry Umiar¬ kowany lecz wyraz¬ ny dobry dobry Grzybnia wegetatywna.Zabarwienie hodowli Zabarwienie czarne.Grzybnia gesta, pofal¬ dowana, dobrze roz¬ winieta.Grzybnia czarna, B. gesta i pofaldo¬ wana Zabarwienie zólto- -brazowe.Dobry rozwój powierzchniowy Grzybnia dobrze roz¬ winieta. Intensywnie zabarwiona pomaran- czowo-brazowo Zabarwienie czarne Zabarwienie inten¬ sywno brazowe.Strzepki dobrze roz¬ winiete.Grzybnia powie¬ trzna (barwa, sporulacja) Bialo-szara.Umiarkowanie rozwinieta Rózowo-szara w ilosciach sladowych Rózowo-szara.Umiarkowanie rozwinieta Biala Umiarkowanie rozwinieta Bialorózowa na bibule zanurzo¬ nej w bulionie Brak Brak Rozpuszczalny barwnik Intensywnie pomaranczowo- brazowy, pra¬ wie czarny Czarny Pomaranczowo- brazowy Pomaranczowo- brazowy w nie¬ wielkich ilos¬ ciach, pojawia¬ jacy sie na po¬ wierzchni.Intensywnie czarny, obfity Intensywnie brazowy, prawie czarny 1 Cechy zewnetrzne.Wlasciwosci bioche¬ miczne Rozpuszczanie ze¬ latyny — dosc szybkie Test redukcji azo¬ tanów do azoty¬ nów — pozytywny.Test zuzycia celu¬ lozy — pozytywny Wytwarzanie H2S po 24 godzinach hodowli Poczatek peptoni- zacji pod koniec 2-go tygodnia ho¬ dowli. Calkowita — po 1 miesiacu.Koagulacji nie stwierdzono.Zmiana pH od 6,3 do 7,0 w ciagu 1 mies. hodowli. | Streptomyces venezuelae, var. ful. szczep DS 11.355 odznacza sie podobnymi cechami co szczep DS 7.103 na wyzej wymienionych podlozach, poda¬ nych w tablicy I. Jak dotad jedyna stwierdzona róznica jest zdolnosc wykorzystywania róznych zródel wegla lub azotu. Szczep DS 11.355 nie wy¬ korzystuje adonitolu, potrzebnego szczepowi DS 7.103, wykorzystuje natomiast sarkozyne bezuzy¬ teczna dla szczepu DS 7.103.Zdolnosc wykorzystywania róznych zródel wegla i azotu przez wymienione tu szczepy, okreslono we¬ dlug metodyki Pridhama i Gottlieba (J. Bact. 56, 107—114, 1948), rozwój obserwowano na podlozu podstawowym badz zastepujac glukoze innymi zwiazkami, mogacymi sluzyc jako zródlo wegla badz tez zastepujac (NH^SC^ innymi zwiazkami mogacymi sluzyc jako zródlo azotu. Wyniki podano w tablicy 2.Tablica 2 Badane zródla wegla d-ryboza d-ksyloza 1-arabinoza l-remnoza d-glukoza | d-galakto'za Wykorzy¬ stanie przez szczepy co o l-H IO co 1-4 . i-» ; W Q Badania zródla azotu NaN03 NaNOz (NH4)2H P04 (NH4)2H P04 adenina adenozyna 1 Wykorzy¬ stanie przez szczepy co o W Q m io co i-H i-H CO Q69 9 cd. tabl. 2 Badane zródla wegla d-fruktoza d-mannoza 1-sorboza laktoza maltoza sacharoza trehaloza ceellobioza rafinoza dekstryna inulina skrobia glikogen glicerol erytrytol adonit adonit dulcytol d-mannitol d-sorbitol inozytol Wykorzy¬ stanie przez szczepy co o I W Q -5- °°. i-H i-H W Badania zródla azotu uracyl mocznik l-asparagina glikokol sarkozyna dl-alanina dl-walina kwas dl-as- paraginowy kwas dl-glu- taminowy 1-arginina 1-lizyna dl-treonina dl-metionina tauryna dl-fenyloala- nina 1-tyrozyna 1-tyrozyna dl-prolina 1-hydroksy- prolina 1-histydyna 1-tryptofan 1 Wykorzy¬ stanie przez szczepy co o i-H CO Q co CO Q Nowe szczepy, z których wytwarza sie antybiotyk 11.837 RP róznia sie zasadniczo od szczepu znane- 40 go, opisanego w opisie patentowym nr 58 131.Szczep S. viridians DS 9 466 tworzy grzybnie po¬ wietrzna, która zabarwia sie na kolor szary gdy pojawia sie sporulacja. Sposób sporulacji szczepu charakteryzujacy sie tworzeniem lancuchów spo- 45 rów zwijajacych sie w spirale, zalicza go do Sek¬ cji Spira klasyfikacji Pridhama. Ponadto S. viri- dans DS 9 466 ma wlasciwosci wytwarzania w róz¬ nych srodowiskach rozpuszczalnego pigmentu zie¬ lonego, bardzo charakterystycznego, który zabar- 50 wia podloze agarowe w tym samym czasie gdy grzybnia wegetatywna zabarwia sie równiez na zielono. Jest to wlasciwosc, której nigdy nie wy¬ kazuja szczepy S. venezuelae, var. fulrofurvescens.Szczep S. viridans DS 9 466 nie tworzy pigmentu 55 melaninowego i nie wytwarza H2S.Nowe szczepy S. venezuelae var. fulvofurvescens DS 7.103 i DS 11.355 tworza grzybnie powietrzna o sporach barwy rózowej. Sposób sporulacji, cha¬ rakteryzujacy sie tworzeniem lancuchów sporów 60 bardzo wydluzonych, prostych lub lekko wygietych, zalicza te szczepy do sekcji Rectus — Flexibilis klasyfikacji Pridhama. Szczepy te nie produkuja nigdy rozpuszczalnego pigmentu zielonego, wytwa¬ rzaja natomiast pigmenty melaninowe i H2S. 65 10 W ponizszej tablicy zestawiono cechy rózniace zasadniczo szczepy Streptomyces viridans DS 9.466 i szczepy Streptomyces venezuelae, var. fulvofur- vescens DS 7.103 i DS 11.355.Barwa grzybni po¬ wietrznej sporulu- jacej Sekcja klasyfikacji Pridhama (pod wzgledem postaci sporoforów) Wytwarzanie mela- niny Wytwarzanie roz¬ puszczalnego pig¬ mentu zielonego Wytwarzanie H2S S. viridaus DS 9.466 szara Spira negatywne dodatnie negatywne S. venezuelae, var. fulvofur- vescens DS 7.103 i DS 11.355 rózowe Rectus-Flexi- bilis dodatnie negatywne dodatnie | Antybiotyk 11.837 RP produkowany przez szcze¬ py DS 7.103 i DS 11.355 jest mieszanina skladni¬ ków, których wlasciwosci sa identyczne z kompo¬ nentami antybiotyku 11.837 RP wytwarzanego przez szczep DS 9.366. Obserwowano natomiast zmiany we wzglednych zawartosciach poszczególnych skladników antybiotyku w zaleznosci od uzytego szczepu; takze w przypadku stosowania tego sa¬ mego szczepu wystepowaly róznice w skladzie w poszczególnych partiach produkcyjnych.Nowe szczepy wykazuja wlasciwosci korzystniej¬ sze niz znany szczep, gdyz pozwalaja otrzymac mieszanine mniej zlozona niz produkowane przez szczep streptomyces viridans DS 9.466 i której skladnik dominujacy jest wytwarzany przez S. vi- ridaus w niewielkiej ilosci. Sklad antybiotyków badano klasycznymi metodami chromatografii bi¬ bulowej, cienkowarstwowej i elektroforezy oraz nastepne wywolywanie metoda biologiczna, na przyklad na zaszczepionych plytkach agarowych.Widmo w podczerwieni produktów uzyskanych z hodowli nowych szczepów nie jest scisle iden¬ tyczne z widmem opisanym w opisie patentowym nr 58 131. Zawiera ono wprawdzie te same pasma absorpcji, lecz o nieco innej intensywnosci. Róznice tlumaczy sie zmiennym stosunkiem poszczególnych skladników.System A B Nosnik tel krzemion¬ kowy (firmy Merck) bibula Ar- ches 302 nie buforowana Rozpuszczalnik dioksan — woda w sto¬ sunku objetosciowym 8:2 n-butanol — kwas octo¬ wy w stosunku objetos¬ ciowym 6:469 885 11 Antybiotyki, wytwarzane przez rózne szczepy, porównywano w nastepujacym systemie chroma¬ tograficznym (patrz tabelka w lamie 10).Po rozwinieciu, wysuszeniu i wywolaniu na plyt¬ kach agarowych zaszczepionych Staphylococcus aureus 209 P, notuje sie plamy zahamowania przy wartosciach Rf, podanych w ponizszej tablicy.System A B Rf x 100 dla antybiotyków produkowanych przez szczepy: DS 9 466 20(25) 30 70 62 67 70(74) 79 DS 7 103 25 30 70 62 70 (79) DS 11 355 25 30 (70) 62 70 Wartosci w nawiasach oznaczaja skladniki obec¬ ne w postaci sladów, podkreslone dwa razy odpo¬ wiadaja skladnikowi dominujacemu.Nowy sposób wytwarzania antybiotyku 11.837 polega na hodowli Streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens DS 7.103 badz Streptomyces vene- zuelae var. fulvofurvescens DS 11.355 na odpo¬ wiednich podlozach i w odpowiednich warunkach oraz na wyodrebnieniu antybiotyku w postaci soli, na przyklad soli potasowej.Warunki, w których Streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens DS 7.103 i DS 11.355 wytwa¬ rzaja antybiotyki 11.837 RP, jak równiez metody wyodrebniania tego antybiotyku z brzeczki fer¬ mentacyjnej sa identyczne z opisanymi w opisie patentowym 58131 metodami wytwarzania antybio¬ tyku 11.837 RP. przez szczep Streptomyces viridans DS 9.466 (NRRL 3.087).Podane nizej przyklady ilustruja mozliwosc prak¬ tycznego zastosowania niniejszego wynalazku, nie wyczerpuja one jednakze wszystkich mozliwosci jego wykorzystania. Aktywnosc biologiczna okres¬ lono metoda zahamowania wzrostu Baeillus sub- tilis, bakterii wrazliwej na dzialanie antybiotyku 11.837 RP przyjetego za standart. Aktywnosc wy¬ razona jest w jednostkach na mg w odniesieniu do cial stalych i na cm3 w odniesieniu do roztwo¬ rów. Jednostka nazwano najmniejsza ilosc pro¬ duktu, który rozpuszczony w 1 cm3 odpowiednie¬ go podloza hamuje wzrost Staphylococcus aureus 209 P w okreslonych warunkach.Przyklad I. Kadz fermentacyjna o pojem¬ nosci 170 1 napelnia sie nastepujacymi skladni¬ kami: moczona miazga kukurydziana 4,800 kg glikoza uwodniona 2,400 kg chlorek sodowy 0,600 kg siarczan magnezowy 0,120 kg woda do 110 1 Po ustawieniu pH srodowiska na poziomie do 7,3 za pomoca 535 cm3 lugu sodowego (d = 1,33) dodaje sie 0,600 kg weglanu wapniowego i wyjala¬ wia, przepuszczajac zywa pare o temperaturze 122°C w ciagu 40 minut.Po odwodnieniu objetosc pozywki wynosi 120 1, a jej pH = 6,9. Podloze to szczepi sie 200 ml ho¬ dowli Streptomyces venezuelse var. fulvofurvescens DS 7.103. Hodowle rozwija sie w temperaturze 30°C w ciagu 28 godzin przy ciaglym wstrzasaniu 30 35 40 50 60 65 12 i napowietrzaniu wyjalowionym powietrzem. Po tym czasie mozna ja uzyc jako inokulum hodowli produkcyjnej.Hodowle produkcyjna prowadzi sie w kadzi o pojemnosci 800 1 przy uzyciu nastepujacego pod¬ loza: moczona miazga kukurydziana skrobia olej sojowy fosforan jednopotasowy siarczan magnezowy uwodniony chlorek kobaltowy woda 20 kg 7,5 kg 7,5 kg 1 kg 1 kg 0,01 kg do 460 1 Po ustawieniu pH na poziomie 7,15 za pomoca 2800 ml stezonego lugu sodowego (d = 1,33) dodaje sie 5 kg weglanu wapniowego. Podloze to o pH = = 7,35 wyjalawia sie przez przepuszczenie zywej pary o temperaturze 122°C, w ciagu 40 minut. Po schlodzeniu objetosc calosci wynosi 490 1, a pH srodowiska 7,05. Jako inokulum stosuje sie hodowle opisana wyzej. Hodowle przeprowadza sie w tem¬ peraturze 30°C w ciagu 96 godzin mieszajac stale srodowisko przy pomocy mieszadla (285 obrotów/ min.) i napowietrzajac je wyjalowionym powie¬ trzem (25 m3/godz.); pH srodowiska wynosi 8,55, a objetosc brzeczki 420 1. Ilosc wytworzonego anty¬ biotyku wynosi 1820 jednostek/cm3.Przyklad II. Do^ 420 1 brzeczki uzyskanej z hodowli Streptomyces venezuelae var. fulvofur- vescens DS 7.103, sporzadzone jak podano w przy¬ kladzie I, wprowadza sie przy mieszaniu kwas fosforowy, az do uzyskania pH srodowiska, wyno¬ szacego 4. Po 1/2-godzinnym mieszaniu dodaje sie 20 kg Clarcelu DIC i poddaje sie filtracji na pra¬ sie filtracyjnej. Pozostala na filtrze grzybnie prze¬ mywa sie 200 1 wody. Przesacz i popluczyny, o ogólnej objetosci 550 1, odrzuca sie, a mokry placek filtracyjny o wadze 113 kg zawiesza w mie¬ szaninie 250 1 metanolu i 50 1 wody i umieszcza w mieszalniku. pH zawiesiny doprowadza sie do wartosci 7,0 za pomoca weglanu sodowego (d = 1,33). Po uplywie jednej godziny zawiesine fil¬ truje sie na prasie i placek filtracyjny przemywa sie 50 1 70-procentowego metanolu. Grzybnie o ma¬ sie 96 kg odrzuca sie, a przesacz o lacznej pojem¬ nosci 360 1 zateza pod obnizonym cisnieniem (40 mm Hg) w aparacie obiegowym, do objetosci 6 1. Kon¬ centrat wytraca sie mieszanina 301 etanolu i 40 1 acetonu.Osad odwirowywuje sie, przemywa i suszy pod cisnieniem obnizonym. Uzyskuje sie 780 g produktu o mianie 515 jednostek/mg.Przyklad III. 780 g antybiotyku, sporzadzo¬ nego, jak podano w przykladzie II, o mianie 515 jednostek/mg rozpuszcza sie w 10 1 wody destylo¬ wanej.Roztwór ten filtruje sie przez zloze krzemionki, a nastepnie przepuszcza przez kolumne (o srednicy wewnetrznej 9 cm), zawierajaca 6 1 zywicy Dowex 1X2 w fazie chlorowej. Kolumne przemywa sie kolejno: woda destylowana az do odbarwienia eluatu 6 1 mieszanina kwasu mrówkowego i wody (10:90 objetosciowo) 20 169 885 13 14 mieszanina kwasu mrówkowego, wody i meta¬ nolu (10 : 10 : 80 objetosciowo) 20 1 mieszanina metanolu i wody (80 : 20 objetos¬ ciowo) 20 1 Antybiotyk eluuje sie mieszanina metanolu i wo¬ dy (80 : 20 objetosciowo) z dodatkiem chlorku po¬ tasowego (10 g/l). Odbiera sie 10 1 frakcje. Frakcje najbardziej aktywne (2—6) laczy sie i zateza pod zmniejszonym cisnieniem w temperaturze 40°C do objetosci 3 1.W celu usuniecia soli i innych zanieczyszczen, koncentrat dializuje sie trzykrotnie przez blone celofanowa, przy uzyciu kazdorazowo wody desty¬ lowanej, w ciagu 48 godzin, a nastepnie liofilizuje sie go.Uzyskuje sie 27 g oczyszczonego antybiotyku w postaci soli potasowej o mianie 12 300 jednostek/ mg, o nastepujacych fizyko-chemicznych wlasci¬ wosciach: wyglad zewnetrzny — bezpostaciowy, bialy proszek latwo rozpuszczalny w wodzie: maksimum absorp¬ cji w nadfiolecie, okreslane przy uzyciu wodnego roztworu o stezeniu 50 mg/l — 255 urn 1* _ 106,5 15 20 \ lem "*""/• 25 Sklad elementarny antybiotyku przedstawia sie w przyblizeniu nastepujaco: C = 46,9% H = 6,55% O = 36,9% * N = 4,5% P = 2,1% K = 2,95% *) Wynik uzyskany przez odjecie od 100%. 30 Przyklad IV. Podloze przygotowuje sie, jak podano w przykladzie I. Podloze to, którego pH po sterylizacji wynosi 7,0 zaszczepia sie 200 ml ho¬ dowli Streptomyces venezuelae, var. fulvofurves- cens DS 11.355. Hodowla rozwija sie w ciagu 30 go¬ dzin przy mieszaniu i napowietrzaniu, w tempera¬ turze, jak podano w przykladzie I.Hodowle produkcyjna przygotowuje sie w kadzi 800 1 napelnionej 500 1 podloza, którego sklad po- 35 dano w przykladzie I, o pH =6,9 (po sterylizacji).Podloze to zaszczepia sie 50 1 hodowli — inokulum, przygotowanej w 170 1 kadzi. Po 99 godzinach ho¬ dowli w warunkach takich jak podano w przy¬ kladzie I, pH srodowiska wynosi 8,45, a objetosc brzeczki 495 1. Miano uzyskanego antybiotyku wy¬ nosi 1520 jednostek/mg.Przyklad V. 495 1 brzeczki uzyskanej z ho¬ dowli Streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens DS 11.355 przerabia sie, jak w przykladzie II.Uzyskuje sie 480 kg nieoczyszczonego antybiotyku o mianie 1000 jednostek/mg.Przyklad VI. 470 g nieoczyszczonego anty¬ biotyku o mianie 1000 jednostek/mg, uzyskanego metoda opisana w przykladzie V, oczyszcza sie metoda opisana w przykladzie III.Uzyskuje sie 14,6 g czystego antybiotyku, w po¬ staci soli potasowej o mianie 19 400 jednostek/mg.Jest to bezpostaciowy, bialy proszek latwo rozpusz¬ czalny w wodzie, maksimum absorpcji w nadfiole¬ cie, okreslone przy uzyciu wodnego roztworu o ste¬ zeniu 50 mg/l, wynosi 256 urn. lE ^ = 120j.Wyniki analizy elementarnej: C = 46,4% H = 6,35% N = 4,1% P = 2,3% K= 6,9% O*) =33,95% *) Zawartosc tlenu okreslono przez odjecie od 100% sumy pozostalych skladników. PL PL PL PL PL PL PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób wytwarzania antybiotyku 11.837 RP po¬ legajacy na fermentacji przy uzyciu kultur Strep¬ tomyces, znamienny tym, ze szczep Streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens DS 7.103 (NRRL 3354) lub Streptomyces venezuelae var. fulvofurves- cens DS 11.355 (NRRL 3355) poddaje sie hodowli w srodowisku odzywczym i w warunkach aerobo- wych, a nastepnie wyodrebnia sie antybiotyk w postaci soli. ERRATA Lam 7, 8, rubryka 1 jest: Bulion, skrobia azotowa powinno byc: Bulion. Skrobia azotanowa Lam 13, wiersz 28 jest: H = 6,55% powinno byc: H = 6,65% PL PL PL PL PL PL PL
PL1968127815A 1967-06-30 1968-06-29 Antibiotic production utilizing streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens [us3627641a] PL69885B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR112713A FR93954E (fr) 1963-09-19 1967-06-30 Nouvel antibiotique et son procédé de préparation.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL69885B1 true PL69885B1 (en) 1973-10-31

Family

ID=8634258

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1968127815A PL69885B1 (en) 1967-06-30 1968-06-29 Antibiotic production utilizing streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens [us3627641a]

Country Status (8)

Country Link
US (1) US3627641A (pl)
AT (1) AT279042B (pl)
BR (1) BR6800189D0 (pl)
CS (1) CS158218B2 (pl)
DK (1) DK117947B (pl)
ES (1) ES355563A2 (pl)
PL (1) PL69885B1 (pl)
SE (1) SE350068B (pl)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6676010B1 (en) * 2002-09-18 2004-01-13 Mastercraft Packaging Corporation Reclosable food container
US20060006262A1 (en) * 2004-07-12 2006-01-12 Gilberts Hans P Interchangeable spice grinding assembly

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2483892A (en) * 1948-03-16 1949-10-04 Parke Davis & Co Process for the manufacture of chloramphenicol
US2916483A (en) * 1956-03-27 1959-12-08 Olin Mathieson Methymycin
US3089816A (en) * 1957-10-29 1963-05-14 Ciba Geigy Corp Lemacidine and process for its manufacture
GB1057424A (en) * 1963-09-19 1967-02-01 Rhone Poulenc Sa New antibiotic and process for its manufacture

Also Published As

Publication number Publication date
US3627641A (en) 1971-12-14
CS158218B2 (pl) 1974-10-15
ES355563A2 (es) 1970-01-01
AT279042B (de) 1970-02-25
SE350068B (pl) 1972-10-16
DK117947B (da) 1970-06-22
BR6800189D0 (pt) 1973-02-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPS58180487A (ja) 抗生物質dc−81およびその製造法
EP0196042A2 (en) Antibiotic prepared from lysobacter sp. SC 14,067
US4293650A (en) Anti-coccidial substance and its preparation
DE69919130T3 (de) Erhöhtes Wachstum von Milchsäurebakterien im Milch
PL69885B1 (en) Antibiotic production utilizing streptomyces venezuelae var. fulvofurvescens [us3627641a]
SU509246A3 (ru) Способ получени антибиотика
US3761587A (en) Antibiotic thiopeptin and process of production
DE2040141C3 (de) Dipeptide und Verfahren zu ihrer Herstellung
PL131791B1 (en) Process for preparing novel antibiotic
Nishimura et al. Minomycin, A New Antibiotic Pigment from A Streptomyces Sp.
US3534138A (en) Antibiotic shincomycin and production thereof
US3626055A (en) Method for producing antibiotic t-2636
CA1046965A (en) Naphthyridinomycin antibiotics from streptomyces
PL87266B1 (pl)
PL92972B1 (pl)
DE939125C (de) Verfahren zur Herstellung von Zusatzfuttermitteln
EP0293787B1 (en) Antibiotic 6270B, processes for its production, and its use as an anticoccidiosis agent and a feed additive
EP0346831A2 (en) Antibiotics and process for producing them
US3598702A (en) Microbiological process for the preparation of pigmenting products
DE2509653C2 (de) Gegen Kokzidien wirksame Substanz und deren Herstellung durch Kultur eines Streptomyces
KR810001115B1 (ko) 항생물질 네오비리도 그리제인류의 제조방법
AT336184B (de) Verfahren zur herstellung von deacetoxycephalosporin c
SU287650A1 (ru) Патентно-техн^^нескаябиблиотека
DD202589A5 (de) Verfahren zur herstellung von narasin
US3627881A (en) Method for producing antibiotic b-2847