PL68197Y1 - Mikroukład do hodowli komórkowej - Google Patents

Mikroukład do hodowli komórkowej

Info

Publication number
PL68197Y1
PL68197Y1 PL123236U PL12323610U PL68197Y1 PL 68197 Y1 PL68197 Y1 PL 68197Y1 PL 123236 U PL123236 U PL 123236U PL 12323610 U PL12323610 U PL 12323610U PL 68197 Y1 PL68197 Y1 PL 68197Y1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
polymer
microcircuit
cells
culture
glass
Prior art date
Application number
PL123236U
Other languages
English (en)
Other versions
PL123236U1 (pl
Inventor
Elżbieta Jędrych
Karolina Ziółkowska
Maciej Skolimowski
Artur Dybko
Zbigniew Brzózka
Original Assignee
Politechnika Warszawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Warszawska filed Critical Politechnika Warszawska
Priority to PL123236U priority Critical patent/PL68197Y1/pl
Publication of PL123236U1 publication Critical patent/PL123236U1/pl
Publication of PL68197Y1 publication Critical patent/PL68197Y1/pl

Links

Landscapes

  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Description

Opis wzoru
Przedmiotem wzoru użytkowego jest mikroukład do hodowli komórkowej stosowany do prowadzenia testów z materiałem biologicznym.
Badania biologiczne związane z hodowlą komórek i ich analizą prowadzone są w klasycznych laboratoriach z wykorzystaniem płytek dołkowych lub szalek Petriego. Wykonywanie badań z materiałem biologicznym w takich warunkach związane jest z pokładaniem ogromnych kosztów związanych z wyposażeniem laboratoriów czy też wykształceniem personelu. Istotne jest też to, iż warunki prowadzenia badań na takich hodowlach nie odzwierciedlają dostatecznie dobrze warunków in vivo. Metody wykorzystywane w laboratoriach biologicznych wymagają ciągłego udoskonalania, a także opracowywania i wprowadzania na rynek nowych urządzeń ze względu na wymagania, jakie są obecnie stawiane prowadzonym pomiarom. Mikrosystemy opisywane w literaturze, przeznaczone do testów komórek, wykonane są najczęściej z jednego rodzaju materiału, mikrowzory wykonywane są w jednej warstwie mikroukładu. Mikroukłady nie są wyposażone w element grzejny. Wykorzystanie miniaturyzacji w tworzeniu nowych urządzeń dedykowanych inżynierii komórkowej, niesie ze sobą wiele korzyści nie tylko ekonomicznych, ale również związanych z przystosowaniem warunków prowadzenia badań do takich, które są najbardziej zbliżone do warunków in vivo.
Znany jest z publikacji K. Ziółkowska i In., Sensor and actuators B: Chemical, 2010, 145:533-542, mikroukład składający się z dwóch płytek - szklanej i polimerowej. W szklanej płytce znajduje się macierz mikrokomór hodowlanych w układzie liniowym, przeznaczonych do prowadzenia hodowli komórek. Mikrokanały, korzystnie meandryczne, utworzone w płytce polimerowej, tworzą generator gradientu stężeń, zawierający dwa kanały wlotowe służące do wprowadzenia dwóch stężeń badanych substancji i kanały wylotowe połączone z mikrokomorami hodowlanymi i łączące mikrokomory hodowlane ze sobą wzdłuż mikroukładu. Od strony dwóch kanałów wlotowych znajdują się trzy mikrokanały, każdy następny etap generatora gradientu stężeń utworzony przez mikrokanały zawiera o jeden mikrokanał więcej. W ostatnim etapie generatora stężeń utworzonym przez mikrokanały znajduje się taka liczba mikrokanałów, która odpowiada liczbie mikrokomór hodowlanych. W trakcie przepływu substancji przez generator gradientu stężeń następuje wymieszanie badanych substancji i tworzenie różnych stężeń. Pozwala to na otrzymanie macierzy mikrokomór z tyloma stężeniami badanej substancji w jednym kroku ile jest linii mikrokomór hodowlanych. Ponadto mikrosystem zawiera wywiercony w płytce polimerowej otwór do wprowadzenia komórek do mikroukładu oraz pożywek hodowlanych.
Mikroukład według powyższej publikacji nie pozwala na zapewnienie stabilnej i ściśle określonej temperatury, koniecznej w trakcie badań z materiałem biologicznym.
Mikroukład według wzoru użytkowego zawiera przezroczystą grzałkę z kontaktami elektrycznymi. Umieszczona jest ona na spodniej stronie płytki szklanej. Grzałka może być wykonana z tlenku indowo-cynowego lub przezroczystego polimeru przewodzącego. Kontakty elektryczne grzałki wykonano metodą sitodruku z wykorzystaniem pasty srebrowej.
Wykonanie mikroukładu do hodowli komórkowej rozpoczyna się od zaprojektowania przebiegu mikrokanałów przepływowych i miejsca wzrostu komórek stanowiących mikrokomory. W szkle wykonano mikrokomory z wykorzystaniem fotolitografii i mokrego trawienia. Materiał światłoczuły umieszcza się na płytce szklanej i naświetla go światłem UV przez 2,5 min, w ten sposób otrzymując tzw. pieczątkę. Uzyskaną pieczątkę wywołuje się w roztworze HF:NH4F (6:1) przez 30 minut. Po przeciwnej stronie płytki szklanej wykonano grzałkę nanosząc polimer przewodzący oraz pastę srebrową za pomocą sitodruku. Mikrowzory w płytce polimerowej wytwarzane są za pomocą fotolitografii i metody odlewu. Na wykonaną pieczątkę, z wypukłą strukturą, wylewa się płynny prepolimer, sieciuje w temperaturze 70°C. Po 60 minutach otrzymuje się wzór w płytce polimerowej. Usieciowaną strukturę w płytce polimerowej zamraża się w ciekłym azocie, a następnie wywierca otwory pełniące rolę wlotu badanych substancji i wlotu służącego do wprowadzania komórek. Wykonane płytki: szklaną i polimerową połączono ze sobą z wykorzystaniem plazmy tlenowej, a w wykonanych otworach umieszczono wężyki doprowadzające roztwory do mikroukładu. Tak przygotowany mikrosystem jest gotowy do użycia. Przed rozpoczęciem prowadzenia badań z materiałem biologicznym mikroukład wysterylizowano.
Mikrosystem umożliwia prowadzenie hodowli zarówno nowotworowych jak i prawidłowych komórek w stabilnej i ściśle określonej temperaturze, koniecznej w trakcie badań z materiałem biologicznym.
Mikroukład do hodowli komórek według wzoru został przedstawiony na rysunku Fig. 1 w rzucie ukośnym.

Claims (2)

  1. Mikroukład według wzoru stanowi hybrydowy system składający się z płytki szklanej 1 ze szkła sodowego oraz płytki polimerowej 2 z poli(dimetylosiloksanu) (PDMS). Płytka szklana 1 i płytka polimerowa 2 są ze sobą trwale połączone przy użyciu plazmy tlenowej, zapewniając uszczelnienie mi-krowzorów. Materiały wykorzystane do wykonania mikroukładu zostały wyselekcjonowane ze względu na ich właściwości chemiczne, które umożliwiają prowadzenie badań z materiałem biologicznym. Ponadto ze względu na przezroczystość użytych materiałów możliwa jest obserwacja zmian morfologii komórek w czasie rzeczywistym, jak również możliwość wykonania mikrosystemu z wykorzystaniem względnie tanich technologii. W mikroukładzie, w płytce szklanej 1 znajduje się macierz 5x5 mikro-komór hodowlanych 3 o średnicy 1000 μίτι i głębokości 30 μΐη, przeznaczonych do prowadzenia hodowli komórek. Mikrokanały 4, utworzone w płytce polimerowej 2, o szerokości 100 μίτι i głębokości 50 μΐη, tworzą generator gradientu stężeń, zawierający dwa kanały wlotowe 5a i 5b służące do wprowadzenia dwóch stężeń badanych substancji i pięć kanałów wylotowych 6 połączonych z mikrokomorami hodowlanymi 3. W trakcie przepływu substancji przez generator gradientu stężeń następuje wymieszanie badanych substancji i tworzenie różnych stężeń. Pozwala to na otrzymanie macierzy mikro-komór z pięcioma stężeniami badanej substancji w jednym kroku. Ponadto mikrosystem zawiera wywiercony w płytce polimerowej otwór 7 służący do wprowadzenia komórek do mikroukładu oraz pożywek hodowlanych. W celu zapewnienia stabilnej i ściśle określonej temperatury, koniecznej w trakcie prowadzenia badań z materiałem biologicznym, w mikrosystemie znajduje się przezroczysta grzałka 8. Umieszczona jest ona na spodniej stronie płytki szklanej 1. Grzałkę 8 wykonano z tlenku indowo--cynowego. Kontakty elektryczne 9 grzałki 8 wykonano metodą sitodruku z wykorzystaniem pasty srebrowej. Wykonanie mikroukładu do hodowli komórkowej rozpoczyna się od zaprojektowania przebiegu mikrokanałów przepływowych 4 i miejsca wzrostu komórek stanowiących mikrokomory 3. W szkle wykonano mikrokomory 3 z wykorzystaniem fotolitografii i mokrego trawienia. Materiał światłoczuły umieszcza się na płytce szklanej i naświetla go światłem UV przez 2,5 min, w ten sposób otrzymując tzw. pieczątkę. Uzyskaną pieczątkę wywołuje się w roztworze HF:NH4F (6:1) przez 30 minut. Po przeciwnej stronie płytki szklanej 2 wykonano grzałkę 8 nanosząc polimer przewodzący oraz pastę srebrową stanowiącą kontakty elektryczne 9 za pomocą sitodruku. Mikrowzory w płytce polimerowej 2 wytwarzane są za pomocą fotolitografii i metody odlewu. Na wykonaną pieczątkę, z wypukłą strukturą, wylewa się płynny prepolimer, sieciuje w temperaturze 70°C. Po 60 minutach otrzymuje się wzór w płytce polimerowej
  2. 2. Usieciowaną strukturę w płytce polimerowej 2 zamraża się w ciekłym azocie, a następnie wywierca otwory 5a i 5b pełniące rolę wlotu badanych substancji i wlotu 7 służącego do wprowadzania komórek. Wykonane płytki: szklaną 1 i polimerową 2 połączono ze sobą z wykorzystaniem plazmy tlenowej, a w wykonanych otworach umieszczono wężyki doprowadzające roztwory do mikroukładu. Tak przygotowany mikrosystem jest gotowy do użycia. Przed rozpoczęciem prowadzenia badań z materiałem biologicznym mikroukład wysterylizowano (70% etanolem i światłem UV) i wprowadzono pożywkę hodowlaną. Następnie przez wlot 7 wprowadzono zawiesinę komórek adherent-nych A549 komórki nowotworowe płuc lub HT-29 - komórki nowotworowe jelita grubego o gęstości ok. 1*106 komórek/cm3, inkubowano je przez 24h w inkubatorze w t=37°C, C02=5%. Komórki wzrastały w mikrokomorach hodowlanych 3 przez 24 godziny. Następnie wlotami 5a i 5b wprowadzono substancję (5-fluorouracyl) o stężeniu 300 μΜ 5a i ΟμΜ 5b. Na końcach generatora gradientu stężeń 6 i w mikrokomorach 3 otrzymano pięć różnych stężeń badanej substancji. Po 24h działania związku określono żywotność komórek z wykorzystaniem barwienia różnicowego roztworem jodku propidyny (PI) i calceiny AM, który wprowadzono wlotem 7. Grzałka 8 zapewniała kontrolę temperatury w trakcie prowadzenia testów. Zastrzeżenia ochronne 1. Mikroukład do hodowli komórkowej, składający się z dwóch połączonych płytek - szklanej (1) i polimerowej (2), w szklanej płytce (1) znajduje się macierz mikrokomór hodowlanych (3) w układzie liniowym a w płytce polimerowej (2) znajdują się mikrokanały (4) tworzące generator gradientu stężeń, zawierający dwa kanały wlotowe (5a) i (5b) do wprowadzenia dwóch stężeń badanych substancji i kanały wylotowe (6) połączone z mikrokomorami hodowlanymi (3) i łączące mikrokomory hodowlane (3) ze sobą wzdłuż mikroukładu, przy czym od strony dwóch kanałów wlotowych (5a) i (5b) znajdują się trzy mikrokanały (4), każdy następny etap generatora gradientu stężeń utworzony przez
PL123236U 2010-12-13 2010-12-13 Mikroukład do hodowli komórkowej PL68197Y1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL123236U PL68197Y1 (pl) 2010-12-13 2010-12-13 Mikroukład do hodowli komórkowej

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL123236U PL68197Y1 (pl) 2010-12-13 2010-12-13 Mikroukład do hodowli komórkowej

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL123236U1 PL123236U1 (pl) 2015-03-02
PL68197Y1 true PL68197Y1 (pl) 2016-01-29

Family

ID=52574603

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL123236U PL68197Y1 (pl) 2010-12-13 2010-12-13 Mikroukład do hodowli komórkowej

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL68197Y1 (pl)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL127216U1 (pl) * 2018-04-05 2019-10-07 Politechnika Warszawska Wielofunkcyjny mikrosystem przepływowy

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114653640A (zh) * 2022-03-14 2022-06-24 天津市胸科医院 药物开发用细胞生长抑制实验装置

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL127216U1 (pl) * 2018-04-05 2019-10-07 Politechnika Warszawska Wielofunkcyjny mikrosystem przepływowy

Also Published As

Publication number Publication date
PL123236U1 (pl) 2015-03-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Abuwatfa et al. Scaffold-based 3D cell culture models in cancer research
Mao et al. Bioprinting of in vitro tumor models for personalized cancer treatment: a review
Wang et al. Three-dimensional in vitro cancer models: a short review
Dereli-Korkut et al. Three dimensional microfluidic cell arrays for ex vivo drug screening with mimicked vascular flow
CN103080294B (zh) 细胞培养容器及使用该容器的细胞培养方法
CN102156158B (zh) 拓扑图式化神经细胞网络培养测量微流控芯片装置
CN111218404A (zh) 一种仿生多器官芯片及其制备方法和应用
Gil et al. Cancer models on chip: paving the way to large‐scale trial applications
CN101223268A (zh) 具有生物屏障的基于药代动力学的培养系统
WO2008028241A1 (en) Microbioreactor
CN110331096A (zh) 模拟肿瘤微环境的微流控芯片及肿瘤微环境的构建方法
Johnson et al. The applications and challenges of the development of in vitro tumor microenvironment chips
CN104498331A (zh) 一种单通道双浓度梯度微流控芯片的制备方法及其应用
Zuchowska et al. A549 and MRC-5 cell aggregation in a microfluidic Lab-on-a-chip system
CN104611224A (zh) 一种细胞共培养微流控芯片及其应用
Jaeger et al. Microfabricated polymeric vessel mimetics for 3-D cancer cell culture
CN212316139U (zh) 一种仿生多器官芯片
CN101451105B (zh) 一种毛细血管模型的构建方法及其微系统芯片
Liu et al. Microfluidic liquid-air dual-gradient chip for synergic effect bio-evaluation of air pollutant
CN106479893B (zh) 一种多种细胞图案化共培养的装置及方法
CN114525208A (zh) 一种肠器官仿生芯片
PL68197Y1 (pl) Mikroukład do hodowli komórkowej
Wang et al. Density regulation and localization of cell clusters by self-assembled femtosecond-laser-fabricated micropillar arrays
CN108504571B (zh) 一种人工肝小叶功能单元的构建装置及构建方法
Eş et al. Monte Carlo simulation‐guided design for size‐tuned tumor spheroid formation in 3D printed microwells