PL68197Y1 - Mikroukład do hodowli komórkowej - Google Patents
Mikroukład do hodowli komórkowejInfo
- Publication number
- PL68197Y1 PL68197Y1 PL123236U PL12323610U PL68197Y1 PL 68197 Y1 PL68197 Y1 PL 68197Y1 PL 123236 U PL123236 U PL 123236U PL 12323610 U PL12323610 U PL 12323610U PL 68197 Y1 PL68197 Y1 PL 68197Y1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- polymer
- microcircuit
- cells
- culture
- glass
- Prior art date
Links
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
Opis wzoru
Przedmiotem wzoru użytkowego jest mikroukład do hodowli komórkowej stosowany do prowadzenia testów z materiałem biologicznym.
Badania biologiczne związane z hodowlą komórek i ich analizą prowadzone są w klasycznych laboratoriach z wykorzystaniem płytek dołkowych lub szalek Petriego. Wykonywanie badań z materiałem biologicznym w takich warunkach związane jest z pokładaniem ogromnych kosztów związanych z wyposażeniem laboratoriów czy też wykształceniem personelu. Istotne jest też to, iż warunki prowadzenia badań na takich hodowlach nie odzwierciedlają dostatecznie dobrze warunków in vivo. Metody wykorzystywane w laboratoriach biologicznych wymagają ciągłego udoskonalania, a także opracowywania i wprowadzania na rynek nowych urządzeń ze względu na wymagania, jakie są obecnie stawiane prowadzonym pomiarom. Mikrosystemy opisywane w literaturze, przeznaczone do testów komórek, wykonane są najczęściej z jednego rodzaju materiału, mikrowzory wykonywane są w jednej warstwie mikroukładu. Mikroukłady nie są wyposażone w element grzejny. Wykorzystanie miniaturyzacji w tworzeniu nowych urządzeń dedykowanych inżynierii komórkowej, niesie ze sobą wiele korzyści nie tylko ekonomicznych, ale również związanych z przystosowaniem warunków prowadzenia badań do takich, które są najbardziej zbliżone do warunków in vivo.
Znany jest z publikacji K. Ziółkowska i In., Sensor and actuators B: Chemical, 2010, 145:533-542, mikroukład składający się z dwóch płytek - szklanej i polimerowej. W szklanej płytce znajduje się macierz mikrokomór hodowlanych w układzie liniowym, przeznaczonych do prowadzenia hodowli komórek. Mikrokanały, korzystnie meandryczne, utworzone w płytce polimerowej, tworzą generator gradientu stężeń, zawierający dwa kanały wlotowe służące do wprowadzenia dwóch stężeń badanych substancji i kanały wylotowe połączone z mikrokomorami hodowlanymi i łączące mikrokomory hodowlane ze sobą wzdłuż mikroukładu. Od strony dwóch kanałów wlotowych znajdują się trzy mikrokanały, każdy następny etap generatora gradientu stężeń utworzony przez mikrokanały zawiera o jeden mikrokanał więcej. W ostatnim etapie generatora stężeń utworzonym przez mikrokanały znajduje się taka liczba mikrokanałów, która odpowiada liczbie mikrokomór hodowlanych. W trakcie przepływu substancji przez generator gradientu stężeń następuje wymieszanie badanych substancji i tworzenie różnych stężeń. Pozwala to na otrzymanie macierzy mikrokomór z tyloma stężeniami badanej substancji w jednym kroku ile jest linii mikrokomór hodowlanych. Ponadto mikrosystem zawiera wywiercony w płytce polimerowej otwór do wprowadzenia komórek do mikroukładu oraz pożywek hodowlanych.
Mikroukład według powyższej publikacji nie pozwala na zapewnienie stabilnej i ściśle określonej temperatury, koniecznej w trakcie badań z materiałem biologicznym.
Mikroukład według wzoru użytkowego zawiera przezroczystą grzałkę z kontaktami elektrycznymi. Umieszczona jest ona na spodniej stronie płytki szklanej. Grzałka może być wykonana z tlenku indowo-cynowego lub przezroczystego polimeru przewodzącego. Kontakty elektryczne grzałki wykonano metodą sitodruku z wykorzystaniem pasty srebrowej.
Wykonanie mikroukładu do hodowli komórkowej rozpoczyna się od zaprojektowania przebiegu mikrokanałów przepływowych i miejsca wzrostu komórek stanowiących mikrokomory. W szkle wykonano mikrokomory z wykorzystaniem fotolitografii i mokrego trawienia. Materiał światłoczuły umieszcza się na płytce szklanej i naświetla go światłem UV przez 2,5 min, w ten sposób otrzymując tzw. pieczątkę. Uzyskaną pieczątkę wywołuje się w roztworze HF:NH4F (6:1) przez 30 minut. Po przeciwnej stronie płytki szklanej wykonano grzałkę nanosząc polimer przewodzący oraz pastę srebrową za pomocą sitodruku. Mikrowzory w płytce polimerowej wytwarzane są za pomocą fotolitografii i metody odlewu. Na wykonaną pieczątkę, z wypukłą strukturą, wylewa się płynny prepolimer, sieciuje w temperaturze 70°C. Po 60 minutach otrzymuje się wzór w płytce polimerowej. Usieciowaną strukturę w płytce polimerowej zamraża się w ciekłym azocie, a następnie wywierca otwory pełniące rolę wlotu badanych substancji i wlotu służącego do wprowadzania komórek. Wykonane płytki: szklaną i polimerową połączono ze sobą z wykorzystaniem plazmy tlenowej, a w wykonanych otworach umieszczono wężyki doprowadzające roztwory do mikroukładu. Tak przygotowany mikrosystem jest gotowy do użycia. Przed rozpoczęciem prowadzenia badań z materiałem biologicznym mikroukład wysterylizowano.
Mikrosystem umożliwia prowadzenie hodowli zarówno nowotworowych jak i prawidłowych komórek w stabilnej i ściśle określonej temperaturze, koniecznej w trakcie badań z materiałem biologicznym.
Mikroukład do hodowli komórek według wzoru został przedstawiony na rysunku Fig. 1 w rzucie ukośnym.
Claims (2)
- Mikroukład według wzoru stanowi hybrydowy system składający się z płytki szklanej 1 ze szkła sodowego oraz płytki polimerowej 2 z poli(dimetylosiloksanu) (PDMS). Płytka szklana 1 i płytka polimerowa 2 są ze sobą trwale połączone przy użyciu plazmy tlenowej, zapewniając uszczelnienie mi-krowzorów. Materiały wykorzystane do wykonania mikroukładu zostały wyselekcjonowane ze względu na ich właściwości chemiczne, które umożliwiają prowadzenie badań z materiałem biologicznym. Ponadto ze względu na przezroczystość użytych materiałów możliwa jest obserwacja zmian morfologii komórek w czasie rzeczywistym, jak również możliwość wykonania mikrosystemu z wykorzystaniem względnie tanich technologii. W mikroukładzie, w płytce szklanej 1 znajduje się macierz 5x5 mikro-komór hodowlanych 3 o średnicy 1000 μίτι i głębokości 30 μΐη, przeznaczonych do prowadzenia hodowli komórek. Mikrokanały 4, utworzone w płytce polimerowej 2, o szerokości 100 μίτι i głębokości 50 μΐη, tworzą generator gradientu stężeń, zawierający dwa kanały wlotowe 5a i 5b służące do wprowadzenia dwóch stężeń badanych substancji i pięć kanałów wylotowych 6 połączonych z mikrokomorami hodowlanymi 3. W trakcie przepływu substancji przez generator gradientu stężeń następuje wymieszanie badanych substancji i tworzenie różnych stężeń. Pozwala to na otrzymanie macierzy mikro-komór z pięcioma stężeniami badanej substancji w jednym kroku. Ponadto mikrosystem zawiera wywiercony w płytce polimerowej otwór 7 służący do wprowadzenia komórek do mikroukładu oraz pożywek hodowlanych. W celu zapewnienia stabilnej i ściśle określonej temperatury, koniecznej w trakcie prowadzenia badań z materiałem biologicznym, w mikrosystemie znajduje się przezroczysta grzałka 8. Umieszczona jest ona na spodniej stronie płytki szklanej 1. Grzałkę 8 wykonano z tlenku indowo--cynowego. Kontakty elektryczne 9 grzałki 8 wykonano metodą sitodruku z wykorzystaniem pasty srebrowej. Wykonanie mikroukładu do hodowli komórkowej rozpoczyna się od zaprojektowania przebiegu mikrokanałów przepływowych 4 i miejsca wzrostu komórek stanowiących mikrokomory 3. W szkle wykonano mikrokomory 3 z wykorzystaniem fotolitografii i mokrego trawienia. Materiał światłoczuły umieszcza się na płytce szklanej i naświetla go światłem UV przez 2,5 min, w ten sposób otrzymując tzw. pieczątkę. Uzyskaną pieczątkę wywołuje się w roztworze HF:NH4F (6:1) przez 30 minut. Po przeciwnej stronie płytki szklanej 2 wykonano grzałkę 8 nanosząc polimer przewodzący oraz pastę srebrową stanowiącą kontakty elektryczne 9 za pomocą sitodruku. Mikrowzory w płytce polimerowej 2 wytwarzane są za pomocą fotolitografii i metody odlewu. Na wykonaną pieczątkę, z wypukłą strukturą, wylewa się płynny prepolimer, sieciuje w temperaturze 70°C. Po 60 minutach otrzymuje się wzór w płytce polimerowej
- 2. Usieciowaną strukturę w płytce polimerowej 2 zamraża się w ciekłym azocie, a następnie wywierca otwory 5a i 5b pełniące rolę wlotu badanych substancji i wlotu 7 służącego do wprowadzania komórek. Wykonane płytki: szklaną 1 i polimerową 2 połączono ze sobą z wykorzystaniem plazmy tlenowej, a w wykonanych otworach umieszczono wężyki doprowadzające roztwory do mikroukładu. Tak przygotowany mikrosystem jest gotowy do użycia. Przed rozpoczęciem prowadzenia badań z materiałem biologicznym mikroukład wysterylizowano (70% etanolem i światłem UV) i wprowadzono pożywkę hodowlaną. Następnie przez wlot 7 wprowadzono zawiesinę komórek adherent-nych A549 komórki nowotworowe płuc lub HT-29 - komórki nowotworowe jelita grubego o gęstości ok. 1*106 komórek/cm3, inkubowano je przez 24h w inkubatorze w t=37°C, C02=5%. Komórki wzrastały w mikrokomorach hodowlanych 3 przez 24 godziny. Następnie wlotami 5a i 5b wprowadzono substancję (5-fluorouracyl) o stężeniu 300 μΜ 5a i ΟμΜ 5b. Na końcach generatora gradientu stężeń 6 i w mikrokomorach 3 otrzymano pięć różnych stężeń badanej substancji. Po 24h działania związku określono żywotność komórek z wykorzystaniem barwienia różnicowego roztworem jodku propidyny (PI) i calceiny AM, który wprowadzono wlotem 7. Grzałka 8 zapewniała kontrolę temperatury w trakcie prowadzenia testów. Zastrzeżenia ochronne 1. Mikroukład do hodowli komórkowej, składający się z dwóch połączonych płytek - szklanej (1) i polimerowej (2), w szklanej płytce (1) znajduje się macierz mikrokomór hodowlanych (3) w układzie liniowym a w płytce polimerowej (2) znajdują się mikrokanały (4) tworzące generator gradientu stężeń, zawierający dwa kanały wlotowe (5a) i (5b) do wprowadzenia dwóch stężeń badanych substancji i kanały wylotowe (6) połączone z mikrokomorami hodowlanymi (3) i łączące mikrokomory hodowlane (3) ze sobą wzdłuż mikroukładu, przy czym od strony dwóch kanałów wlotowych (5a) i (5b) znajdują się trzy mikrokanały (4), każdy następny etap generatora gradientu stężeń utworzony przez
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL123236U PL68197Y1 (pl) | 2010-12-13 | 2010-12-13 | Mikroukład do hodowli komórkowej |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL123236U PL68197Y1 (pl) | 2010-12-13 | 2010-12-13 | Mikroukład do hodowli komórkowej |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL123236U1 PL123236U1 (pl) | 2015-03-02 |
| PL68197Y1 true PL68197Y1 (pl) | 2016-01-29 |
Family
ID=52574603
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL123236U PL68197Y1 (pl) | 2010-12-13 | 2010-12-13 | Mikroukład do hodowli komórkowej |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL68197Y1 (pl) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL127216U1 (pl) * | 2018-04-05 | 2019-10-07 | Politechnika Warszawska | Wielofunkcyjny mikrosystem przepływowy |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN114653640A (zh) * | 2022-03-14 | 2022-06-24 | 天津市胸科医院 | 药物开发用细胞生长抑制实验装置 |
-
2010
- 2010-12-13 PL PL123236U patent/PL68197Y1/pl unknown
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL127216U1 (pl) * | 2018-04-05 | 2019-10-07 | Politechnika Warszawska | Wielofunkcyjny mikrosystem przepływowy |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL123236U1 (pl) | 2015-03-02 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Abuwatfa et al. | Scaffold-based 3D cell culture models in cancer research | |
| Mao et al. | Bioprinting of in vitro tumor models for personalized cancer treatment: a review | |
| Wang et al. | Three-dimensional in vitro cancer models: a short review | |
| Dereli-Korkut et al. | Three dimensional microfluidic cell arrays for ex vivo drug screening with mimicked vascular flow | |
| CN103080294B (zh) | 细胞培养容器及使用该容器的细胞培养方法 | |
| CN102156158B (zh) | 拓扑图式化神经细胞网络培养测量微流控芯片装置 | |
| CN111218404A (zh) | 一种仿生多器官芯片及其制备方法和应用 | |
| Gil et al. | Cancer models on chip: paving the way to large‐scale trial applications | |
| CN101223268A (zh) | 具有生物屏障的基于药代动力学的培养系统 | |
| WO2008028241A1 (en) | Microbioreactor | |
| CN110331096A (zh) | 模拟肿瘤微环境的微流控芯片及肿瘤微环境的构建方法 | |
| Johnson et al. | The applications and challenges of the development of in vitro tumor microenvironment chips | |
| CN104498331A (zh) | 一种单通道双浓度梯度微流控芯片的制备方法及其应用 | |
| Zuchowska et al. | A549 and MRC-5 cell aggregation in a microfluidic Lab-on-a-chip system | |
| CN104611224A (zh) | 一种细胞共培养微流控芯片及其应用 | |
| Jaeger et al. | Microfabricated polymeric vessel mimetics for 3-D cancer cell culture | |
| CN212316139U (zh) | 一种仿生多器官芯片 | |
| CN101451105B (zh) | 一种毛细血管模型的构建方法及其微系统芯片 | |
| Liu et al. | Microfluidic liquid-air dual-gradient chip for synergic effect bio-evaluation of air pollutant | |
| CN106479893B (zh) | 一种多种细胞图案化共培养的装置及方法 | |
| CN114525208A (zh) | 一种肠器官仿生芯片 | |
| PL68197Y1 (pl) | Mikroukład do hodowli komórkowej | |
| Wang et al. | Density regulation and localization of cell clusters by self-assembled femtosecond-laser-fabricated micropillar arrays | |
| CN108504571B (zh) | 一种人工肝小叶功能单元的构建装置及构建方法 | |
| Eş et al. | Monte Carlo simulation‐guided design for size‐tuned tumor spheroid formation in 3D printed microwells |