PL247500B1 - Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu - Google Patents

Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu

Info

Publication number
PL247500B1
PL247500B1 PL441843A PL44184322A PL247500B1 PL 247500 B1 PL247500 B1 PL 247500B1 PL 441843 A PL441843 A PL 441843A PL 44184322 A PL44184322 A PL 44184322A PL 247500 B1 PL247500 B1 PL 247500B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
propolis
extract
extractant
herbal
ethanol
Prior art date
Application number
PL441843A
Other languages
English (en)
Other versions
PL441843A1 (pl
Inventor
Małgorzata Dżugan
Michał Miłek
Ewelina Sidor
Dorota Grabek-Lejko
Anna Pasternakiewicz
Ewa Ciszkowicz
Andrzej Łyskowski
Original Assignee
Podkarpackie Centrum Innowacji Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Univ Rzeszowski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Podkarpackie Centrum Innowacji Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia, Univ Rzeszowski filed Critical Podkarpackie Centrum Innowacji Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Priority to PL441843A priority Critical patent/PL247500B1/pl
Publication of PL441843A1 publication Critical patent/PL441843A1/pl
Publication of PL247500B1 publication Critical patent/PL247500B1/pl

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23B—PRESERVATION OF FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES; CHEMICAL RIPENING OF FRUIT OR VEGETABLES
    • A23B2/00—Preservation of foods or foodstuffs, in general
    • A23B2/70—Preservation of foods or foodstuffs, in general by treatment with chemicals
    • A23B2/725—Preservation of foods or foodstuffs, in general by treatment with chemicals in the form of liquids or solids
    • A23B2/729—Organic compounds; Microorganisms; Enzymes
    • A23B2/733—Compounds of undetermined constitution obtained from animals or plants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; PREPARATION OR TREATMENT THEREOF
    • A23L21/00—Marmalades, jams, jellies or the like; Products from apiculture; Preparation or treatment thereof
    • A23L21/20—Products from apiculture, e.g. royal jelly or pollen; Substitutes therefor
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; PREPARATION OR TREATMENT THEREOF
    • A23L27/00—Spices; Flavouring agents or condiments; Artificial sweetening agents; Table salts; Dietetic salt substitutes; Preparation or treatment thereof
    • A23L27/10—Natural spices, flavouring agents or condiments; Extracts thereof
    • A23L27/11—Natural spices, flavouring agents or condiments; Extracts thereof obtained by solvent extraction

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Jellies, Jams, And Syrups (AREA)
  • Preparation Of Fruits And Vegetables (AREA)

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia jest sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu, charakteryzujący się tym, że obejmuje etapy, w których suszone zioła jadalne w ilości wynoszącej co najmniej 5 g/100 ml ekstrahenta, korzystnie co najmniej 10 g/100 ml ekstrahenta, przy czym ekstrahentem jest roztwór etanolu w wodzie o stężeniu wagowym wynoszącym co najmniej 50%, korzystnie co najmniej 60%, a najkorzystniej 70%, podaje się ekstrakcji w łaźni ultradźwiękowej; otrzymany etanolowy ekstrakt z ziół oddziela się od suszu na drodze filtracji; propolis w ilości wynoszącej co najmniej 5 g/100 ml ekstrahenta, korzystnie co najmniej 10 g/100 ml ekstrahenta, przy czym ekstrahentem jest wyżej otrzymany etanolowy ekstrakt z ziół, podaje się maceracji (korzystnie 5 dni) z okresowym wytrząsaniem, uzyskując po odfiltrowaniu surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania preparatu propolisowo-ziołowego w formie ciekłej lub stałej na bazie propolisu i roślin leczniczych, wykazującego zwiększone właściwości antyoksydacyjne i przeciwdrobnoustrojowe. Preparat może znaleźć zastosowanie jako biokonserwant do żywności, wykazujący skojarzone działanie propolisu (przeciwdrobnoustrojowe) oraz ziół (aromatyzujące, zapach zastosowanych ziół maskuje charakterystyczny zapach propolisu). Preparat wykazuje wzmocnione właściwości antyoksydacyjne wynikające z synergizmu użytych surowców.
Propolis, nazywany inaczej kitem pszczelim jest nierozpuszczalnym w wodzie produktem o bardzo złożonym składzie, stanowi mieszaninę żywic, wosków, pyłków oraz substancji garbnikowych, polifenolowych i białkowych, zmienną w zależności od pochodzenia. Propolis jest najczęściej stosowanym środkiem apiterapeutycznym, wykazującym wysoką aktywność farmakologiczną, głównie silne właściwości przeciwutleniające i przeciwdrobnoustrojowe wobec szerokiego spektrum bakterii, grzybów i wirusów. Najczęściej stosuje się ekstrakt etanolowy propolisu (EEP), zawierający liczne minerały, witaminy i polifenole, który w wodzie tworzy zawiesinę. Na rynku występują też bezalkoholowe preparaty propolisowe, uzyskane np. z użyciem glicerolu roślinnego. Każdy preparat na bazie propolisu wykazuje specyficzny, określany jako przyjemny, zapach surowego propolisu (woskowo-żywiczny).
Ze względu na wyjątkowe właściwości bakteriobójcze propolis jest intensywnie badany pod kątem zastosowania do konserwacji żywności, hamowania procesów mikrobiologicznego psucia się żywności. Ograniczeniem zastosowania propolisu w żywności jest jego intensywny zapach, który wpływa negatywnie na cechy organoleptyczne utrwalanego produktu obniżając akceptowalność konsumencką produktu.
W celu uniknięcia tej niedogodności w proponowanym rozwiązaniu zastosowano prosty pomysł połączenia propolisu z odpowiednimi aromatycznymi roślinami, co pozwala na zamaskowanie obcego dla żywności zapachu propolisu aromatem ziół. Innowacją proponowanego rozwiązania jest zastosowanie do ekstrakcji propolisu wcześniej przygotowanego wyciągu z ziół. Korzyścią takiego połączenia jest uzyskanie preparatu o akceptowalnym zapachu i dodatkowo wzmocnionych właściwościach antyoksydacyjnych i przeciwdrobnoustrojowych, wynikających z synergizmu składników bioaktywnych propolisu i ziół. Ponadto uzyskany preparat może być przekształcony w formę proszku, na drodze mikrokapsułkowania metodą suszenia rozpyłowego. Zamknięcie preparatu propolisu w kapsułkach mikroskopijnej wielkości, powoduje jego utrwalenie, większą stabilność preparatu, ograniczenie zapachu, który ujawnia się w pełni dopiero w kontakcie z wodą. Proces utrwalania preparatu na drodze suszenia rozpyłowego wymaga wykorzystania nośnika opłaszczającego, np. maltodekstryny niskoscukrzonej, co może zwiększyć wartość energetyczną preparatu (max. 350 kcal/100 g preparatu).
W stanie techniki znane są rozwiązania dotyczące różnych metod uzyskiwania preparatu propolisowego z udziałem ziół, patenty pochodzą głównie z Azji (Chiny). W tych rozwiązaniach wyciągi roślinne mieszane są z ekstraktem propolisu, inaczej niż w zgłaszanym sposobie, gdzie wyciąg ziołowy zastosowano do ekstrakcji propolisu.
I tak, w chińskim zgłoszeniu patentowym CN107495069 A ujawniono naturalny środek konserwujący żywność, który zawiera następujące składniki w częściach wagowych: płyn do ekstrakcji roślin 45-60, metylocyklopentenolon 3-8, trigliceryd kaprylowo-kaprynowy 1-6, propolis 10-15, kwas mirystynowy 10-18, alginian sodu 4-12, kwas cytrynowy 0,1-1,7, polifenole herbaty 0,1-0,9 i likopen 0,2-0,8.
Japońskie zgłoszenie patentowe JP2109963 A2 dotyczy środka konserwującego w postaci roztworu ekstraktu przygotowanego przez ekstrakcję propolisu alkoholem etylowym i zastosowania propolisu jako konserwantu do żywności, a także jego pozyskania na drodze ekstrakcji roztworem etanolu.
Z kolei, koreańskie zgłoszenie patentowe KR20070119855 A dotyczy sposobu wytwarzania konserwantów do żywności. W szczególności opisano sposób przygotowania środka konserwującego żywność, który ma na celu zapobieganie zatruciom pokarmowym przez dezodoryzujące, przeciwgrzybicze i sterylizujące działanie propolisu. Sposób przygotowania środka konserwującego żywność obejmuje etapy: (S10) umieszczenie stałych składników propolisu zebranych z plastra miodu w zamrażarce i zamrożenie ich w niskiej temperaturze; (S20) mielenie zamrożonego propolisu w młynku; (S30) dodanie 70 procent etanolu do zmielonych substancji stałych propolisu i mieszanie mieszaniny w temperaturze 40 stopni Celsjusza w celu stopienia substancji stałych; (S40) mieszanie roztworu propolisu w temperaturze 60 stopni Celsjusza w celu odparowania alkoholu; (S50) suszenie na powietrzu roztworu propolisu, z którego usunięto alkohol, w temperaturze 40 stopni Celsjusza w celu zestalenia roztworu; oraz (S60) napełnianie worka do pakowania sproszkowanym propolisem, a następnie zamykanie worka.
Zgłoszenie to ujawnia sposób pozyskania propolisu, do zastosowania jako konserwantu do żywności, na drodze ekstrakcji roztworem etanolu.
Japońskie zgłoszenie patentowe JP63145208 A2 ujawnia naturalny środek konserwujący zawierający ekstrakt z korzenia lukrecji z rozpuszczalnikiem organicznym oraz ekstrakt z propolisu z rozpuszczalnikiem organicznym jako składnikami aktywnymi w proporcji 2:8-8:2.
Jak widać, w dziedzinie istnieje zapotrzebowanie na nowe środki konserwujące do żywności, zwłaszcza pochodzenia naturalnego, wykorzystujące ich właściwości przeciwbakteryjne, przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe.
Celem niniejszego wynalazku było opracowanie nowego biokonserwantu do żywności na bazie propolisu oraz sposobu jego otrzymywania.
Cel ten został zrealizowany dzięki opracowaniu sposobu otrzymywania preparatu propolisowo-ziołowego w formie ciekłej lub stałej na bazie propolisu i roślin leczniczych, wykazującego zwiększone właściwości antyoksydacyjne i przeciwdrobnoustrojowe.
A zatem, przedmiotem niniejszego wynalazku jest sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu, charakteryzujący się tym, że obejmuje etapy, w których suszone zioła jadalne w ilości wynoszącej co najmniej 5 g/100 ml ekstrahenta, korzystnie co najmniej 10 g/100 ml ekstrahenta, przy czym ekstrahentem jest roztwór etanolu w wodzie o stężeniu wagowym wynoszącym co najmniej 50%, korzystnie co najmniej 60%, a najkorzystniej 70%, podaje się ekstrakcji w łaźni ultradźwiękowej; otrzymany etanolowy ekstrakt z ziół oddziela się od suszu na drodze filtracji; następnie propolis w ilości wynoszącej co najmniej 5 g/100 ml ekstrahenta, korzystnie co najmniej 10 g/100 ml ekstrahenta, przy czym ekstrahentem jest wyżej otrzymany etanolowy ekstrakt z ziół, podaje się maceracji przez co najmniej 3, korzystnie 5 dni z okresowym wytrząsaniem dni i odfiltrowuje przez bibułę, uzyskując surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy.
Korzystnie, surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy zatęża się poprzez próżniowe odparowanie etanolu, po czym dekantuje się wodną fazę górną, uzyskując nierozpuszczalny w wodzie koncentrat ekstraktu.
Korzystnie, surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy albo zatężony koncentrat nierozpuszczalny w wodzie poddaje się suszeniu rozpyłowemu z nośnikiem, przy czym suszeniu poddaje się wodno-etanolową zawiesinę zawierającą:
- surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy w proporcji 10 ml ekstraktu : 100 ml wody destylowanej: nie więcej niż 30 g nośnika albo
- rozcieńczony koncentrat propolisowo-ziołowy (1 ml koncentratu rozpuszczony w 9 ml 70% etanolu) w proporcji 10 ml rozcieńczonego koncentratu: 100 ml wody destylowanej: nie więcej niż 30 g nośnika, przy czym jako nośnik stosuje się pojedynczo lub w kombinacjach maltodekstrynę, niskoscukrzoną maltodekstrynę, gumę arabską, alginian sodu, żelatynę, kazeinę, białka serwatkowe, białka sojowe oraz cyklodekstrynę.
Korzystnie, suszenie prowadzi się przy temperaturze wlotowej powietrza suszącego wynoszącej maksymalnie 160°C, temperaturze wylotowej powietrza wynoszącej maksymalnie 90°C i przepływie 2,33 ml/minutę.
Niniejszy wynalazek i jego efekty przedstawiono na figurach, gdzie:
na Fig. 1 pokazano obraz SEM uzyskanych mikrokapsułek preparatu propolisowo-ziołowego;
na Fig. 2 pokazano kolonie bakteryjne wyrosłe na podłożu PCA po 3 dniach inkubacji (dla mięsa drobiowego poddanego utrwaleniu surowym ekstraktem propolisowym i propolisowo-ziołowym);
na Fig. 3 pokazano kolonie drożdży wyrosłe na podłożu PDA po 3 dniach inkubacji (dla mięsa drobiowego poddanego utrwaleniu surowym ekstraktem propolisowym i propolisowo-ziołowym);
na Fig. 4 pokazano kolonie bakteryjne wyrosłe na podłożu PCA po 3 dniach inkubacji (dla pasztetu pieczonego utrwalone do surowym ekstraktem propolisowo-ziołowym);
na Fig. 5 pokazano kolonie drożdży wyrosłe na podłożu PDA po 3 dniach inkubacji (dla pasztetu pieczonego utrwalonego surowym ekstraktem propolisowo-ziołowym);
na Fig. 6 pokazano próbki mięsa drobiowego przechowywane w temperaturze pokojowej (około 22°C) przez 72 godziny (poddanego utrwaleniu proszkiem propolisowo-ziołowym);
na Fig. 7 pokazano kolonie bakteryjne wyrosłe na podłożach PCA po 3 dniach inkubacji (mięso drobiowe utrwalone proszkiem propolisowo-ziołowym);
na Fig. 8 pokazano kolonie drożdży i grzybów wyrosłe na podłożu PDA po 5 dniach inkubacji (mięso drobiowe utrwalone proszkiem propolisowo-ziołowym);
na Fig. 9 pokazano próbki surowego soku jabłkowego przechowywane w temperaturze pokojowej przez 96 godzin (utrwalonego proszkiem propolisowo-ziołowym);
na Fig. 10 pokazano kolonie bakterii wyrosłe na podłożu PCA po 3 dniach inkubacji (sok jabłkowy utrwalony proszkiem propolisowo-ziołowym);
na Fig. 11 pokazano kolonie drożdży i grzybów wyrosłe na podłożu PDA po 5 dniach inkubacji (sok jabłkowy utrwalony proszkiem propolisowo-ziołowym, rozcieńczenie 10-3).
na Fig. 12 pokazano kolonie drożdży i grzybów wyrosłe na podłożu PDA po 5 dniach inkubacji (sok jabłkowy utrwalony proszkiem propolisowo-ziołowym, rozcieńczenie 10-1).
Preparat do zastosowania jako biokonserwant do żywności o zapachu zastosowanych ziół maskujących charakterystyczny zapach propolisu może być wytwarzany w dwóch postaciach:
- w postaci cieczy (mniej przetworzonej), uzyskanej na drodze ekstrakcji propolisu z zastosowaniem wyciągu ziołowego (surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy), który może być zatężony metodą próżniową,
- w postaci stabilnego proszku uzyskanego metodą suszenia rozpyłowego powyższego surowego lub skoncentrowanego ekstraktu propolisowo-ziołowego.
Sposób według niniejszego wynalazku polega na tym, że ekstrakt propolisu wzbogacony w polifenole i związki zapachowe ziół uzyskuje się dzięki zastosowaniu do ekstrakcji propolisu wyciągu z roślin aromatycznych w 70% etanolu, zamiast stosowanego do klasycznej ekstrakcji 70% etanolu. Surowy ekstrakt propolisu uzyskuje się na drodze maceracji propolisu z okresowym wytrząsaniem (korzystnie 5 dni) z użyciem wcześniej przygotowanego wyciągu z ziół w 70% etanolu (w proporcji 10 g suszu 100 ml 70% etanolu), który oddziela się przez filtrację. Tak uzyskany surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy (o zawartości związków polifenolowych ogółem min. 1000 mg GAE/100 ml) wykazuje większą skuteczność biologiczną przeciwko bakteriom i drożdżom. Równocześnie posiada korzystne cechy zapachowe (składniki ziół maskują zapach propolisu, przyjemny ale obcy dla żywności), pozwalające na jego zastosowanie w wybranych rodzajach żywności.
Wybór ziół warunkuje zastosowanie preparatu, np. do mięsa propolis+zioła prowansalskie, do soku jabłkowego propolis+mięta. Surowy ekstrakt może być przetworzony w proszek na drodze koncentracji próżniowej i suszenia rozpyłowego wodno-etanolowej zawiesiny złożonej z surowego ekstraktu propolisu, wody i nośnika (np. maltodekstryny niskoscukrzonej w proporcji 10 ml : 100 ml : maksymalnie 30 g nośnika).
Sposób produkcji obejmuje następujące etapy:
1. Przygotowanie etanolowego wyciągu z ziół na drodze ekstrakcji suszonych ziół (przynajmniej 10 g/100 ml) 70% etanolem wspomaganej ultradźwiękami (np. 40 kHz, 20 min, 700 W). Supernatant jest oddzielony od suszu na drodze filtracji. Wyciąg ziołowy zawiera min. 30 mg GAE/100 ml związków polifenolowych, w ocenie organoleptycznej wykazuje zapach specyficzny dla użytych ziół.
2. Uzyskanie surowego ekstraktu propolisowo-ziołowego na drodze maceracji propolisu z okresowym wytrząsaniem z użyciem przygotowanego według punktu 1 wyciągu z ziół w 70% etanolu (10 g propolisu o zawartości maks. 30% zanieczyszczeń nierozpuszczalnych w etanolu/100 ml wyciągu). W przypadku większej zawartości zanieczyszczeń należy zwiększyć proporcjonalnie udział surowca do ekstrakcji (biokonserwant w postaci ciekłej). Surowy ekstrakt, oddzielony na drodze filtracji przez bibułę, może być zatężony kilkunastokrotnie na drodze próżniowego odparowania etanolu i separacji koncentratu (faza dolna, nierozpuszczalna w wodzie a rozpuszczalna w etanolu) przez dekantację fazy wodnej (górna) znad osadu (faza dolna, koncentrat).
3. Otrzymanie preparatu w formie proszku na drodze suszenia rozpyłowego z użyciem nośnika opłaszczającego. Suszeniu poddaje się wodno-etanoIową zawiesinę zawierającą surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy lub rozcieńczony (min. 10-krotnie) koncentrat (faza dolna po zatężaniu surowego ekstraktu), wodę i nośnik w proporcji 10 ml : 100 ml : maks. 30 g. Mikrokapsułkowana forma preparatu ma postać okrągłych ziaren o średnicy około 5-10 μm, wykazuje dobrą stabilność, brak zbrylania się, w wodzie tworzy zawiesinę (powyżej 0,1 g/ml), która wykazuje jasnożółte zabarwienie i zapach charakterystyczny dla zastosowanych ziół. Proszek wykazuje aktywność antyoksydacyjną i przeciwdrobnoustrojową wobec bakterii i drożdży. Ma wygodną formę do stosowania, nie pyli się.
PL 247500 Β1
PRZYKŁADY
Przykład 1: Otrzymywanie surowych ekstraktów propolisowo-ziołowych w formie ciekłej
Wyciąg ziołowy z ziół prowansalskich (suszona przyprawa do żywności, dostępna w handlu) przygotowano w następujący sposób: 10gziółzalano 100 ml 70% etanolu w kolbie, kolbę zamknięto korkiem i poddano ekstrakcji właźni ultradźwiękowej (Sonic 10,40 kHz, 20 min., maks. temp, końcowa 42°C). Próbkę przefiltrowano przez sączek bibułowy (gramatura 84 g/m2). Oddzielony roztwór użyto jako ekstrahent do ekstrakcji propolisu. 10 g rozdrobnionego propolisu zalano 100 ml wyciągu ziołowego, wytrząsano w wytrząsarce laboratoryjnej przez 1 godzinę (Benchmark, 400 rpm). Macerację prowadzono przez 5 dni (120 godz.) bez dostępu światła, raz dziennie wstrząsając. Po upływie wyznaczonego czasu próbki przesączono przez sączek bibułowy (gramatura 84 g/m2). Po zakończonej filtracji, surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy przechowywano szczelnie zamknięty, w temp. 21 ± 2°C bez dostępu światła.
Do oceny aktywności biologicznej uzyskanego preparatu in vitro zastosowano standardowe testy kolorymetryczne wykorzystywane w analizie właściwości antyoksydacyjnych materiałów biologicznych:
FRAP - metoda pozwalająca ocenić zdolność redukującą próbki wobec jonów żelaza(lll),
DPPH - metoda oceniająca zdolność do zmiatania rodników DPPH,
ABTS - ocena zdolności do neutralizacji kationorodnika ABTS,
TPC - całkowita zawartość polifenoli.
Zastosowanie 4 metod opartych na różnych mechanizmach pozwala w pełni ocenić właściwości antyoksydacyjne badanej próbki.
Uzyskany ekstrakt propolisowo-ziołowy wykazuje zwiększoną o 10% zawartość związków polifenolowych oraz wzmocnione właściwości antyoksydacyjne (do 60% w metodzie DPPH) (Tabela 1).
Tabela 1. Porównanie właściwości antyoksydacyjnych ekstraktów: propolisowego, ziołowego i propolisowo-ziołowego
Metoda Ekstrakt propolisowy Wyciąg ziołowy Ekstrakt propolisowoziołowy
FRAP [mmol TE/100 ml] DPPH [mmol TE/100 ml] 523,2 177,3 191,8 62,3 577,6 280,9
ABTS [mmol TE/100 ml] 3864,7 659,8 4092,0
TPC [mg GAE/100ml] 1324,1 349,0 1457,2
Uzyskany ekstrakt propolisowo-ziołowy zawiera wszystkie składniki pochodzące z propolisu i dodatkowe pochodzące z ziół (np. 7-glukozyd luteoliny i kwas rozmarynowy), co potwierdzono metodą chromatografii cieczowej HPLC (Tabela 2).
Tabela 2. Porównanie profilu polifenolowego ekstraktu propolisowego i propolisowo-ziołowego (z uwzględnieniem frakcji górnej i dolnej po zatężeniu) wyznaczonego metodą HPLC (wyrażone w mg/ml ekstraktu)
Próbka Ekstrakt propolisowy Ekstrakt propolisowoziołowy Ekstrakt propolisowoziołowy - frakcja I (górna) Ekstrakt propolisowoziołowy - frakcja II (dolna)
kwas kawowy 0,085 0,083 0,249 <LOQ
kwas p-kumarowy 2,332 2,786 4,714 11,777
kwas ferulowy 0,759 0,758 1,284 2,664
kwas benzoesowy 1,224 1,299 2,075 5,824
sakuranetyna 1,299 1,123 0,54 14,134
pinobanksyna 0,322 0,307 0,208 2,465
pinocembryna 0,426 0,326 0,145 4,654
7-glukozyd luteoliny - + + -
kwas rozmarynowy - + + +
PL 247500 Β1
Analiza mikrobiologiczna metodą dołkową potwierdziła aktywność przeciwbakteryjną uzyskanego ekstraktu propolisowo-ziołowego, identyczną jak dla ekstraktu propolisowego (Tabela 3). Aktywność skupiona jest głównie we frakcji dolnej nierozpuszczalnej w wodzie (koncentrat), która wykazuje duży potencjał do konserwowania żywności (bardziej stężona, może być wprowadzana w mniejszych ilościach niż surowy ekstrakt).
Tabela 3. Porównanie aktywności przeciw bakteriom Streptococcus spp. (wyrażone jako MIC - minimalne stężenie hamujące wzrost)
Próbki MIC [wielokrotność rozcieńczenia próbki]
Streptococus agalactiae Streptococus pyogenes
Ekstrakt propolisowy 4096 2048
Ekstrakt ziołowy 8 8
Ekstrakt propolisowo- ziołowy 4096 2048
Zatężony ekstrakt propolisowoziołowy - faza górna 256 2S6
Zatężony ekstrakt propolisowoziołowy - faza dolna (koncentrat) 4096 1024
Przykład 2. Otrzymywanie preparatu propolisowo-ziołowego w formie proszku
Suszeniu rozpyłowemu poddano ekstrakty uzyskane w Przykładzie 1.
Suszenie rozpyłowe prowadzono przy użyciu suszarki BUCHI B-290 przy zadanych parametrach suszenia: temperatura wlotu 110°C; temperatura wylotu 80°C; wydajność pompy 14%. Skład mieszaniny poddanej suszeniu:
1. 10 ml ekstraktu propolisowego + 30 g niskoscukrzonej maltodekstryny + 100 ml wody destylowanej,
2. 10 ml ekstraktu propolisowo-ziołowego + 30 g niskoscukrzonej maltodekstryny + 100 ml wody destylowanej,
3. 1 ml koncentratu propolisowego (fazy dolnej zatężonego ekstraktu propolisowego) + 9 ml 70% etanolu + 30 g niskoscukrzonej maltodekstryny + 100 ml wody destylowanej.
4. 1 ml koncentratu propolisowo-ziołowego (fazy dolnej zatężonego ekstraktu propolisowo-ziołowego + 9 ml 70% etanolu + 30 g niskoscukrzonej maltodekstryny + 100 ml wody destylowanej.
Zastosowana metoda suszenia pozwoliła na uzyskanie mikrokapsułkowanego ekstraktu w postaci proszku o średnicy ziaren poniżej 10 pm (Fig. 1). Na Fig. 1 pokazano obraz SEM uzyskanych mikrokapsułek preparatu propolisowo-ziołowego.
Stwierdzono, że użycie wyciągu z ziół prowansalskich jako ekstrahenta do maceracji propolisu wpływa pozytywnie na aktywność antyoksydacyjną uzyskanego ekstraktu propolisowo-ziołowego (Tabela 4).
Suszenie rozpyłowe jest skuteczną metodą zachowania właściwości antyoksydacyjnych oraz całkowitej zawartości związków fenolowych propolisu (Tabela 4). Najwyższą aktywnością antyoksydacyjną charakteryzował się proszek uzyskany z ekstraktu propolisowo-ziołowego. Analizowane proszki wzbogacone dodatkiem ziół prowansalskich wykazywały wyższą całkowitą zawartość związków fenolowych w porównaniu do tych samych próbek, które nie zostały wzbogacone ziołami.
Tabela 4. Aktywność antyoksydacyjną roztworów poddanych suszeniu rozpyłowym i proszków po procesie suszenia.
Roztwory Mieszanina poddana suszeniu (e kstrakt+maltodekstryna+wod a) Proszki
FRAP [umolTE/100 ml] TPC [mgGAE/100 ml] FRAP [umolTE/100 g] TPC [mgGAE/100 g]
1 162,66 50,45 582,24 171,13
2 117,60 40,48 405,15 133,18
3 237,17 60,71 817,98 210,32
4 121,22 44,10 429,95 140,62
PL 247500 Β1
Profil zapachowy uzyskanych proszków porównano metodą GCxGC MS w fazie nadpowierzchniowej techniką SPME (Tabela 5). W proszkach propolisowych wykryto głównie związki z grupy pochodnych metylowych benzenu, choć największy udział procentowy ustalono dla kwasu nonanowego. W przypadku proszku propolisowo-ziołowego stwierdzono najbogatszy profil związków zapachowych, wykryto dodatkowe składniki zapachowe (np. beta-kariofilen z grupy węglowodorów seskwiterpenowych, terpinolen-składnik olejku pasternaku, gamma-terpinen, p-cymen-specyficzne dla tymianku, benzoesan prenylu, karwakrol i tymol (związki charakterystyczne dla roślin z rodziny Lamiaceae, np. macierzanki, lebiodki). Można wnioskować, że związki te pochodzą z ziół prowansalskich, które są mieszanką roślin bogatych w olejki eteryczne (rozmaryn, bazylia, tymianek, szałwia lekarska, mięta pieprzowa, cząber ogrodowy, lebiodka (oregano) i majeranek).
Rozpuszczenie próbek w solance ujawniło znacznie bogatszy profil związków zapachowych, dzięki zniszczeniu matrycy polisacharydowej nośnika (maltodekstryny). Dodatek ziół do mikrokapsułkowanych preparatów skutkuje pojawieniem się charakterystycznych składników roślinnych olejków eterycznych, np. estragol, bisabolen, terpineol, kamfora, kalamanen, co potwierdzono zaawansowaną metodą chromatografii gazowej GCxGC MS (Tabela 5
Tabela 5. Porównanie profili składników lotnych (zapachowych) dla uzyskanych proszków w metodzie GCxGC MS
Związek (udział %) Proszek z propolisu Proszek z propolisu+zioła
Proszek Proszek rozpuszczo ny w 20% NaCI Proszek Proszek rozpuszczo ny w 20% NaCI
1 -metylo-4-(1 -metyloetylo)-1,4cykloheksadien 7,6927
1,7,7-trimetylobicyklo[2.2.1]heptan-2-ol 1,5549
cis-1 -etylidenooktahydro-7ametylo-1H-inden 1,8083
octan 1-metylo-1-(4-metylo-3- cykloheksen-1 -ylo)etylu 1,2859
salicylan 2-etyloheksylu 1,1866
1,3,3-trimetylo-2- oksabicyklo[2.2.2]oktan 6,0623 1,8329
4-metylo-1 -(1 -metyloetylo)-3cykloheksen-1-ol 1,226 1,0019
a,a,4-trimetylo-3-cyklohekseno-1metanol 2,0973
4-alliloanizol 2,7848
węglowodory alifatyczne 36,868 42,068 35,218 19,742
alfa-bisabolen pochodzący z ziół 1,4428
alfa-humulen pochodzący z ziół 3,7804
alfa-muurolol 2,2344
alfa-selinen 1,7009
Aromandendren 3,704
1,2,4,5-tetrametylobenzen 2,5877
1,3-bis(1,1-dimetyloetylo)benzen 0,41927 1,7964
1,4-dietylo-2-metylobenzen 1,3869
PL 247500 Β1
1 -etylo-2,4-dimetylobenzen 1,4432
1-metylo-3-(1metyloetylo)benzen 3,491 3,5363
1-metylo-4-(1- metyloetylo)benzen 15,164 1,6569
2,4-dietylo-1 -metylobenzen 3,7776
2-nitrobenzenometanol 2,4514
benzoesan benzylu 8,1471 5,3167
kwas benzoesowy 1,1478
ester 2-hydroksyfenylometylowy kwasu benzoesowego 1,7253
ester pentylowy kwasu benzoesowego 3,3651 0,8034
6,6-dimetylo-bicyklo[3.1,1]hept- 2-eno-2-etanol 3,2330
(E)-(1 R,95)-(-)-4,11,11 -trimetylo- 8-metyleno-bicyklo[7.2.0]undek4-en 2,297 1,8757 4,9555
kalamenen<cis-> 1,0983 0,5230
kamfora pochodząca z ziół 0,3529
karwakrol pochodzący z ziół 6,8584 3,5046
tlenek kariofilenu pochodzący z ziół 3,858 2,4955
(E)-cynamonian metylu 1,1270
Alfamuurolen 0,71692 1,5796
1-metylo-4-(1- metyloetylideno)cykloheksen 1,0946 0,0446
dodekanonian etylu 4,3473
Estragol 2,6257
Etanol 43,839 1,2156 2,329 0,0254
3-fenylopropionian etylu 1,1321 1,3496
dodekanonian etylu 3,6860
tetradekanonian etylu 2,357 1,2409
kwas nonanowy 7,7301 2,1955
ester etylowy kwasu pentadekanowego 1,0418 0,226
benzoesan prenylu 7,8046 1,4389 7,9689
tymolol pochodzący z ziół 3,1168 4,8218
tymochinon pochodzący z ziół 1,1558901
eter tymol om etyl owy pochodzący z ziół 4,9392
hydrat trans-seskwisabinenu 1,2647
wanilina pochodząca z ziół 0,96618 0,1396
Przykład 3. Zastosowanie surowego ekstraktu propolisowo-ziołowego do utrwalania mięsa drobiowego
Mięso drobiowe umyto, osuszono i pokrojono w kostkę o wymiarach 2x2x2 cm. Odważano po około 50 g mięsa do zlewki i dodawano surowe ekstrakty (w ilości 1 ml/50 g):
- propolisowy w 70% etanolu
- propolisowo-ziołowy w 70% etanolu.
Próby przechowywano w lodówce przez 3 dni. Po tym czasie wykonano badania mikrobiologiczne. W tym celu próby wysiewano po 1 ml (posiew wgłębny) oraz po 0,1 ml (posiew powierzchniowy) z różnych rozcieńczeń na podłoże PCA (Plate Counting Agar) i inkubowano przez 72 h w temperaturze 30°C. Po tym czasie obliczono liczbę wyrosłych kolonii. Wynik podano w CFU/g produktu.
Stwierdzono ograniczenie wzrostu bakterii (spadek liczby kolonii) dla obu ekstraktów, przy czym większą skuteczność wykazano dla surowego ekstraktu propolisowo-ziołowego (Fig. 2).
W ujęciu ilościowym zahamowanie wzrostu w porównaniu do próby kontrolnej, dla której stwierdzono obecność 2,73 x 1011 CFU/g (próba 3P), wyniosło - 4,3 x 1010 CFU/g dla ekstraktu propolisowego (próba 4P) oraz 1,1 x 1010 CFU/g dla ekstraktu propolisowo-ziołowego (próba 5P).
Na Fig. 2 pokazano liczbę kolonii bakteryjnych wyrosłych na podłożu PCA po 3 dniach inkubacji. Po lewej stronie próba 3P - filet z kurczaka, kontrolna; w środku - próba 4P - filet z kurczaka z ekstraktem propolisowym; po prawej stronie próba 5P - filet z kurczaka z dodatkiem ekstraktu propolisowo-ziołowego.
Analogicznie wykazano hamujące działanie obu ekstraktów wobec drożdży, przy czym większą skuteczność wykazano dla surowego ekstraktu propolisowo-ziołowego (Fig. 3).
Zahamowanie wzrostu w porównaniu do próby kontrolnej, dla której stwierdzono obecność 1,44 x 108 CFU/g (próba 3P), wyniosło 5,2 x 107 CFU/g dla ekstraktu propolisowego (próba 4P) oraz 3,6 x 107 CFU/g dla ekstraktu propolisowo-ziołowego (próba 5P).
Na Fig. 3 pokazano liczbę kolonii drożdży wyrosłych na podłożu PDA po 3 dniach inkubacji. Po lewej stronie próba 3P - filet z kurczaka, kontrolna; w środku - próba 4P - filet z kurczaka z ekstraktem propolisowym; po prawej stronie próba 5P - filet z kurczaka z dodatkiem ekstraktu propolisowo-ziołowego.
Przykład 4. Zastosowanie surowego ekstraktu propolisowo-ziołowego do utrwalania pasztetu pieczonego
Pasztet pieczony rozdrobniono, odważono po 50 g do zlewki i dodano 1 ml surowego ekstraktu propolisowo-ziołowego w 70% etanolu. Próby przechowywano w lodówce przez 72 h. Po tym czasie wykonano badania mikrobiologiczne.
Stwierdzono ograniczenie wzrostu bakterii (spadek liczby kolonii) dla pasztetu utrwalonego surowym ekstraktem propolisowo-ziołowym (Fig. 4). W porównaniu do próby kontrolnej, dla której stwierdzono obecność bakterii na poziomie 1,28 x 107 CFU/g (próba 2P), dla próby utrwalonej (1P) uzyskano istotną redukcję wzrostu do 1 x 106 CFU/g.
Na Fig. 4 pokazano liczbę kolonii bakteryjnych wyrosłych na podłożu PCA po 72 h inkubacji. Po lewej stronie próba 2P - pasztet, kontrolna; po prawej stronie próba 1P - pasztet z dodatkiem ekstraktu propolisowo-ziołowego (2 ml/100 g).
Analogicznie wykazano hamujące działanie ekstraktu wobec drożdży (Fig. 5).
Dla próby kontrolnej (2P) stwierdzono obecność drożdży na poziomie 2,6 x 105 CFU/g, która została zredukowana w próbie z ekstraktem propolisowo-ziołowym (1P) do 1 x 104 CFU/g.
Fig. 5. Liczba kolonii drożdży wyrosłych na podłożu PDA po 72 h inkubacji. Po prawej stronie próba 2P - pasztet, kontrolna; po lewej stronie próba 1P - pasztet z dodatkiem ekstraktu propolisowo-ziołowego.
Przykład 5. Zastosowanie proszku propolisowo-ziołowego do utrwalania mięsa drobiowego
Filet drobiowy pokrojono w kostkę o rozmiarach 1 cm x 1 cm x 1 cm. Na szalkach odważono po 20 g mięsa.
Szalka 1: kawałki mięsa obtoczono w 1 g proszku propolisowo-ziołowego (preparat 4 uzyskany w przykładzie 2).
Szalka 2: kawałki mięsa obtoczono w 1 g czystej maltodekstryny (kontrola 1).
Szalka 3: kawałki mięsa surowego bez dodatków (kontrola 2).
Szalki przygotowano, przykryto pokrywkami z dostępem powietrza i pozostawiono w temperaturze, pokojowej na 72 godziny.
Po tym czasie organoleptycznie potwierdzono działanie konserwujące preparatu propolisowo-ziołowego dla szalki 1 przechowywanej w temperaturze pokojowej (zapach ziołowy) w porównaniu do szalki 3 (zapach zepsutego mięsa). Mięso w kontakcie z preparatem propolisowo-ziołowym zmieniało barwę (Fig. 6).
Na Fig. 6 pokazano próbki mięsa drobiowego przechowywane w temperaturze pokojowej (około 22°C) przez 72 godziny, od lewej mięso + preparat propolisowo-ziołowy (1 g proszku/20 g mięsa), w środku mięso + maltodekstryna (1 g maltodekstryny/20 g mięsa), po prawej mięso bez dodatków.
Ocena wpływu dodatku proszku propolisowo-ziołowego na liczbę bakterii, drożdży i pleśni w mięsie drobiowym przechowywanym w temperaturze pokojowej przez 72 godziny (próbki pokazane na Fig. 6).
Mięso drobiowe, po przechowywaniu przez 72 godziny odważono w ilości 10 g i umieszczono w sterylnym woreczku do homogenizacji. Następnie dodano 90 ml płynu fizjologicznego i przeprowadzono homogenizację przez 180 sekund w homogenizatorze. Ze zhomogenizowanych prób wykonano seryjne rozcieńczenia i wysiano próby w objętości 0,1 ml na podłoże PCA (do liczenia bakterii) oraz PDA (dla drożdży i pleśni). Szalki inkubowano w temperaturze 30°C (PCA) przez 72 godziny oraz w temperaturze pokojowej (PDA) przez 120 godzin. Po tym czasie obserwowano liczbę wyrosłych kolonii bakterii i grzybów. Wyniki porównano z próbami kontrolnymi.
W przypadku mięsa z dodatkiem propolisu widoczna jest znaczna redukcja liczby wyrosłych kolonii bakteryjnych, natomiast w przypadku dodatku maltodekstryny redukcja również jest widoczna, ale nie tak znacząca, jak w przypadku proszku propolisowo-ziołowego (Fig. 7).
Na Fig. 7 pokazano bakterie wyrosłe na podłożu PCA z rozcieńczenia prób 10-3. Od lewej: próba kontrolna, mięso niczym nie traktowane; mięso z dodatkiem proszku propolisowo-ziołowego (1 g/20 g mięsa); mięso z dodatkiem maltodekstryny (1 g/20 g mięsa).
Nośnik pełni dodatkową funkcję w ograniczaniu wzrostu bakterii, wspomaga efekt antybakteryjny składników pochodzących z propolisu. Analogiczny efekt uzyskano dla drożdży i grzybów (Fig. 8).
Na Fig. 8 pokazano drożdże i grzyby wyrosłe na podłożu PDA z rozcieńczenia prób 10-3. Od lewej: próba kontrolna, mięso niczym nie traktowane; mięso z dodatkiem propolisu; mięso z dodatkiem maltodekstryny.
Przykład 6. Zastosowanie proszku propolisowo-ziołowego do utrwalania surowego soku jabłkowego
Do analiz wykorzystano świeżo wyciśnięty z użyciem domowej sokowirówki sok jabłkowy (odmiany Idared), który użyto bez sączenia („naturalnie mętny”).
Sok odmierzono do 3 kolbek:
- 10 ml soku bez dodatków (próba kontrolna)
- 10 ml soku z dodatkiem 1 g proszku propolisowo-ziołowego (preparat 4 z przykładu 2)
- 10 ml soku z dodatkiem 1 g maltodekstryny
K olbki pozostawiono na 96 godzin w temperaturze pokojowej. Po tym czasie poddano obserwacji wizualnej (Fig. 9).
Na Fig. 9 pokazano zdjęcie próbek soków przechowywanych w temperaturze pokojowej przez 96 godzin. Od lewej: kontrola, sok bez żadnego dodatku, sok z dodatkiem proszku propolisowo-ziołowego (w środku); sok z dodatkiem maltodekstryny.
P róbki soków przechowywano w temperaturze pokojowej przez 96 godzin. W przypadku próby kontrolnej oraz z dodatkiem maltodekstryny widoczne są gołym okiem grzyby pleśniowe, natomiast w próbie z dodatkiem propolisu sok pozbawiony jest grzybów pleśniowych widocznych gołym okiem (Fig. 9).
Po tym czasie przeprowadzono analizy mikrobiologiczne próbek soków. W tym celu wykonano seryjne rozcieńczenia, a każde z rozcieńczeń wysiano po 0,1 ml na podłoże agarowe PCA, do badania ogólnej liczby drobnoustrojów oraz po 0,1 ml na podłoże PDA do oznaczania liczby drożdży i pleśni. Szalki z podłożem PCA inkubowano w temperaturze 30°C przez 72 godziny, natomiast szalki z podłożem PDA inkubowano w temperaturze pokojowej (21 ± 2°C) przez 120 godzin. Po okresie inkubacji porównano liczbę wyrosłych kolonii bakteryjnych na poszczególnych szalkach.
Po wysianiu prób na podłoża stałe z PCA zaobserwowano znaczną redukcję liczby bakterii w soku z dodatkiem proszku propolisowo-ziołowego. Również sam dodatek maltodekstryny hamuje wzrost bakterii, co widoczne jest na Fig. 10. W przypadku próby kontrolnej oraz z maltodekstryną liczba wyrosłych kolonii bakteryjnych z przedstawionego na zdjęciu rozcieńczenia jest tak duża, że obserwowany jest wzrost w postaci murawy, podczas gdy w soku z dodatkiem proszku widoczne są tylko pojedyncze kolonie bakteryjne (szalka 2).
Na Fig. 10 pokazano wzrost bakterii w próbach soku niesączonego (od lewej: kontrola, sok z proszkiem propolisowo-ziołowym, sok z dodatkiem maltodekstryny).
Na podłożu PDA służącym do wzrostu drożdży i pleśni widoczny jest brak wzrostu kolonii drożdżowych w soku z dodatkiem proszku (szalka 2), natomiast w próbie kontrolnej oraz w soku z maltodekstryną widoczna jest duża liczba kolonii grzybów (Fig. 11). Przy zastosowaniu mniejszego rozcieńczenia soku do analizy, w przypadku próby kontrolnej oraz próby z maltodekstryną pleśnie porastają całą powierzchnię szalki. W próbce soku utrwalonego proszkiem widoczna jest zaledwie jedna kolonia pleśni (Fig. 12).
Na Fig. 11 pokazano wzrost drożdży i pleśni w próbach soku niesączonego (od lewej: kontrola, sok z proszkiem propolisowo-ziołowym, sok z dodatkiem maltodekstryny) w rozcieńczeniu 10-3.
Na Fig. 12 pokazano wzrost drożdży i pleśni w próbach soku niesączonego (od lewej: kontrola, sok z proszkiem propolisowo-ziołowym, sok z dodatkiem maltodekstryny) w rozcieńczeniu 10-1·

Claims (4)

1. Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu, znamienny tym, że obejmuje etapy, w których:
- suszone zioła jadalne w ilości wynoszącej co najmniej 5 g/100 ml ekstrahenta, korzystnie co najmniej 10 g/100 ml ekstrahenta, przy czym ekstrahentem jest roztwór etanolu w wodzie o stężeniu wagowym wynoszącym co najmniej 50%, korzystnie co najmniej 60%, a najkorzystniej 70%, podaje się ekstrakcji w łaźni ultradźwiękowej;
- otrzymany etanolowy ekstrakt z ziół oddziela się od suszu na drodze filtracji;
- propolis w ilości wynoszącej co najmniej 5 g/100 ml ekstrahenta, korzystnie co najmniej 10 g/100 ml ekstrahenta, przy czym ekstrahentem jest wyżej otrzymany etanolowy ekstrakt z ziół, poddaje się maceracji z okresowym wytrząsaniem, korzystnie przez 5 dni, po czym po odfiltrowaniu uzyskuje się surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy zatęża się poprzez próżniowe odparowanie etanolu, po czym dekantuje się wodną fazę górną, uzyskując nierozpuszczalny w wodzie koncentrat ekstraktu.
3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy albo zatężony koncentrat nierozpuszczalny wodzie poddaje się suszeniu rozpyłowemu z nośnikiem, przy czym suszeniu poddaje się wodno-etanolową zawiesinę zawierającą:
- surowy ekstrakt propolisowo-ziołowy w proporcji 10 ml ekstraktu : 100 ml wody destylowanej: nie więcej niż 30 g nośnika albo
- rozcieńczony koncentrat propolisowo-ziołowy (1 ml koncentratu rozpuszczony w 9 ml 70% etanolu) w proporcji 10 ml rozcieńczonego koncentratu: 100 ml wody destylowanej: nie więcej niż 30 g nośnika,
- przy czym jako nośnik stosuje się pojedynczo lub w kombinacjach maltodekstrynę, niskoscukrzoną maltodekstrynę, gumę arabską, żelatynę, alginian sodu, kazeinę, białka serwatkowe, białka sojowe oraz cyklodekstrynę.
4. Sposób według zastrz. 3, znamienny tym, że suszenie prowadzi się przy temperaturze wlotowej powietrza suszącego wynoszącej maksymalnie 160°C, temperaturze wylotowej powietrza wynoszącej maksymalnie 90°C i przepływie 2,33 ml/minutę.
PL441843A 2022-07-26 2022-07-26 Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu PL247500B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL441843A PL247500B1 (pl) 2022-07-26 2022-07-26 Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL441843A PL247500B1 (pl) 2022-07-26 2022-07-26 Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL441843A1 PL441843A1 (pl) 2024-01-29
PL247500B1 true PL247500B1 (pl) 2025-07-21

Family

ID=89719877

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL441843A PL247500B1 (pl) 2022-07-26 2022-07-26 Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL247500B1 (pl)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS63145208A (ja) * 1986-12-10 1988-06-17 Maruzen Kasei Kk 天然保存料
PL295075A1 (en) * 1992-06-30 1994-01-10 Janusz Bartoszewicz Food preservative
PL376586A1 (pl) * 2005-08-11 2007-02-19 Maciej Andrych Suplement spożywczy miodowo-propolisowy
CN106578015A (zh) * 2016-11-30 2017-04-26 广西大学 一种高效荔枝保鲜剂及其制备方法和使用方法
CN107495069A (zh) * 2017-08-24 2017-12-22 安徽靖童科技农业发展有限公司 一种天然食品保鲜剂

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS63145208A (ja) * 1986-12-10 1988-06-17 Maruzen Kasei Kk 天然保存料
PL295075A1 (en) * 1992-06-30 1994-01-10 Janusz Bartoszewicz Food preservative
PL376586A1 (pl) * 2005-08-11 2007-02-19 Maciej Andrych Suplement spożywczy miodowo-propolisowy
CN106578015A (zh) * 2016-11-30 2017-04-26 广西大学 一种高效荔枝保鲜剂及其制备方法和使用方法
CN107495069A (zh) * 2017-08-24 2017-12-22 安徽靖童科技农业发展有限公司 一种天然食品保鲜剂

Also Published As

Publication number Publication date
PL441843A1 (pl) 2024-01-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
dos Reis et al. Physico-chemical characteristics of microencapsulated propolis co-product extract and its effect on storage stability of burger meat during storage at− 15 C
Mongkolsilp et al. Radical scavenging activity and total phenolic content of medicinal plants used in primary health care
Rattanachaikunsopon et al. Antimicrobial activity of basil (Ocimum basilicum) oil against Salmonella enteritidis in vitro and in food
Tagrida et al. Betel (Piper betle L.) leaf ethanolic extracts dechlorophyllized using different methods: Antioxidant and antibacterial activities, and application for shelf-life extension of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fillets
Yan et al. Comparison of total phenolic contents and antioxidant activities of turmeric leaf, pandan leaf and torch ginger flower
Nisar et al. Estimation of total phenolics and free radical scavenging of turmeric (Curcuma longa)
Kozłowska et al. Phenolic contents and antioxidant activity of extracts of selected fresh and dried herbal materials
CN109730064A (zh) 一种食品级植物源性复合抑菌剂组合物
Abdelhakam et al. Quality characteristics of beef hamburger enriched with red grape pomace powder during freezing storage
Šnē et al. Sea buckthorn vegetative parts–a good source of bioactive compounds
Dikme Use of medicinal and aromatic plants in food
Ibrahim et al. Effects on lamb patties quality
Paraskevopoulou et al. Chios mastic gum and its food applications
Chahdoura et al. Bioactivity, proximate, mineral and volatile profiles along the flowering stages of Opuntia microdasys (Lehm.): Defining potential applications
KR101809836B1 (ko) 이슬송이버섯 조성물을 이용한 소금 제조방법
LEAHU et al. Variation in content of antioxidant and free radical scavenging activity of basil (Ocimum basilicum), dill (Anethum graveolens) and parsley (Petroselinum sativum)
PL247500B1 (pl) Sposób otrzymywania biokonserwantu do żywności na bazie propolisu
Quyen et al. Chemical Profile and Biological Activities of The Essential Oil of Cinnamon (Cinnamomum cassia (L.) J. Presl) Twigs and Leaves.
Bhave et al. Effect of cooking on total phenol, total flavonoids and DPPH free radical scavenging potential of Plectranthus amboinicus
Verma et al. ANTIOXIDANT EFFECT OF AMLA () FRUIT AND CURRY (EMBLICA OFFICINALIS MURRAYA KOENIJII) LEAF EXTRACTS ON QUALITY OF GOAT MEAT NUGGETS
Beyazen et al. Phytochemical screening, antioxidant and antimicrobial activities of seeds of Foeniculum vulgare (ensilal)
Skotti et al. Screening of lemon balm extracts for anti-aflatoxigenic, antioxidant and other biological activities
KR20210002836A (ko) 회향 추출물의 갈변 방지 용도
Kabiru et al. Soymilk Preservation Using Extracts Of Cloves (Syzygium Aromaticum Myrtaceae) And Guinea-Pepper (Xylopia Aethiopica Annonaceae).
Al-Qaisy et al. Total phenolic content and antioxidant efficacy of three parts of the pumpkin Cucurbita mochata and the effect of drying method on them