PL237575B1 - Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych - Google Patents
Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych Download PDFInfo
- Publication number
- PL237575B1 PL237575B1 PL422849A PL42284917A PL237575B1 PL 237575 B1 PL237575 B1 PL 237575B1 PL 422849 A PL422849 A PL 422849A PL 42284917 A PL42284917 A PL 42284917A PL 237575 B1 PL237575 B1 PL 237575B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- rapeseed cake
- fermentation
- cake
- temperature
- content
- Prior art date
Links
Landscapes
- Fodder In General (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych przeznaczonych do wykorzystania w żywieniu zwierząt, zwłaszcza drobiu, w szczególności kurcząt brojlerów i indyków.
Zaspokojenie potrzeb pokarmowych zwierząt na białko w Polsce charakteryzuje się ujemnym bilansem, co zmusza do stałego poszukiwania alternatywnych źródeł białka (Brzóska i in., 2010; Zaworska 2015). Białko pasz rzepakowych stanowi istotną pozycję w bilansie pasz białkowych i łagodzi ich niedobór. Polska jest potentatem w produkcji rzepaku. (Rękas i in., 2016). Nasiona tych roślin, a także produkty uboczne ich przetwarzania (poekstrakcyjna śruta rzepakowa, makuchy, wytłoki i ekspelery rzepakowe,) zawierają stosunkowo wysoki udział substancji antyodżywczych (ANF) do których należą (polisacharydy nieskrobiowe, kwas erukowy, glukozynolany, taniny, oligosacharydy, fityniany, inhibitory proteaz) ograniczających ich wykorzystanie w paszach dla zwierząt (Annison i Choct 1991; Bedford 2000; Smulikowska, 2003; Brzóska i in., 2010, Patyra i Kwiatek, 2015. Ponadto zawarty w paszach fosfor jest praktycznie niedostępny dla zwierząt, zwłaszcza monogastrycznych, dlatego mieszanki paszowe muszą być uzupełniane tym biopierwiastkiem. Odpowiednie zbilansowanie mieszanki pod względem zawartości fosforu jest bardzo istotne, gdyż jego niedobór obniża produkcyjność zwierząt, a wprowadzony w nadmiarze zwiększa jej koszt i negatywnie obciąża środowisko naturalne (Prasad i in., 2015). Pasze rzepakowe mogą być częściowym lub pełnym substytutem importowanej poekstrakcyjnej śruty sojowej w żywieniu określonych gatunków i grup zwierząt dopiero z zastosowaniem dodatków enzymatycznych lub po jej uszlachetnieniu. Już w 1962 roku Warden i Schaible (1962) wykazali, że egzogenna fitaza pozytywnie wpływa na mineralizację kośćca u kurcząt brojlerów. Kermanshahi i Abbasi Pour (2006), stosując w mieszankach z poekstrakcyjną śrutą rzepakową uzupełnioną preparatem enzymatycznym zawierającym ksylanazę i glukanazę w dawce 0,025%, uzyskali istotną poprawę przyrostów w okresie starter, z kolei Kucharski i in. (2002) twierdzą, że kurczęta brojlery najlepiej reagują na dodatek do paszy preparatów enzymatycznych redukujących działanie czynników antyżywieniowych przez pierwsze 3-4 tygodnie życia. Poza stosowaniem dodatków enzymatycznych aby podnieść konkurencyjność pasz rzepakowych i ograniczyć oddziaływanie substancji antyodżywczych przeprowadza się procesy uszlachetniające Abd El-Hady, Habiba (2003). Mają one na celu poprawę wartości odżywczej, przyswajalności składników pokarmowych i zwiększenie możliwości ich wykorzystania jako pasz wysokobiałkowych w żywieniu zwierząt (Ciesiołka i in. 2005; Urbano i in. 2005; Ghavidel i Prakash, 2007; Gulewicz i in. 2008; Jezierny i in. 2010; Kasprowicz-Potocka i in. 2012; Chilomer i in. 2013). Fermentacja jest prostym i tanim sposobem, przetwarzania i konserwacji materiałów paszowych. Przetworzenie następuje poprzez szybkie obniżenie pH w obecności kwasów organicznych. Jednakże w zależności od warunków tych procesów (temp., wilgotność, czas, typ urządzeń) mogą one wpływać zarówno korzystnie jak i niekorzystnie na strawność tych składników (Li i in. 2002). Dlatego też stosuje się kultury starterowe - inokulanty zawierające wyselekcjonowane mikroorganizmy, ukierunkowując przebieg fermentacji i ograniczenie rozwoju negatywnej flory. Z licznych doniesień wynika, że do fermentacji najczęściej wykorzystuje się preparaty mikrobiologiczne - inokulanty, które szczególnie w pierwszych godzinach fermentacji ułatwiają proces fermentacji. Preparaty te zawierają także enzymy, amylazę lub celulazę, o które wydatnie poprawiają skuteczność przetwarzania. Enzymy bowiem mają za zadanie szybko i skutecznie uwolnić dodatkowe cukry z węglowodanów zawartych w materiale. Na szybkość i efektywność fermentacji może wpływać wiele czynników. Jednocześnie działanie fitazy na cząsteczkę fitynianu prowadzi do powstania fosforu oraz mio-inozytolu jako finalnego produktu hydrolizy (Żyła i in. 1995).
Najważniejszym aspektem wpływającym na efektywność fermentacji jest dostępność surowców do fermentacji, a więc zasobność podłoża w cukry (glukoza, mannoza, fruktoza i galaktoza) ulegające bezpośrednio fermentacji (Kasprowicz-Potocka, 2015; Zaworska i in, 2017). Istotne jest także ilość i rodzaj wprowadzonych komponentów i odpowiednie ich proporcje w stosunku do wody, jak również warunki procesu - pH środowiska, temperatura i dostęp tlenu, które przyczyniają się do wydajności procesu i namnażania czy też hamowania rozwoju mikroorganizmów. Dzięki nowym technologiom i rozwojowi mikrobiologii do fermentacji wykorzystać można różne szczepy bakterii, także drożdży oraz dodatków enzymatycznych, prowadzących proces bezpośrednio (bez wstępnej hydrolizy, scukrzania) i wykorzystujące różne substraty (cukry proste, pentozy, skrobię, różne źródła białka i substancje antyodżywcze).
PL 237 575 B1
Fermentacją poprawia się bezpieczeństwo żywności poprzez eliminację potencjalnie szkodliwych bakterii oraz rozkład substancji antyodżywczych, w tym także mykotoksyn. Zabieg ten oprócz podniesienia wartości odżywczej może generować syntezę witamin, przeciwutleniaczy i innych związków biologicznie czynnych (Rafter, 1995). Poprzez wytworzenie substancji zapachowych, poprzez tworzenie się kwasów organicznych i związków lotnych i redukcję najczęściej gorzkich ANF, fermentacja może zwiększać aromatyczność paszy oraz korzystnie wpływać na smakowitość surowca, co wpływa na poprawę pobierania paszy przez zwierzęta. Dlatego w ostatnich latach fermentacja stała się obiektem zainteresowań wielu podmiotów zajmujących się żywieniem zwierząt.
W danych literaturowych dostępne są opracowania w których prowadzona była fermentacja mączki rzepakowej z użyciem bakterii oraz drożdży (Rhizopus oligosporus, lub kultury Lactobacillus fermentum, Enterococcus faecium, Saccharomyces cerevisae i Bacillus subtilis). Badania te wykazały, że proces fermentacji może zmniejszyć zawartość glukozynolanów - glukobrassycyny (o 97,3%), oligosacharydów (73%), ligniny i NDF (o 30%) i fitynianów (o 67%) w zależności od składu inokulum i warunków procesu 40 (Bau i in. 1994, Chianga i in. 2010).
Znane są także rozwiązania, które przewidują wykorzystanie procesu fermentacji materiałów paszowych. Jednym z rozwiązań tego typu jest CN105994938 w którym fermentowano białko mączki kukurydzianej za pomocą masy bakteryjnej w ilości 1,0x108 cfu/ml do 1,0x109 cfu/ml. Sposób wytwarzania obejmuje następujące etapy: przygotowanie mączki kukurydzianej do fermentacji, którą przesiewa się przez sito i tak wyselekcjonowany materiał zaszczepiania się w ilości 6% masy bakteriami przy stosunku suchej masy do wody 1:1. Następnie materiał miesza się w zbiorniku fermentacyjnym w celu uzyskania jednorodnej masy fermentacyjnej i prowadzi się fermentację wgłębną beztlenową w temperaturze 30°C do 35°C przez 72 h do 96 h. Do zakończeniu procesu masę suszy się w temperaturze 50°C do 55°C a następnie doprowadzano do temperatury pokojowej. Proces przetwarzania przedstawiony w patencie wpłynął na wzrost zawartości białka ogólnego o 13%, spowodował spadek zawartości cukru ogólnego o 36%, wpłynął na wzrost zawartości fenyloalaniny o 12,5%, treoniny o 8,5%, izoleucyny o 13,6%, leucyny o 12,9%, waliny o 25,4%, proliny o 10,9%, glicyny o 12,8%, alaniny o 16,1%, kwasu asparginowego o 13,3%, kwasu glutaminowego o 11,3%, tyrozyny o 12%, histydyny o 12,1% i argininy o 10,1%. Ponadto uzyskany materiał charakteryzuje się lepszą smakowitością. Sucha fermentowana mączka z białka kukurydzianego może być stosowana jako źródło wysokiej jakości paszy białkowej.
Z kolei w zgłoszeniu CN1911066 przedstawiono technologie wgłębnej fermentacji fasoli za pomocą złożonego enzymu w celu otrzymania białka paszowego, który obejmuje etapy: dodawanie wody o temperaturze 30-45°C, dodanie aktywowanego enzymu i bakterii fermentacji mlekowej (Bacillus subtilis) oraz drożdży, lub ich mieszaninę. Fermentacja prowadzona jest w systemie ciągłego mieszania w temperaturze 30-50°C przez 48-84 godziny, do osiągnięcia pH równego 4,5-5,5. W wyniku fermentacji stwierdzono o 90% redukcję inhibitorów trypsyny, wzrost hydrolizy białek o 15%, wzrost zawartości białka ogólnego 8% i kwasu mlekowego o 5%.
W rozwiązaniu znanym ze zgłoszenia CN 106173225 w którym fermentowano białkowy dodatek paszowy skomponowany z mąki pszennej, fasoli, bawełny i cyprysu, za pomocą Bacillus subtilis, Clostridium butyricum, Saccharomyces cerevisiae i Lactobacillus, przy stosunku masowym odpowiednio: 27,8%; 49,7%; 5%; 17,5%, przy czym stężenie bakterii Bacillus subtilis wynosiło 1x108 cfu/ml, stężenie bakterii kwasu mlekowego w dawce 1,2x108 cfu/ml, stężenie Saccharomyces cerevisiae 2,5x107 cfu/ml, stężenie bakterii Lactobacillus w wysokości 9x107 cfu/ml. W uzyskanym produkcie stwierdzono zawartość polipeptydów >19%, wzrost zawartości białka ogólnego o 10,02%, zawartość tłuszczu surowego spadła o 35,36%, popiołu surowego o 27,29%.
W rozwiązaniu o numerze CN105941828 proces przewarzania paszy obejmuje odważenie odpowiednio: otrąb kukurydzianych w ilości 70-80%, nasion soi 10-15%, 3-5% wodoro-fosforanu wapnia, chlorku sodu 2-5%, chlorku magnezu 3%, 0,3-0,5% siarczanu sodu, siarczanu cynku 2%, a następnie całość mieszano w udziale % 60%-70%, 30%-40% z wodą i prowadzono fermentacje stałą, wgłębną z wykorzystaniem szczepu Aspergillus niger, Bacillus subtilis, Saccharomyces cerevisiae i Pichia pastoris stanowiących 3% - 5% masy w podłożu fermentacyjnym. Warunki procesu: fermentacja tlenowa, w temperaturze 28-35°C, czas procesu: 2 lub 3 dni. Uzyskana pasza wg wynalazku może być bogatsza w białko o ok. 30-40%, witaminy z grupy B, aminokwasy i inne substancje i może być szeroko stosowana jako białkowy surowiec paszowy w żywieniu zwierząt. Dzięki zastosowaniu tego materiału paszowego skrócony jest okres odchowu, notowana jest lepsza mięsność i produkcja jaj oraz poprawa jakości struktury mięśnia. Ponadto poprawia odporność zwierząt - w szczególności młodych oraz stymulować może wzrost narządów i wpływać na okrywę włosową.
PL 237 575 B1
Z kolei dokument amerykański US20140037786 omawia także sposób wytwarzania fermentowanej paszy dla zwierząt gospodarskich, obejmujący: fermentacje w warunkach beztlenowych materiału paszowego zawierającego co najmniej jeden wybrany białkowy materiał roślinny, przy czym zawartość białka w tym materiale wynosi co najmniej 20%; ponadto w procesie dostarczone ma być źródło fitazy w postaci materiału roślinnego ze zbóż: obejmujących pszenicę, żyto, pszenżyto, jęczmień ozimy i jęczmień jary lub ich kombinację; oraz wprowadzenie inokulantu w postaci bakterii wytwarzających kwas mlekowy (głównie bakterii z rodzaju Enterococcus, Lactobacillus, Pediococcus, Lactococcus lub ich kombinacji) w ilości 107 cfu/g paszy, zapobiegając rozwojowi jakichkolwiek bakterii, drożdży lub pleśni obecnych w fermentowanych materiałach paszowych co przyczynia się do ograniczenia patogennych drobnoustrojów w przewodzie pokarmowym, ale jednocześnie może przyczynić się do obniżenia zawartości substancji antyodżywczych.
W innym patencie znanym z opisu WO 2016046708 przetwarzano przy użyciu nowo wybranych szczepów bakterii kwasu mlekowego. Cel przetwarzania osiąga się stosując substrat pochodzenia roślinnego z kulturę starterową LAB, dominującą przez szczepy Pediococcus acidilactici BaltBioOl MSCL P1480 lub Pediococcus pentosaceus BaltBio02 MSCL P1481 izolowanych z fermentowanego materiału zbożowego. Fermentacja przeprowadzana jest w warunkach beztlenowych lub tlenowych, w temperaturze 20-40°C, w czasie od 8 h do 72 h w zależności od właściwości podłoża który został zmieszany z wodą w stosunku 1:1. Po zakończeniu fermentacji zaleca się uzyskany materiał traktować różnorodnie m.in. granulować, suszyć czy konserwować w inny sposób.
Z kolei z badań wykonanych w ostatnich latach wynika, że w dietach drobiu, w szczególności kurcząt rzeźnych można stosować do 7% makuchu rzepakowego bez ujemnych skutków w masie ciała ptaków, wykorzystaniu paszy, wydajności rzeźnej i jakości tuszy. Oznacza to, że w wyprodukowanych ponad 3000 tys. t mieszanek paszowych dla kurcząt rzeźnych może zawierać się około 180-240 t makuchu rzepakowego. Szacunkowa ilość pasz rzepakowych wytwarzanych w Polsce wynosi około 12001400 tys. t rocznie. Plany zwiększenia produkcji biopaliw i korzystne dla rolników ceny nasion rzepaku sprzyjają zwiększaniu jego uprawy. Oznacza to, że konieczne jest zagospodarowanie wzrastającej ilości makuchów rzepakowych oraz zwiększenie efektywności ich wykorzystania paszowego.
Znane metody w jakich inokulanty, preparaty mikrobiologiczne, enzymatyczne i oraz preparaty chemiczne, w szczególności o działaniu zakwaszającym wprowadzane są do materiału fermentowanego pośrednio mogą wpływać na obniżenie zawartości ANF, mikotoksyn, a także pobudzać aktywność metaboliczną innych dodatków pozostając z nimi w symbiozie. Efektywność procesu fermentacji uzależniona jest od warunków rozwoju mikroorganizmów na który wpływa wilgotność, temperatura, czas, pH, dostęp tlenu i substratów. W praktyce analitycznej zmiany zachodzące podczas przetwarzania pasz często powodowały poprawę części właściwości otrzymanego produktu jak i pogorszenie innych. Oznacza to, że konieczne jest nieustanne optymalizowanie parametrów procesu fermentacji, podłoża i substratów, aby możliwe było jak najszersze pozytywne działanie zmierzające do poprawy wartości pokarmowej pasz, która przyczyni się do możliwości wykorzystania pasz rzepakowych w żywieniu, w szczególności młodszych grup technologicznych i wydajności produkcyjnej, wykorzystania dostępnego materiału i obniżenia kosztów produkcji.
Udało się to poprzez zastosowanie sposobu uszlachetniania makuchów rzepakowych według wynalazku, i jak wykazały testy laboratoryjne osiągnięto wzrost zawartości białka ogólnego, białka strawnego i wartości energetycznej paszy przy jednoczesnym spadku zawartości związków bezazotowych wyciągowych. Ponadto nieoczekiwanie odkryto, że proces fermentacji z udziałem dodatku fitazy wpływa na prawie całkowite zredukowanie zawartości niedostępnego w paszy fosforu w postaci fitynowej oraz blisko dziesięciokrotne zredukowanie koncentracji glukozynolanów, a także pozwala na wykorzystanie w procesie hodowlanym oligosacharydów z rodziny rafinozy (rafinoza i stachioza). Mając na uwadze iż przemysł paszowy poszukuje szybkich, tanich i prostych rozwiązań technologicznych, poprawiających wartości odżywcze makuchu rzepakowego, zaproponowany proces przetwarzania pozwala ponadto obniżyć koszty paszy poprzez zastosowanie w mieszance zamiast drogiej poekstrakcyjnej śruty sojowej fermentowanych makuchów rzepakowych.
Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych według wynalazku polega na tym, że makuch rzepakowy o zawartości białka większej niż 15%, korzystnie w warunkach beztlenowych, poddaje się fermentacji stałej wgłębnej, a do wody z dodatkiem enzymatycznym fitazy, w szczególności płynnej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 5500 OTU/g dodaje się makuch rzepakowy a po co najmniej 24 h neutralizuje się mikroorganizmy wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze nie mniejszej niż 70°C przez co najmniej 15 minut, i korzystnie suszy się uzyskany produkt w temperaturze od 45 do 60°C, korzystnie 50-55°C do osiągnięcia co najmniej 86% suchej masy.
PL 237 575 Β1
Przy czym korzystnie, gdy makuch rzepakowy w ilości 1:2 miesza się z wodą, korzystnie letnią w temperaturze 25-35°C, korzystnie 30°C i do otrzymanej mieszaniny aplikuje się enzym w postaci płynnej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 5500 OTU/g w ilości korzystnie 0,05% do 5% nie mniejszej niż 1% w stosunku do masy mieszaniny makuchu z wodą, a surowce miesza się, co najmniej w momencie dodawania oraz po 6ciu godzinach prowadzenia fermentacji, korzystnie utrzymując temperaturę pokojową lub wyższą, korzystnie temperaturę 30°C przez co najmniej 18 h, jednak nie dłużej niż 30 h, korzystnie 24 h.
Korzystnie, gdy enzym fitazy ma postać płynną lub sypką i pozyskany jest z grzyba Pichia pastoris. Korzystnie, gdy w przypadku stosowania enzymu sypkiego, jest on homogennie zmieszany z wodą przed dodaniem makuchu, korzystnie w stosunku 1:2 (makuch:woda)
Korzystnie fermentację prowadzi się w naczyniach szklanych, pojemnikach, beczkach lub fermentatorach z tworzywa sztucznego, korzystnie plastiku lub plexi.
Jak pokazały przeprowadzone badania porównawcze w surowym makuchu rzepakowym (materiał wyjściowy) i produktach fermentacji zarówno podczas oznaczenia podstawowego składu chemicznego (białka ogólnego, włókna surowego, tłuszczu surowego, popiołu surowego) wg AOAC (2007), analizy oligosacharydów metodą chromatografii gazowej wg. Zalewski i in. (2001) w PAN w Olsztynie, fosforu fitynowego stosując metodę opisaną przez Haug i Lantzsch (1983), obliczeń statystycznych przy pomocy programu komputerowego SAS 9.3. (USA) oraz SAS Enterprise Guide 5.1 z przyjęciem istotności różnic pomiędzy grupami oraz interakcję pomiędzy nimi obliczono przy użyciu szczegółowego testu t-Studenta (dla porównania w parach) przy P<0.05, uzyskany produkt posiada lepsze właściwości fizykochemiczne i skutecznie poprawia wartość odżywczą materiału poprzez wzrost wartości energetycznej paszy i wzrost koncentracji białka ogólnego i białka strawnego przy jednoczesnym obniżeniu bezazotowych związków wyciągowych oraz występujących substancjach antyodżywczych - glukozynolanów, fosforu fitynowego, oligosacharydów. Wyniki przeprowadzonych testów obrazują tabele.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w podstawowym składzie chemicznym materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego. (Średnie wyniki z 4 powtórzeń fermentacji)
| Składniki (%) w suchej masie | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | SEM | P |
| popiół surowy | 6.700 | 6.702 | 0.100 | 0.9000 |
| białko ogólne | 32.51 Ib | 34.855a | 0,620 | <0,0001 |
| białko strawne | 26.801b | 29.569a | 0.570 | <0.0001 |
| włókno surowe | 15.517 | 16.384 | 0.260 | 0.0500 |
| tłuszcz surowy | 9,956a | 9.287b | 0,120 | <0,0001 |
| ZBW | 35.315a | 32.773b | 1,010 | <0,0001 |
| EB(kcal) | 5126.59b | 5240.29a | 23.880 | 0.0021 |
| EB (MJ) | 21.454b | 21.937a | 0.100 | 0.0019 |
| Składniki mineralne | ||||
| Fosfor ogólny | 1,151 | 1,143 | 0,010 | 0.0803 |
Tabela 1. Podstawowy skład chemiczny materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
Stwierdzono, istotne zmiany w składzie chemicznym. Proces fermentacji istotnie wpływa na wzrost zawartości białka ogólnego, białka strawnego i wartości energii brutto paszy przy jednoczesnym spadku zawartości związków bezazotowych wyciągowych, bez wpływu na zawartość pozostałych składników.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości fosforu fitynowego i % stosunku udziału fosforu fitynowego do fosforu ogólnego materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
PL 237 575 Β1
| Składnik (%) w suchej masie | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | SEM | P |
| Pfit | 0.307a | 0 016b | 0.030 | <.0001 |
| P fit % Pog. | 26.67a | 1.40b | 2.913 | <.0001 |
Tabela 2. Zawartość fosforu fitynowego (P) i % stosunku udziału fosforu fitynowego do fosforu ogólnego materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
Fermentacja makuchu rzepakowego prawie całkowicie zredukowała poziom niedostępnego w paszy fosforu w postaci fitynowej.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości glukozynolanów materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
| Komponent (pmol/g) | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy |
| Glukozynolany (nmol/g) | 16.30 | 1.66 |
| glukonapina | 3.09 | 0.29 |
| glukobrassicinapina | 1.20 | 0.10 |
| progoitryna | 8.89 | 0.54 |
| glukobrassicyna | 0.17 | 0.00 |
| hydroksyglukobrassicyna | 2.95 | 0.74 |
Tabela 3. Zawartość glukozynolanów w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i w suchym fermentowanym makuchu rzepakowego.
Fermentacja makuchu rzepakowego blisko dziesięciokrotnie zredukowała zawartość w nim wszystkich glukozynolanów (glukonapinę, glukobrassicinapinę, progoitrynę, glukobrassicynę, hydroksyglukobrassicynę).
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
| mg g-1 suchej masy | Surowy makuch rzepakowy | Fermentow any makuch rzepakowy | ||||||
| Lp. | cukrowce | średnia | SD | SEM | średnia | SD | SEM | |
| 1 | fruktoza | 0.30 | 0.03 | 0.02 | 0.35 | 0.01 | 0.01 | |
| 2 | galaktoza | 0.00 | 0.00 | 0.00 | 0.19 | 0.01 | 0.01 | |
| 3 | glukoza | 0.83 | 0.02 | 0.01 | 0.35 | 0,04 | 0.02 | |
| 4 | sacharoza | 53.16 | 0.65 | 0.38 | 2.73 | 0.08 | 0.04 | |
| 5 | maltoza | 0.57 | 0.08 | 0.05 | 0.09 | 0.00 | 0.00 | |
| 6 | galaktinol | 1.21 | 0.07 | 0.04 | 0.00 | 0.00 | 0.00 | |
| 7 | DGMI | 0.09 | 0.01 | 0.00 | 0.08 | 0.00 | 0.00 | |
| 8 | rafinoza | Cukry z rodziny rafinozy | 3.21 | 0.06 | 0.03 | 1.47 | 0.07 | 0,04 |
| 9 | stachioza | 17.66 | 044 | 0.25 | 0.48 | 0.03 | 0,01 | |
| 10 | 1 -KEST OZA/melecytoza | 0.54 | 0.07 | 0.04 | 0.58 | 0.05 | 0.03 | |
| 11 | di-galaktozylo-glicerol | 0.56 | 0.02 | 0.01 | 0.00 | 0.00 | 0.00 | |
| suma | 78.14 | 0.71 | 0.41 | 6.31 | 0.82 | 0.47 |
Tabela 4. Zawartość cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
PL 237 575 Β1
Stwierdzono korzystne zmiany w zawartości cukrowców, wykorzystanie sacharozy, rozkład oligosacharydów (rafinozy i stachiozy) należących do substancji antyodżywczych przy jednoczesnym wzroście poziomu monosacharydów.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości mannitolu i uaktywnienia mio-inozytolu w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowym) i w suchym fermentowanym materiale.
| mg g-1 suchej masy | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | |||||
| Lp | Cukrowce | średnia | SD | SEM | średnia | SD | SEM |
| 1 | Mannitol | 0.21 | 0.01 | 0.01 | 8.11 | 0.58 | 0.33 |
| 2 | mio-inozytol | 0.49 | 0.02 | 0.01 | 2.54 | 0.09 | 0.05 |
Tabela 5. Zawartość mannitolu i mio-inozytolu w materiale wyjściowym i suchym fermentowanym makuchu rzepakowym
Wytworzony w procesie mannitol (wzrost prawie czterdziestokrotny) pozwala wydłużyć trwałość uzyskanego produktu, ponadto ma on właściwości nawilżające i bakteriostatyczne. Z kolei mio-inozytol (wzrost ponad pięciokrotny) w produkcie fermentowanym powszechnie zaliczany do witamin z grupy B jest składnikiem fosfolipidów, błon komórkowych, odgrywa istotną rolę w morfo- i cytogenezie komórkowej, a także w syntezie lipidów.
Wytworzony fermentowany makuch rzepakowy może zostać wykorzystany do produkcji mieszanek pełń o po rej owych, pasz uzupełniających, koncentratów i innych mieszanek paszowych stosowanych w żywieniu zwierząt.
Przykład zastosowania
Przykład I
Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych według wynalazku polega na tym, makuch rzepakowy o zawartości białka większej niż 22%, w warunkach beztlenowych poddaje się fermentacji stałej wgłębnej, a do wody z dodatkiem enzymatycznym fitazy, w postaci płynnej egzogennej 6-fitazy o aktywności 5000 OTU/g, w ilości 1% do masy mieszaniny wody i makuchu, a po 24 h neutralizuje się mikroorganizmy wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze 70°C przez 15 minut, suszy się uzyskany produkt w temperaturze 50-55°C do osiągnięcia 86% suchej masy.
Przy czym makuch rzepakowy w ilości 1:2 miesza się z letnią wodą o temperaturze około 30°C wymieszanej z enzymem w postaci egzogennej 6-fitazy o aktywności 5000 OTU/g w ilości 1% w stosunku do masy mieszaniny makuchu z wodą, a surowce miesza się w momencie dodawania oraz po 6ciu godzinach prowadzenia fermentacji, utrzymując temperaturę pokojową 30°C przez cały proces fermentacji.
Enzym fitazy ma postać płynną i wytworzony jest z grzyba Pichia pastoris, a enzym homogennie zmieszany jest z mieszaniną wody i makuchu w stosunku 2:1.
Fermentację prowadzi się w naczyniach wybranych spośród naczyń szklanych, pojemników, beczek lub fermentatorów z tworzywa sztucznego.
Jak pokazały przeprowadzone badania porównawcze w surowym makuchu rzepakowym (materiał wyjściowy) i produktach fermentacji zarówno podczas oznaczenia podstawowego składu chemicznego (białka ogólnego, włókna surowego, tłuszczu surowego, popiołu surowego) wg AOAC (2007), analizy oligosacharydów metodą chromatografii gazowej wg. Zalewski i in. (2001) w PAN w Olsztynie, fosforu fitynowego stosując metodę opisaną przez Haug i Lantzsch (1983), obliczeń statystycznych przy pomocy programu komputerowego SAS 9.3. (USA) oraz SAS Enterprise Guide 5.1 z przyjęciem istotności różnic pomiędzy grupami oraz interakcję pomiędzy nimi obliczono przy użyciu szczegółowego testu t-Studenta (dla porównania w parach) przy P<0.05, uzyskany produkt posiada lepsze właściwości wartości energetycznej paszy i wzrost koncentracji białka ogólnego i białka strawnego przy jednoczesnym obniżeniu bezazotowych związków wyciągowych oraz występujących substancjach antyodżywczych - glukozynolanów, fosforu fitynowego, oligosacharydów. Wyniki przeprowadzonych testów obrazują tabele.
PL 237 575 Β1
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w podstawowym składzie chemicznym materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego. (Średnie wyniki z 4 powtórzeń fermentacji)
| Składniki (%) w suchej masie | Surowy makuch rzepakowy | Fermentow'any makuch rzepakowy | SEM | P |
| popiół surowy | 6.700 | 6.702 | 0.100 | 0.9000 |
| białko ogólne | 32.511b | 34.855a | 0.620 | <0.0001 |
| białko strawne | 26,801b | 29.569a | 0,570 | <0,0001 |
| włókno surowe | 15.517 | 16.384 | 0.260 | 0.0500 |
| tłuszcz surowy | 9.95 6a | 9.287b | 0.120 | <0.0001 |
| ZBW | 35.315a | 32.773b | 1.010 | <0.0001 |
| EB(kcal) | 5126.59b | 5240.29a | 23.880 | 0,0021 |
| EB (MJ) | 21,454b | 21,937a | 0.100 | 0.0019 |
| Składniki mineralne | ||||
| P | 1.151 | 1.143 | 0.010 | 0.0803 |
Tabela 6. Podstawowy skład chemiczny materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
Stwierdzono, istotne zmiany w składzie chemicznym. Proces fermentacji istotnie wpływa na wzrost zawartości białka ogólnego, białka strawnego i wartości energii brutto paszy przy jednoczesnym spadku zawartości związków bezazotowych wyciągowych, bez wpływu na zawartość pozostałych składników.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości fosforu fitynowego i % stosunku udziału fosforu fitynowego do fosforu ogólnego materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
| Składnik (%) w suchej masie | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | SEM | P |
| Pfit | 0.307a | 0.016b | 0.030 | <.0001 |
| Pfit%Pog. | 26.67a | 1.40b | 2.913 | <0001 |
Tabela 7. Zawartość fosforu fitynowego i % stosunku udziału fosforu fitynowego do fosforu ogólnego materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
Fermentacja makuchu rzepakowego prawie całkowicie zredukowała poziom niedostępnego w paszy fosforu w postaci fitynowej.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości glukozynolanów materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
| Komponent (pmol/g) | Surowy' makuch rzepakowy' | Fermentowany' makuch rzepakowy |
| Glukozynolany (pmol/g) | 16.30 | 1.66 |
| glukonapina | 3.09 | 0.29 |
| glukobrassicinapina | 1,20 | 0.10 |
| progoitryna | 8.89 | 0.54 |
| glukobrassicyna | 0.17 | 0.00 |
| hydrok syglukobrassi cyna | 2.95 | 0.74 |
Tabela 8. Zawartość glukozynolanów w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i w suchym fermentowanym makuchu rzepakowego.
PL 237 575 Β1
Fermentacja makuchu rzepakowego blisko dziesięciokrotnie zredukowała zawartość w nim wszystkich glukozynolanów (glukonapinę, glukobrassicinapinę, progoitrynę, glukobrassicynę, hydroksyglukobrassicynę)
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
| mg g-1 suchej masy | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | ||||||
| Lp. | cukrowce | średnia | SD | SEM | średnia | SD | SEM | |
| 1 | fruktoza | 0.30 | 0.03 | 0.02 | 0.35 | 0.01 | 0.01 | |
| 2 | galaktoza | 0.00 | 0.00 | 0.00 | 0.19 | 0.01 | 0.01 | |
| 3 | glukoza | 0.83 | 0.02 | 0.01 | 0.35 | 0.04 | 0.02 | |
| 4 | sacharoza | 53.16 | 0.65 | 0.38 | 2.73 | 0.08 | 0.04 | |
| 5 | maltoza | 0.57 | 0.08 | 0.05 | 0.09 | 0.00 | 0.00 | |
| 6 | galaktinol | 1.21 | 0.07 | 0.04 | 0.00 | 0.00 | 0.00 | |
| 7 | DGM1 | 0.09 | 0.01 | 0.00 | 0.08 | 0.00 | 0.00 | |
| 8 | rafinoza | Cukry' z rodziny rafinozy | 3.21 | 0.06 | 0.03 | 1.47 | 0.07 | 0,04 |
| 9 | stachioza | 17.66 | 0.44 | 0.25 | 0.48 | 0.03 | 0,01 | |
| 10 | 1 -KEST OZ A/me lecytoza | 0.54 | 0.07 | 0.04 | 0.58 | 0.05 | 0.03 | |
| 11 | di-galaktozylo-glicerol | 0.56 | 0.02 | 0.01 | 0.00 | 0.00 | 0.00 | |
| suma | 78.14 | 0.71 | 0.41 | 6.31 | 0.82 | 0.47 |
Tabela 9. Zawartość cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
Stwierdzono korzystne zmiany w zawartości cukrowców, wykorzystanie sacharozy, rozkład oligosacharydów (rafinozy i stachiozy) należących do substancji antyodżywczych przy jednoczesnym wzroście poziomu monosacharydów.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości mannitolu i uaktywnienia mio-inozytolu w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowym) i w suchym fermentowanym materiale.
| mg g-1 suchej masy | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | |||||
| Lp. | Cukrowce | średnia | SD | SEM | średnia | SD | SEM |
| 4 | Mannitol | 0.21 | 0.01 | 0.01 | 8.11 | 0.58 | 0.33 |
| 7 | mio-inozytol | 0.49 | 0.02 | 0.01 | 2.54 | 0.09 | 0.05 |
Tabela 10. Zawartość mannitolu i mio-inozytolu w materiale wyjściowym i suchym fermentowanym makuchu rzepakowym
Wytworzony w procesie mannitol (wzrost prawie czterdziestokrotny) pozwala wydłużyć trwałość uzyskanego produktu, ponadto ma on właściwości nawilżające i bakteriostatyczne. Z kolei mio-inozytol (wzrost ponad pięciokrotny) w produkcie fermentowanym powszechnie zaliczany do witamin z grupy B jest składnikiem fosfolipidów, błon komórkowych, odgrywa istotną rolę w morfo- i cytogenezie komórkowej, a także w syntezie lipidów.
Wytworzony fermentowany makuch rzepakowy może zostać wykorzystany do produkcji mieszanek pełń o po rej owych, pasz uzupełniających, koncentratów i innych mieszanek paszowych stosowanych w żywieniu zwierząt.
Przykład II
Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych według wynalazku polega na tym, makuch rzepakowy o zawartości białka większej niż 18%, w warunkach beztlenowych poddaje się fermentacji
PL 237 575 Β1 wgłębnej, a do wody dodaje się dodatek enzymatyczny fitazy, w postaci egzogennej 6-fitazy o aktywności 1250 OTU/g, a następnie makuch rzepakowy, a po 24 h neutralizuje się mikroorganizmy wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze 70°C przez 15 minut i suszy się uzyskany produkt w temperaturze 50-55°C do osiągnięcia 86% suchej masy.
Przy czym makuch rzepakowy w ilości 1:2 miesza się z letnią wodą o temperaturze około 30°C się zawierającej dodatek enzymatyczny w postaci egzogennej 6-fitazy o aktywności 1250 OTU/g w ilości 1% w stosunku do masy mieszaniny makuchu z wodą, a surowce miesza się w momencie dodawania oraz po 6ciu godzinach prowadzenia fermentacji, utrzymując temperaturę pokojową 30°C przez cały proces fermentacji.
Enzym fitazy ma postać sypką i wytworzony jest z grzyba Pichia pastoris i miesza się go z wodą przed dodaniem makucha rzepakowego w stosunku.
Fermentację prowadzi się w naczyniach wybranych spośród naczyń szklanych, pojemników, beczek lub fermentatorów z tworzywa sztucznego.
Jak pokazały przeprowadzone badania porównawcze w surowym makuchu rzepakowym (materiał wyjściowy) i produktach fermentacji zarówno podczas oznaczenia podstawowego składu chemicznego (białka ogólnego, włókna surowego, tłuszczu surowego, popiołu surowego) wg AOAC (2007), analizy oligosacharydów metodą chromatografii gazowej wg. Zalewski i in. (2001) w PAN w Olsztynie, fosforu fitynowego stosując metodę opisaną przez Haug i Lantzsch (1983), obliczeń statystycznych przy pomocy programu komputerowego SAS 9.3. (USA) oraz SAS Enterprise Guide 5.1 z przyjęciem istotności różnic pomiędzy grupami oraz interakcję pomiędzy nimi obliczono przy użyciu szczegółowego testu t-Studenta (dla porównania w parach) przy P<0.05, uzyskany produkt posiada lepsze właściwości fizykochemiczne i skutecznie poprawia wartość odżywczą materiału poprzez wzrost zawartości białka ogólnego i tłuszczu surowego przy jednoczesnym obniżeniu włókna surowego oraz występujących substancjach antyodżywczych - glukozynolanów, fosforu fitynowego, oligosacharydów. Wyniki przeprowadzonych testów obrazują tabele.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w podstawowym składzie chemicznym materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego. (Średnie wyniki z 4 powtórzeń fermentacji)
| Składniki (%) w suchej masie | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | SEM | P |
| popiół surowy | 6,700 | 6.702 | 0.100 | 0.9000 |
| białko ogólne | 32.51 Ib | 34.855a | 0.620 | <0.0001 |
| białko strawne | 26,801b | 29.569a | 0,570 | <0.0001 |
| włókno surowe | 15.517 | 16.384 | 0.260 | 0.0500 |
| tłuszcz surowy | 9,956a | 9,287b | 0,120 | <0,0001 |
| ZBW | 35.315a | 32.773b | 1,010 | <0,0001 |
| EB(kcal) | 5126.59b | 5240.29a | 23.880 | 0.0021 |
| EB (MJ) | 21.454b | 21.937a | 0.100 | 0.0019 |
| Składniki mineralne | ||||
| P | 1.151 | 1.143 | 0.010 | 0.0803 |
Tabela 11. Podstawowy skład chemiczny materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
Stwierdzono, istotne zmiany w składzie chemicznym. Proces fermentacji istotnie wpływa na wzrost zawartości białka ogólnego, białka strawnego i wartości energii brutto paszy przy jednoczesnym spadku zawartości związków bezazotowych wyciągowych, bez wpływu na zawartość pozostałych składników.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości fosforu fitynowego i % stosunku udziału fosforu fitynowego do fosforu ogólnego materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
PL 237 575 Β1
| Składnik (%) w suchej masie | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | SEM | P |
| Pfit | 0.307a | 0.016b | 0.030 | <.0001 |
| P fit % Pog. | 26.67a | 1.40b | 2.913 | <.0001 |
Tabela 12. Zawartość fosforu fitynowego i % stosunku udziału fosforu fitynowego do fosforu ogólnego materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
Fermentacja makuchu rzepakowego prawie całkowicie zredukowała poziom niedostępnego w paszy fosforu w postaci fitynowej.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości glukozynolanów materiału wyjściowego (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
| Komponent (pmol/g) | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy |
| Glukozynolany (μηιοΐ/g) | 16.30 | 1.66 |
| glukonapina | 3.09 | 0.29 |
| gl ukobrassicin apina | 1.20 | 0.10 |
| progoitryna | 8.89 | 0.54 |
| glukobrassicyna | 0.17 | 0.00 |
| hydroksyglukobrassicyna | 2.95 | 0.74 |
Tabela 13. Zawartość glukozynolanów w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i w suchym fermentowanym makuchu rzepakowego.
Fermentacja makuchu rzepakowego blisko dziesięciokrotnie zredukowała zawartość w nim wszystkich glukozynolanów (glukonapinę, glukobrassicinapinę, progoitrynę, glukobrassicynę, hydroksyglukobrassicynę)
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
| mg g-1 suchej masy | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | ||||||
| Lp. | cukrowce | średnia | SD | SEM | średnia | SD | SEM | |
| 1 | fruktoza | 0.30 | 0.03 | 0.02 | 0.35 | 0.01 | 0.01 | |
| 2 | galaktoza | 0.00 | 0.00 | 0.00 | 0.19 | 0.01 | 0.01 | |
| 3 | glukoza | 0.83 | 0.02 | 0.01 | 0.35 | 0.04 | 0.02 | |
| 4 | sacharoza | 53.16 | 0.65 | 0.38 | 2.73 | 0.08 | 0.04 | |
| 5 | maltoza | 0.57 | 0.08 | 0.05 | 0.09 | 0.00 | 0.00 | |
| 6 | galaktinol | 1.21 | 0.07 | 0.04 | 0.00 | 0.00 | 0.00 | |
| 7 | DGMI | 0.09 | 0.01 | 0.00 | 0.08 | 0.00 | 0.00 | |
| 8 | rafinoza | Cukry z rodziny rafinozy' | 3,21 | 0.06 | 0.03 | 1.47 | 0.07 | 0.04 |
| 9 | stachioza | 17.66 | 0.44 | 0.25 | 0.48 | 0.03 | 0.01 | |
| 10 | 1 -KESTOZA/melecytoza | 0.54 | 0.07 | 0.04 | 0.58 | 0.05 | 0.03 | |
| 11 | di-galaktozylo-glicerol | 0,56 | 0.02 | 0.01 | 0.00 | 0.00 | 0.00 | |
| suma | 78.14 | 0.71 | 041 | 6.31 | 0.82 | 0.47 |
Tabela 14. Zawartość cukrowców w tym oligosacharydów z rodziny rafinozy w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowego) i suchego fermentowanego makuchu rzepakowego.
PL 237 575 Β1
Stwierdzono korzystne zmiany w zawartości cukrowców, wykorzystanie sacharozy, rozkład oligosacharydów (rafinozy i stachiozy) należących do substancji anty-odżywczych przy jednoczesnym wzroście poziomu monosacharydów.
Określenie wpływu procesu fermentacji na zmiany w zawartości mannitolu i uaktywnienia mio-inozytolu w materiale wyjściowym (makuchu rzepakowym) i w suchym fermentowanym materiale.
| mg g-1 suchej masy | Surowy makuch rzepakowy | Fermentowany makuch rzepakowy | |||||
| Lp. | Cukrowce | średnia | SD | SEM | średnia | SD | SEM |
| 1 | mannitol | 0.21 | 0.01 | 0.01 | 8.11 | 0.58 | 0.33 |
| 2 | mio-inozytol | 0.49 | 0.02 | 0.01 | 2.54 | 0.09 | 0.05 |
Tabela 15. Zawartość mannitolu i mio-inozytolu w materiale wyjściowym i suchym fermentowanym makuchu rzepakowym
Wytworzony w procesie mannitol (wzrost prawie czterdziestokrotny) pozwala wydłużyć trwałość uzyskanego produktu, ponadto ma on właściwości nawilżające i bakteriostatyczne. Z kolei mio-inozytol (wzrost ponad pięciokrotny) w produkcie fermentowanym powszechnie zaliczany do witamin z grupy B jest składnikiem fosfolipidów, błon komórkowych, odgrywa istotną rolę w morfo- i cytogenezie komórkowej, a także w syntezie lipidów.
Wytworzony fermentowany makuch rzepakowy może zostać wykorzystany do produkcji mieszanek pełń o po rej owych, pasz uzupełniających, koncentratów i innych mieszanek paszowych stosowanych w żywieniu zwierząt.
Claims (10)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych, znamienny tym, że makuch rzepakowy o zawartości białka większej niż 15%, poddaje się fermentacji stałej wgłębnej, a do wody z dodatkiem enzymatycznym fitazy w ilości od 0.05 do 5% wagowych, w szczególności egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 5500 OTU/g dodaje się makuch rzepakowy w stosunku 1:2 (makuch/woda), a po co najmniej 24 h neutralizuje się mikroorganizmy wygrzewając uzyskaną mieszaninę w temperaturze nie mniejszej niż 70°C przez co najmniej 15 minut, i korzystnie suszy się uzyskany produkt w temperaturze od 45 do 60°C, korzystnie 50-55°C do osiągnięcia co najmniej 86% suchej masy.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że fermentację prowadzi się w warunkach beztlenowych.
- 3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że dodatek enzymatyczny ma postać płynną lub sypką.
- 4. Sposób według zastrz. 1 albo 2 albo 3, znamienny tym, że makuch rzepakowy w ilości 1:2 (makuch:woda) miesza się z wodą o temperaturze 25-35°C i do otrzymanej mieszaniny aplikuje się enzym w postaci płynnej egzogennej 6-fitazy o maksymalnej aktywności 5500 OTU/g, a surowce miesza się, co najmniej w momencie dodawania oraz po 6ciu godzinach prowadzenia fermentacji.
- 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że woda ma temperaturę 30°C.
- 6. Sposób według zastrz. 4 albo 5, znamienny tym, że podczas fermentacji utrzymuje się temperaturę pokojową lub wyższą przez co najmniej 18 h i nie dłużej niż 30 h.
- 7. Sposób według zastrz. 4 albo 5, znamienny tym, że podczas fermentacji utrzymuje się temperaturę 30°C pokojową lub wyższą przez co najmniej 18 h i nie dłużej niż 30 h.
- 8. Sposób według zastrz. 6 albo 7, znamienny tym, że czas fermentacji wynosi 24 h.
- 9. Sposób według dowolnego z wcześniejszych zastrzeżeń, znamienny tym, że enzym fitazy ma postać płynną lub sypką i pozyskany jest z grzyba Pichia pastoris.
- 10. Sposób według dowolnego z wcześniejszych zastrzeżeń, znamienny tym, że fermentację prowadzi się w naczyniach wybranych spośród: szklanych, pojemnikach, beczkach lub fermentatorach z tworzywa sztucznego, korzystnie plastiku lub plexi.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL422849A PL237575B1 (pl) | 2017-09-14 | 2017-09-14 | Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL422849A PL237575B1 (pl) | 2017-09-14 | 2017-09-14 | Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL422849A1 PL422849A1 (pl) | 2019-03-25 |
| PL237575B1 true PL237575B1 (pl) | 2021-05-04 |
Family
ID=65799916
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL422849A PL237575B1 (pl) | 2017-09-14 | 2017-09-14 | Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL237575B1 (pl) |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1268305A (zh) * | 1999-03-24 | 2000-10-04 | 中国科学院水生生物研究所 | 一种凤眼莲饲料的制配方法 |
| CN102334599A (zh) * | 2011-09-06 | 2012-02-01 | 甘肃省农业科学院生物技术研究所 | 一种亚麻籽饼粕发酵生产畜用营养液的方法 |
| FR3016768B1 (fr) * | 2014-01-27 | 2016-02-26 | J Soufflet Ets | Utilisation d'une composition enzymatique dans l'alimentation des ruminants |
| LT6271B (lt) * | 2014-09-24 | 2016-05-10 | Uab "Baltijos Biotechnologijos" | Augalinės kilmės fermentuoti pašarai |
| CN105994934A (zh) * | 2016-06-29 | 2016-10-12 | 潘焕萍 | 雏鸡饲料及其制备方法 |
-
2017
- 2017-09-14 PL PL422849A patent/PL237575B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL422849A1 (pl) | 2019-03-25 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN101897383B (zh) | 一种发酵法去除棉菜粕毒物和提高营养价值的方法、一种饲用发酵棉菜粕蛋白原料及其应用 | |
| Kasprowicz-Potocka et al. | The effect of dry yeast fermentation on chemical composition and protein characteristics of blue lupin seeds | |
| CN102669448B (zh) | 一种肉大鸡低能量饲料及其制备方法 | |
| KR101918732B1 (ko) | 곡물 분말 내의 단백질을 농축하는 방법 | |
| CN106306409A (zh) | 一种育肥猪喂食用白玉菇菌糠饲料及其生产工艺 | |
| CN109452449A (zh) | 一种菜粕生料二次发酵工艺生产发酵菜粕的方法及其应用 | |
| CN112385736A (zh) | 一种菌酶协同发酵油糠的方法 | |
| CN110583866A (zh) | 一种高膳食纤维低抗原蛋白发酵大豆皮及其制备方法 | |
| Olugosi et al. | Nutritional enhancement of cocoa pod husk meal through fermentation using Rhizopus stolonifer | |
| US20200407764A1 (en) | Method for preparing fermented composition with improved odor using yeast | |
| CN105166324B (zh) | 一种利用苎麻骨培养基菌糠制作饲料的方法 | |
| Lamsal et al. | Microbial growth and modification of corn distillers dried grains with solubles during fermentation | |
| Li et al. | Synergism of microorganisms and enzymes in solid-state fermentation of animal feed. A review. | |
| Belal | Assessment of the performance of chicks fed with wheat bran solid fermented by Trichoderma longibrachiatum (SF1) | |
| CN116584591A (zh) | 一种生产洁蛋的蛋鸡低氮生物饲料及其制备方法 | |
| Dairo et al. | Proximate composition and amino acid profile of rice husk biodegraded with Pleurotus ostreatusfor different periods | |
| KR101252134B1 (ko) | 소의 성장촉진용 사료 첨가제 및 이를 이용한 축우 사료의 제조방법 | |
| PL237575B1 (pl) | Sposób uszlachetniania makuchów rzepakowych | |
| Al-Mashhadani et al. | Effect of fermentation of wheat bran and barley on the improvement of nutritional value. | |
| CN108783013A (zh) | 采用纤维素原料制成的生物蛋白饲料及制备方法 | |
| Das et al. | Inclusion of different levels of solid-state fermented mahua oil cake on growth, digestibility and immunological parameters of rohu (Labeo rohita) | |
| CN112293594A (zh) | 一种猪用发酵桑树蛋白饲料及其制备方法 | |
| TWI830742B (zh) | 使用酵母以製備具有經改良之氣味的發酵組成物的方法、所使用之酵母、及包含其的組成物 | |
| PL242642B1 (pl) | Sposób redukcji fosforu fitynowego w śrucie rzepakowej poprzez fermentację z dodatkami enzymatycznymi i bakteriami | |
| Lawal et al. | Aspergillus flavus degraded brewer dried grains for broiler chicken diet: Performance and nutrient digestibility parameters |