PL206642B1 - Sposób modyfikacji grafitu - Google Patents
Sposób modyfikacji grafituInfo
- Publication number
- PL206642B1 PL206642B1 PL375125A PL37512505A PL206642B1 PL 206642 B1 PL206642 B1 PL 206642B1 PL 375125 A PL375125 A PL 375125A PL 37512505 A PL37512505 A PL 37512505A PL 206642 B1 PL206642 B1 PL 206642B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- strain
- distilled water
- agar
- days
- graphite
- Prior art date
Links
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 48
- 229910002804 graphite Inorganic materials 0.000 title claims description 34
- 239000010439 graphite Substances 0.000 title claims description 34
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 18
- 230000004048 modification Effects 0.000 title claims description 6
- 238000012986 modification Methods 0.000 title claims description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 54
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 47
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 31
- VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N sodium nitrate Chemical compound [Na+].[O-][N+]([O-])=O VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 24
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims description 22
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims description 22
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 18
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 18
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 18
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 18
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 15
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 15
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 15
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 12
- 239000000284 extract Substances 0.000 claims description 12
- 235000010344 sodium nitrate Nutrition 0.000 claims description 12
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 10
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 10
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 10
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 10
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 claims description 9
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 claims description 9
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 8
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 8
- 238000000527 sonication Methods 0.000 claims description 7
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 claims description 6
- 241001515917 Chaetomium globosum Species 0.000 claims description 6
- 241000186673 Lactobacillus delbrueckii Species 0.000 claims description 6
- 241000306281 Mucor ambiguus Species 0.000 claims description 6
- 241000985514 Penicillium ochrochloron Species 0.000 claims description 6
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 claims description 6
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 claims description 6
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 6
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 claims description 5
- 239000003599 detergent Substances 0.000 claims description 4
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 claims description 4
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 claims description 2
- 238000009395 breeding Methods 0.000 claims 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 claims 1
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 11
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 11
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 7
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 7
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 7
- 238000001157 Fourier transform infrared spectrum Methods 0.000 description 6
- 238000001237 Raman spectrum Methods 0.000 description 6
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 4
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 3
- 230000010349 pulsation Effects 0.000 description 2
- 102220201851 rs143406017 Human genes 0.000 description 2
- IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-(2-dodecoxyethoxy)ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000215068 Acacia senegal Species 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 229920000084 Gum arabic Polymers 0.000 description 1
- 239000000205 acacia gum Substances 0.000 description 1
- 235000010489 acacia gum Nutrition 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L disodium hydrogen phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].OP([O-])([O-])=O BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229910000397 disodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019800 disodium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000011197 physicochemical method Methods 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
RZECZPOSPOLITA
POLSKA
Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) 206642 (13) B1 (21) Numer zgłoszenia: 375125 (51) Int.Cl.
C01B 31/04 (2006.01) C12R 1/01 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (22) Data zgłoszenia: 16.05.2005 (54)
Sposób modyfikacji grafitu (73) Uprawniony z patentu:
POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL (43) Zgłoszenie ogłoszono:
27.11.2006 BUP 24/06 (45) O udzieleniu patentu ogłoszono:
30.09.2010 WUP 09/10 (72) Twórca(y) wynalazku:
MIROSŁAWA SZCZĘSNA-ANTCZAK, Łódź, PL TADEUSZ ANTCZAK, Łódź, PL STANISŁAW BIELECKI, Łódź, PL AGATA KACZOROWSKA, Łódź, PL (74) Pełnomocnik:
rzecz. pat. Bałczewski Zbigniew Wojciech Ośrodek Wynalazczości Politechniki Łódzkiej
PL 206 642 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób modyfikacji grafitu.
Dotychczas grafit modyfikuje się metodami chemicznymi i fizyko-chemicznymi w podwyższonej temperaturze i ciśnieniu.
Sposób modyfikacji grafitu zgodnie z wynalazkiem polega na tym, że grafit, uprzednio wysterylizowany, umieszcza się w wysterylizowanym podłożu hodowlanym szczepu pleśni Mucor circinelloides, Aspergillus niger, Penicillium ochrochloron lub Chaetomium globosum względnie szczepu bakterii Lactobacillus delbrueckii lub Pseudomonas fluorescens, wyizolowanego ze środowiska naturalnego, szczepi podłoże zawiesiną wodną zarodników lub komórek tego szczepu, otrzymaną w wyniku jego inkubacji i prowadzi hodowlę wgłębną na wytrząsarce w czasie 10-14 dni w temperaturze 20 -40°C przy szybkości obrotów 50-350 rpm. Po tym czasie grafit poddaje się oczyszczeniu z materiału biologicznego. W tym celu modyfikowany grafit zanurza się w wodzie destylowanej, poddaje działaniu ultradźwięków lub sonifikacji w czasie 10-45 minut i po przemyciu wodą destylowaną przenosi do naczynia zawierającego 0,05-2% roztwór wodny detergentu i w tym roztworze poddaje znów działaniu ultradźwięków lub sonifikacji w czasie 10-120 minut na wytrząsarce przy szybkości obrotów 50-350 rpm, w końcu przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej. Szczep Mucor circinelloides inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 agaru. Szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 agaru. Szczep pleśni Penicillium ochrochloron inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-6 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g peptonu, 0,3-2 g ekstraktu drożdżowego, 0,5-2 g Na2HPO4, 0,001-0,1 g MgSO47H2O, 0,1-2 g glukozy. Szczep Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1 -1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy. Szczep Lactobacillus delbrueckii inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2-8 g ekstraktu drożdżowego, 2-15 g ekstraktu mięsnego, 2-15 g peptonu, 1-6 g NaCl, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2-8 g ekstraktu drożdżowego, 2-15 g ekstraktu mięsnego, 2-15 g peptonu, 1-6 g NaCl. Szczep Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-6 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-6 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu. Jako detergenty korzystnie stosuje się Triton X-100, Brij 35, gumę arabską, Tween 80, SEKUMATIC®FC lub ich mieszaniny.
W sposobie według wynalazku proces modyfikacji grafitu zachodzi bezpośrednio podczas hodowli drobnoustrojów. W wyniku tej modyfikacji otrzymuje się grafit zawierający na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu czyli grafit o poprawionych właściwościach aplikacyjnych powierzchni.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady nie ograniczając jego zakresu.
P r z y k ł a d I.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Mucor circinelloides poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pieśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO47H2O, 30 g glukozy, w którym zanurzono grafit wysterylizowany w czasie 15 minut
PL 206 642 B1 w temperaturze 121°C. Nastę pnie prowadzono hodowlę wgłębną w czasie 14 dni na wytrząsarce przy szybkości obrotowej 210 rpm w temperaturze 30°C. Po tym czasie grafit zanurzono w wodzie destylowanej, następnie poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut i po przemyciu wodą, przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% roztworem wodnym Tritonu X-100, w którym mieszano go na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowany grafit umieszczono w 1% roztworze wodnym Tritonu X-100, w którym poddano go działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu grafit przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR grafitu zmodyfikowanego podczas hodowli pleśni Mucor circinelloides stwierdzono, iż zawiera na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d II.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Aspergillus niger poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO47H2O, 30 g glukozy, w którym zanurzono grafit wysterylizowany w czasie 15 minut w temperaturze 121°C grafit i prowadzono hodowlę wgłębną w czasie 10 dni na wytrząsarce przy szybkości obrotowej 210 rpm w temperaturze 30°C. Po tym czasie grafit zanurzono w wodzie destylowanej, następnie poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut i po przemyciu wodą, przeniesiono do naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100, w którym mieszano go na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie przeniesiono zmodyfikowany grafit do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i ponownie poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu przemyto grafit wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR grafitu zmodyfikowanego podczas hodowli pleśni Aspergillus niger stwierdzono, iż zawiera na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d III.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Penicillium ochrochloron poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO47H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2,5 g peptonu, 0,625 g ekstraktu drożdżowego, 1,25 g K2HPO4, 0,025 g MgSO47H2O, 0,5 g glukozy, w którym zanurzono grafit uprzednio wysterylizowany w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono hodowlę wgłębną w czasie 10 dni na wytrząsarce przy szybkości obrotowej 210 rpm w temperaturze 30°C. Po tym czasie grafit zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą i przeniesiono do naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100, w którym poddano go mieszaniu na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowany grafit przeniesiono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano znów działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR grafitu zmodyfikowanego podczas hodowli pleśni Penicillium ochrochloron stwierdzono, iż zawiera na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d IV.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Chaetomium globosum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO47H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO47H2O, 30 g glukozy, w którym zanurzono grafit wysterylizowany w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono hodowlę wgłębną w czasie 10 dni na wytrząsarce przy szybkości obrotowej 210 rpm w temperaturze 30°C. Po tym czasie zanurzano go w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, następnie przemyto wodą destylowaną i przeniesiono do naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100, w którym poddano go mieszaniu na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowany grafit przeniesiono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano znów
PL 206 642 B1 działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowany grafit przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR grafitu zmodyfikowanego podczas hodowli pleśni Chaetomium globosum stwierdzono, iż zawiera na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d V.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep Lactobacillus delbrueckii poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej, 5 g ekstraktu drożdżowego, 10 g ekstraktu mięsnego, 10 g peptonu, 3 g NaCl, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia, po czym otrzymane w wyniku inkubacji komórki przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podł o że hodowlane o skł adzie: 1 kg wody destylowanej, 5 g ekstraktu drożdżowego, 10 g ekstraktu mięsnego, 10 g peptonu, 3 g NaCl, w którym zanurzono grafit wysterylizowany w czasie 15 minut w temperaturze 121°C. Hodowlę prowadzono w czasie 10 dni w na wytrząsarce przy szybkości obrotowej 210 rpm w temperaturze 30°C. Po tym czasie grafit zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, następnie przemyto wodą, przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% roztworem wodnym Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Po oczyszczeniu na wytrząsarce grafit przeniesiono do naczynia zawierającego 0,1% roztwór wodny detergentu SEKUMATIC®FC i poddano 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4, po czym przemyto go wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR grafitu zmodyfikowanego podczas hodowli bakterii Lactobacillus delbrueckii stwierdzono, iż zawiera na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu.
P r z y k ł a d VI.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep Pseudomonas fluorescens poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu wołowego, 5 g peptonu, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia, po czym otrzymane w wyniku inkubacji komórki przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu wołowego, 5 g peptonu, w którym zanurzono grafit wysterylizowany w czasie 15 minut w temperaturze 121°C. Hodowlę prowadzono w czasie 10 dni na wytrząsarce przy szybkości obrotowej 210 rpm, w temperaturze 30°C. Po tym czasie grafit zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą i przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100, w którym poddano go mieszaniu na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie grafit przeniesiono do naczynia zawierającego 0,1% roztwór wodny SEKUMATIC®FC i poddano 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4. W końcu zmodyfikowany grafit przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR grafitu zmodyfikowanego podczas hodowli bakterii Pseudomonas fluorescens stwierdzono, iż zawiera na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu.
Claims (7)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób modyfikacji grafitu, znamienny tym, że grafit, uprzednio wysterylizowany, umieszcza się w wysterylizowanym podłożu hodowlanym szczepu pleśni Mucor circinelloides, Aspergillus niger, Penicillium ochrochloron lub Chaetomium globosum względnie szczepu bakterii Lactobacillus delbrueckii lub Pseudomonas fluorescens, wyizolowanego ze środowiska naturalnego, szczepi podłoże zawiesiną wodną zarodników lub komórek tego szczepu, otrzymaną w wyniku jego inkubacji i prowadzi hodowlę wgłębną na wytrząsarce w czasie 10-14 dni w temperaturze 20-40°C przy szybkości obrotów 50-350 rpm, po czym grafit zanurza się w wodzie destylowanej, następnie poddaje działaniu ultradźwięków lub sonifikacji w czasie 10-45 minut, po przemyciu wodą destylowaną przenosi do naczynia zawierającego 0,05-2% roztwór wodny detergentu i w tym roztworze poddaje znów działaniu ultradźwięków lub sonifikacji w czasie 10-120 minut na wytrząsarce przy szybkości obrotów 50-350 rpm, w koń cu przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Mucor circinelloides inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepuPL 206 642 B1 prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 gK2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 agaru.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 agaru.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Penicillium ochrochloron inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001 -0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru, temperaturze 20-40°C w czasie 2-6 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g peptonu, 0,3-2 g ekstraktu drożdżowego, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g MgSO47H2O, 0,1-2 g glukozy.
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 1-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO47H2O, 10-40 g glukozy.
- 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Lactobacillus delbrueckii inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2-8 g ekstraktu drożdżowego, 2-15 g ekstraktu mięsnego, 2-15 g peptonu, 1-6 g NaCl, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2-8 g ekstraktu drożdżowego, 2-15 g ekstraktu mięsnego, 2-15 g peptonu, 1-6 g NaCl.
- 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-6 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-6 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375125A PL206642B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji grafitu |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375125A PL206642B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji grafitu |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL375125A1 PL375125A1 (pl) | 2006-11-27 |
| PL206642B1 true PL206642B1 (pl) | 2010-09-30 |
Family
ID=40561349
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL375125A PL206642B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji grafitu |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL206642B1 (pl) |
-
2005
- 2005-05-16 PL PL375125A patent/PL206642B1/pl not_active IP Right Cessation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL375125A1 (pl) | 2006-11-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Orgaz et al. | Bacterial biofilm removal using fungal enzymes | |
| Rodriguez et al. | Effect of surface roughness and stainless steel finish on Listeria monocytogenes attachment and biofilm formation | |
| Steele et al. | An atomic force microscopy study of the biodeterioration of stainless steel in the presence of bacterial biofilms | |
| Jayakumar et al. | Preparation and antimicrobial activity of scleraldehyde from Schizophyllum commune | |
| WO2009093675A1 (ja) | スナゴケ及び種子植物の生育促進方法及び生育促進菌 | |
| Kim et al. | Antifouling membranes employing a 2D planar nanobiocatalyst of crosslinked glucose oxidase aggregates wrapping extra-large graphene oxide | |
| EP2757149A1 (en) | Method for inhibiting proliferation of plant pathogenic microbe using collimonas bacterium | |
| Moonmangmee et al. | Purification and characterization of a novel polysaccharide involved in the pellicle produced by a thermotolerant Acetobacter strain | |
| JP5469314B2 (ja) | バクテリアセルロースの生産方法 | |
| PL206642B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu | |
| JP6671647B2 (ja) | 食肉熟成用の布及び熟成肉の製造方法 | |
| Yahia et al. | Isolation and identification of antibiotic producing Pseudomonas fluorescens NBRC-14160 from Delta Soil in Egypt | |
| CN102146348A (zh) | 一株产高丝氨酸内酯的乙酸钙不动杆菌及其应用 | |
| JP4246181B2 (ja) | 農作物の生長を助けるシュードモナス属ＲＲｊ２２８及びこれを含有する微生物製剤 | |
| PL206644B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| Du et al. | Production of polyvinyl alcohol‐degrading enzyme with Janthinobacterium sp. and its application in cotton fabric desizing | |
| JP2013188176A (ja) | 新規微生物およびその変異株並びにそれを用いた多糖類の製造方法 | |
| CN116240117B (zh) | 一种通过调控蛹虫草菌球形态来增强蛹虫草材料机械性能的方法和应用 | |
| CN112662578A (zh) | 一株多粘类芽孢杆菌dx32及其抑制拟盘多毛孢属植物病原真菌的应用 | |
| Sivakumar et al. | Screening of biopolymer producing bacteria isolated from some brassica plants | |
| Dabai et al. | Cassava starch as an alternative to agar-agar in microbiological media | |
| PL206641B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu | |
| PL206643B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| Neagu et al. | The functionalization of silica and titanate nanostructures with halotolerant proteases | |
| WO2007135941A1 (ja) | 酢酸菌型セラミドの製造方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20080516 |