PL206643B1 - Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych - Google Patents
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowychInfo
- Publication number
- PL206643B1 PL206643B1 PL375126A PL37512605A PL206643B1 PL 206643 B1 PL206643 B1 PL 206643B1 PL 375126 A PL375126 A PL 375126A PL 37512605 A PL37512605 A PL 37512605A PL 206643 B1 PL206643 B1 PL 206643B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- days
- distilled water
- mgso
- glucose
- temperature
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 22
- 238000000576 coating method Methods 0.000 title claims description 19
- 230000004048 modification Effects 0.000 title description 5
- 238000012986 modification Methods 0.000 title description 5
- 239000003245 coal Substances 0.000 title 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 64
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 55
- VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N sodium nitrate Chemical compound [Na+].[O-][N+]([O-])=O VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 34
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 24
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 24
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 22
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 21
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 21
- 229910021385 hard carbon Inorganic materials 0.000 claims description 19
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims description 18
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 18
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 18
- 235000010344 sodium nitrate Nutrition 0.000 claims description 17
- 239000011324 bead Substances 0.000 claims description 16
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims description 15
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims description 15
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 14
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 14
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 12
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 12
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 12
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 claims description 8
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 8
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 7
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 claims description 6
- 241000079253 Byssochlamys spectabilis Species 0.000 claims description 6
- 241001515917 Chaetomium globosum Species 0.000 claims description 6
- 241000222393 Phanerochaete chrysosporium Species 0.000 claims description 6
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 claims description 6
- 241000223261 Trichoderma viride Species 0.000 claims description 6
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 5
- 239000003599 detergent Substances 0.000 claims description 4
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 3
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 3
- JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N Thiamine Natural products CC1=C(CCO)SC=[N+]1CC1=CN=C(C)N=C1N JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N azanium;azane;2,3,4-trihydroxy-4-oxobutanoate Chemical compound [NH4+].[NH4+].[O-]C(=O)C(O)C(O)C([O-])=O NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000006916 nutrient agar Substances 0.000 claims description 3
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 3
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 3
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 3
- KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N thiamine Chemical compound CC1=C(CCO)SCN1CC1=CN=C(C)N=C1N KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 229960003495 thiamine Drugs 0.000 claims description 3
- 235000019157 thiamine Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000011721 thiamine Substances 0.000 claims description 3
- 239000012620 biological material Substances 0.000 claims description 2
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 229910002804 graphite Inorganic materials 0.000 description 8
- 239000010439 graphite Substances 0.000 description 8
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 7
- 238000001157 Fourier transform infrared spectrum Methods 0.000 description 6
- 238000001237 Raman spectrum Methods 0.000 description 6
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 6
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 6
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000009144 enzymatic modification Effects 0.000 description 6
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 6
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 6
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 5
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 2
- 102220201851 rs143406017 Human genes 0.000 description 2
- IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-(2-dodecoxyethoxy)ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920000084 Gum arabic Polymers 0.000 description 1
- 241000978776 Senegalia senegal Species 0.000 description 1
- 239000000205 acacia gum Substances 0.000 description 1
- 235000010489 acacia gum Nutrition 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 229910003460 diamond Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010432 diamond Substances 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(12) OPIS PATENTOWY
RZECZPOSPOLITA
POLSKA
(21) Numer zgłoszenia: 375126 (22) Data zgłoszenia: 16.05.2005
Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (19) PL (11) 206643 (13) B1 (51) Int.Cl.
C01B 31/04 (2006.01) C01B 31/06 (2006.01) C12R 1/01 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (54)
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych
| (73) Uprawniony z patentu: POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL | |
| (43) Zgłoszenie ogłoszono: | (72) Twórca(y) wynalazku: MIROSŁAWA SZCZĘSNA-ANTCZAK, Łódź, PL |
| 27.11.2006 BUP 24/06 | TADEUSZ ANTCZAK, Łódź, PL |
| (45) O udzieleniu patentu ogłoszono: | AGATA KACZOROWSKA, Łódź, PL STANISŁAW BIELECKI, Łódź, PL PIOTR NIEDZIELSKI, Dobra Nowiny, PL WITOLD KACZOROWSKI, Łódź, PL |
| 30.09.2010 WUP 09/10 | STANISŁAW MITURA, Łódź, PL |
| (74) Pełnomocnik: rzecz. pat. Bałczewski Zbigniew Wojciech Ośrodek Wynalazczości Politechniki Łódzkiej |
PL 206 643 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób modyfikacji twardych powłok węglowych, stanowiących mieszaninę grafitu i diamentu.
Dotychczas do modyfikacji twardych powłok węglowych wykorzystuje się gazy i substancje chemiczne, zaś samą modyfikację prowadzi się w warunkach podwyższonego ciśnienia i temperatury.
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych według wynalazku polega na tym, że przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane, umieszcza się w preparacie enzymatycznym stanowiącym mieszaninę biomasy pochodzącej z hodowli wyizolowanego ze środowiska naturalnego szczepu pleśni Trichoderma viride, Aspergillus niger, Phanerochaete chrysosporium, Chaetomium globosum lub Paecilomyces variotti bądź szczepu bakterii Pseudomonas fluorescens, oddzielonej w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej oraz zdezintegrowanej w warunkach sterylnych, z płynem pohodowlanym pochodzącym z tej hodowli, zmieszanych w stosunku objętościowym 1:1, umieszczonym w wysterylizowanym naczyniu i pozostawia w tym preparacie na czas 848 dni w temperaturze 10-50°C. Następnie przedmioty te przemywa się kilkakrotnie wodą destylowaną, oczyszcza z materiału biologicznego w łaźni ultradźwiękowej lub sonifikatorze w 0,05-2% roztworze wodnym detergentu w czasie 5-120 minut, po czym znów przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej. Szczep pleśni Trichoderma viride inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 15-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 612°Blg w temperaturze 20-45°C w czasie 5-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g
MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100 -340 rpm w czasie 2-7 dni. Szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 5-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-7 dni. Szczep pleśni Phanerochaete chrysosporium inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 15-45 g bacto malt ekstraktu, 0,01-0,1 g płatków owsianych, 10-30 g bacto agaru, o pH 4-6, w temperaturze 20-45°C w czasie 5-9 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g K2HPO4, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 0,05-0,2 g CaCl2-2H2O, 0,05-0,4 g winianu amonu, 3-30 g glukozy, 2-10 g malt ekstraktu, 0,1-2 mg tiaminy dodawanej po sterylizacji podłoża, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni. Szczep pleśni Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 5-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100 -340 rpm w czasie 2-7 dni. Szczep pleśni Paecilomyces variotti inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O,10-50 g glukozy i 15-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 3-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-1 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-7 dni. Szczep bakterii Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 10-35 g nutrient agaru, o pH=5,5-7, w temperaturze 20-45°C w czasie 1-3 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-5 g ekstraktu wołowego, 2-10 g peptonu, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-5 dni. Biomasę poddaje się dezintegracji w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, korzystnie przy użyciu kulek szklanych nie zawierających ołowiu stosując 1-2 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 8000-16000 min-1, w czasie nie dłuższym niż 5 minut. Jako detergenty korzystnie stosuje się Tryton X-100, Brij 35, gumę arabską, Tween 80 oraz SEKUMATIC®FC lub ich mieszaniny.
Sposobem według wynalazku uzyskuje się na modyfikowanych przedmiotach twarde powłoki węglowe wykazujące pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz/lub obecność na ich powierzchni
PL 206 643 B1 połączeń polarnych węgla i tlenu, dzięki czemu poprawione zostają właściwości aplikacyjne powierzchni.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady nie ograniczając jego zakresu.
P r z y k ł a d I.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Trichoderma viride poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C. Następnie prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono na przegrodzie filtracyjnej w warunkach sterylnych, po czym prowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, za pomocą kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C. Proces modyfikacji enzymatycznej przedmiotów pokrytych twardą warstwą węglową prowadzono w czasie 14 dni w temperaturze 30°C. Po tym czasie przedmioty wyjęto z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
W wyniku analizy widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych przedmiotów po obróbce preparatem enzymów pleśni Trichoderma viride stwierdzono, iż powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d II.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Aspergillus niger poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i przeprowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej tych przedmiotów w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Po tym czasie modyfikowane przedmioty wyjęto z naczynia, przemyto je trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych przedmiotów po obróbce preparatem enzymów pleśni Aspergillus niger stwierdzono, iż powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d III.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Phanerochaete chrysosporium poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 30 g bacto malt ekstraktu, 0,05 g płatków owsianych, 15 g bacto agaru, o pH 5,5, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g K2HPO4, 0,5 g
PL 206 643 B1
MgSO4-7H2O, 0,1 g CaCl2-2H2O, 0,2 g winianu amonu, 10 g glukozy, 5 g malt ekstraktu, 1 mg tiaminy (dodana po sterylizacji podłoża) i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej, po czym przeprowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się wysterylizowane przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej tych przedmiotów w czasie 14 dni w temperaturze 30°C. Następnie wyjęto modyfikowane przedmioty z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych przedmiotów po obróbce preparatem enzymów pleśni Phanerochaete chrysosporium stwierdzono, iż powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d IV.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Chaetomium globosum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i prowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1 w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej tych przedmiotów w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Następnie przedmioty te wyjęto z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych przedmiotów po obróbce preparatem enzymów pleśni Chaetomium globosum stwierdzono, iż powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d V.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Paecilomyces variotti poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym. 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie. 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i następnie poddano dezintegracji w warunkach sterylnych w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze
PL 206 643 B1
121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej tych przedmiotów w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Następnie modyfikowane przedmioty wyjęto z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do naczynia zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych przedmiotów po obróbce preparatem enzymów pleśni Paecilomyces variotti stwierdzono, iż powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
P r z y k ł a d VI.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep bakterii Pseudomonas fluorescens poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 23 g nutrient agaru (Difco), o pH=6,3, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia. Uaktywnione komórki bakterii przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu woł owego, 5 g peptonu i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 2 dni. Wytworzoną biomasę oddzielono w drodze wirowania (10000xg) w warunkach sterylnych, po czym poddano ją dezintegracji w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w temperaturze nie przekraczającej 4°C w czasie 5 minut, stosując 1 g kulek na 20 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu, całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej tych przedmiotów w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Modyfikowane przedmioty wyjęto następnie z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia zawierającego 0,1% roztwór detergentu SEKUMATIC®FC w wodzie, w którym poddano je 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4. Następnie zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych przedmiotów po obróbce preparatem enzymów bakterii Pseudomonas fluorescens stwierdzono, iż powłoki te wykazują pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.
Claims (8)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych, znamienny tym, że przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane, umieszcza się w preparacie enzymatycznym stanowiącym mieszaninę biomasy pochodzącej z hodowli wyizolowanego ze środowiska naturalnego szczepu pleśni Trichoderma viride, Aspergillus niger, Phanerochaete chrysosporium, Chaetomium globosum lub Paecilomyces variotti bądź szczepu bakterii Pseudomonas fluorescens, oddzielonej w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej oraz zdezintegrowanej w warunkach sterylnych, z płynem pohodowlanym pochodz ącym z tej hodowli, zmieszanych w stosunku objętoś ciowym 1:1, umieszczonym w wysterylizowanym naczyniu i pozostawia w tym preparacie na czas 8-48 dni w temperaturze 10-50°C, następnie przedmioty te przemywa się kilkakrotnie wodą destylowaną, oczyszcza z materiał u biologicznego w ł a ź ni ultradź wię kowej lub sonifikatorze w 0,05-2% roztworze wodnym detergentu w czasie 5-120 minut, po czym znów przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Trichoderma viride inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 15-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 6-12°Blg, w temperaturze 20-45°C w czasie 5-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4,0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-7 dni.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-30 g agaru w temperaturze 20-45 °C czasie 5-8 dniPL 206 643 B1 i hoduje na wysterylizowanym pod ł o ż u hodowlanym o skł adzie. 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3,0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O,10-50 g glukozy, w temperaturze 20 -45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-7 dni.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Phanerochaete chrysosporium inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 15-45 g bacto malt ekstraktu, 0,01-0,1 g płatków owsianych, 10-30 g bacto agaru, o pH 4-6, w temperaturze 20-45°C w czasie 5-9 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie. 1 kg wody destylowanej, 1-4 g K2HPO4, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 0,05-0,2 g CaCl2-2H2O, 0,05-0,4 g winianu amonu, 3-30 g glukozy, 2-10 g malt ekstraktu, 0,1-2 mg tiaminy dodawanej po sterylizacji podłoża, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni.
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005 -0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 5-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-7 dni.
- 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep pleśni Paecilomyces variotti inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005 -0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 3-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie. 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-1 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-7 dni.
- 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że szczep bakterii Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 10-35 g nutrient agar, o pH=5,5-7 w temperaturze 20-45°C w czasie 1-3 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-5 g ekstraktu wołowego, 2-10 g peptonu, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-5 dni.
- 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że biomasę poddaje się dezintegracji w temperaturze nie przekraczającej 4°C, korzystnie przy użyciu kulek szklanych nie zawierających ołowiu stosując 1-2 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 8000-16000 min-1, w czasie nie dłuższym niż 5 minut.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375126A PL206643B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375126A PL206643B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL375126A1 PL375126A1 (pl) | 2006-11-27 |
| PL206643B1 true PL206643B1 (pl) | 2010-09-30 |
Family
ID=40561350
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL375126A PL206643B1 (pl) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL206643B1 (pl) |
-
2005
- 2005-05-16 PL PL375126A patent/PL206643B1/pl not_active IP Right Cessation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL375126A1 (pl) | 2006-11-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Abdel-Nasser et al. | Evaluation of the efficiency of nanoparticles for increasing α-amylase enzyme activity for removing starch stain from paper artifacts | |
| CN104508118A (zh) | 微生物发酵方法和组合物 | |
| CN105018544B (zh) | 具有促进海参生长和抗逆作用的卡拉胶寡糖及其制法和应用 | |
| CN105713860A (zh) | 一株耐酸细菌纤维素高产菌株及用该菌株制备可食用细菌纤维素的方法 | |
| Cahyaningtyas et al. | Statistical optimization of halophilic chitosanase and protease production by Bacillus cereus HMRSC30 isolated from Terasi simultaneous with chitin extraction from shrimp shell waste | |
| CN107455520A (zh) | 一种绿茶饮料的制备方法 | |
| CN107475154A (zh) | 用于降解烟叶中蛋白质的smxp‑03菌株及其应用 | |
| CN106690395A (zh) | 一种含枯草芽孢杆菌菌株smxp‑58的菌酶混合制剂 | |
| JP5212641B2 (ja) | ウメ乳酸発酵飲食品及びその製造方法 | |
| JPWO1997040135A1 (ja) | 新規セルロース生産菌 | |
| Youssef et al. | Optimization of cultural conditions for β-mannanase production by a local Aspergillus niger isolate | |
| PL206643B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| CN102146348A (zh) | 一株产高丝氨酸内酯的乙酸钙不动杆菌及其应用 | |
| KR101224039B1 (ko) | 꽃송이버섯의 β-글루칸 함량을 증진하는 재배방법 | |
| CN113151055A (zh) | 产果胶酶芽孢杆菌及其发酵方法、以及胡椒脱皮的方法 | |
| PL206641B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu | |
| KR101925095B1 (ko) | 곡물발효효소가 코팅되어 소화가 용이한 견과류를 포함하는 식품의 제조방법 | |
| CN104388418A (zh) | 利用低能离子诱变赤霉菌选育赤霉酸高产菌株的方法 | |
| La Jamaludin et al. | Isolation and Identification of Protease Enzyme Producing Bacteria from Fermentation of Gonad Sea Urchin (Echinothrix calamaris). | |
| Guleria et al. | Optimization of cultural conditions for cellulase-free xylanase production by mutant strain of alkalophilic Cellulosimicrobium sp | |
| CN101580825A (zh) | 以齐整小核菌为菌种生产高活性纤维素酶 | |
| PL206644B1 (pl) | Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych | |
| JP5803009B2 (ja) | 新規麹菌 | |
| JP7716715B2 (ja) | 新規なクエン酸生産菌、及びクエン酸の製造方法 | |
| PL206642B1 (pl) | Sposób modyfikacji grafitu |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20080516 |