PL162969B1 - Method of obtaining n-acyl derivatives of monomeric peptideglicane - Google Patents

Method of obtaining n-acyl derivatives of monomeric peptideglicane

Info

Publication number
PL162969B1
PL162969B1 PL28448190A PL28448190A PL162969B1 PL 162969 B1 PL162969 B1 PL 162969B1 PL 28448190 A PL28448190 A PL 28448190A PL 28448190 A PL28448190 A PL 28448190A PL 162969 B1 PL162969 B1 PL 162969B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
pgm
carboxylic acid
formula
monomeric
acyl
Prior art date
Application number
PL28448190A
Other languages
English (en)
Inventor
Bozidar Suskovic
Radmila Naumski
Vera Gomercic
Zdenko Mubrin
Original Assignee
Pliva Pharm & Chem Works
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pliva Pharm & Chem Works filed Critical Pliva Pharm & Chem Works
Publication of PL162969B1 publication Critical patent/PL162969B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K9/00Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K9/001Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof the peptide sequence having less than 12 amino acids and not being part of a ring structure
    • C07K9/005Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof the peptide sequence having less than 12 amino acids and not being part of a ring structure containing within the molecule the substructure with m, n > 0 and m+n > 0, A, B, D, E being heteroatoms; X being a bond or a chain, e.g. muramylpeptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Abstract

1 . Sposób wytwarzania nowych N-acylo- wych pochodnych monomerycznego peptydo- glikanu o wzorze 1, w którym R oznacza grupe acylowa kwasu C 2-1 8-alkilokarboksylowego o lancuchu prostym, albo kwasu C5-18-alkilo- karboksylowego o lancuchu rozgalezionym, albo nienasyconego kwasu C1 2-1 8-alkenylo- karboksylowego, albo kwasu C 7-1 2-arylokarbo- ksylowego i ich farmakologicznie dopuszczal­ nych soli, znamienny tym, ze monomeryczny peptydoglikan o wzorze 2 acyluje sie za pomoca poddania go reakcji z kwasem o wzorze R- COOH, w którym R ma znaczenie zdefinio­ wane w odniesieniu do wzoru 1, przy czym kwas wystepuje w postaci zaktywowanej, w obecnosci zasady. Wzór 1 PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania nowych N-acylowych pochodnych monomerycznego peptydoglikanu (PGM) i ich farmakologicznie dopuszczalnych soli, które są szczególnie wskazane jako immunomodulatory i immunoadiuwanty.
Wiadomo, że monomeryczny peptydoglikan (PGM) o wzorze 2 [Carbohydr. Res., 110, 320-325 (1982)] wykazuje aktywność immunomodulującą [Z.Immun. Forsch., 155,312-328 (1979)] jak i antymetastatyczną Eur. J. Cancer O col, 19,681-686 (1983); Cancer Immunol. Immunother., 15,84-86(1983); [Cancer Immunol. Immunother., 18,49-53 (1984)], jest nietoksyczny i apirogenny. Jest on dobrze rozpuszczalny w wodzie, lecz nierozpuszczalny w rozpuszczalnikach organicznych. Z powodu jego w wysokim stopniu hydrofitowego i lipofobowego charakteru nie jest on zdolny do przenikania przez lipofilowe błony organizmu. Rozmiar hydrofilowości i lipofilowości tych związków może znacząco wpływać na ich aktywność.
Celem wynalazku jest wytwarzanie nowych N-acylowych pochodnych monomerycznego peptydoglikanu o wzorze 1, w którym R oznacza grupę acylową kwasu C2-ie-alkilokarboksylowego o łańcuchu prostym, albo kwasu Cs-ie-alkilokarboksylowego o łańcuchu rozgałęzionym, albo nienasyconego kwasu Ci2-i8-alkenylokarboksylowego, albo kwasu C7-i2-arylokarboksylowego, albo ich farmakologicznie dopuszczalnych soli.
R oznaczający we wzorze 1 acyl, pochodzący z kwasu C2-ie-alkilokarboksylowego o łańcuchu prostym oznacza np. acetyl, aktanoil, dekanoil, lauroil, palmitoil i stearoil.
R oznaczający we wzorze 1 acyl, pochodzący z kwasu Cs-18-alkiiokarboksylowego o łańcuchu rozgałęzionym korzystnie oznacza piwaloil.
R oznaczający we wzorze 1 acyl pochodzący z nienasyconego kwasu Ci2-i8-alkenylokarboksylowego korzystnie oznacza oleoil.
R oznaczający we wzorze 1 acyl pochodzący z kwasu C7-i2-arylokarboksylowego korzystnie oznacza benzoil.
Farmakologicznie dopuszczalne sole nowych N-acylowych pochodnych monomerycznego peptydoglikanu (PGM) obejmują ich sole z zasadami tak nieorganicznymi jak i organicznymi, takie jak sole z metalami alkalicznymi, np. sole sodowe, sole potasowe, sole z metalami ziem alkalicznych, np. sole wapniowe, sole amoniowe i sole z zasadami organicznymi, np. solezetanoloaminą, sole z lrielanoloaminą, oraz inne fizjologicznie tolerowane sole.
Sposób wytwarzania nowych N-acylowych pochodnych PGM o wzorze l polega na tym, że stosuje się metody znane, jako takie, acylowania PGM o wzorze 2 za pomocą poddania go reakcji z odpowiednim kwasem o wzorze R-COOH, w którym R ma znaczenie zdefiniowane odnośnie do
162 969 wzoru 1, w obecności zasady, przy czym kwas występuje w postaci zaktywowanej, np. w postaci bezwodnika, a zwłaszcza w postaci aktywnego estru, np. estru utworzonego w przypadku wzajemnego oddziaływania kwasu z N-hydroksysukcynoimidem, N-hydroksybenzotriazolem, Nhydroksyftalimidem i podobnymi alkoholami. Wytworzenia estrów aktywnych dokonuje się w obecności czynnika odwadniającego, takiego jak dwucykloheksylokarbodwuimid (DCC) i inne zwykłe karbodwuimidy, jak opisano w piśmiennictwie, Ν,Ν-karbodwumidazol, p-toluenosulfonian i inne znane sulfoniany. Warunki reakcji w przypadku użycia tych czynników są opisane w piśmiennictwie. Korzystne są reakcje z udziałem karbodwuimidów, ponieważ przeprowadza się je w temperaturze 20-25°C, z dużą wydajnością. Acylowanie PGM np. bezwodnikiem octowym przeprowadza się w obecności zasady, takiej jak wodorowęglan sodowy, podczas gdy acylowanie odpowiednim estrem aktywnym przeprowadza się w obojętnym rozpuszczalniku, takim jak dwumetyloformamid (DMF) w obecności zasady organicznej jako katalizatora. PGM i estru aktywnego używa się w stosunku 1:1,3 do 1:2 (mol/mol), a PGM i rozpuszczalnika używa się w stosunku 1:30 do 1:100 (wag./obj.). Zasada organiczna występuje jako amina, np. trójetyloamina, a dodaje się ją do PGM w stosunku 1:2 do 1:5 (mol/mol). Reakcję przeprowadza się w temperaturze 20-25°C w ciągu 24 godzin. Przebieg reakcji obserwuje się z wykorzystaniem chromatografii cienkowarstwowej (TLC) w podłożu żelu krzemionkowego jako adsorbenta i w układzie rozpuszczalników odpowiednim do oddzielania produktów od wyjściowych substratów reakcji, takim jak układ rozpuszczalników n-propanol-woda 7:3 (obj./obj.) (układ A).
Produkt otrzymuje się przy dodaniu rozpuszczalnika organicznego, w którym nie jest on rozpuszczalny, takiego jak octan etylu (CH3COOC2H5). Oczyszcza się go zwykłymi metodami, takimi jak chromatografia kolumnowa na rozmaitych adsorbentach, np. żelu krzemionkowym z elucją wyżej wspomnianym układem A, lub na Sephadex z elucją wodą.
Dalszym celem wynalazku jest zapewnienie sposobu wytwarzania farmaceutyków zawierających czynną, ale jeszcze fizjologicznie tolerowaną dawkę nowej N-acylowej pochodnej monomerycznego peptydoglikanu o wzorze 1 lub jej farmakologicznie dopuszczalnej soli, wskazanych jako lecznicze preparaty immunomodulatorowe lub immunoadiuwantowe. Związki czynne można formułować w połączeniu z farmakologicznie dopuszczalnym nośnikiem. Środki farmaceutyczne korzystnie podaje się pozajelitowo.
Aktywność biologiczną związków wytwarzanych sposobem według wynalazku badano na 2-2,5 tygodniowych myszach-samcach CBA. Zwierzęta adaptowano do warunków laboratoryjnych w ciągu co najmniej tygodnia przed każdym badaniem. Skuteczność N-acylowej pochodnej PGM porównywano z wynikami osiągniętymi w kontrolnych grupach myszy, którym podawano fizologiczny roztwór soli (kontrola negatywna) i wyjściowy PGM (kontrola pozytywna). Wszystkie podawane substnacje wprowadzano do organizmu drogą dożylną (i.v.) w pojedynczej dawce 200j^{^//mysz, a odpowiednio lOmg/kg. Obserwowano następujące efekty aktywności immunofarmakologicznej: ciężar śledziony, ilość limfocytów i ilość komórek wytwarzających łysinki (PFC) w teście Jernego [w: Celi Bound Antibodies, Whister Institute Press, Philadelphia, str. 109 (1963)]. Ciężar śledziony wyrażano w mg. Ilość limfocytów śledziony wyrażano wilości absolutnej, podczas gdy PFC wyrażano jako ich ilość całkowitą i jako aktywność 106 limfocytów śledziony. Grupy badane i odpowiadające im grupy kontrolne obejmowały, każda, po 5-7 myszy. Aktywność każdej N-acylowej pochodnej PGM badano co najmniej trzy razy w różnych okresach.
Przeprowadzono analizę statystyczną używając testu t-Studenta i stosując oryginalny program komputerowy Stat Works. Istotność różnic oceniano w dwustronnym teście przy poziomic akceptacji równym lub niższym od 5%. Podsumowane wyniki dotyczące wpływu poszczególnych N-acylowych pochodnych PGM na odpowiedź immunologiczną wskazano w tabeli 1.
162 969
Tabela I
Aktywność immunologiczna N-acylowych pochodnych PGM
N Ciężar śledziony l/p llosc lunfoeyiow śledziony l/p PFC l/p PFC/raLhimfocyty/ l/p
i ; 3 4 5 6 7 8 9 10 11
Eksperyment Nr 1 Kontrola 17 IO9,1±17,34 37,7±7,36 745± 34,40 185,9X93,04
*< 100 100 100 100
PGM 17 ll 1,7± 10,66 35,1 ±5,06 82,9±31.71 219,1 ±96,98
* 102 93 112 118
Nr 1637 18 123,6118,63 7,37 37,8±6,90 93,4±3725 219,1±67,H
% 113 0,05 100 126 118
Eksperyment Nr 2 Kontrola 11 1033±1835 38,7±9,16 J6J±2625 1Μ.3Χ742Ι0
9t 100 100 100 100
PGM 11 107,5±9,40 35,0±6,01 762±32,95 206.9X11324 2,97
4 104 90 135 150 0,01
Kontrola 18 99,8±I7,14 34,2X9.45 69,3±42,49 190,3±144,16
V 100 100 100 100
Nr 1640 19 1I3,4±22,28 34.119,56 95,7±28.45 223 282,1 ±142,64 1,78
% 114 100 138 0,05 142 0,1
Eksperyment Nr 3 Kontrola 16 1202± 17,83 38,8±8,19 55,7±40,52 122.1X80,16
¢1 100 100 100 100
PGM 17 138,7± 11,72 3,54 472±99,53 2,71 88,8± 72,51 156,1 ±102,78
115 0,01 122 0,02 159 128
Nr 1645 18 120,4x12,36 46.1H 1.70 2,08 88,5±75,95 1542± 111,12
<r 100 119 0,05 159 126
Eksperyment Nr 4 Kontrola 16 1202117,83 38,8±8,19 55,71^^,52 122.1180 16
Tc 100 100 100 100
PGM 17 138.6Χ 11,72 3,52 47,2X9,52 2,71 88,8±72,2O 156.11 102,78
% 115 0,01 122 0,02 159 128
Nr 1646 17 124,4± 16,54 42,1±10.55 81,6X79,80 I69.91151,32
% 103 109 147 , H9
Eksperyment Nr 5 Kontrola 15 121,31 16,3 57,1 ±21,44 77,5 ±28,59 163.6161,00
% 100 100 100 100
PGM 18 129,5± 11,80 49,5±8,98 1O7.7±57,78 190,4±79,53
<5 107 87 139 116
Nr 1647 18 135.5±22,6O 452±8,50 2,16 125.4±68,45 2,49 2542x132,36 2,44
7c 112 79 0,05 162 0,02 155 0 05
Eksperyment Nr 6 Kontrola 21 I28,9± 14,26 38,8±8,45 47,1 ±28,06 105,9± 54,24
% 100 100 100 100
PGM 23 I34,3± 13,9 43,8x7,82 2,04 56,0±23,14 117 1±48,37
% 104 113 0,05 119 III
Kontrola 28 1^^,(Ot2O,93 35,9X9,13 57,8±40,45 152,5± 127,38
% 100 100 100 100
Nr 164« 28 I23,4±23,I5 39,l±10,92 95,8±75,30 2,35 266,5±279,40 1,95
162 969
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 II
<7 104 109 166 0.05 175 0.1
Eksperyment Nr 7 Kontrola 18 IO8.4± 16,71 41.23:1028 86.l±25,80 194,0±79.48
% 100 100 100 100
PGM 18 lll.8± 10.68 38.8±9.06 87.6± 29.76 214,4±95.6I
''r 103 94 102 III
Nr 1665 17 131.7± 14.40 <41 42.3±7.96 97.1±41.86 210.8±88.40
«t 121 0.01 103 113 109
Eksperyment Nr 8 Kontrola 17 IO6,4± 12.49 43.8x10.39 77.Ut33.8I 170,9±93.98
% 100 100 100 100
PGM 17 I12.7± 10.38 40.9±7.86 76.9±28.55 163.6± 72.39
% 106 93 100 98
Nr 1668 18 I12.3± 12.08 41.9±5.6ć 85.8±33.17 202.7±91.97
% 106 96 III 119
Eksperyment Nr 9 Kontrola 16 117.4±18,71 45.9± 10.47 692±23.72 139.1 ±50,43
% 100 100 100 100
PGM 18 12I.6±I4.54 46.7x7.99 72.8±22 20 I41.4±-W.57
% 104 102 105 102
Nr 1700 18 125 5± 19.44 42 9x9.82 76.4±24.94 163.Oi52.95
% 107 94 110 118
W powyższej Tabeli 1 użyto następujących oznaczeń
1637 sól sodowa N-steMoikoRGM, l640*sól sodowa N-benzotioKjM. 1645 sól sodowa N-oktanoiloPGM. 1646 sól sodowa N-dekutotloPGM. 1647 sól sodowa N-lauroto-PjM. 1643 sól sodowa N-palmιiolicoPGM, 1665 sól sodowa N-olcdcoIPGM. 1668 sól sodowa N-acetylo-TOM. 1700 sól sodowa N-piwaJodo^M
Statystycznie istotny wzrost ciężaru śledziony stwierdzono po zastosowaniu soli sodowej N-stearoilo-PGM i soli sodowej N-oleoilo-PGM (odpowiednio 13 i 21% w porównaniu z wartościami kontrolnymi). Względny wzrost ciężru śledziony stwierdzono też po użyciu sok sodowej N-benzoilo-PGM, soli sodowej N-lauroilo-PGM, soli sodowej N-piwaloilo-PGM, ale różnice w porównaniu z wartościami kontrolnymi nie wzrosły w stopniu istotnym, aczkolwiek jasno wyrażają one tendencję do wzmagania aktywności tych pochodnych. Zmiany w ilości limfocytów śledziony (ilość absolutna w 1 ml) różniły się w odniesieniu do każdej z pochodnych. W grupie myszy, w której podano sól sodową N-lauroilo-PGM wykryto statystycznie istotne obniżenie o 20% w porównaniu z wartościami kontrolnymi. U myszy, na które działano solą sodową Noktanoilo-PGM doprowadziło to do statystycznie istotnego wzrostu ilości limfocytów śledziony (19%). 4-6% zmniejszenie ilości limfocytów śledziony wykryto u myszy po podaniu pochodnej piwoloilowej i acetylowej, podczas gdy 3-9% wzrost stwierdzono u myszy, na które działano oleilową, dekanoilową i palmitoilową pochodną PGM. Chociaż oczywiste były pewne tendencje w osiągniętych zmianach, te ostatnie nie były statystycznie istotne. Sole sodowe stearoilowej i benzoilowej pochodnej PGM nie wywierały wpływu na ilość limfocytów śledziony. Praktycznie wszystkie badane substancje wywoływały wzrost PFC, który różnił się od 10 do 66% ponad wartości kontiolne. Jednak statystycznie istotną różnicę stwierdzono tylko w przypadku soli sodowych N-benzoilowej, N-lauroilowej i N-palmitoilowej pochodnej PGM. Wszystkie użyte substancje wzmagały aktywność PFC, jak to było oczywiste w odniesieniu do ilości limfocytów śledziony, a która różniła się od 9 do 75% ponad wartości stwierdzone w kontrolnej grupie myszy. Statystycznie istotną różnicę stwierdzono w przypadku benzoilowej i acetylowej pochodnej PGM, gdzie różnice w porównaniu z wartościami kontrolnymi praktycznie osiągnęły poziom statystycznie istotny (0,5 < p < 0,1).
Na podstawie osiągniętych czynników można wyciągnąć wniosek, że wszystkie badane pochodne monomerycznego peptydoglikanu wykazują pewną aktywność immunostymulującą, ale poszczególne pochodne różnią się w swojej skuteczności. Jedna z możliwych interpretacji różnorodności osiągniętych różnic w ilości limfocytów i wzroście ciężaru śledziony może polegać na
162 969 odmiennych mechanizmach działania PGM i jego N-acylowych pochodnych wytwarzanych sposobem według wynalazku na komórkowy układ immunologiczny.
Inną możliwą przyczyną może być to, że pochodne PGM są podobne co do mechanizmu działania, ale różnią się co do aktywności własnej. Wpływ na odporność humoralną jest oczywisty, co wynika ze zmian aktywności PFC i różni się w pewnym rozmiarze od wpływu na ilość limfocytów śledziony. Znaczny wpływ na całkowitą aktywność PFC stwierdzono w przypadku benzoilowej, lauroilowej pochodnej PGM, które nie zmieniają zasadniczo lub nie obniżają ilości limfocytów w 1 mg tkanki śledzionowej.
Strukturalne modyfikacje w cząsteczce PGM doprowadziły do nowej i nieoczywistej aktywności biologicznej N-acylowych pochodnych PGM wytarzanych sposobem według wynalazku z wykazywanej na dwu odmiennych drogach: znaczny wpływ na komórkową odpowiedź immunologiczną, charakterystyczny dla lauroilowej i oktanoilowej pochodnej PGM, a z drugiej strony, benzoilowa, Iauroilowa i palmitoilowa pochodna PGM były jeszcze bardziej zaangażowane w odporności humoralnej. Otrzymane wyniki wykazały wyższość, pod względem aktywności, laurollowej pochodnej PGM, a to z powodu jej wpływu na odporność komórkową i humoralną. Oprócz tego, wykazuje ona wyższość, pod względem aktywności, w porównaniu z wyjściowym PGM, gdy podaje się ją w tym samym stężeniu.
Wynalazek objaśniają następujące przykłady.
Przykład I. Wytwarzanie soli sodowej N-acetylo-PGM.
Do roztworu 500 mg (0,495 mmola) PGM w 7 ml wody dodaje się 2,75 ml nasyconego wodnego roztworu wodorowęglanu sodowego (NaHCOa) i całość chłodzi na łaźni lodowej w temperturze 5°C. Do ochłodzonej mieszaniny wkrapla się 2,75 ml (29 mmoli) bezwodnika octowego i całość miesza się w ciągu 24 godzin w temperaturze 20°C. Następnie mieszaninę zatęża się przez odparowanie pod zmniejszonym ciśnieniem, w wyniku czego otrzymuje się 0,95 g oleistego osadu, który rozpuszcza się w 2,5 ml wody i rozdziela na kolumnie upakowanej 150 ml Sephadex G-25 fine, a następnie eluuje wodą. Frakcje zawierające produkt łączy się i lifilizuje. Wydajność 490 mg (92%).
Temperatura topnienia 196-188°C, UVmax(H2O) (nm):202; IRKBr(cm '1) :3400-3240, 1660, 1550,1410.1H NMR (D2O) (ppm): 1,90 (s, 3H CHaCONH^pm), 1,96 (s, 3H CHsCONH-G1c), 2,03 (s, 3H CHsCONH-Mur).
Skróty: A2pm — dwuaminopimelil; Mur = muraminoil, Gic — glukozaminyl.
Przykład II. Wytwarzanie N-stearoilo-PGM.
Do roztworu 1,546 mg (1,53 mmola) PGM w 26,6 ml DMF dodaje się 800 mg (2,09 mmola) stearynianu sukcynoimidu i 0,4 ml (2,18 mmola) trójetyloaminy (TEA) i miesza się w ciągu 20 godzin w temperaturze 20-25°C. Powstaje żelowata zawiesina, do której wkropla się przy mieszaniu 180 ml octanu etylu i mieszanie kontynuuje się w ciągu dalszych 5 godzin. Osad oddziela się za pomocą sączenia i suszy. Wydajność 2g. Produkt oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na 25 g żelu krzemionkowego i elucji układem rozpuszczalników A. Frakcje zawierające produkt łączy się i zatęża przez odparowanie rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem. Wydajność l,44g (57%).
Temperatura topnienia 217-220°C, UVmax(H2O) (nm):204; IRKB,(cm Ί): 3280, 2910, 2350. 1635,1530.
Przykład III. Wytwarzanie N-piwaloilo-PGM.
Do roztworu 500 mg (0,495 mmola) PGM w 10 ml DMF dodaje się 137 mg (0,688 mmola) piwalinianu sukcynoimidu i 0,13 ml (0,7 mmola) trójetyloaminy (TEA) i miesza się w ciągu 24 godzin w temperaturze 25°C. Do klarownego roztworu wkrapla się 50 ml octanu etylu, utworzony osad utrzymuje się przy mieszaniu w ciągu 2 godzin i odsącza się. Osad przemywa się 2 razy po 5 ml octanu etylu i suszy. Wydajność 550 mg. Produkt oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej i clucji układem rozpuszczalników A. Frakcje zawierające produkt łączy się i zatęża za pomocą odparowania rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem. Wydajność 270 mg (49,8%).
Temperatura topnienia 202-204°C, UVmax(H2O) (nm):201; IRKBr(cm '1):3400, 3300, 3080, 3050,2980, 1650, 1540.
162 969
Przykład IV. Wytwarzanie N-oleilo-PGM.
Do roztworu 500 mg (0,495 mmola) PGM w 9 ml DMF dodaje się 258 mg (0,679 mmola) oleinianu sukcynoimidu i 0,13 ml (0,7 mmola) trójetyloaminy (TEA) i całość miesza się w ciągu 24 godzin w temperaturze 25°C. Wkrapla się 50 ml octanu etylu i utworzony osad utrzymuje przy mieszaniu w ciągu 3 godzin. Osad oddziela się za pomocą sączenia i suszy. Wydajność 680 mg. Osad oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym i elucji układem rozpuszczalników A. Frakcje zawierające produkt łączy się i zatęża za pomocą odparowania rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem. Wydajność 0,345 g (54,6%).
Temperatura topnienia 204-206°C, UVmax(H2O) (nm): 198; IRKBr(cm _1) :3300, 2950, 2875, 1640,1555.
Przykład V. Wytwarzanie N-benzoilo-PGM.
Do roztworu 1346 mg (1,33 mmola) PGM w 23,3 ml DMF dodaje się 400 mg (1,825 mmola) benzoesanu sukcynoimidu i 0,35 ml trójetyloaminy (TEA) i całość miesza się w ciągu 24 godzin w temperaturze 25°C. Wkrapla się 160 ml octanu etylu i utworzoną zawiesinę utrzymuje przy mieszaniu w ciągu 5 godzin. Osad oddziela się za pomocą sączenia, przemywa 2 razy po 10 ml octanu etylu i suszy. Wydajność 1,45 g. Produkt oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym i elucji układem rozpuszczalników A. Frakcje zawierające produkt łączy się i zatęża za pomocą odparowania rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem. Wydajność l,04g (6,91%).
Temperatura topnienia 173-175°C. UVmax(H2O)(nim): 203,224 (sh); IRKBr(cm *) :3260,1680, 1515.
Przykład VI-IX. W sposób analogiczny do sposobu opisanego w przykładach II - V wytwarza się następujące pochodne PGM: oktanoilową, dekanoilową, lauroilową i palmitoilową. Główne fizycze cechy charakterystyczne tych pochodnych przedstawione są w tabeli 2.
Tabela 2
Główne cechy charakterystyczne N-oktanoilowej, N-dekanoilowej, N-lauroilowej i N-palmitoilowej pochodnej PGM
N-acylo-PGM Temperatura topnienia °C UVmax(H2O) (nm) IRKb (cm/
hetanoilo 194-195 203 3280, 2930, 1655, 1638, 1545
dekanoilo 196-197 203 2990, 1610, 1580, 1090,
lauroilo 203-205 204 3280, 2920, 2850, 1655, 1543
palmitoilo 205-208 203 3280, 2920, 2845, 1635, 1520
Przykład X. Wytwarzanie N-stearoilo-PGM.
Do roztworu 284,5 mg (1 mmola) kwasu stearynowego w 25 ml mieszaniny rozpuszczalników octan etylu- tetrahydrofuranu (1:1, obj./obj.) dodaje się 162,2 ml (1,2 mmola) N-hydroksybenzotiazolu (HOBt) i 247 mg (1,2 mmola) DCC i miesza się w ciągu 16 godzin w temperaturze 20-25°C. Otrzymany osad oddziela się za pomocą sączenia i przemywa na sączku 2 razy po 3 ml octanu etylu. Łączy się ług macierzysty i ekstrakty i odparowuje się do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem. 470 mg surowego produktu oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na 5 g żelu krzemionkowego i elucji układem rozpuszczalników chloroform-metanol (100:1, obj./obj.). Otrzymuje się 350 mg oczyszczonego stearynianu N-benzotriazolu, który rozpuszcza się w 20 ml DMF i dodaje 511 mg (0,499 mmola) PGM i 0,13 ml trójetyloaminy, po czym mieszaninę miesza się w ciągu 16 godzin w temperaturze 20-25°C. Powstaje żelowaty osad, do którego dodaje się 88 ml octanu etylu i kontynuuje się mieszanie w ciągu dalszej godziny. Osad oddziela się za pomocą sączenia, zawiesza ponownie w 45 ml octanu etylu, miesza w ciągu godziny i jeszcze raz odsącza i suszy. Wydajność 621 mg. Produkt oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na 8g żelu krzemionkowego i elucji układem rozpuszczalników A. Frakcje zawierające produkt łączy się, odparowuje się rozpuszczalnik pod zmniejszonym ciśnieniem i suszy się produkt. Wydajność
542,5 mg (85%).
Produkt jest identyczny z produktem wytworzonym sposobem opisanym w Przykładzie II.
162 969
Przykład XI. Wytwarzanie soli sodowej N-stearoilo-PGM.
1276,5 mg (1 mmol) N-stearoilo-PGM dodaje się do 20 ml wody, w której rozpuszczono równomolową ilość wodorotlenku sodowego. Klarowny roztwór miesza się w ciągu godziny i liofilizuje. Wydajność 1281 mg.
Przykład XII. Wytwarzanie soli sodowej N-stearoilo-PGM.
Zgodnie ze sposobem z przykładu II, produkt surowy, otrzymany po wytrąceniu za pomocą dodania octanu etylu, zawiesza się w wodzie, zobojętnia za pomocą dodania wodorotlenku sodowego do pH 7, po czym klarowny roztwór nanosi się na kolumnę upakowaną Sephadex G-25 fine i eluuje wodą. Frakcje zawierające produkt, identyczny z produktem wytworzonym sposobem opisanym w przykładzie XI, łączy się i liofilizuje.
W sposób analogiczny do sposobu opisanego w przykładach XI i XII wytwarza się dalsze farmakologicznie dopuszczalne sole.
CH^H CHjOH
J---Λ
NHOCCH
DCCHa NH0CCH, ć CH3 ó ch3chconhćhconhch-conh2 ch2 ćh2
CH2 CH3 CHj conhchconhćhconhćhcooh ch, ćh2 ch2
Wzór 1
R-HN CH CONH,
OH
OH / £ CH£HCONHĆI
NHOCCH3
HCONHCH-CONH2
CH2 ćH2 CH3 CH3
ĆONHCHCONHĆHCONHĆHCOOH
CH3 CH
Wzór 2
CH,
CH2 ch2
H-HN- CH-CONH2
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena l0 000

Claims (2)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania nowych N-acylowych pochodnych monomerycznego peptydoglikanu o wzorze 1, w którym R oznacza grupę acylową kwasu C2-ie-alkilokarboksylowego o łańcuchu prostym, albo kwasu Cs-ie-alkilokarboksylowego o łańcuchu rozgałęzionym, albo nienasyconego kwasu Ci2-i8-alkenylokarboksylowego, albo kwasu C7-i2-arylokarboksylowego i ich farmakologicznie dopuszczalnych soli, znamienny tym, że monomeryczny peptydoglikan o wzorze 2 acyluje się za pomocą poddania go reakcji z kwasem o wzorze R-COOH, w którym R ma znaczenie zdefiniowane w odniesieniu do wzoru 1, przy czym kwas występuje w postaci zaktywowanej, w obecności zasady.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kwas o wzorze R-COOH występuje w postaci bezwodnika lub estru.
PL28448190A 1989-03-27 1990-03-27 Method of obtaining n-acyl derivatives of monomeric peptideglicane PL162969B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
YU00626/89A YU62689A (en) 1989-03-27 1989-03-27 N-acyl derivatives of peptidoglican monomer, their pharmaceutically acceptable salts, process for preparing thereof and their use as immunity modulators and immunoadjuvant

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL162969B1 true PL162969B1 (en) 1994-01-31

Family

ID=25550749

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL28448190A PL162969B1 (en) 1989-03-27 1990-03-27 Method of obtaining n-acyl derivatives of monomeric peptideglicane

Country Status (12)

Country Link
US (1) US5153173A (pl)
EP (1) EP0390039A3 (pl)
JP (1) JPH04193898A (pl)
BG (1) BG51456A3 (pl)
CA (1) CA2013065A1 (pl)
CS (1) CS149090A2 (pl)
DD (1) DD296085A5 (pl)
HU (1) HU202546B (pl)
PL (1) PL162969B1 (pl)
RO (1) RO105699B1 (pl)
RU (1) RU1779258C (pl)
YU (1) YU62689A (pl)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0492478B1 (en) * 1990-12-21 1995-07-19 Pliva Farmaceutska, Kemijska, Prehrambena I Kozmeticka Industrija S P.O. Tert-butyloxycarbonyl-L-tyrosyl-peptidoglycan monomer and 125 I-labelled derivative thereof, their preparation and use
EP0600974A1 (en) * 1991-08-15 1994-06-15 PLIVA Handels GmbH Preparation of medicaments containing the peptidoglycan monomer or its derivatives
IL137584A0 (en) 1998-02-02 2001-07-24 Univ Princeton SUBSTRATE ANALOGS FOR MurG, METHODS OF MAKING SAME AND ASSAYS USING SAME

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
YU40472B (en) * 1977-03-22 1986-02-28 Pliva Pharm & Chem Works Process for obtaining the basic repeated disaccharide-pentapeptide unit of peptidoglycane from the peptidoglycane complex generated in the submersion culturing of microorganisms
JPS58198496A (ja) * 1982-05-14 1983-11-18 Dainippon Pharmaceut Co Ltd グルコサミニルムラミルペプチド誘導体
YU45382B (en) * 1986-11-19 1992-05-28 Pliva Sour Zagreb Process for preparing complex of n-acethyl-glucosis-aminyl-n-acethyl-muramoil-l-alanyl-d-izoglutaminyl-(l)-mezodiaminopimelyl-(d-amid)-(l)-al

Also Published As

Publication number Publication date
DD296085A5 (de) 1991-11-21
RU1779258C (ru) 1992-11-30
US5153173A (en) 1992-10-06
HU901831D0 (en) 1990-08-28
CA2013065A1 (en) 1990-09-27
HUT53661A (en) 1990-11-28
EP0390039A2 (en) 1990-10-03
YU62689A (en) 1991-02-28
RO105699B1 (ro) 1992-11-30
BG51456A3 (en) 1993-05-14
CS149090A2 (en) 1991-08-13
JPH04193898A (ja) 1992-07-13
HU202546B (en) 1991-03-28
EP0390039A3 (en) 1991-11-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0114787B1 (de) Neue Peptidderivate
GB1570625A (en) Glucosamine derivatives and a process for their manufacture
NZ225506A (en) Polyethylene glycol carbamates, metal complexes thereof and pharmaceutical compositions
NZ270828A (en) Lipopeptide a1437 derivative and pharmaceutical compositions thereof
CA2004190A1 (en) New lysosphingolipid derivitives
EP0041896B1 (en) Immunologically active dipeptidyl 2-amino-1,2-dideoxy-d-glucose derivatives and methods of preparation
Charon et al. Chemical synthesis and immunological activities of glycolipids structurally related to lipid A
US4310514A (en) Immunologically active dipeptidyl 5-0,6-0-acyl-2-amino-2-deoxy-D-glucofuranose derivatives and methods of preparation
Reddy et al. Synthesis and biological evaluation of novel 2-azido muramyl dipeptide as NOD2 agonistic adjuvants
PL162969B1 (en) Method of obtaining n-acyl derivatives of monomeric peptideglicane
DE69009795T2 (de) Muramylpeptid-Derivate und diese enthaltende immunregulierende Zusammensetzungen.
EP0060999B1 (de) Galactopyranoside Verbindungen, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung als Antigene oder Immunadsorbentien
US4851446A (en) Immunosuppressing method
US4764523A (en) Novel carbonic acid esters
AU611111B2 (en) Urea derivatives of desferrioxamine B (and O-acylate and O-carbamoyl derivatives thereof)
JPH0617350B2 (ja) 新規なグルタミン酸誘導体及びそれらの塩類、それらの製造法、薬剤としての使用並びにそれらを含有する組成物
EP0410883A2 (en) Di-lysogangliosides derivatives
JPH0560474B2 (pl)
AU658277B2 (en) Amino sugar derivatives
US5905071A (en) Glycosylamides of 2-aminoacylamino-2-deoxy sugars
US5656601A (en) Acylated splenopentins, methods for their synthesis and their use
JPH0242052A (ja) カルバモイル化ヒドロキサミン酸誘導体及びその製造方法
JPS61275299A (ja) デオキシムラミルジペプチド誘導体
US5108990A (en) Glutamic acid derivatives
WO1991004268A1 (en) [N-(η-GLUTAMYL)GLYCYL]ALANINE DERIVATIVES