PL129919B1 - Process for manufacture fodder yeast and/or ethyl alcohol from vegetable wastes - Google Patents

Process for manufacture fodder yeast and/or ethyl alcohol from vegetable wastes Download PDF

Info

Publication number
PL129919B1
PL129919B1 PL1981234381A PL23438181A PL129919B1 PL 129919 B1 PL129919 B1 PL 129919B1 PL 1981234381 A PL1981234381 A PL 1981234381A PL 23438181 A PL23438181 A PL 23438181A PL 129919 B1 PL129919 B1 PL 129919B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
fermentation
carried out
ethyl alcohol
hours
temperature
Prior art date
Application number
PL1981234381A
Other languages
Polish (pl)
Other versions
PL234381A1 (en
Inventor
Gyula Nagy
Robert Kerekes
Pal Somogyi
Judit Rezessy
Boldizsar Vajda
Original Assignee
Jozsef Attila Mtszhu
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jozsef Attila Mtszhu filed Critical Jozsef Attila Mtszhu
Publication of PL234381A1 publication Critical patent/PL234381A1/xx
Publication of PL129919B1 publication Critical patent/PL129919B1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/22Processes using, or culture media containing, cellulose or hydrolysates thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23KFODDER
    • A23K10/00Animal feeding-stuffs
    • A23K10/10Animal feeding-stuffs obtained by microbiological or biochemical processes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/06Ethanol, i.e. non-beverage
    • C12P7/08Ethanol, i.e. non-beverage produced as by-product or from waste or cellulosic material substrate
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02EREDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/10Biofuels, e.g. bio-diesel

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Fodder In General (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania drozdzy paszowych i/lub alkoholu etylowego z od¬ padów pochodzenia roslinnego.Rosliny, a dokladniej: 25—40% substancji suchej, roslinnych substancji odpadowych, skladaja sie z celulozy. Ponadto zawieraja one lignine w ilosci 20—40% i w mniejszej ilosci polimery pentozowe, heksozowe, jak równiez inne substancje nieorganicz¬ ne i organiczne.Znane sa dwie drogi wykorzystywania roslinnych substancji odpadowych przez poddanie ich fermen¬ tacji. Jedna z nich jest bezposrednia fermentacja celulozy z pomca mikroorganizmów rozkladajacych celuloze. Druga mozliwosc polega na rozkladaniu celulozy kwasami lub enzymami do glukozy i na sfermentowaniu uzyskanej glukozy.Istnieje niewiele mikroorganizmów, które sa zdol¬ ne do bezposredniej fermentacji celulozy, a i te or¬ ganizmy moga dokonywac rozkladu celulozy tylko w bardzo powolnym tempie. Mikroorganizmami roz¬ kladajacymi celuloze sa na przyklad bakteria z ga¬ tunku Cellulomonas i Cellovibrio, a z drozdzy na¬ lezy tu zaliczyc przykladowo Myrrothecium ver rucaria, Trichadrema viride itd.Ch. E. Dunlap (A. Chem. Soc. Symp. 1978) ekspe¬ rymentowal na szczepach Cellulomonas i Alcalige- nes w celu uzyskania mikroorganizmów rozkladaja¬ cych celuloze. F. Kargi i M. L. Schuler (Biotechn. and Bioeng. Vol. XXII 1567—1600, 1980) przeprowa- 10 15 20 30 dzal eksperymenty na pewnej mutacji Pseudomo- nas fluorescens.Próby wytwarzania bialka pochodzenia mikro- organicznego (single celi protein SCP) za pomoca bakterii i plesniaków traca stopniowo na znacze¬ niu, poniewaz stosowanie tych mikroorganizmów jako bialka paszowego jest.kwestionowane w aspek¬ cie medyczno-weterynaryjnym.Mozliwosci wykorzystania celulozy przez podda¬ nie jej fermentacji staja sie znacznie szersze, jezeli najpierw dokona sie hydrolizy celulozy na glukoze, poniewaz glukoza asymilowana jest przez niemal wszystkie mikroorganizmy.Sholler i Thorns opracowali jako pierwsi na prze¬ lomie XIX i XX w. sposób calkowitej hydrolizy celulozy. W sposobie tym zastosowano kwasy mi¬ neralne o srednim stezeniu i temperatury ponad 100°C. Sposób byl w zwiazku z fym bardzo energo¬ chlonny, a do jego przeprowadzenia uzywano urza¬ dzen odpornych na dzialanie kwasów i cisnienia.Sposób tan zostal wprawdzie pózniej unowoczesnio¬ ny (stezenie Wasów i cisnienie mogly ulec zmniej¬ szeniu), jednak nie buduje sie wiecej fabryk, które mialyby pracowac w oparciu o ten sposób.Od 1950 podejmowano próby przeprowadzenia hy¬ drolizy za pomoca enzymu celulozy, wytwarzanego przez grzyby (B. Hagerdal, m.in. Biotechn. and Bioeng. VoL XXII 1515—1526 i 1527—1542). Do hy¬ drolizy celulozy stosowano powszechnie system en¬ zymatyczny Trochoderma viride (D. Sternberg, 129 919129 919 3 Bdotechn. and Bioeng. Symp. nr 6, 35^53, 1976).Enzymatyczna nydroliza jest procesem drogim.Oplaca sie w zasadzie dopiero wówczas, gdy roz¬ twór glukozy uzyskany droga hydrolizy zostanie poddany obróbce celem uzyskania produktu dróz- » szego.Punktem wyjscia przy opracowywaniu sposobu wedlug wynalazku bylo to, ze do wytworzenia bial¬ ka pochodzenia mikroorganlcznego mozna stosowac mikroorganizmy, które nadaja sie do wykorzystania io jako karma dla zwierzat i moga wykorzystac poza lignina szeroki wachlarz skladników roslinnych.Nalezace do gatunków Candida i Torulopsis, utilis Spezies uzywane sa od dziesiatków lat jako drozdze paszowe. Te znane gatunki drozdzy nie moga roz- 15 kladac ani celulozy, ani ligniny. Równiez w litera¬ turze nie opisano dotychczas zadnego gatunku droz¬ dzy, które bylyby w stanie rozkladac celuloze.Nieoczekiwanie odkryto teraz, ze wyodrebniony w 1978 roku, metoda genetyczna i metoda selekcji 20 szczepów, szczep Candida utilis posiada zdolnosc rozkladu celulozy uwodnionej oraz czesciowo zde¬ gradowanej. Dla uwodnienia i degradacji celulozy wypracowany zostal prosty sposób obróbki wstep¬ nej, za pomoca którego z materialu zawierajacego 25 celuloze mozna przygotowac odpowiedni dla wymie¬ nionego szczepu drozdzy roztwór pozywki.Wedlug wynalazku zawierajace celuloze odpady poddaje sie wstepnej obróbce za pomoca rozcienczo¬ nego kwasu mineralnego o stezeniu 0,5—^10% i/lub 30 rozcienczonego lugu o stezeniu 0,5—10% w tempe- rautrze 80—100°C, w ciagu 0,5—5 godz., a nastepnie fermentacji w warunkach tlenowych lub beztleno¬ wych pod wplywem szczepu Candida utilis var. cel- lulolytica, który zlozony zostal w Wegierskiej Ko- 35 lekcji Szczepów (OKI) dnia 23.09.1980 za numerem CU 28 00199.Korzystnie stosuje sie 0,5—4,0%-owy kwas siar¬ kowy i/lub 0,5—4,0%-owy lug. Obróbke wstepna przeprowadza sie korzystnie w temperaturze 90— 40 —98°C, w ciagu 0,5—3 godzin. Fermentacje przepro¬ wadza sie korzystnie w temperaturze 35—37°C, w sposób nieciagly lub ciagly. W przypadku fer¬ mentacji nieciaglej, czas Jej trwania w zaleznosci od materialu wyjsciowego wynosi 16—72 godziny, 45 korzystnie 16—50 godzin.Do wytworzenia drozdzy paszowych zawartosc wolnego tlenu w brzeczce fermentacyjnej wynosi 1,0-^0,4 mg CVI, korzystnie 1,5—2,5 mg Oj/l. Dla wy¬ tworzenia alkoholu etylowego fermentacje przepro- & wadza sie w warunkach beztlenowych. Do równo¬ leglej produkcji drozdzy paszowych i alkoholu ety¬ lowego napowietrza sie brzeczke fermentacyjna tak, aby zawartosc wolnego tlenu wynosila w niej 0—1 mg0^1. 55 Szczep Cu 28 zostal wyodrebniony ze szczepu po¬ lowego. Okolo 1 g zgnilego drewna zhomogenizo- wano z 9 ml sterylnego fizjologicznego roztworu soli kuchennej. Z roztworu sporzadzono decymalny szereg rozcienczenia, którym zaszczepiono agar Sa¬ bourauda zawierajacy karboksymetyloceluloze.Agar Sabourauda zawierajacy karboksymetylocelu¬ loze odpowiada pod wzgledem skladu pozywce Oxoid CMa41 z ta jednak róznica, ze zawiera on karboksymetyloceluloze zamiast deksstrozy). Plytki 65 60 inkubowano przez 72 godziny w temperaturach 25, 30 wzglednie 37°C. Metoda morfologii komórki wy¬ brano wyrosle na plytkach kultury drozdzy i przesz¬ czepiono je na powyzke zawierajaca glukoze i kar¬ boksymetyloceluloze o nastepujacym skladzie: ekstrakt wolowiny (difko) 5,0 g glukoza 7,5 g karboksymetyloceluloza 7,5 g pepton poch. bakteryjnego (difko) 4,0 g ekstrakt drozdzy (Oxoid L 21) 1,0 g dwuwodorofosforan potasu 0,2 g wodorofosforan dwupotasowy 0,15 g dwuwodorofosforan sodowy 2,0 g wodorofosforan dwusodowy 1,5 g siarczan magnezu 0,3 g siarczan cynku 0,1 g siarczan amonu 3,0 g chlorek zelaza(III) 0,1 mg siarczanmiedzi 0,6 mg chlorek manganu 0,15 mg jodekpotasu 0,05 mg kwas ortoborowy 0,1 mg agar 15 g woda do 1 litra Droga zwykle stosowanych procesów oczyszcza¬ jacych wyhodowano kultury pochodzace od jednej komórki i utrzymywano je na pozywce zawieraja¬ cej glukoze i karboksymetyloceluloze. Sposród tych wyodrebnionych kultur wyszukano te, która najle¬ piej rozkladala karboksymetyloceluloze.Synchroniczna kulfura tego szczepu zostala w 1978 podddana obróbce mutagennej (majacej na celu wy¬ tworzenie odpowiednich mutacji), a mianowicie uzy¬ to N-metylo-N-nitrozo-N'-nitroguanidyne o takim stezeniu, przy którym liczba zywych zarodków spa¬ da co najmniej o trzy rzedy wielkosci. Komórki, które przezyly, wysegregowano na pozywce w sta¬ nie plynnym, zawierajacej karboksymetyloceluloze i przeszczepiono na pozywke Sabourauda, zawieraja¬ ca karboksymetyloceluloze. Aktywnosc celulozy (tj. jej zdolnosc do rozkladu celulozy) uzyskanych ko¬ lonii mutantów okreslono za pomoca kwasu dwu- nitrosalicylowego, a szczep o najwiekszej aktywno¬ sci celulazy (Candida utilis var. cellulolytica) zostal wybrany i zlozony pod numerem 00199 w Narodo¬ wej Zbiornicy Mikroorganicznej Krajowego Insty¬ tutu Zdrowia (Orszagos Kózegsgti-gyii Intezet Mi- kroorganizmusik Nemzeti Gyiijtemsnye).Komórki wymienionego szczepu maja ksztalt eli¬ psoidalny, mniejsza srednica lezy miedzy 2,5 a 4,5 |xm wieksza srednica wynosi od 4,5 do 7,5 |xm. Szczep tworzy biale, wypukle kolonie o blyszczacej po¬ wierzchni i gladkich brzegach.W celu uwodnienia i czesciowej degradacji na ce¬ luloze dziala sie rozcienczonym kwasem mineral¬ nym i/lub rozcienczonym lugiem przy temperaturze miedzy 80 a 10O°C w zaleznosci od rodzaju odpa¬ dów roslinnych w ciagu 0,5—5 godzin. Kwas i lug maja stezenie 0,5—10% wagowych.Optymalne stezenie jak równiez temperature oraz czas trwania obróbki wstepnej okresla sie w zalez¬ nosci od skladu chemicznego i struktury roslinnych odpadów dla kazdego przypadku oddzielnie.W zaleznosci od rodzaju odpadów roslinnych moz¬ na co najmniej 25 do 60% przetworzyc przez kon-5 129 919 6 wersje biologiczna na drozdze paszowe badz na al¬ kohol etylowy 1. Ponizej przeprowadzono porówna¬ nie miedzy szczepem Tdrulopsis tradycyjnie stoso¬ wanym do wytwarzania drozdzy paszowych a sto¬ sowanym zgodnie z wynalazkiem szczepem Candi- da utilis var. cellulolytica. W tabeli podana zostala ilosc suchych drozdzy w kg, jaka mozna uzyskac ze 100 kg suchego surowca oraz ilosc alkoholu etylo¬ wego w hl° (wykorzystanie wyrazone w litrach absolutnego alkoholu), jaka mozna uzyskac ze 100 kg suchego surowca. 10 siarczan amonu 3,0 g ekstrakt wolowiny (difko) 5,0 g pepfon pochodzenia bakteryjnego (difko) 4,0 g ekstrakt drozdzy (Oxoid L 21) 1,0 g chlorek zelazowy — siedmiowodzian 0,1 mg siarczan miedzi — pieciowodzian 6,6 mg chlorek manganu — trójwodzian 0,15 mg jodek potasu 0,05 mg kwas ortoborowy 0,1 mg zostaja rozpuszczone w 1 litrze destylowanej wody.Roztwór sterylizuje sie przez godzine w tempera- Material wyjsciowy oraz produkt drozdze paszowe ze slomy alkohol etylowy ze slomy drozdze paszowe z makulatury alkohol etylowy z makulatury drodze paszowe z kenafu alkohol etylowy z kenafu drodze paszowe i alkohol etylowy z kenafu drozdze paszowe z mieszanki przygotowanej z odpadów trzciny cukrowej i bagasu w stosunku 75:25 alkohol etylowy z mieszanki przygotowanej z odpadów trzciny cukrowej i bagasu | w stosunku 75:25 Wykorzystanie Candida utilis var. cellulolytica 9,6—11,2 12,0—13,0 13,2—14,0 13,6—14,0 16,0—18,0 20,0—22,0 9,0—10,0' 8,0—10,0 18,0—19,0 22,0—23,6 Torulopsis utilis 6,4^- 7,8 8,2— 9,4 8,6— 9,2 9,6— 9,2 9,2—10,0 11,4^12,2 4,0— 5,0 3,5— 4,5 9,8—10,6 12,2—13*6 Kenaf jest roslina wlóknista, bagas jest! to pozosta¬ losc po wytloczeniu trzciny cukrowej.Wynalazek zostal wyjasniony blizej w oparciu o przyklady.Przyklad I. 1000 jednostek wagowych kenafu miele sie w mlynie mlotkowym na czasteczki o wiel¬ kosci 1—2 mm. Do tego materialu dodaje sie 9000 jednostek wagowych 3,2% kwasu siarkowego, a mie¬ szanine poddaje sie obróbce cieplnej w kwasoodpor- nym pojemniku w temperaturze 96°C w ciagu 120 minut. Nastepnie dodaje sie i rozpuszcza 7,2 jedno¬ stek wagowych superfosfatu i 4,0 jednostki wagowe technicznego siarczanu amonu. Roztwór zostaje od¬ wirowany, a jego wartosc pH zostaje ustawiona na 6,5 za pomoca technicznego lugu sodowego. Uzyska¬ ny w ten sposób roztwór pozywki zostaje ochlodzo¬ ny do temperatury 37°C i zaszczepiony w stosunku 1:100 kultura wstepna Candida cellulolytica zawie¬ rajaca 108 komórek na jeden milimetr.Kultura wstepna zostaje sporzadzona w nastepu¬ jacy sposób: glukoza karboksymetyloceluloza (rozpuszczalna w wodzie) ^ dwuwodorofosforan potasu wodorofosforan dwupotasowy dwuwodorofosforan sodu — jednowodzian wodorofosforan dwusodowy siarczan magnezu — siedmiowodzian siarczan cynku 7,5 g 7,5 g 0,2 g 0,15 g 2,0 g 1,5 g 0,3 g 0,1 g 35 40 45 50 55 60 turze 105°C w kolbach zamknietych zatyczkami z waty. Roztw6r pozywki zostaje przy temperatu¬ rze 37°C zaszczepiony 10 ml majacej 24 godziny za¬ wiesiny Candida utilis var. cellulolytica, a nastep¬ nie poddaje sie go inkubacji. Zawiesine zawieraja¬ ca 108 komórek na milimetr zostaje zaszczepiona pozywka kultury glównej.Fermentacja odbywa sie przy zapowietrzaniu nadwyzka tlenowa 1—2 mg CVI. W przypadku fer¬ mentacji o przebiegu nieciaglym fermentacja trwa 36^0 godzin.Na koncu fermentacji (po uzyskaniu maksymal¬ nej ilosci komórek) mozna drozdze odfiltrowac na prózniowym filtrze bebnowym lub prasie filtracyj¬ nej lub tez wysuszyc metoda suszenia rozprysko- wego. Ze 100 kg kenafu mozna w opisany sposób uzyskac 16—18 kg suszonych drozdzy.Przyklad II. Postepowanie jest takie, jak w przykladzie I z ta róznica, ze fermentacja prze¬ biega w warunkach beztlenowych, bez napowietrza¬ nia. Fermentacja trwa 46—50 godzin. Ilosc alkoho¬ lu, jaka mozna oddestylowac z brzeczki fermenta¬ cyjnej wynosi — w przeliczeniu na alkohol absolut¬ ny — 20,0—22,0 1.Przyklad III. Postepowanie jest takie jak w przykladzie I, jednak zamiast kenafu jako suro¬ wiec stosuje sie slome. Przez 38 minut trwa obrób¬ ka wstepna 3,7% kwasem siarkowym w temperatu¬ rze 98°C. Po przefiltrowaniu pozostalosc poddaje sie dzialaniu 2,8% lugu sodowego w temperaturze 98°C przez 42 minuty. Zarówno kwas jak i lug zastoso-129 919 8 wano w ilosci 4500 jednostek wagowych. Fermen¬ tacja trwa 4j6 godzin przy wartosci pH 6,3.Ze 100 kg suchej slomy uzyskuje sie 9,6^11,2 kg suchy drozdzy paszowych. przyklad IV. Postepuje sie w sposób opisany w przykladzie III z ta róznica, ze fermentacje prze¬ prowadza sie w warunkach beztlenowych. Pb 52- -godzinnej fermentacji brzeczke fermentacyjna kul¬ tury poddaje sie destylacji. W przeliczeniu na alko¬ hol absolutiny uzyskuje sie ze 100 kg slomy 112—13 litrów alkoholu.Przyklad V. Postepuje sie tak jak to opisano w przykladzie I, z tym, ze zamiast kenafu jako ma¬ terial wyjsciowy zastosowano tu makulature. Pod¬ daje sie ja przez 60 minut obróbce wstepnej za po¬ moca 3,6% lugu sodowego w temperaturze 98i°C. Fer¬ mentacja trwa 54 godziny. Ze 100 kg makulatury pozwala to uzyskac 13,2—14,0 kg suchych drozdzy paszowych.Przyklad VI. Praca przebiega tak, jak to opi¬ sano w przykladzie V z ta róznica, ze dokonuje sie fermentacji bez napowietrzania, w warunkach bez¬ tlenowych. Po 60 godzinach fermentacji mozna ze 100 kg makulatury otrzymac alkohol w ilosci 13,6^ —14,0 1 (abs.).Przyklad VII. Postepowanie jest takie, jak to opisano w przykladzie I z t4a róznica, ze jako ma¬ terial wyjsciowy stosuje sie mieszanke z 75 czesci odpadów zniwnych trzciny cukrowej i 25 czesci ba- gasu (wytloków trzciny cukrowej). Obróbka wstep¬ na odbywa sie przez dzialanie 2,8% kwasem siarko¬ wym w temperaturze 96°C przez 150 minut. Fer¬ mentacja trwa 40—44 godziny. Ze 100 kg wymie¬ nionej mieszanki mozna wyprodukowac 18—19 kg suchych drozdzy paszowych.Przyklad VIII. Praca przebiega fak jak w przykladzie VII z ta róznica, ze przeprowadza sie fermentacje w warunkach beztlenowych, bez napo¬ wietrzania. Fermentacja trwa 50—56 godzin. Ze 100 kg materialu wyjsciowego mozna wyproduko¬ wac 22,0—2^6 1 absolutnego alokholu.Przyklad IX. Postepowanie jest takie, jak przedstawiono w przykladzie I, z tym, ze kulture napowietrza sie nadwyzka tlenowa 0,2 mg (VI.W takim przypadku ze 100 kg kenafu otrzymuje sie 10 15 25 30 35 40 45 9—10 kg suchych drozdzy paszowych i 8—10 1 ab¬ solutnego alkoholu etylowego.Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania drozdzy paszowych i/lub alkoholu etylowego z odpadów pochodzenia roslin¬ nego rolniczego i/lub przemyslowego, znamienny tym, ze zawierajace celuloze odpady poddaje sie obróbce wstepnej za pomoca rozcienczonego kwasu mineralnego, o stezeniu 0,5—10% i/lub rozcienczo¬ nego lugu o stezeniu 0,5—10%, w temperaturze 80— —100°C, w ciagu 0,5—5 godzin, a nastepnie fermen¬ tacji w warunkach tlenowych lub beztlenowych za pomoca szczepu Candida utilis var. cellulolytica CU 28 001'99 (OKI),), w temperaturze 33—39°C. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze stosuje sie 0,5—4% kwas siarkowy i/lub 0,5—4,0% lug. 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze obróbke wstepna prowadzi sie w temperaturze 90— —98°C. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze obróbke wstepna prowadzi sie w ciagu 0,5—3i go¬ dzin. 5. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze fermentacje prowadzi sie w temperaturze 3)5—37°C. 6. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze fermentacje prowadzi sie w sposób ciagly. 7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze fermentacje prowadzi sie w sposób okresowy w cia-. gu 16r-72 godzin, korzystnie 16—50 godzin, w za¬ leznosci od materialu wyjsciowego. 8. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przy wytwarzaniu drozdzy paszowych brzeczke fer¬ mentacyjna napowietrza sie tak, aby zawartosc wol¬ nego tlenu wynosila 1,0—0,4 mg (VI, korzystnie 1,5—2,5 mg CVI. 9. Siposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przy wytwarzaniu alkoholu etylowego fermentacje przeprowadza sie w warunkach beztlenowych. 10. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przy równoleglej produkcji drozdzy paszowych i al¬ koholu etylowego napowietrza sie brzeczke fermen¬ tacyjna tak, aby zawartosc wolnego tlenu wynosila 0—1 mg Oi/l.ZGK 1761/1131/5 — 80 egz.Cena 100 zl PLThe subject of the invention is a method for the production of fodder yeast and / or ethyl alcohol from vegetable waste. Plants, and more precisely: 25-40% of dry matter, vegetable waste substances, consist of cellulose. In addition, they contain lignin in an amount of 20-40%, and to a lesser extent, pentose, hexose polymers, as well as other inorganic and organic substances. Two ways of using plant waste materials by fermenting them are known. One is the direct fermentation of cellulose with the help of cellulose-degrading microorganisms. The second option is to break down cellulose with acids or enzymes to glucose and ferment the resulting glucose. There are few microorganisms that are able to ferment cellulose directly, and these organisms can only break down cellulose at a very slow rate. Cellulose-decomposing microorganisms are, for example, bacteria of the species Cellulomonas and Cellovibrio, and yeasts include, for example, Myrrothecium ver rucaria, Trichadrema viride, etc. E. Dunlap (A. Chem. Soc. Symp. 1978) experimented with strains of Cellulomonas and Alcalgines to obtain cellulose-degrading microorganisms. F. Kargi and ML Schuler (Biotechn. And Bioeng. Vol. XXII 1567—1600, 1980) conducted experiments on a certain mutation of Pseudomonas fluorescens. Attempts to produce a protein of microorganic origin (SCP single cell protein) with the aid of bacteria and molds it gradually loses its significance, because the use of these microorganisms as feed protein is questioned in the medical-veterinary aspect. The possibilities of using cellulose by fermenting it become much wider if the cellulose is first hydrolyzed. on glucose, since glucose is assimilated by almost all microorganisms. Sholler and Thorns were the first to develop a method for the complete hydrolysis of cellulose in the late nineteenth and early twentieth centuries. This process uses mineral acids with an average concentration and a temperature of over 100 ° C. The method was very energy-consuming due to the fact that it was carried out with the use of devices resistant to the action of acids and pressure. Although this method was later modernized (concentration and pressure could be reduced), it is not built up. more factories to operate based on this method. Since 1950, attempts have been made to carry out hydrolysis with cellulose enzymes produced by fungi (B. Hagerdal, including Biotechn. and Bioeng. VoL XXII 1515-1526 and 1527-) 1542). The enzyme system Trochoderma viride has been widely used for the hydrolysis of cellulose (D. Sternberg, 129 919 129 919 3 Bdotechn. And Bioeng. Symp. No. 6, 35 ^ 53, 1976). Enzymatic nydrolysis is an expensive process. when the glucose solution obtained by the hydrolysis is processed to obtain a more expensive product. The starting point for the development of the process according to the invention was that microorganisms that can be used and used as animal feed and can use a wide range of plant ingredients in addition to lignin. Part of the Candida and Torulopsis species, Spezies utilis have been used as feed yeast for decades. These known species of yeast cannot decompose either cellulose or lignin. Also in the literature no species of yeast that could degrade cellulose has yet been described. Surprisingly, it has now been discovered that the strain Candida utilis, isolated in 1978, by a genetic method and a method of selecting 20 strains, has the ability to degrade hydrated and partially degraded cellulose. ¬ graded. For the hydration and degradation of cellulose, a simple pre-treatment method has been developed, by means of which a nutrient solution suitable for the said yeast strain can be prepared from a cellulose-containing material. According to the invention, cellulose-containing waste is pre-treated with a dilute mineral acid. with a concentration of 0.5-10% and / or 30 of a diluted liquor with a concentration of 0.5-10% at a temperature of 80-100 ° C for 0.5-5 hours, and then fermentation under aerobic conditions or anaerobes under the influence of the strain Candida utilis var. cel- lulolytica, which was deposited at the Hungarian Strain Collection (OKI) on September 23, 1980 under the number CU 28 00199. Preferably 0.5-4.0% sulfuric acid and / or 0.5 —4.0% lug. The pre-treatment is preferably carried out at a temperature of 90-40-98 ° C for 0.5-3 hours. The fermentation is preferably carried out at a temperature of 35-37 ° C., in a discontinuous or continuous manner. In the case of discontinuous fermentation, its duration, depending on the starting material, is 16-72 hours, preferably 16-50 hours. For the production of fodder yeast, the content of free oxygen in the fermentation broth is 1.0- ^ 0.4 mg CVI, preferably 1.5-2.5 mg O / l. Fermentations are carried out under anaerobic conditions to produce the ethyl alcohol. For the simultaneous production of fodder yeast and ethyl alcohol, the fermentation broth is aerated so that its free oxygen content is 0-1 mg0 -1. The Cu 28 strain was isolated from the field strain. About 1 g of rotten wood was homogenized with 9 ml of sterile physiological saline. A decimal dilution series was made from the solution and inoculated with Sabouraud's agar containing carboxymethylcellulose. Agar Sabouraud, containing carboxymethylcellulose, corresponds in composition to Oxoid CMa41, but with the difference that it contains carboxymethylcellulose. The plates were incubated for 72 hours at temperatures of 25, 30 or 37 ° C. The method of cell morphology was grown on yeast culture plates and transplanted onto a specimen containing glucose and carboxymethyl cellulose with the following composition: beef extract (difco) 5.0 g glucose 7.5 g carboxymethyl cellulose 7.5 g peptone derived. bacterial (difco) 4.0 g yeast extract (Oxoid L 21) 1.0 g potassium dihydrogen phosphate 0.2 g dipotassium hydrogen phosphate 0.15 g sodium dihydrogen phosphate 2.0 g disodium hydrogen phosphate 1.5 g magnesium sulfate 0.3 g sulphate zinc 0.1 g ammonium sulphate 3.0 g iron (III) chloride 0.1 mg copper sulphate 0.6 mg manganese chloride 0.15 mg potassium iodide 0.05 mg orthoboric acid 0.1 mg agar 15 g water to 1 liter In the usual purification processes, cultures derived from one cell were grown and maintained on a medium containing glucose and carboxymethyl cellulose. Among these isolated cultures, the one that decomposed carboxymethylcellulose was found the best. The synchronous culture of this strain was subjected to mutagenic treatment in 1978 (to generate appropriate mutations), namely N-methyl-N-nitroso-N ' - nitroguanidines of such a concentration that the number of viable embryos drops by at least three orders of magnitude. Surviving cells were segregated on liquid medium containing carboxymethyl cellulose and transplanted onto Sabouraud's medium containing carboxymethyl cellulose. The cellulose activity (i.e. its ability to degrade cellulose) of the resulting mutant colonies was determined with the aid of di-nitrosalicylic acid, and the strain with the highest cellulase activity (Candida utilis var. Cellulolytica) was selected and deposited under number 00199 in Narodowa The Microorganic Reservoir of the National Institute of Health (Orszagos Kózegsgti-gyii Intezet Mikroorganizmusik Nemzeti Gyiijtemsnye). The cells of the said strain are elipsoidal in shape, the smaller diameter is between 2.5 and 4.5 µm, the larger diameter is 7.5 µm. The strain forms white, convex colonies with a shiny surface and smooth edges. For hydration and partial degradation on cellulose, it is treated with diluted mineral acid and / or diluted slurry at a temperature of between 80 and 10 ° C depending on the type of reaction. Plant seeds within 0.5-5 hours. The acid and the lye have a concentration of 0.5-10% by weight. The optimal concentration as well as the temperature and duration of the pretreatment are determined on a case-by-case basis depending on the chemical composition and structure of the plant waste. at least 25 to 60% to be processed by the biological version in fodder yeast or into ethyl alcohol 1. The following is a comparison between the strain Tdrulopsis traditionally used for the production of fodder yeast and that used in accordance with the invention. with the strain Candida utilis var. cellulolytica. The table shows the amount of dry yeast in kg that can be obtained from 100 kg of dry raw material and the amount of ethyl alcohol in hl ° (consumption expressed in liters of absolute alcohol) that can be obtained from 100 kg of dry raw material. 10 ammonium sulphate 3.0 g beef extract (difco) 5.0 g peppone of bacterial origin (difco) 4.0 g yeast extract (Oxoid L 21) 1.0 g ferric chloride - hetahydrate 0.1 mg copper sulphate - pentahydrate 6 , 6 mg manganese chloride - trihydrate 0.15 mg potassium iodide 0.05 mg orthoboric acid 0.1 mg are dissolved in 1 liter of distilled water. The solution is sterilized for one hour at the temperature of the starting material and the product yeast fodder with straw ethyl alcohol with straw feed yeast from recycled paper ethyl alcohol from recycled paper by forage from kenaf ethyl alcohol from kenaf by forage and ethyl alcohol from kenaf feed yeast from a mixture prepared from sugar cane waste and bagasse in the ratio 75:25 ethyl alcohol from a mixture prepared from sugar cane waste and bagasu | in a ratio of 75:25 Utilization of Candida utilis var. cellulolytica 9.6—11.2 12.0—13.0 13.2—14.0 13.6—14.0 16.0—18.0 20.0—22.0 9.0—10.0 '8.0—10.0 18.0—19.0 22.0—23.6 Torulopsis utilis 6.4 ^ - 7.8 8.2— 9.4 8.6—9.2 9.6— 9.2 9.2-10.0 11.4 ^ 12.2 4.0— 5.0 3.5— 4.5 9.8-10.6 12.2-13 * 6 Kenaf is a fiber plant, bagas is! This is the residue of the extrusion of sugar cane. The invention is explained in more detail on the basis of examples. Example 1. 1000 units by weight of kenaf are ground in a hammer mill into particles with a size of 1-2 mm. To this material, 9,000 weight units of 3.2% sulfuric acid are added, and the mixture is heat treated in an acid-resistant container at 96 ° C. for 120 minutes. 7.2 weight units of superphosphate and 4.0 weight units of technical ammonium sulfate are then added and dissolved. The solution is centrifuged and its pH value is adjusted to 6.5 with the aid of technical sodium liquor. The resulting culture solution is cooled to 37 ° C and inoculated at a ratio of 1: 100, a Candida cellulolytica preculture containing 108 cells per millimeter. The preculture is prepared as follows: glucose carboxymethylcellulose ( soluble in water) ^ potassium dihydrogen phosphate potassium dihydrogen phosphate dihydrogen phosphate sodium dihydrogen phosphate - monohydrate disodium hydrogen phosphate magnesium sulfate - zinc sulfate heptahydrate 7.5 g 7.5 g 0.2 g 0.15 g 2.0 g 1.5 g 0.3 g 0 , 1 g 35 40 45 50 55 60 round 105 ° C in flasks closed with cotton plugs. The nutrient solution is inoculated at 37 ° C. with 10 ml of a 24 hour suspension of Candida utilis var. cellulolytica and then it is incubated. A suspension containing 108 cells per millimeter is inoculated with the medium of the main culture. The fermentation is carried out with the aeration of an excess oxygen of 1-2 mg CVI. In the case of discontinuous fermentation, fermentation takes 36 to 0 hours. At the end of fermentation (after obtaining the maximum number of cells), the yeast can be filtered on a vacuum drum filter or filter press or dried by spray drying. From 100 kg of kenaf, it is possible to obtain 16-18 kg of dried yeast in the described way. Example II. The procedure is as in Example 1 with the difference that the fermentation takes place under anaerobic conditions without aeration. Fermentation takes 46-50 hours. The amount of alcohol that can be distilled from the fermentation broth, based on absolute alcohol, is 20.0-22.0 1. EXAMPLE III. The procedure is as in Example 1, but straw is used as a raw material instead of kenaf. A pre-treatment with 3.7% sulfuric acid at 98 ° C. is carried out for 38 minutes. After filtering, the residue is treated with 2.8% sodium hydroxide solution at 98 ° C for 42 minutes. Both the acid and the liquor were used in an amount of 4500 weight units. The fermentation lasts 4-6 hours at a pH value of 6.3. From 100 kg of dry straw, 9.6–11.2 kg of dry fodder yeast is obtained. example IV. The procedure is as described in Example III with the difference that the fermentation is carried out under anaerobic conditions. After a 52-hour fermentation, the fermentation broth of the culture is distilled. Based on the alcohol of absolutin, it is obtained from 100 kg of straw, 112-13 liters of alcohol. EXAMPLE 5 The procedure is as described in Example 1, except that scrap paper was used instead of kenaf as a starting material. It is pre-treated for 60 minutes with 3.6% sodium hydroxide solution at 98 ° C. Fermentation takes 54 hours. From 100 kg of waste paper it is possible to obtain 13.2-14.0 kg of dry fodder yeast. Example VI. Operation is as described in Example 5 with the difference that the fermentation is performed without aeration under anaerobic conditions. After 60 hours of fermentation, it is possible to obtain alcohol in the amount of 13.6 ^ -14.0 1 (abs.) From 100 kg of waste paper. Example VII. The procedure is as described in example I, with the difference that the starting material is a mixture of 75 parts of sugarcane harvest waste and 25 parts of bash (sugarcane bagasse). Pre-treatment is carried out by treatment with 2.8% sulfuric acid at 96 ° C. for 150 minutes. Fermentation takes 40-44 hours. From 100 kg of this mixture, 18-19 kg of dry forage yeast can be produced. Example VIII. The operation is as in Example VII, except that the fermentations are carried out under anaerobic conditions without aeration. Fermentation takes 50-56 hours. From 100 kg of starting material it is possible to produce 22.0-2.6 liters of absolute alcohol. Example IX. The procedure is as shown in example I, except that the culture is aerated with an oxygen surplus of 0.2 mg (VI. In this case, 100 kg of kenaf gives 10 15 25 30 35 40 45 9-10 kg of dry fodder yeast and 8-10 liters of absolute ethyl alcohol. Patent claims 1. Method of producing fodder yeast and / or ethyl alcohol from agricultural and / or industrial plant waste, characterized in that the cellulose-containing waste is pretreated with dilute acid a mineral with a concentration of 0.5-10% and / or a dilute liquor with a concentration of 0.5-10% at a temperature of 80-100 ° C for 0.5-5 hours, and then fermentation in aerobic or anaerobic conditions with the strain Candida utilis var. cellulolytica CU 28 001–99 (OKI), at 33-39 ° C. 2. The method according to claim The process according to claim 1, characterized in that 0.5-4% sulfuric acid and / or 0.5-4.0% lug are used. 3. The method according to p. The process of claim 1, characterized in that the pretreatment is carried out at a temperature of 90-98 ° C. 4. The method according to p. The process of claim 1, characterized in that the pretreatment is carried out for 0.5 to 3 hours. 5. The method according to p. The process of claim 1, wherein the fermentation temperature is 3) 5-37 ° C. 6. The method according to p. The process of claim 1, characterized in that the fermentation is carried out continuously. 7. The method according to p. The process of claim 1, wherein the fermentations are carried out in a batch manner. from 16 to 72 hours, preferably from 16 to 50 hours, depending on the starting material. 8. The method according to p. A method according to claim 1, characterized in that in the production of fodder yeast the fermentation broth is aerated so that the free oxygen content is 1.0-0.4 mg (VI, preferably 1.5-2.5 mg CVI. A method according to claim 1, characterized in that the fermentation is carried out under anaerobic conditions in the production of ethyl alcohol. for the content of free oxygen to be 0-1 mg Oi / l. ZGK 1761/1131/5 - 80 copies Price PLN 100 PL

Claims (10)

Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania drozdzy paszowych i/lub alkoholu etylowego z odpadów pochodzenia roslin¬ nego rolniczego i/lub przemyslowego, znamienny tym, ze zawierajace celuloze odpady poddaje sie obróbce wstepnej za pomoca rozcienczonego kwasu mineralnego, o stezeniu 0,5—10% i/lub rozcienczo¬ nego lugu o stezeniu 0,5—10%, w temperaturze 80— —100°C, w ciagu 0,5—5 godzin, a nastepnie fermen¬ tacji w warunkach tlenowych lub beztlenowych za pomoca szczepu Candida utilis var. cellulolytica CU 28 001'99 (OKI),), w temperaturze 33—39°C.Claims 1. Method for the production of fodder yeast and / or ethyl alcohol from agricultural and / or industrial plant wastes, characterized in that the wastes containing cellulose are pretreated with a dilute mineral acid with a concentration of 0.5-10% and / or a diluted liquor at a concentration of 0.5-10% at a temperature of 80-100 ° C for 0.5-5 hours, and then fermentation under aerobic or anaerobic conditions with the strain Candida utilis var . cellulolytica CU 28 001'99 (OKI),) at the temperature of 33-39 ° C. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze stosuje sie 0,5—4% kwas siarkowy i/lub 0,5—4,0% lug.2. The method according to claim The process according to claim 1, characterized in that 0.5-4% sulfuric acid and / or 0.5-4.0% lug are used. 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze obróbke wstepna prowadzi sie w temperaturze 90— —98°C.3. The method according to p. The process of claim 1, characterized in that the pretreatment is carried out at a temperature of 90-98 ° C. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze obróbke wstepna prowadzi sie w ciagu 0,5—3i go¬ dzin.4. The method according to p. The process of claim 1, wherein the pretreatment is carried out for 0.5 to 3 hours. 5. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze fermentacje prowadzi sie w temperaturze 3)5—37°C.5. The method according to p. The process of claim 1, characterized in that the fermentation temperature is 3) 5-37 ° C. 6. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze fermentacje prowadzi sie w sposób ciagly.6. The method according to p. The process of claim 1, characterized in that the fermentation is carried out continuously. 7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze fermentacje prowadzi sie w sposób okresowy w cia-. gu 16r-72 godzin, korzystnie 16—50 godzin, w za¬ leznosci od materialu wyjsciowego.7. The method according to p. The process of claim 1, wherein the fermentations are carried out in a batch fashion. from 16 to 72 hours, preferably from 16 to 50 hours, depending on the starting material. 8. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przy wytwarzaniu drozdzy paszowych brzeczke fer¬ mentacyjna napowietrza sie tak, aby zawartosc wol¬ nego tlenu wynosila 1,0—0,4 mg (VI, korzystnie 1,5—2,5 mg CVI.8. The method according to p. A method as claimed in claim 1, characterized in that in the production of fodder yeast, the fermentation broth is aerated so that the free oxygen content is 1.0-0.4 mg (VI, preferably 1.5-2.5 mg CVI. 9. Siposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przy wytwarzaniu alkoholu etylowego fermentacje przeprowadza sie w warunkach beztlenowych.9. Self according to claim The process of claim 1, wherein the fermentations are carried out under anaerobic conditions in the production of ethyl alcohol. 10. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przy równoleglej produkcji drozdzy paszowych i al¬ koholu etylowego napowietrza sie brzeczke fermen¬ tacyjna tak, aby zawartosc wolnego tlenu wynosila 0—1 mg Oi/l. ZGK 1761/1131/5 — 80 egz. Cena 100 zl PL10. The method according to p. The process according to claim 1, characterized in that in the simultaneous production of fodder yeast and ethyl alcohol, the fermentation broth is aerated so that the content of free oxygen is 0-1 mg Oi / l. ZGK 1761/1131/5 - 80 copies. Price PLN 100 PL
PL1981234381A 1980-12-23 1981-12-22 Process for manufacture fodder yeast and/or ethyl alcohol from vegetable wastes PL129919B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU803095A HU181771B (en) 1980-12-23 1980-12-23 Process for preparing fodder yeast and/or ethanol from plant wastes

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL234381A1 PL234381A1 (en) 1982-08-16
PL129919B1 true PL129919B1 (en) 1984-06-30

Family

ID=10962530

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981234381A PL129919B1 (en) 1980-12-23 1981-12-22 Process for manufacture fodder yeast and/or ethyl alcohol from vegetable wastes

Country Status (10)

Country Link
CA (1) CA1178221A (en)
CS (1) CS241494B2 (en)
CU (1) CU21613A3 (en)
DD (1) DD201694A5 (en)
DE (1) DE3151176A1 (en)
FR (1) FR2496690A1 (en)
GB (1) GB2090514B (en)
HU (1) HU181771B (en)
PL (1) PL129919B1 (en)
SU (1) SU1218927A3 (en)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
YU25697A (en) * 1997-06-18 1999-07-28 Dušan Ćirić Process of obtaining ethyl aclohol from cellulose
EP1865048A1 (en) 2006-06-09 2007-12-12 Cognis IP Management GmbH Process for the production of fatty acid alkyl esters by integrating fermentation and esterification
GB2530987B (en) 2014-10-03 2017-06-21 Nafici Env Res (Ner) Ltd A method for processing straw

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3937845A (en) * 1975-01-08 1976-02-10 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Semi-solid fermentation of straw
ZA801703B (en) * 1979-07-02 1981-05-27 American Can Co Fermented acid hydrolyzates and fermentation process

Also Published As

Publication number Publication date
FR2496690B1 (en) 1984-05-11
CS974881A2 (en) 1985-06-13
HU181771B (en) 1983-11-28
CU21613A3 (en) 1987-10-12
SU1218927A3 (en) 1986-03-15
FR2496690A1 (en) 1982-06-25
GB2090514B (en) 1984-04-11
CS241494B2 (en) 1986-03-13
CA1178221A (en) 1984-11-20
PL234381A1 (en) 1982-08-16
GB2090514A (en) 1982-07-14
DE3151176A1 (en) 1982-09-02
DD201694A5 (en) 1983-08-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Updegraff Utilization of cellulose from waste paper by Myrothecium verrucaria
Foster et al. The production of fumaric acid by molds belonging to the genus Rhizopus
CN105431534A (en) beta-1,3-glucanase, polynucleotide, recombinant vector, transformant, production method for beta-1,3-glucanase, enzyme preparation, and production method for paramylon having reduced molecular weight
CN103525870A (en) Microbial flocculant as well as preparation method and application thereof
CN105967436A (en) Method for biodegradation of organic phosphorus pesticide wastewater
CN103224884B (en) Method for culturing oleaginous microorganism
JP4025848B2 (en) Decomposition method of cellulose raw material
PL129919B1 (en) Process for manufacture fodder yeast and/or ethyl alcohol from vegetable wastes
Aziz et al. Bioconversion of acid-and gamma-ray-treated sweet potato residue to microbial protein by mixed cultures
Zayed et al. Studies on the production and kinetic aspects of single cell protein from sugar cane bagasse saccharified by Aspergillus niger
US3761355A (en) Comestible digestible protein from cellulose
CA1093487A (en) Method of producing acetone and butanol from a cellulosic material
RU2562146C2 (en) Method of producing forage protein product on grain raw material fermentolysat
CN103571811B (en) Xylanase and production method
KR101856849B1 (en) Method of producing glucose from chinese cabbage wastes and algae culture media containing glucose
CN113046408B (en) Method for preparing fulvic acid from straws
Abraham et al. Kinetics of the enzymatic saccharification of pretreated tapioca waste (Manihot esculenta) and water hyacinth (Eichhornia crassipes)
JPS59198987A (en) Effective utilization of cellulosic material
JPH06191976A (en) Production of organic fertilizer
CN106348885A (en) Method for preparing organic liquid water-soluble fertilizer through combination of alkaline extraction and fermentation
JPH06191977A (en) Method for high-speed composting of organic material
JPH01104158A (en) Microorganism and method for treating shell of crustacea using the same
Srinivasan Production of single-cell protein from cellulose
KR810001630B1 (en) Method for preparation of fertilizer for cultivating ginseng
CN115215700A (en) Liquid fertilizer based on biomass fermentation and preparation method thereof