PL105494B1 - Sposob wytwarzania soli kwasu klawulanowego - Google Patents

Sposob wytwarzania soli kwasu klawulanowego Download PDF

Info

Publication number
PL105494B1
PL105494B1 PL1976192968A PL19296876A PL105494B1 PL 105494 B1 PL105494 B1 PL 105494B1 PL 1976192968 A PL1976192968 A PL 1976192968A PL 19296876 A PL19296876 A PL 19296876A PL 105494 B1 PL105494 B1 PL 105494B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
clavulanic acid
salt
medium
water
fractions
Prior art date
Application number
PL1976192968A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL105494B1 publication Critical patent/PL105494B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D503/00Heterocyclic compounds containing 4-oxa-1-azabicyclo [3.2.0] heptane ring systems, i.e. compounds containing a ring system of the formula:, e.g. oxapenicillins, clavulanic acid derivatives; Such ring systems being further condensed, e.g. 2,3-condensed with an oxygen-, nitrogen- or sulfur-containing hetero ring
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/18Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing at least two hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system, e.g. rifamycin
    • C12P17/188Heterocyclic compound containing in the condensed system at least one hetero ring having nitrogen atoms and oxygen atoms as the only ring heteroatoms
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/803Physical recovery methods, e.g. chromatography, grinding
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/852Klebsiella
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/886Streptomyces

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia soli kwasu klawulanowego na drodze fermen¬ tacji Streptomyces jumonjinensis. Kwas klawulanowy o wzorze 1, który jest uzy¬ tecznym zwiazkiem o dzialaniu przeciwbakteryj- nym, oiraz jego sole i estry opisane sa w belgij¬ skim opisie patentowym nr 827926. W opisie tym przedstawiony jest równiez spo¬ sób wytwarzania kwasiu klaw'Ulanowego i jego po¬ chodnych na drodze fermentacji Streptomyces clavuligerus. Streptomyces jumonjinensis opisany jest w bel¬ gijskim opisie patentowym nr 804341 jako szczep bakteryjny wytwarzajacy czynnik przeciwbakte- ryjny inny niz kwas klawulanowy. Obecnie stwier¬ dzono, ze w trakcie hodowania Streptomyces ju¬ monjinensis powstaje równiez kwas klawulanowy. Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia soli kwasu klawulanowego o wzorze 1, który polega na tym, ze hoduje sie szczep Streptomyces jumonjinensis a nastepnie usuwa sie komórki ze srodowiska fermentacyjnego, kontaktuje sie skla¬ rowana brzeczke przy pH=6—7 ze slabo lub silnie zasadowa zywica jonowymienna do momen¬ tu az zywica zostanie nasycona kwasem klawula- nowym, wymywa sie zywice wodnym roztworem soli, rozdziela sie frakcje wykazujace aktywnosc inhibitorów ^-laktamazy, wysala sie te frakcje i wyodrebnia sól kwasu klawulanowego. Kwas klawulanowy odzyskuje sie w postaci sta- lych soli litu, sodu, potasu wapnia, magnezu, ba¬ ru, glinu, amonu lub podstawionych soli amonu, takich jak pierwszo, drugo, trzecio- i czwartorze¬ dowe sole amonowe. Korzystnie kwas klawulanowy odzyskiwany jest w postaci stalej soli metalu alkalicznego, takiej jak sól sodowa lub potasowa. Termin „stale sole kwasu klawulanowego" ozna¬ cza w opisie krystaliczne i bezpostaciowe sole kwasu klawulanowego. Sole kwasu klawulanowe¬ go korzystnie jest uzyskiwac w postaci krystalicz¬ nej, na przyklad jako krystaliczna, czterowodna sól sodowa kwasu klawulanowego lub jako krystalicz¬ na sól potasowa lub sodowa. W sposobie wedlug wynalazku korzystnie jest stosowac Streptomyces jumonjinensis NRRL 5741 lub jego wysoko wydajny mutant. Streptomyces jumonjinensis NRRL 5741 zdepono¬ wany jest w Baarn w Holandii jako CBS 177.76 i w German Collection of Microorganisms DSN. Uzywany w opisie termin „hodowanie" oznacza umyslny rozwój w warunkach aerobowych orga¬ nizmu wytwarzajacego kwas klawulanowy w obec¬ nosci przyswajalnych zródel wegla, azotu i soli mineralnych. Rozwój taki moze miec miejsce w stalym lub pólplynnym srodowisku odzywczym, lub w 'srodowisku cieklym, w którym odzywki sa rozpuszczone lub zdyspergowane. Hodowanie moze byc prowadzone w warunkach aerobowego lub calkowitego zalania. Srodowisko odzywcze moze 105 4943 105 494 4 byc utworzone ze zlozonych odzywek, lub moze byc zdefiniowane chemicznie. W belgijskini opisie patentowym nr 804,341 przedstawione sa ogólne warunki hodowania Streptomyces jumonjinensis. Jak stwierdzono, szczególnie przydatne sa sro¬ dowiska zawierajace takie zolozone odzywki jak ekstrakt drozdzowy, maczka sojowa itp. Srodowisko odzywcze^ które moza byc stosowa¬ ne do hodowania Streptomyces jumonjinensis mo¬ ze zawierac w granicach 0,1—10% zlozone, orga¬ niczne zródlo azotu, takie jak ekstrakt drozdzowy, wodny roztwór merceryzowanej kukurydzy, bialko roslinne, bialko nasienne, produkty hydrolizy ta¬ kich bialek, hydrolizaty] bialka pochodzacego z mleka, ekstrakty ryb i miesa, i hydrolizaty takie jak peptony. Jako chemicznie zdefiniowane zródla azotu mozna stosowac mocznik, sole amonowe, amidy, zwykle' aminokwasy takie jak walina, as- paragina, kwas glutaminowy, prolina i fenyloala- nina, lub ich mieszaniny. Do srodowiska odzywcze¬ go moga byc wlaczone weglowodowany w ilosci 0,1—5%- Mozna stosowac równiez skrobie lub pro¬ dukty jej hydrolizy takie jak dekstryna, sacharo¬ za, laktoza lub inne cukry, lub gliceryne lub estry gliceryny. Zródlami wegla moga byc oleje roslinne lub tluszcze zwierzece. Do srodowiska odzywczego moga byc równiez wlaczone kwasy karboksylowe i ich sole, jako zródlo wegla dla wzrostu i wytwa¬ rzania inhibitorów {J-laktamazy. Niezbedne moze byc dodanie srodków przeciw- pieniacych takich jak Pluronic L81, w celu regu¬ lowania pienienia niektórych srodowisk w ka¬ dziach fermentacyjnych. Do opisanego wyzej srodowiska, zwlaszcza jesli jest zdefiniowane chemicznie, mozna dodac soli mineralnych takich jak NaCl, KC1, MgCl2, ZNC12, FeCl3, Na*S04, FES04, MgS04 isoli Na+ i K+kwa¬ su fosforowego. CaCOt mozna dodac jako zródlo jonów Ca++ luib dla jego dzialania buforujacego. Mozna wlaczyc równiez sladowe ilosci soli takich pierwiastków jak nikiel, kobalt lub mangan. W razie potrzeby mozna dodac witamin. Stosowany w opisie termin „mutant" oznacza dowolny mutant szczepu pojawiajacy sie samo¬ rzutnie lub w wyniku dzialania czynnika zew¬ netrznego, bezj wzgledu na to, czy czynnik taki stosowany jest umyslnie czy przypadkowo. Odpo¬ wiednie sposoby tworzenia mutantów obejmuja równiez sposoby opisane w belgijskim opisie pa¬ tentowym nr 827,926. Hodowania Streptomyces jumonjinensis prowa¬ dzi sie normalnie w temperaturze w granicach 16—35°C, zwykle w granicach 20—32°C, a korzyst¬ nie w" granicach 25—30°C, na przyklad w tempe¬ raturze okolo 27°C, i przy pH w granicach 5—8,5, a korzystniej w granicach 6—7,5. Streptomyces jumonjinensis moze byc hodowa¬ ny w takim srodowisku umieszczonym w zwyk¬ lych naczyniach, na przyklad w szklanych kolbach stozkowych napowietrzanych przez wstrzasanie, na przyklad na wstrzasarce obrotowej, lub w napo¬ wietrzanych kadziach fermentacyjnych, na przy¬ klad w zaopatrzonych w przegrody kadziach fer¬ mentacyjnych wykonanych z nierdzewnej stali i mieszanych przy pomocy wirnika zaopatrzonego w tarcze z lopatkami, a napowietrzanych przez urzadzenie rozpryskujace. Fermentacje mozna rów¬ niez prowadzic w sposób ciagly. Wyjsciowe pH srodowiska poddawanego fermen¬ tacji wynosi zwykle 7,0, a maksymalna wydajnosc kwasu klawulanowego uzyskuje sie w okresie 1—10 dni hodowli w temperaturze 20—32°C, na przyklad w okresie 2—5 dni. Kwas klawulanowy* jak i jego sole moga byc ekstrahowane z przesaczu hodowli róznymi sposo¬ bami opisanymi w belgijskim opisie patentowym nr 827,926. Jak stwierdzono, szczególnie uzyteczne sa sposoby polegajace na ekstrahowaniu rozpusz¬ czalnikiem zimnego przesaczu hodowli o kwaso¬ wych wartosciach pH, oraz metody oparte na anio¬ nowym charakterze tego produktu przemiany ma¬ terii, takie jak zastosowanie anionitów organicz¬ nych. Zwykle przed ekstrakcja usuwa sie ze srodowi¬ ska hodowli na drodze filtracji lub odwirowania komórki Streptomyces jumonjinensis. W procesie ekstrakcji rozpuszczalnikiem przesacz hodowli schladza sie, obniza jego pH do zakresu pH=2—3 przez dodanie kwasu, po czym do¬ kladnie miesza z nie mieszajacym sie z woda roz¬ puszczalnikiem organicznym takim jak ootan n-butylu, metyloizobutyloketon, n-butanol lub oc¬ tan etylu. Do obnizenia pH srodowiska stosuje sie zwykle kwas nieorganiczny taki jak kwas chloro¬ wodorowy, siarkowy, azotowy, fosforowy itp., na¬ tomiast do ekstrakcji zakwaszonego przesaczu ho¬ dowli szczególnie przydatny jest n-butanol. Po roz¬ dzieleniu faz na drodze odwirowania, kwas klawu- lanowy bedacy produktem przemiany materii wspomnianego szczepu ekstrahuje sie z warstwy rozpuszczalnika wodnym roztworem kwasnego' we¬ glanu sodowego lub buforem wodorofosforanu po¬ tasowego, zawiesina CaC03 lub woda, utrzymujac pH mieszaniny! w granicach odczynu obojetnego, na przyklad przy pH = 7,0. Wyciag wodny, po rozdzieleniu faz, mozna zatezyc pod zmniejszonym cisnieniem i liofilizowac w celu uzyskania surowe¬ go osadu soli kwasu klawulanowego. Uzyskany produkt jest trwaly w przypadku przechowywania go w temepraturze —20 °C, w' postaci wysuszonej substancji stalej. W procesie z uzyciem; anionitu organicznego, obojetny lub lekko kwasny przesacz hodowli, na przyklad o pH = 6—7, wprowadza sie w kontakt ze zlozem anionitui organicznego o charakterze slabej lub mocnej zasady, odpowiednio takiego jak Amiberlite IR4B lub Zerolit FFIP, az do calkowi¬ tego nasycenia zywicy, co objawia sie obecnoscia kwasu klawulanowego w wycieku ze zloza. Wów¬ czas zloze przemywa sie woda i eluuje wodnym roztworem soli takiej jak chlorek metalu alkalicz¬ nego, na przyklad chlorek sodowy. Frakcje zawie¬ rajace kwas klawulanowy laczy sie, wysala i liofi¬ lizuje, uzyskujac surowy osad soli kwasu klawula¬ nowego. Amberlite IR4B jest przykladem anionitu organicznego o charakterze slabej zasady, z aktyw¬ nymi grupami poliaminowymi i uisieciowanym pod¬ lozem polistyrenowo-dwuwinylowo-benzenowym. Innymi, nadajacymi sie do tego celu amonitami 55 40 45 50 555 105 494 6 organicznymi sa Amberlite IRA68 i IRA93. Ze- rolit FFIP jest anionitem 'organicznym o charakte¬ rze mocnej zasady, posiadajacym aktywne, czwar¬ torzedowe grupy amonowe i usieciowane podloze poliwinylowo-dwuwinylobenzeniOwe. Zywice rów¬ nowazne Zerolitowi FFIP to Isopor FFIP oraz DeAcidite FFIP SRA 64, 61 i 62 . Alternatywna postacia procesu ekstrakcji jest sposób polegajacy na zetknieciu przesaczu hodowli (zwykle o odczynie zblizonym do obojetnego) za¬ wierajacej sól kwasu klawulanowego z warstwa organiczna, w której rozpuszczona jest nierozpusz¬ czalna w wodzie amina. Odpowiednimi do tego celu rozpuszczalnikami organicznymi sa takie ty¬ powe, nie mieszajace sie z woda rozpuszczalniki polarne jak metyloizobuty — loketon, trójchloro¬ etylen ,itp. a odpowiednimi aminami sa aminy dru¬ gorzedowe lub trzeciorzedowe, w których jednym z podlstawriików jest grupa bedaca dlugim lancu¬ chem alifatycznym o 12—16 atomach wegla, a dru¬ gim Ill-rz. grupa alkilowa, dzieki czemu czastecz¬ ka jest lipofilowa. W naszym przypadku korzyst¬ na amina okazal sie Amberlite LA2. Zwykle ami¬ ne stosuje sie w postaci soli addycyjnej z kwa¬ sem. Po ekstrakcji, kwas klawulanowy znajduje sie w warstwie organicznej w postaci soli amino¬ wej. Nastepnie warstwe organiczna oddziela sie od przesaczu hodowli. Z warstwy organicznej kwas klawulanowy mozna ekstrahowac wodnym roztwo¬ rem soli metalu alkalicznego, takiej jak chlorek sodowy, azotan sodowy itp. Surowy osad soli kwa¬ su klawulanowego mozna uzyskac na drodze liofi¬ lizowania lub w podobny sposób. Do innych sposobów wydzielania kwasu klawu¬ lanowego mozna zaliczyc adsorpcje na weglu, stra¬ canie, wysalanie i filtracje na sitach molekular¬ nych. Sposoby te stosuje sie zwykle w polaczeniu z innymi metodami wydzielania. Adsorpcje na weglu mozna korzystnie prowadzic przepuszczajac wodny roztwór hodowli przez zloze wegla drzewnego, na przyklad przez kolumne wy¬ pelniona weglem drzewnym. Nastepnie warstwe wegla przemywa sie korzystnie woda i eluuje wodnym roztworem mieszajacego sie z woda roz¬ puszczalnika, takiego keton, na przyklad aceton, zbierajac frakcje zawierajace kwas klawulanowy. Czesto; wygodnie jest eluowac wegiel najpierw acetonem, a potem roztworem wodnym acetonu. Czesto korzystnie jest wytwarzac kwas klawula¬ nowy w postaci soli stosunkowo slabo rozpuszczal¬ nej w wodzie, na przyklad w postaci soli litowej. W tym przypadku mozna stosowac metody pole¬ gajace na wytracaniu lub wysalaniu. Wytracanie mozna prowadzic dodajac do wodnego roztworu stosunkowo slaborozpuszczalnej w wodzie soli kwasu klawulanowego, na przyklad klawulanianu litowego, czy nierozpuszczalnego w wodzie roz¬ puszczalnika organicznego. Proces taki mozna ko¬ rzystnie prowadzic kontaktujac sól kwasu klawu¬ lanowego z sola litowa, lub eluujac sola litowa z kolumny, lub rozpuszczajac sole w tym samym roztworze i dodajac mieszajacego sie z woda roz¬ puszczalnika do roztworu zawierajacego klawula- nian litowy. Klawulanian litowy mozna uzyskac z jego wod¬ nego roztworu w obecnosci jonowego zwiazku li¬ tu, korzystnie soli litowej uzywanej do utworze¬ nia klawulanianu litowego, zwiekszajac stezenie jonów litu w roztworze tak, by spowodowac znacz¬ ne przekroczenie wspólczynnika rozpuszczalnosci klawulanianu litowego w danej temperaturze. Po¬ niewaz klawulanian litowy w nizszych temperatu¬ rach jest slabiej rozpuszczalny, proces korzystnie jest prowadzic w obnizonej temperaturze, na przyklad w temperaturze w granicach 0—5°C. Dalsze uzyskanie surowych osadów uzyskanych opisanymi wyzej metodami mozna prowadzic w rózny sposób, lecz szczególnie korzystne jest sto¬ sowanie oczyszczania chromatograficznego w ko¬ lumnie jonitowej, zwlaszcza, gdy jako jonit stosuje sie Isopor, DeAcidite FFIP SRA64 lub celuloze DEAE. Kolumne wypelniona DeAcidite mozna stopniowo eluowac wodnym roztworem soli, takiej jak chlorek sodowy, o stezeniu zmieniajacym sie od 0 do 0,5 m. Kolumne wypelniona celuloza DEAE w 0,01 m buforze fosforanowym o pH = 7 mozna eluowac roztworem soli, zwykle roztworem chlorku metalu alkalicznego, takim jak roztwór NaCl o stezeniu 0—0,2 m NaCl w 0,01 m buforze fosforanowym o pH = 7. Frakcje zawierajace sub¬ stancje aktywne mozna wykrywac badajac aktyw¬ nosc inhiibitofwania p-laktamazy i ich oddzia¬ lywania na uklad KAG — obie te metody opisane sa w belgijskim opisie patentowym nr 827926. Frakcje zawierajace zwiazki aktywne laczy sie, zateza pod próznia do niewielkiej objetosci i od¬ sala. Oddzielanie kwasu klawulanowego i/lub jego soli od substancji zanieczyszczajacych, zwlaszcza od soli nieorganicznych, prowadzi sie adsorbujac zwiazek o dzialaniu przeciwbakteryjnym na zywi¬ cy lipofilowej, na której nie adsorbuja sie sole nieorganiczne. Szczególnie uzyteczny do tego celu jest kopolimer polistyrenowó-dwuwinylobenzeno- wy taki jak Amberlite XAD-4 Pozadany antybio¬ tyk mozna wymywac z kolumny woda lub wod¬ nym roztworem alkanolu, a uzyskany roztwór za- tezac przez odparowanie i liofilizowac. W wyniku uzyskuje sie produkt o wiekszej czystosci. Oddzie¬ lanie kwasu klawulanowego i/lub jego soli od so¬ li nieorganicznych mozna równiez korzystnie pro¬ wadzic na drodze chromatograficznej w kolumnie wypelnionej zelem stosowanym do filtracji, na przyklad usieciowanym zelem dekstranowym ta¬ kim jak Sephadex G 15 lub zelem poliamidoakry- lowym takim jak Biogel P2. (Biogel P2, Sephadex G15 i Amberlite XAD-4 dostarczony byl przez odpowiednie firmy: Bio Rad, Richmond, USA, Pharmacia Great Britain Ltd, 75 Uxbri)clge Road, London W. 5., U. K. i Rohm and Haas, Philadelphia, USA). Odsolona substancje aktywna mozna oczyszczac dalej na drodze chromatograficznej, na przyklad w kolumnie wypelnionej celuloza, przy uzyciu ukladu rozpuszczalników typu woda — alkohol, na przyklad ukladu butanol:etanol:woda w stosunku 4:1:5 (w % objetosciowych). Odmiany procesie wytwarzania czystego kwasu klawulanowego lub jego soli obejmuja uzyskiwa¬ nie zanieczyszczonego kwasu klawulanowego lub a 40 45 50 55 607 105 494 8 jego soli, utworzenie w zwykly sposób estru, oczyszczanie estru, i nasitepnie regenerowanie z niego kwasu klawulanowego lub jego soli. Odpo- wiednirn estfem do wykorzystania w tej odmia¬ nie sposobu wedlug wynalazku jest ester benzylo¬ wy lub podobny, ulegajacy wodorolizie ester. Zanieczyszczony kwas klawulanowy lub jego sól, która poddaje sie oczyszczaniu sposobem wedlug wynalazku, moze miec postac osadu lub roztworu zawierajacego równiez znaczne ilosci zanieczysz¬ czen organicznych lub nieorganicznych. Kwas klawulanowy lub jego sól mozna przepro¬ wadzic w ester na drodze opisanych wyzej reakcji estryfikacji. Preferowanym sposobem tworzenia pozadanego estru kwasu klawulanowego jest pod¬ danie soli kwasu klawulanowego reakcji z czynni¬ kiem estryfikujacym takim jak reaktywny haloge¬ nek, ester siarczanowy itp. Reakcje takie prowadzi sie czesto w rozpuszczalniku organicznym o wyso¬ kiej stalejt dielektrycznej, takim jak dwumetylo- formamid, mieszanina dwumetyloformamidu i ace¬ tonu, dwumetylosulfotlenek, N-metyloacetamid, szesciometylofosforamid itp. W razie potrzeby, sól kwasu kalwulanowego mozna rozpuscic w zwykly sposób w rozpuszczal¬ niku lub zwiazac z nosnikiem. Odpowiednimi nos¬ nikami do zastosowania w tym procesie sa amo¬ nity organiczne o charakterze mocnej zasady, zwlaszcza te, które posiadaja budowe makrosiatko- wa, pozwalajaca na uzycie ukladów rozpuszczalni¬ ków nie zawierajacych wody. Jak stwierdzono, do tego celu nadaje sie Amberlyst A26. Sól { kwasu klawulanowego mozna adsorbowac na zywicy bez¬ posrednio z przesaczu hodowli, po czym zywice dyspergowac w dwumetyloformamidzie zawieraja¬ cym jodek sodowy i bromek benzylu. Alternatyw¬ nie, kwas klawulanowy mozna eluowac metoda kolumnowa przy uzyciu roztworu jodku sodowego w dwumetyloformamidzie lub mieszaninie dwu¬ metyloformamidu i acetonu. Kwas klawulanowy zawarty w wycieku estryfikuje sie przez dodanie bromku benzylu. Zanieczyszczony ester kwasu klawulanowego oczyszcza sie zwykle na drodze chromatograficznej. W tym przypadku ester rozpuszcza sie w rozpusz¬ czalniku organicznym takim jak octan etylu, chlo¬ rek metylenu, chloroform itp. Faze stala w proce¬ sie oczyszczania chromatograficznego stanowi zwykle zel krzemionkowy lub zel stosowany do fil¬ tracji, taki jak Sephadex LH 30 lub podobne pod wzgledem przydatnosci w chromatografii substan¬ cje. Frakcje wyplywajace z kolumny mozna badac na obecnosc estru kwasu klawulanowego wykorzy¬ stujac jego wlasnosci synergiczne, lub poddajac próbom chemicznym, takim jak reakcja z chlor¬ kiem trójfenylotetrazolowym w polaczeniu z chro¬ matografia cienkowarstwowa. Frakcje aktywne laczy sie i pod zmniejszonym cisnieniem odpedza z nich rozpuszczalnik. Ester uzyskany tym sposobem posiada zwykle dostateczna czystosc, lecz w razie potrzeby moze byc poddany ponownemu oczyszczeniu na drodze chromatograficznej. Oczyszczony ester kwasu klawulanowego mozna przeprowadzic w kwas klawulanowy lub jego sól na drodze sposobów opisanych w belgijskim opisie patentowym nr 827926. Szczególnie uzytecznym sposobem odzyskiwania kwasu klawulanowego lub jego soli z estru. jest wodoroliza estru benzylowego. Reakcje takie pro¬ wadzi sie zwykle w obecnosci metalu grupy przej¬ sciowej jako katalizatora, przy zastosowaniu ni¬ skiego lub sredniego cisnienia wodoru. Reakcje mozna prowadzic w temperaturze podwyzszonej, obnizonej lub równej temperaturze otoczenia, na przyklad w temperaturze w granicach 0—100°C. Szczególnie korzystnymi warunkami prowadzenia takiego uwodornienia jest( zastosowanie lekkiego nadcisnienia wodoru i temperatury zblizonej do temperatury otoczenia (12—20°C). Reakcje mozna prowadzic w typowych rozpuszczalnikach takich jak nizsze alkanole, na przyklad etanol. Jak stwierdzono, szczególnie korzystnym katalizatorem jest pallad na weglu drzewnym. W przypadku, gdy uwodornienie prowadzi sie w obecnosci zasady, jako produkt uzyskuje sie sól kwasu klawulanowego. I tak, sól litowa, sodowa lub potasowa uzyskuje sie w przypadku, gdy reak¬ cje prowadzi sie w obecnosci kwasnego weglanu sodowego lub potasowego, lub weglanu litowego, sodowego lub potasowego. W wyniku takich reakcji uzyskuje sie dostatecz¬ nie czysty kwas klawulanowy lub jego sól (na przyklad o czystosci co najmniej 90%, a zwykle mozna uzyskiwac kwas calkowicie czysty). Przyklad I. Streptomyces jumonjinensis NRRL 5741 hoduje sie w ciagu 7 dni w tempe¬ raturze 28°C na stalych; pochylonych powierzch¬ niach agarowych o nastepujacym skladzie: Bacto — ekstrakt drozdzowy (Difco) 4,0 g/l Bacto — ekstrakt slodowy (Difco) 10,0 g/l Bacto — desktroza (Difco) 4,0 g/l Powyzsze skladniki rozpuszcza sie w wodzie de¬ stylowanej, pH roztworu doprowadza sie do war¬ tosci 7,3 i dodaje Bacto —agar 20,0 g/l Narosl zeskrobana z powierzchni uzywa sie bez¬ posrednio do zaszczepienia 100 ml srodowiska na¬ siennego umieszczonego w 500 ml kolbach stozko¬ wych zamknietych korkami piankowymi z tworzy¬ wa sztucznego. Sklad srodowiska jest nastepujacy: Tryptone (Oxoid) 5,0 g/l Ekstrakt drozdzowy 3,0 g/l Srodowisko przed zaszczepieniem wyjalawia sie w ciagu 15 minut w autoklawie pod cisnieniem 1,05 at, w temperaturze 121°C. Zaszczepione, in- kubuje sie w ciagu 65 godzin w temperaturze 26°C umieszczajac je na wstrzasarce obrotowej o 240 obrotach na minute i skoku ok. 2,54 cm. ml porcje srodowiska nasiennego uzywane sa do zaszczepiania 100 ml porcji srodowiska fermen¬ tacyjnego umieszczonego w 500 ml kolbach stozko¬ wych zaopatrzonych w korki piankowe. Stosuje sie trzy rózne srodowiska fermentacyj¬ ne o nastepujacych skladach: 40 45 50 55 609 195 494 lt Srodowisko A Glikoza Maczka sojowa CaC03 NsjSOa COCl2. 6H2Q g/l g/l 0,2 g/l 0,5 g/l 0,001 g/l Rozdrobione w wodzie destylowanej Srodowisko B Dekstryna Maczka sojowa Melasa NaHzP04 KC1 55 g/l g/l g/l 1,3 g/l 1,0 g/l Rozdrobione w wodzie destylowanej Srodowisko C Ekstrakt drozdzowy Scotasol (Oxoid) 10 g/l g/l Rozdrobione w wodzie destylowanej, przed ste¬ rylizacja pH srodowiska doprowadza sie do war¬ tosci 7. Jako maczke sojowa stosuje sie Arkasoy 50 z firmy British Arkday Co., Old Trafford, Manchester; Scotasol jest suszonym, rozpuszczal¬ nym slodem gorzelnianym z firmy Thomas Borth- wick Ltd., 69 Wellington Street, Glasgow, U. K.; dekstyrna pochodzi z firmy C.P.G. (U.K.) Ltd., Trafford Park, Manchester U.K.). Wszystkie srodowiska fermentacyjne przed zasz¬ czepieniem wyjalawia sie w ciagu 15 minut w au¬ toklawie pod cisnieniem 1,05 at, w temperaturze 121°C. Kolby z medium fermentacyjnym inkubuje sie w tempraturze 26QC, umieszczajac je na wstrza- sarce obrotowej o predkosci 240 obrotów na minu¬ te jf o skoku okolo 2,54 cm. Drugiego dnia fer¬ mentacji z kolb pobiera sie w warunkach jalo¬ wych 5 ml próbki medium i poddaje je nastepuja¬ cemu postepowaniu: Próbki odwirowuje sie z predkoscia 2200 obr/min w ciagu 10 minut, po czym oddziela warstwe wierzchnia. Oddzielona warstwa wykazuje dzia¬ lanie inhibitujace wytwarzanie p-laktamazy przez E.coli J.T4 w standardowej próbie inhibito- wania ^-laktamazy. Odpowiednia próbka inhibito- wania fl-laktamazy opisana jest w belgijskim opi¬ sie patentowym nr 827926. Przyklad II. Streptomyces jumonjinensis NRRL 5741 hoduje sie na srodowisku A w sposób opisany w przykladzie I. W równych odstepach czasu pobiera sie ze srodowiska fermentacyjnego w warunkach jalowych 5 ml próbki. Warstwe gór¬ na uzyskana w wyniku odwirowania tych próbek w ciagu 10 minut z predkoscia 2200 obr/min pod¬ daje sie licznym, opisanym nizej testom: (a) badaniu dzialania przeciwbakteryjnego na przykladzie Klebsiella aerogenes A, przy zastoso¬ waniu próby dyfuzji przez otwór w plytce aga¬ rowej, (b) badaniu aktywnosci w próbie plytki agaro¬ wej KAG opisanej w belgijskim opisie patento¬ wym nr 827926. 40 45 50 55 60 65 Rodzaj próby Srednica obszaru Klebsiella aerogenes (mm) | Srednica obszaru w próbie KAG (mm) Czas fermentacji (dni) 1 2 4 ,5 37sl 3 17,4 26,8 7 | Próbki z 4 dnia fermentacji umieszcza sie na paskach bibuly chromatograficznej Whatmana nr 1 o szerokosci 1 cm i podaje w ciagu nocy w temperaturze 4°C rozwijaniu przy pomocy na¬ stepujacych ukladów rozpuszczalników: n-butanol:etanol:woda 4:1:5 (w % objetosciowych) n-butanol:kwas octowy:woda 12:3:5 (w % objetosciowych) Nastepnie paski suszy sie i umieszcza na plyt¬ kach agarowych zakazonych Klebsiella aerogenes NCTC 418 i zawierajacych penicyline C (plytki KAG), po czym calosc inkubuje w ciagfu 16 go¬ dzin w temperaturze 28°C. Porównujac wyniki uzyskane dla obu ukladów rozpuszczalników moz¬ na stwierdzic, ze w przypadku ukladu butanol/ /kwas octowy/ woda pojedyncza strefa inhibitowa- nia wystepuje przy RF = 0,72, a, w przypadku ukladu butanol/ etanol/ woda — przy Rr = 0,25. W tym samym ukladzie rozpuszczalników wartosci RF, dla zwyklych próbek sal takie same jak dla autentycznych próbek kwasu klawulanowego. Przyklad III. Streptomyces jumonjinensis NRRL 5741 hoduje sie w ciagu 7 dni w tempera¬ turze 26°C na stalych, nachylonych powierzchniach agarowych umieszczonych w kolbach Roux. Sro¬ dowisko agarowe tworzy: Bacto — Yesast Malt Ekstract Agar (ISP — srodowisko 2). (Difco Laboratories, Detroit, Michigan, U.S.A). Do kolby Roux'a dodaje sie 100 ml jalowej, zde- mineralizowanej wody zawierajacej 0,05% Trito- nu X (srodek powierzchniowo czynny), pol czym zeskrobuje hodowle z powierzchni w celu utwo¬ rzenia zawiesiny komórek i zarodków. 100 ml uzyskanej zawiesiny uzywa sie do zaszczepienia 50 litrów srodowiska nasiennego umieszczonego w za¬ opatrzonej w przegrody 90-litrowej kadzi fermen¬ tacyjnej z nierdzewnej stali. Srodowisko nasienne tworzy sie z nastepujacych skladników: g/l Tryptone (Oxoid) 5,0 Ekstrakt drozdzowy (Oxoid) 3,0 Srodek przeciwpieniacy 0,5 Calosc rozrobiona w wodzie (Srodek przecwipieniacy sklada sie z 10% Pluronic L81 (Ugine Kuhlmann Chemicals Ltd.) zdyspergo- wanego w oleju sojowym (British Oil and Cake Mills). Przed zaszczepieniem isrodowisko wyjalawia sie w kadzi fermentacyjnej para wodna. Po zaszczepieniu, srodowisko nasienne wytrzasa11 105 494 12 sie przy uzyciu plytki rozpryskujacej o srednicy ok. 12,7 cm obracajacej sie z predkoscia 240 obr/min. Do kadzi dostarcza sie jalowe powietrze w ilosci 50 litrów/minute, utrzymujac temperature srodowiska w poblizu 26°C. Hodowanie prowadzi sie w ciagu 48 godzin. 7,5 litra srodowiska nasiennego uzywa sie do zaszczepiania 150 1 srodowiska fermentacyjnego umieszczonego w zaopatrzonej w przegrody 300 1 kadzi fermentacyjnej ze stali nierdzewnej. Srodowisko fermentacyjne utworzone jest z na¬ stepujacych skladników: g/l Jednowodzian glikozy 20,0 Maczka sojowa 10,0 CaC03 0,2 COClf.6HiO 0,001 Na2S04 0,5 Srodek przeciwpieniacy 0,5 Calosc rozrobiona w wodzie (Maczke sojowa stanowi Arkasoy 50 z firmy Britisn Arkady CO., Ltd., Old Trafford, Manche¬ ster). Stosuje sie taki sam srodek przeciwpieniacy jak w srodowisku nasiennym. Przed zaszczepieniem, srodowisko wyjalawia sie w kadzi fermentacyjnej przy pomocy pary wodnej. Po zaszczepieniu, srodowisko wstrzasa sie przy pomocy plytki rozpryskujacej o srednicy ok. 15,5 cm, obracajacej sie z predkoscia 340 obr/min. Do kadzi dostarcza sie jalowe powietrze w ilosci 150 l/min, utrzymujac temperature srodowiska w poblizu 26°C. Cala fermentacje prowadzi sie w ciagu 72 godzin. Uzyskana mieszanine odwirowuje sie i oddziela 140 1 sklarowanego roztworu, doprowadzajac jego pH do wartosci 6,2. Nastepnie uzyskany roztwór przepuszcza sie z predkoscia 500 ml/min przez wy¬ pelnienie o wymiarach 15X130 cm, które stanowi anionit organiczny o charakterze mocnej zasady, taki jak, Zerolit FF(ip) SRA61 (Zerolit Ltd U.K.). Nastepnie kolumne przemywa sie 15 1 schlodzonej, zdemineralizowanej wody z predkoscia 500 ml/min, po czym eluuje z ta sama predkoscia schlodzonym, 1 m roztworem wodnym NaCl, zbierajac frakcje 4-litrowe. Frakcje sprawdza sie przy pomocy standardowe¬ go testu biologicznego na plytke KAG. Frakcje wykazujace odpowiednia aktywnosc (sa to frak¬ cje 2—19) laczy sie, doprowadza ich pH do wartosci 6,2, schladza i przepuszcza z predkoscia 500 ml/min przez kolumne wypelniona warstwa Amberlite XAD-4 o wymiarach 30X125 cm (Rohm and Haas, Philadelphia, USA). Kolumne przemy¬ wa sie 5 1 schlodzonego 1 m roztworu NaCl, po czym eluuje z predkoscia 500 ml/min woda zde- mineralizowana o temperaturze 5°C. Zbiera sie frakcje 5 litrowe rozpoczynajac od frakcji wymy¬ wajacych NaCl z kolumny. Frakcje 3—9 zawieraja¬ ce kwas klawulanowy laczy sie ze soba. 1 polaczonych frakcji zateza sie 10-krotnie na drodze odwrotnej osmozy (De Danske Sukkerfa- brikker Laboratory Module; membrana typu 995). Prowadzenie procesu polega na recyrkulowaniu frakcji ze zbiornika wykonanego ze stali nierdzew¬ nej, zaopatrzonego W uklad chlodzacy i tak usta¬ wiony zawór wylotowy z ukladu ultrafiltracji, by uzyskac róznice cisnien na 40 membranach równa 45 atmosfer. Temperature frakcji utrzymuje sie w . granicach 2—5°C, a pH w granicach 6,8 + 0,1 przez dodawanie 2n roztworu HC1. 3,5 1 uzyskanego koncentratu suszy sie uzyskujac 34 g brazowego, bezpostaciowego osadu. 2 g tego osadu oczyszcza sie sposobem podanym io w przykladzie 17 belgijskiego opisu patentowego nr 827926, uzyskujac praktycznie czysta, krystalicz¬ na, czterowpdha sól sodowa kwasu klawulanowe- go. 32 g uzyskanego wyzej, bezpostaciowego osa¬ du poddaje sie dzialaniu 10 mm bromku benzylu i 35 ml dwumetyloformamidu, mieszajac mieszani¬ ne w ciagu 4 godzin w temperaturze pokojowej. Nastepnie odpedza sie pod próznia rozpuszczalni¬ ki, uzyskujac w wyniku pólplynna pozostalosc. Do pozostalosci dodaje sie 50 ml octanu etylu, po czym calosc przesacza usuwajac caly osad. Przesacz od¬ parowuje sie pod próznia uzyskujac7 w wyniku oleista pozostalosc. W kolumnie umieszcza sie przygotowana w mie¬ szaninie cykloheksanu i chloroformu w stosunku 1:1 warstwe Sephade^u LH4O (Pharmacia Lto.) o wymiarach 3,8X34 cm. Produkt reakcji estryfiko¬ wania rozpuszcza sie w minimalnej ilosci miesza¬ niny cykloheksanu i chloroformu w stosunku 1:1, i przepuszcza przez kolumne, która nastepnie elu- Si uje sie ta sama mieszanina rozpuszczalników. Pierwsze 150 ml eluatu odrzuca sie, po czym zbie¬ ra frakcje po 25 ml. Obecnosc klawulanianu ben¬ zylu wykrywa sie umieszczajac 5 mikrolitrowe próbki kazdej frakcji na cienkich plytkach zelu krzemionkowego, po czym chromatogramy rozwija mieszanina cykloheksanu i octanu etylu w stosun¬ ku 1:1. Klawulanian benzylu staje sie widoczny po spryskaniu chromatogramu chlorkiem trójfenylote¬ trazolu. Uzyskana wartosc Rr porównuje sie z au- 40 tentyczna próJba klawulaniianiu benzylu analizowa¬ na chromatograficznie w tych samych warunkach (chlorek trójfenylotetrazolu przygotowuje sie przez zmieszanie 1 czesci 4% roztworu chlorku trójfeny¬ lotetrazolu w metanolu, z 1 czescia In roztworu 45 sody kaustycznej). Frakcje 30—45 zawierajace klawulanian benzylu laczy sie i odparowuje pod zmniejszonym cisnie¬ niem uzyskujac w wyniku olej. w Produkt uzyskany z kolumny wypelnionej Sepha- dex'em LH20 rozpuszcza sie w minimalnej ilosci mieszaniny cykloheksanu i octanu etylu w sto¬ sunku 1:1, i przepuszcza przez kolumne zawieraja¬ ca warstwe zelu krzemionkowego (zel krzemionko- B5 wy typu H do chromatografi cienkowarstwowej z firmy Merck) o wymiarach 2,5X28 cm, przygoto¬ wana w tym samym rozpuszczalniku. Kolumne eluuje sie mieszanina cykloheksanu i octanu ety¬ lu w stosunku 1:1, zbierajac 28 frakcji po 7 ml, w a nastepnie odbierajac frakcje po 15 ml. Frakcje 31—33 umieszczone na cienkiej plytce chromato¬ graficznej zelu krzemionkowego i spryskane chlor¬ kiem trójfenylotetrazolu zabarwiaja ,sie na czerwo¬ no. Frakcje te laczy sie i odparowuje pod zmniej- 65 szonym cisnieniem.105 494 13 14 Uzyskany olej poddaje sie analizie widmowej NMR i w podczerwieni, otrzymujac wyniki iden¬ tyczne jak w przypadku autentycznych próbek klawulanianu benzylu. Przyklad IV. Wytwarzanie klawulanianu so¬ dowego. 0,5 g klawulanianu benzylu z przykladu III umieszczonego w 20 ml etanolu i 5 ml wody uwo- darnia sie w ciagu 25 minut w temperaturze po¬ kojowej i pod cisnieniem atmosferycznym w obec¬ nosci 0,13 g katalizatora: 10% Pd/C, oraz w obec¬ nosci 0,15 g kwasnego weglanu sodowego. Nastep¬ nie katalizator odsacza sie, przemywa woda i eta¬ nolem, a polaczone przesacze odparowuje pod próznia. Produkt przekrystalizowuje sie z miesza¬ niny wody i acetonu uzyskujac czterowodny kla- wulanian sodowy. PL
PL1976192968A 1975-10-13 1976-10-12 Sposob wytwarzania soli kwasu klawulanowego PL105494B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB41898/75A GB1563103A (en) 1975-10-13 1975-10-13 Process for the preparation of clavulanic acid

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL105494B1 true PL105494B1 (pl) 1979-10-31

Family

ID=10421869

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1976192968A PL105494B1 (pl) 1975-10-13 1976-10-12 Sposob wytwarzania soli kwasu klawulanowego

Country Status (26)

Country Link
US (1) US4072569A (pl)
JP (1) JPS6057834B2 (pl)
AR (1) AR211031A1 (pl)
AT (1) AT354624B (pl)
AU (1) AU503529B2 (pl)
BE (1) BE846933A (pl)
CA (1) CA1072471A (pl)
CH (1) CH629532A5 (pl)
DD (1) DD126930A5 (pl)
DE (1) DE2646001A1 (pl)
DK (1) DK457576A (pl)
ES (1) ES452363A1 (pl)
FI (1) FI762909A7 (pl)
FR (1) FR2328045A1 (pl)
GB (1) GB1563103A (pl)
GR (1) GR61646B (pl)
IE (1) IE43801B1 (pl)
IL (1) IL50527A (pl)
NL (1) NL7611204A (pl)
NO (1) NO763474L (pl)
NZ (1) NZ182120A (pl)
PL (1) PL105494B1 (pl)
SE (1) SE434065B (pl)
SU (1) SU695565A3 (pl)
YU (1) YU251776A (pl)
ZA (1) ZA765702B (pl)

Families Citing this family (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4155912A (en) 1977-12-14 1979-05-22 Bristol-Myers Company 2-Methylpenem-3-carboxylic acid antibiotics
US4182711A (en) 1978-04-27 1980-01-08 Bristol-Myers Company Antibacterial agents of the β-lactam type
US4272437A (en) 1978-12-18 1981-06-09 Bristol-Myers Company Antibacterial agents, and 4-thio azetidinone intermediates
US4282150A (en) 1978-12-18 1981-08-04 Bristol-Myers Company 2,6-Disubstituted penem compounds
US4374065A (en) 1979-09-21 1983-02-15 Bristol-Myers Company Antibacterial agents of the β-lactam type
US4378314A (en) 1979-09-21 1983-03-29 Bristol Myers Company Antibacterial agents and metal containing azetidinone intermediates therefore
GB8521516D0 (en) * 1985-08-29 1985-10-02 Beecham Group Plc Compounds
GB9401969D0 (en) * 1994-02-02 1994-03-30 Smithkline Beecham Plc Process
SI9400107A (en) * 1994-03-02 1995-10-31 Lek Tovarna Farmacevtskih New process of the isolation of clavulanic acid and its pharmaceutical salts from fermented broth of streptomyces sp.p 6621 ferm p 2804.
SI9500074A (en) * 1995-03-10 1996-10-31 Lek Tovarna Farmacevtskih Process for preparation of alkani salts of clavulanic acid.
SI9500265A1 (en) * 1995-08-28 1997-02-28 Lek Tovarna Farmacevtskih Process for purification of the aqueous fermented broth filtrate of streptomyces sp. p 6621 ferm p 2804 by ultrafiltration
SI9600120A (en) * 1996-04-12 1997-12-31 Lek Tovarna Farmacevtskih New and improved fermentative procedure for the production of clavulanic acid and its salts
AR015825A1 (es) * 1997-05-28 2001-05-30 Gist Brocades Bv Produccion fermentativa de acido clavulanico bajo condiciones controladas de fosfato
US6440708B1 (en) 1998-09-29 2002-08-27 Dsm N.V. Fermentation of clavulanic acid at a controlled level of ammonia
US6979735B1 (en) * 1999-04-01 2005-12-27 Dsm N.V. Agglomerates by crystallization
KR20090094261A (ko) * 2006-12-01 2009-09-04 디에스엠 아이피 어셋츠 비.브이. 클라부란산의 제조방법
EP2589663A1 (en) 2011-11-04 2013-05-08 LEK Pharmaceuticals d.d. Process for production of clavulanic acid

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5318595B2 (pl) * 1972-08-31 1978-06-15
NZ177159A (en) * 1974-04-20 1978-03-06 Beecham Group Ltd Clavulanic acid, salts, esters and preparation thereof from streptomyces clavuligerus: pharmaceutical compositions

Also Published As

Publication number Publication date
NZ182120A (en) 1979-03-16
AU1855576A (en) 1978-04-20
DE2646001A1 (de) 1977-04-21
YU251776A (en) 1982-06-30
ES452363A1 (es) 1978-01-01
DK457576A (da) 1977-04-14
DD126930A5 (pl) 1977-08-24
NO763474L (pl) 1977-04-14
SU695565A3 (ru) 1979-10-30
IE43801L (en) 1977-04-13
ATA753276A (de) 1979-06-15
IE43801B1 (en) 1981-06-03
AU503529B2 (en) 1979-09-06
NL7611204A (nl) 1977-04-15
CH629532A5 (de) 1982-04-30
CA1072471A (en) 1980-02-26
US4072569A (en) 1978-02-07
JPS6057834B2 (ja) 1985-12-17
GB1563103A (en) 1980-03-19
IL50527A (en) 1979-05-31
GR61646B (en) 1978-12-05
FI762909A7 (pl) 1977-04-14
IL50527A0 (en) 1976-11-30
JPS5247991A (en) 1977-04-16
AT354624B (de) 1979-01-25
ZA765702B (en) 1977-09-28
FR2328045A1 (fr) 1977-05-13
AR211031A1 (es) 1977-10-14
SE434065B (sv) 1984-07-02
BE846933A (fr) 1977-04-04
SE7611046L (sv) 1977-04-14
FR2328045B1 (pl) 1980-01-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL105494B1 (pl) Sposob wytwarzania soli kwasu klawulanowego
SE443562B (sv) Forfarande for framstellning av ett rent salt av klavulansyra
JPS6317078B2 (pl)
CA2023114C (en) Microorganism for selective production of a specific component of avermectin and a method for selective production thereof
CA1150167A (en) Process for the production of antibiotic cephamycin c
CA1092999A (en) Method for producing maytansinol and its derivatives
US4894344A (en) Method for manufacturing 2-amino-2-deoxy-D-mannitol
EP0028511B1 (en) Cephalosporins, processes for their preparation and microorganisms capable of their production
SU751332A3 (ru) Способ получени антибиотического комплекса а-35512
US4066507A (en) Process for producing l-leupeptins
JP3210080B2 (ja) テアニンの製造方法
DE3003359C2 (pl)
US4382952A (en) Antibiotic roridin L-2 and its use
US4334022A (en) Method for producing mildiomycin
US6790984B1 (en) Process for purifying pravastatin sodium from a fermentation broth
US4562153A (en) Process for the separation of L-leucine and L-isoleucine
US4535155A (en) Method for separating cephalosporins
US4189537A (en) Process of producing antibiotic BL580Δ with Streptomyces hygroscopicus
US4003902A (en) Naphthyridinomycin antibiotics
JP2594167B2 (ja) 新規抗生物質sf2698物質およびその製造法
US4370266A (en) Mycoplanecin derivatives and their preparation
CA1247029A (en) Cephem compounds and their production
AU654382B2 (en) Recovery process for antibiotics LL-E19020 alpha and beta
US4696794A (en) CL-1957D antibiotic compound and its production
US2965547A (en) Process for the production of l-6-diazo-5-oxonorleucine