NO135424B - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
NO135424B
NO135424B NO1689/72A NO168972A NO135424B NO 135424 B NO135424 B NO 135424B NO 1689/72 A NO1689/72 A NO 1689/72A NO 168972 A NO168972 A NO 168972A NO 135424 B NO135424 B NO 135424B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
cells
glucose
glutaraldehyde
bacterial cells
weight
Prior art date
Application number
NO1689/72A
Other languages
English (en)
Other versions
NO135424C (no
Inventor
M F Zienty
Original Assignee
Miles Lab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Miles Lab filed Critical Miles Lab
Publication of NO135424B publication Critical patent/NO135424B/no
Publication of NO135424C publication Critical patent/NO135424C/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/24Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of an isomerase, e.g. fructose

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Det er velkjent at glucoseisomeraseenzym kan anvendes for å katalysere omdannelsen av glucose (dextrose) til fructose (levulose) som har en hbyere sotningskraft enn utgangsmaterialet. Det er også kjent at glucoseisomerase produseres ved fermentering i passende nær-ingsmedia av organismer, slike som Pseudomonas hydrophila, Streptoray-ces flavovireus, Streptomyces echinatur, Streptomyces achromogenus, Streptomyces albus og Streptomyces olivaceus. Glucoseisomerase dannes inne i bakteriecellene; som gror under dets produksjon. Cellene kan filtreres fra fermenteringsvæsken og anvendes direkte som en kilde til glucoseisomerase. Alternativt kan cellene fjernes ved filtrering og derefter åpnes på velkjent måte. De resulterende, åp-nede celler og frigjort innhold kan derefter anvendes som en kilde for glucoseisomerase. Ytterligere kan cellene åpnes, og celleavfal-let fjernes ved sentrifugering. Den overflytende væske kan derefter anvendes direkte som en kilde for glucoseisomerase, eller enzymet kan gjenvinnes i form av pulver fra denne væske ved velkjente teknikker. Glucoseisomerase fremstillet ved de tidligere kjente teknikker ble ikke kommersielt nyttige på grunn av den høye omkostning ved anvendelse av enzymene. Enzymproduksjonsomkostnin-gene var høye på grunn av det kostbare næringsmedium som er nødven-dig, samt de relativt lave utbytter av enzymet sammenlignet med produksjonsteknikker fra andre enzymer. Det er derfor nødvendig at glucoseisomerase lar seg gjenvinne efter bruk og derefter bruke påny til ytterligere omsetning av glucose til fructose.
Glucoseisomerase er mest egnet for gjenvinning og fornyet bruk hvis den fremdeles inneholdes i de originale bakterieceller. Bakteriecellene kan lett fjernes fra det sukkerholdige omdannelsesmedium. Imidlertid forhindrer kjente teknikker fornyet bruk av bakterieceller, da cellene taper ca. 50 % av sin glucoseisomeraseaktivitet for hver gangs bruk.
Ifølge foreliggende oppfinnelse angis en fremgangsmåte for stabilisering av glucoseisomerase i bakterieceller som omfat-ter en behandling med glutaraldehyd av bakterieceller inneholdende glucoseisomeraseaktivitet.
Fra Biochim. Biphys. Acta 1971, 225(1), 140-50 er det kjent å behandle micrococcus lysodeikticus membraner med glutaraldehyd for å forbedre retensjonen av ATPase, NADH dehydrogenase og polynucleotid fosforylase. De membraner som behandles er av-fall fra sprukne celler.
Der gis imidlertid i denne publikasjon ingen opplys-ninger om hvorvidt en slik behandling kan utføres på hele, uspruk-ne celler, heller ikke om stabilisering av andre enzymer slike
.som glucose isomerase.
Bakterieceller inneholdende glucoseisomeraseaktivitet og som er nyttige ved fremgangsmåten ifølge foreliggende oppfinnelse, kan fremstilles ved velkjente fremgangsmåter. De foretrukne enzymholdige celler produseres.ved dyrkning under submerse,
aerobe betingelser, av en kultur av Streptomyces olivaceus NRRL
3583 eller mutanter derav i et medium inneholdende passende nær-ingsmidler. De resulterende bakterieceller skilles fra fermenteringsvæsken ved filtrering eller sentrifugering.
De gjenvundne bakterieceller suspenderes derefter i et vandig medium og blandes med glutaraldehyd. Glutaraldehyd anvendes i en mengde på 0,1 - 50 vekt%, regnet på cellenes tørrvekt.
Fortrinsvis anvendes glutaraldehyd i en mengde på 10 - 50 vekt%
regnet på de tørre cellers vekt.. Bakteriecellene har initialt en pH på ca. 8,5. Mens bakteriecellene behandles med glutaraldehyd, faller pH sluttelig til 6,5. Hvis den initiale pH er over
8,5, eller pH under behandlingen faller under 6,5, bør tilsettes et passende puffermateriale for å bibeholde pH av bakteriecellene innen området fra 6,5 til 8,5.
Bakteriecellene bør behandles med glutaraldehyd fra
30 minut til 2 timer. Den foretrukne behandlingstid er 1-1,5 timer.
Behandlingstemperaturen er ikke kritisk og kan passende være i området 15 - 60°C.
Glucoseisomeraseaktiviteten for bakteriecelleutgangsmate-rialet og glutaraldehydbehandlet materiale ble utldersokt ved folgende fremgangsmåte: En 62,5 %'s (vekt/volumbasis) vandig oppldsning av glucose ble fremstillet ved langsom tilsetning, under omroring, av 625 g vann-fri glucose til 300 ml varmt destillert vann. Opplbsningen ble av-kjblt til romtemperatur og tilsatt 125 ml 1 molar vandig opplosning av tris-(hydroxymethyl)-aminomethan ved pH 8,5, 125 ml 1 molar vandig opplosning av vandig magnesiumsulfat og 50 ml 0,025 molar vandig opplosning av cobolt(II)klorid. Den erholdte blanding ble fortynnet til 1 liter med destillert vann.
En 10 ml porsjon av den ovenfor nevnte glucoseopplosning ble tilsatt til en 25 ml måleflaske. Tilstrekkelig enzym, for bestemmelse, ble tilsatt for å gi en reduksjon av den spesifikke rotasjon, som definert i det folgende, på 2,9 - 7,5 . Flaskeinnholdene ble fortynnet til 25 ml med destillert vann, og den erholdte blanding inkubert ved 60°C i 2 timer. Reaksjonen ble derefter stoppet ved tilsetning av 1 ml 0,5 molar vandig opplosning av perklorsyre. Blandin-gen ble derefter sentrifugert ved 15.000 omdr./min. i 20 minutter, og den optiske rotasjon (i grader) av den ovenfor liggende væske ble be-stemt ved velkjente teknikker. En blindprove gjennomgikk den samme prosedyre, men uten tilstedeværelse av enzym. Den optiske rotasjon
o o 25
av blindprbven ble også målt. Den spesifikke rotasjon [ajp av pro-ven eller blindprbven var 2a, eller 2 ganger den observerte optiske rotasjon. Den prosentvise omdannelse av glucose til fructose ble beregnet efter folgende formel:
Enzymaktiviteten i glucoseisomeraseenheter (GIU) av enzym-prbven under bestemmelse ble beregnet ved folgende formel:
hvori u-g fructose dannet ble beregnet ved multiplikasjon av den ovenfor beregnede "Prosent glucoseomdannelse" verdi med 6,25 x 10^. En glucoseisomeraseenhet er den mengde enzym som vil omdanne et |x mol. glucose til fructose pr. minutt under analysebetingelsene.
Oppfinnelsen beskrives mere detaljert i de folgende eksem-pler:
Eksempel 1
En kultur av Streptomyces olivaceus NRRL 3583 ble overfort til en omrdrt luftet fermenteringsanordning inneholdende 10 liter av en vandig blanding inneholdende 0,7 % xylose, 0,3 % raffinert maissti-velse, 1 % pepton, 0,50 % kjottekstrakt, 0,25 % gjærekstrakt, 0,50 % natriumklorid og 0,05 % magnesiumsulfat, og som hadde en pH på 7,0. Alle de ovenfor gitte prosentverdier er beregnet på vekt/volumbasis. Rdreanordningen roterte med 400 omdr./min, og ble fort gjennom mediet med en hastighet på 3 volumdeler luft pr. volum medium pr. minutt. Fermenteringen ble fortsatt 24 timer ved 32°C. Den fermenterte væske ble derefter sentrifugert ved 40.000 omdr./min for separasjon av bakteriecellene. En del av bakteriecellene ble frosset og lyofilisert. 3 g frysetorkede, hele deiler ble suspendert i 50 ml av en vandig opplosning av tris-(hydroxymethyl)-aminomethan ved en pH på 8,5, og den omrorte suspensjon ble behandlet med 0,1 g av en 25 vekt% vandig glutaraldehydopplosning (0,83 vekt% glutaraldehyd regnet på torrvekten av cellene) under omrdring ved romtemperatur (ca. 20°C) i 1,5 timer. De behandlede celler hadde en aktivitet på 145 GIU/g, ble oppsamlet ved filtrering og tilsatt til en 62,5 vekt%'s vandig opplosning av glucose inneholdende 0,001vekt% coboltklorid og 0,01 vekt% magnesiumklorid. Den erholdte blanding fikk reagere ved 70°C i 2 timer for å omdanne ca. 4,5 % av glucosen til fructose. Cellene ble skilt fra: reaksjonsblandingen ved sentrifugering, og fructose-dextro-seblandingen dekantert.
Cellene ble analysert og funnet å ha. den samme glucoseisomeraseaktivitet som for anvendelse. Cellene ble derefter igjen anvendt til å behandle en frisk glucoseopplSsning under de samme betingelser som beskrevet ovenfor, og derefter gjenvunnet og analysert. Denne fremgangsmåte ble gjentatt for ialt 12 gangers bruk av cellene. Disse celler bibeholdt 56 % av den initiale glucoseisomeraseaktivitet. Celler som ikke hadde vært behandlet med glutaraldehyd mistet i det vesentlige all deres glucoseisomeraseaktivitet efter å ha vært anvendt to ganger.
Eksempel 2
En fermenterende væske inneholdende Streptomyces olivaceus NRRL 3583 bakterieceller ble fremstillet på samme måte som beskrevet i eksempel 1. Endel av denne væske ble sentrifugert, og en 3 grams porsjon av fuktige, hele bakterieceller ble isolert. Disse celler ble derefter suspendert i 50 ml vann og behandlet med 0,1 g av en 25 vekt%'s vandig opplosning av glutaraldehyd i et pH område på 6,5 - 8,5 ved romtemperatur i 1 time. De behandlede celler hadde en aktivitet på 265 GIU/g og ble oppsamlet ved filtrering og anvendt for å omdanne glucose til fructose på den måte som er beskrevet i eksempel 1. Cellene ble gjenvunnet og brukt påny med ny glucose for ialt tolv ganger. Cellene bibeholdt 60,7 % av den initiale glucoseisomeraseaktivitet.
Eksempel 3
En fermenterende væske inneholdende Streptomyces olivaceus NRRL 3583 ble fremstillet på samme måte som beskrevet i eksempel 1.
En aliquot mengde av den totale væske inneholdende 3 g hele celler ble blandet med 0,2 g av en 25 vekt%'s vandig glutaraldehydopplosning (1,67 vekt% glutaraldehyd regnet på torrvekten av cellene) og omrdrt ved romtemperatur i et pH område på 6,5 - 8,5 i en time. De behandlede celler hadde en aktivitet på 271 GIU/g og ble oppsamlet ved filtrering og anvendt til å omdanne glucose til fructose på samme måte som beskrevet i eksempel 1. Cellene ble gjenvunnet og brukt påny med ny glucose ialt tolv ganger. Cellene bibeholdt 61,6 % av den initiale glucoseisomeraseaktivitet.
Eks erope 1 4
En fermenterende væske inneholdende Streptomyces olivaceus NRRL 3583 bakterieceller ble fremstillet på samme måte som beskrevet i eksempel 1. En aliquot del av den totale væske inneholdende 4 g hele celler ble blandet med 0,4 g av en 25 vekt%'s vandig glutaraldehydopplosning (2,5 vekt% glutaraldehyd regnet på torrvekten av cellene) og omrdrt ved romtemperatur i en time. Ingen pH kontroll ble anvendt. Ved reaksjonens begynnelse hadde celleblandingen en pH på 8,4. Ved slutten av reaksjonsperioden var pH 6,8. De behandlede celler hadde en aktivitet på 387 GIU/g og ble oppsamlet ved filtrering og anvendt for å omdanne glucose til fructose, som beskrevet i eksempel 1. Cellene ble gjenvunnet og brukt påny med ny glucoseopplosning ialt fem ganger. Cellene bibeholdt lOO % av den initiale glucoseisomeraseaktivitet.
Eksempel 5
En fermenterende væske inneholdende Streptomyces olivaceus NRRL 3583 bakterieceller ble fremstillet på samme måte som beskrevet i eksempel 1 i et 378 liters forgjæringskar. Denne væske hadde en total aktivitet på 1.350.000 GIU og inneholdt 3,18 kg bakterieceller regnet på torrvekt (425 GIU/gm). pH verdien for væsken ble justert til 8,5 ved tilsetning av natriumhydroxyd. En 3,18 kg porsjon av 50 vekt%'s vandig glutaraldehydopplosning fortynnet til en konsentrasjon på 0,5-0,6 % (vekt/volumbasis) ble tilsatt til væsken under omroring i lopet av en periode på 30 - 40 minutter (50 vekt% glutaraldehyd regnet på torrvekten av cellene). Den erholdte blanding fikk reagere ved romtemperatur i 1,5 timer under mild omroring. En 0,5 %'s (vekt/volum-basis) porsjon diatoméjord filtrerhjelpemiddel ble derefter tilsatt og forgjæringsvæsken filtrert i et roterende vakuumfilter. Filterkaken ble vasket med vann for å fjerne rester av forgjæringsvæsken. De oppsamlede bakterieceller hadde en total aktivitet på 1.215.000 GIU eller 90 % av den initiale aktivitet.
En glucoseopplosning ble fremstillet ved å blande 102,1 kg glucose i 208,2 1 vann (49,2 % glucose på vekt/volumbasis. Til denne opplosning ble tilsatt coboltklorid i en mengde på 0,001 %
(vekt/volumbasis) og magnesiumklorid i en mengde på 0,01 % (vekt/vo-lumbasis). En porsjon av den ovenfor fremstillede glutaraldehydbe?-handlede bakterieceller med en total aktivitet på 407.250 GIU ble og-så tilsatt til glucoseoppldsningen. Den resulterende blanding ble omrdrt ved 60°C 24 timer, under hvilket tidsrom pH ble bibeholdt på 7,7 - 7,9 ved tilsetning av natriumhydroxyd. Bakteriecellene ble filtrert fra reaksjonsblandingen som ble analysert til å inneholde 40,2 % fructose. De ovenfor oppsamlede bakterieceller ble derefter anvendt "i en ny glucoseopplosning på samme måte som beskrevet ovenfor. Denne prosedyre ble gjentatt inntil bakteriecellene var brukt ialt ni ganger. Ved det niende forsok hadde glucoseisoraeraseaktiviteten av - bakteriecellene dannet 38,8 % fructose, hvilket fremdeles var 96,6 % av den initiale aktivitet.

Claims (3)

1. Fremgangsmåte ved stabilisering av glucoseisomerase i hele bakterieceller, karakterisert ved at bakteriecellene inneholdende glucoseisomeraseaktivitet behandles med glutaraldehyd i en mengde på 0,1 - 50 vekt%, regnet på cellenes tørr-vekt, og ved en pH på fra 6,5 til 8,5.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at glutaraldehyd anvendes i en mengde på 10 - 50 vekt%, regnet på cellenes tørrvekt.
3. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at celler av Streptomyces olivaceus behandles med glutaraldehyd.
NO1689/72A 1971-05-13 1972-05-12 NO135424C (no)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US14319471A 1971-05-13 1971-05-13

Publications (2)

Publication Number Publication Date
NO135424B true NO135424B (no) 1976-12-27
NO135424C NO135424C (no) 1977-04-05

Family

ID=22503004

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO1689/72A NO135424C (no) 1971-05-13 1972-05-12

Country Status (13)

Country Link
US (1) US3779869A (no)
JP (1) JPS5622514B1 (no)
BE (1) BE783410A (no)
BR (1) BR7202502D0 (no)
CA (1) CA978113A (no)
DK (1) DK130652C (no)
FR (1) FR2137869B1 (no)
GB (1) GB1376983A (no)
IL (1) IL38923A (no)
IT (1) IT1046202B (no)
LU (1) LU65327A1 (no)
NL (1) NL155887B (no)
NO (1) NO135424C (no)

Families Citing this family (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5118518B2 (no) * 1973-03-07 1976-06-10
US3957580A (en) * 1974-03-27 1976-05-18 Pfizer Inc. Immobilized microbial cells
US4001480A (en) * 1974-08-16 1977-01-04 Swift & Company Encapsulation process utilizing microorganisms and products produced thereby
US3980521A (en) * 1974-08-28 1976-09-14 Novo Industri A/S Immobilization of glucose isomerase
US3974036A (en) * 1974-09-03 1976-08-10 Miles Laboratories, Inc. Process for conditioning bacterial cells containing glucose isomerase activity
US4025389A (en) * 1975-03-13 1977-05-24 Novo Industri A/S Process and isomerizing glucose
US4208482A (en) * 1976-04-23 1980-06-17 Anheuser-Busch, Incorporated Immobilization of glucose isomerase
AU515471B2 (en) * 1977-08-23 1981-04-02 Novo Nordisk A/S Iron containing cell mass glucose isomerase preparation
US4212943A (en) * 1978-03-27 1980-07-15 Miles Laboratories, Inc. Production of bacterial cell aggregate
DK146942C (da) * 1978-04-19 1984-07-30 Novo Industri As Fremgangsmaade til fremstilling af et immobiliseret enzymprodukt
US4241185A (en) * 1979-02-23 1980-12-23 The Great Western Sugar Company Method of stabilizing α-galactosidase
DE3038219A1 (de) * 1980-10-09 1982-04-15 Süddeutsche Zucker AG, 6800 Mannheim Verfahren zur herstellung von isomaltulose (6-o-(alpha)-d-glucopyranosido-d-fructose) mit hilfe von immobilisierten bakterienzellen
US4337313A (en) * 1980-12-08 1982-06-29 Miles Laboratories, Inc. Immobilization of biocatalysts
US4355105A (en) * 1981-03-30 1982-10-19 Miles Laboratories, Inc. Glutaraldehyde/polyethylenimine immobilization of whole microbial cells
US4390627A (en) * 1981-10-26 1983-06-28 Miles Laboratories, Inc. Immobilization of the sucrose mutase in whole cells of protaminobacter rubrum
US4695455A (en) * 1985-01-22 1987-09-22 Mycogen Corporation Cellular encapsulation of pesticides produced by expression of heterologous genes
USRE33441E (en) * 1985-06-14 1990-11-13 Novo Industri A/S Immobilization of biologically active material with glutaraldehyde and polyazaetidine
DK152764C (da) * 1985-06-14 1988-10-03 Novo Industri As Fremgangsmaade til fremstilling af et immobiliseret enzymprodukt
US4920052A (en) * 1988-02-05 1990-04-24 Miles Inc. Process for producing glucose isomerase
AU6029998A (en) * 1997-01-17 1998-08-07 Regents Of The University Of Minnesota Dna molecules and protein displaying improved triazine compound degrading ability
US6673582B2 (en) 2000-01-25 2004-01-06 Regents Of The University Of Minnesota Microbes and methods for remediation
US8815569B2 (en) * 2003-01-08 2014-08-26 Basf Se Methods for preserving and/or storing cells having a nitrilase or nitrile hydratase activity

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3625828A (en) * 1969-04-16 1971-12-07 Miles Lab Process for production of glucose isomerase
US3694314A (en) * 1970-11-09 1972-09-26 Standard Brands Inc Process for isomerizing glucose to fructose

Also Published As

Publication number Publication date
BE783410A (fr) 1972-09-01
CA978113A (en) 1975-11-18
IL38923A (en) 1974-10-22
FR2137869A1 (no) 1972-12-29
DE2223340B2 (de) 1976-02-19
FR2137869B1 (no) 1974-07-26
LU65327A1 (no) 1972-08-23
GB1376983A (en) 1974-12-11
DK130652C (da) 1978-11-13
NO135424C (no) 1977-04-05
JPS5622514B1 (no) 1981-05-26
NL155887B (nl) 1978-02-15
US3779869A (en) 1973-12-18
IT1046202B (it) 1980-06-30
AU3981372A (en) 1973-05-10
BR7202502D0 (pt) 1973-05-24
IL38923A0 (en) 1972-09-28
DE2223340A1 (de) 1972-11-23
DK130652B (no) 1975-03-17
NL7205718A (no) 1972-11-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO135424B (no)
US4431737A (en) Process for the production of alpha-galactosidase and uses of the enzyme thus obtained
Schlegel et al. The isolation of mutants not accumulating poly-β-hydroxybutyric acid
Takasaki Studies on Sugar-isomerizing Enzyme: Production and Utilization of Glucose Isomerase from Streptomyces sp.
US3806420A (en) Process for the preparation of creatinine amidohydrolase
NO155446B (no) Fremgangsmaate til fremstilling av isomaltulose.
US3826714A (en) Thermophilic glucose isomerase enzyme preparation
NO140233B (no) Fremgangsmaate til gjennomfoering av en enzymkatalysert omdannelse, samt enzymholdig aggregat for bruk ved fremgangsmaaten
NO128540B (no)
US3645848A (en) Process of preparing glucose isomerase
HU196841B (en) Process for the production and immobilization of xylose isomerase and for the isomerization of glycose into fructose
US2821501A (en) Recovery of starch
Okagbue et al. Mixed culture of Bacillus circulans WL-12 and Phaffia rhodozyma on different carbon sources: yeast-wall lytic enzyme production and extractability of astaxanthin
NO162347B (no) Fremgangsmaate for enzymatisk hydrolyse av raffinose.
NO139691B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av glukoseisomeriserende enzym fra mikroorganismer
US2936265A (en) Proteolytic enzyme and methods for its production
JPH0224519B2 (no)
JPH0369278B2 (no)
US4237231A (en) Method of purifying glucose isomerase and a composition for storing same
D'Souza et al. Removal of glucose from egg prior to spray drying by fermentation with immobilized yeast cells
JPH06292578A (ja) 耐熱性マンノースイソメラーゼ及びその製造法並びにこれを用いたマンノースの製造法
EP0041213B1 (en) Glucose isomerase, process therefor and use for producing fructose from glucose
AU595144B2 (en) Process for producing glucose isomerase
DK145679B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af fructose
Illanes et al. Kinetics of extraction of invertase from autolysed bakers' yeast cells