KR20200129967A - 오리엔티아 쯔쯔가무시 균의 신규 재조합 단백질 항원 및 이를 이용한 백신 조성물 - Google Patents

오리엔티아 쯔쯔가무시 균의 신규 재조합 단백질 항원 및 이를 이용한 백신 조성물 Download PDF

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Abstract

본 발명은 쯔쯔가무시 균 감염 여부 등의 진단과 그 쯔쯔가무시 균에 대한 백신으로 유용하게 사용할 수 있는, ScaA 및 TSA56항원의 보존 서열로부터 도출한 신규 재조합 단백질을 융합한 항원과 이를 이용한 백신 조성물을 개시한다.

Description

오리엔티아 쯔쯔가무시 균의 신규 재조합 단백질 항원 및 이를 이용한 백신 조성물{Novel Recombinant Protein Antigens of Orientia tsutsugamushi and the Vaccine Composition Using the Same}
본 발명은 오리엔티아 쯔쯔가무시 균의 신규 재조합 단백질 항원 및 이를 이용한 백신 조성물에 관한 것이다.
쯔쯔가무시병 (scrub typhus)은 오리엔티아 쯔쯔가무시균(Orientia tsutsugamushi, 이하 "쯔쯔가무시균")에 감염된 털진드기 유충이 사람을 물었을 때 발생하는 절지동물 매개 감염질환으로서, 러시아 연해주, 한국, 일본, 중국, 및 동남아시아 지역, 호주 북부 등, 주로 아시아-태평양 지역에서 매년 백만명 이상의 환자들이 발생하고 있는 것으로 추정되고 있다. 감염된 털진드기 유충에 물린 환자는 1-2주간의 잠복기를 거쳐 발열, 오한, 가피 생성, 발진, 근육통, 림프절 종대 등의 증상을 나타낸다. 감염 초기에 진단되면 적절한 항생제 처방을 통하여 치료가 가능하지만, 초기 임상증상이 다른 열성감염질환과 유사하여 감별진단이 어렵고, 임상현장에서 간편하고 빠르게 진단할 수 있는 방법이 없기 때문에 중증의 전신성 열성질환으로 발전하는 경우가 많으며, 매년 적지 않은 사망자가 발생하고 있다.
쯔쯔가무시균은 100종 이상의 다양한 혈청형(serotype) 또는 유전형(genotype)이 존재하고 있는 것으로 알려져 있는데, 전통적으로 알려진 길리엄(Gilliam), 카프(Karp) 및 카토(Kato) 등의 원형(prototype)을 포함하여 수 십여 가지의 아형(strain)들로 분류되고 있다(Am J Trop Med Hyg.1985.34(6):1173; J Clin Microbiol. 1991.29(2):340;J Clin Microbiol. 1993.31(3):598). 쯔쯔가무시균의 유전형은 이 세균의 주요 막단백질인 56kDa Type specific antigen (TSA56)을 암호화하는 유전자에 의해 분류된다. 한국에서는 카프형과 유사한 보령 유전형에 의한 감염이 주로 발생하고 있지만, 쯔쯔가무시병이 발생하고 있는 국가들에서 발견되고 있는 쯔쯔가무시균의 유전형의 종류와 빈도는 매우 다양한 것으로 알려져 있다.
사람이나 생쥐감염모델에서 쯔쯔가무시균에 감염에 의해 유도되는 보호면역은 감염되었던 쯔쯔가무시균의 유전형에 특이적인 것으로 알려져 있으며, 항체반응의 지속성은 1~2년으로 비교적 짧게 유지된다. 또한 다른 유전형이 2차 감염되었을 때에는 방어능이 제공되지 않는다. 예를 들면, 길리암 혈청형에 감염된 환자가 2달후에 다시 카프 혈청형에 재감염 되어 쯔쯔가무시병이 발병한 예가 보고된 바 있다. 이러한 쯔쯔가무시균의 유전적 다양성으로 인하여 아직까지 효과적인 백신이 개발되지 못하고 있을 뿐만 아니라, 이 질환을 혈청학적으로 진단하는 데에도 장애가 되고 있다. 또한 최근에는 동남아시아, 인도 등지에서 항생제 저항균에 대한 보고가 있었으며, 우리나라와 중국 등 동아시아지역에서 발생보고가 증가하고 있어 공공 보건에 커다란 문제가 되고 있다. 따라서 다양한 쯔쯔가무시균 유전형들에 대한 감염을 효과적으로 신속히 진단하고, 효과적인 보호면역을 제공할 수 있는 기술개발의 필요성이 증가하고 있는 상황이다.
쯔쯔가무시병 백신 개발을 위하여 지난 70여년간 다양한 연구가 진행되어 왔다. 초기 연구들에서 쯔쯔가무시병 백신의 개발은 포르말린 처리나 감마선 조사를 통한 사백신(Killed-vaccine)은 사람에게서 효과적인 보호 면역을 제공하지 못하는 것으로 확인되었고, TSA56 단백질(56-kDa Type-Specific Antigen) 및 47KDa의 외막 단백질을 이용한 재조합 단백질 백신(Subunit vaccine), DNA 백신 등이 연구되어 왔으나, 이들 백신들은 동일한 유전형 감염에 대해서만 일시적인 방어면역을 유도하는 것으로 보고 되었고 다른 유전형에 대해서는 보호면역을 유도하지 못하는 것으로 확인되었다(Lancet. 1945.2(6380):734; Infect Immun. 1997.65(4):1541; Am J Trop Med Hyg. 2005.72(4):458).
현재 쯔쯔가무시균의 주요 막단백질인 56kDa Type specific antigen (TSA56)과 surface cell antigen A(ScaA)가 인비트로(in vitro) 및 인비보(in vivo) 실험에서 숙주세포(host cell)의 면역 반응을 일으키는 것으로 알려졌으나(Vaccine. 1997.15(16):1741; PLoS Negl Trop Dis. 2015.9(3):e0003585) 백신 실용화 단계에는 미치지 않고 있다.
따라서 이러한 유전적 차이를 극복하고, 다양한 유전형이나 혈청형들에 대해서 보편적인 보호면역을 제공할 수 있는 백신 항원의 개발이 필요한 상황이다. 그리고 이렇게 다양한 유전형들을 효과적으로 조기에 진단하는데 필요한 진단 항원의 개발도 시급하다.
본 발명에서는 기후변화에 따라 지속적으로 확산되는 쯔쯔가무시균 피해를 억제하기 위한 백신 조성물을 개시하였다. 본 발명의 조성물은 여러 유전자형에서 보존된 부위를 항원으로 이용하였기 때문에 쯔쯔가무시균의 유전적 차이를 극복하고 보편적인 보호면역을 제공할 수 있다.
본 발명은 오리엔티아 쯔쯔가무시 균의 신규 재조합 단백질 항원을 제공하는 데 있다.
본 발명의 다른 목적은 상기 재조합 단백질 항원을 이용하는 오리엔티아 쯔쯔가무시 균에 대한 백신 조성물을 제공하는 데 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 재조합 단백질 항원을 이용하는 오리엔티아 쯔쯔가무시 균에 대한 진단용 조성물을 제공하는 데 있다.
본 발명의 기타 다른 목적이나 구체적인 목적은 이하에서 제시될 것이다.
본 발명자들은 아래의 실시예에서 확인되는 바와 같이, 미국립생물정보학센터(National Center for Biotechnology Information)의 유전자서열 데이터베이스에서 다양한 유전자형의 쯔쯔가무시균 유래의 15개 ScaA 유전자 아미노산서열과 1,030개 TSA56 단백질 유전자 염기서열을 수집하였다. 이들 중에서 전체 아미노산 서열 변이의 평균값보다 낮은 아미노산 서열을 포함하는 보존블럭을 규정하고, 이 보존블럭에서 유래한 ScaA 및 TSA56 재조합한 단백질의 (이하 "F4V2")의 서열을 결정하였으며 이들의 항원성을 확인하였다.
상기 F4V2 재조합 단백질들을 마우스에 면역하였을 때 항체 생산이 유도되었으며 이들의 항혈청은 쯔쯔가무시균 감염을 억제하는 효과를 나타내었다.
전술한 바의 실험 결과는 본 발명의 F2V2 재조합 단백질 항원이 쯔쯔가무시 균에 대한 백신의 활성성분으로서 유용함을 보여주는 결과라 할 수 있다.
다른 측면에 있어서, 본 발명은 상기 재조합 단백질 항원을 암호화하는 유전자에 관한 것이고, 또 다른 측면에 있어서, 본 발명은 이러한 유전자를 이용하여 재조합 단백질 항원을 제조하는 방법에 관한 것이다.
본 발명의 제조 방법은 상기 재조합 단백질 항원을 암호화하는 유전자를 이용하여 당업계에 공지된 DNA 재조합 기술 등으로 제조할 수 있다. 이러한 방법은 (i) 상기 재조합 단백질 항원을 암호화하는 유전자를 포함하는 발현벡터를 제조하고 (ii) 이 발현벡터를 숙주세포에 형질전환시키고 (iii) 형질전환된 숙주세포를 배양하고, 마지막으로 (iv) 그 배양물로부터 상기 재조합 단백질 항원을 분리·정제하는 단계를 포함하여 구성된다.
상기 재조합 단백질 항원인 목적 단백질(생산하고자 하는 단백질임)을 암호화하는 목적 유전자는 그 유전자가 암호화하는 목적 단백질 서열을 기초로 화학적으로 합성될 수 있다. 이러한 화학적 합성 방법은 당업계에 주지되어 있는데, 예컨대 고체상 합성 기술, 용액상 합성 기술 등을 이용할 수 있고, 이들 기술을 응용하여 자동화한 시판되는 유전자 합성기(DNA synthesizers) 등을 이용할 수 있다. 구체적인 사항들은 문헌[Nucleic Acids Res. 1986.14(13):5399], 문헌[Tet. Lett. 27:5575-5578, 1986], 문헌[Nucl. Acid Res. 4:2557, 1977], 문헌[Lett., 28:2449, 1978] 등을 참조할 수 있다.
본 발명에서 발현벡터는 플라스미드, 코스미드, 파지미드, 파지 등 형태의 핵산일 수 있으며, 숙주 미생물에 따라 적합한 벡터를 상용화된 벡터 중에서 구입하여 사용하거나 구입·개조하여 사용할 수 있다. 예컨대 숙주 미생물로서 대장균을 사용할 경우 pUC19, pSTV28, pBBR1MCS, pBluscriptII, pBAD, pTrc99A, pET, pACYC184, pBR322, pJE101, pJE102,, pJE103 등을 사용할 수 있다.
재조합 DNA 기술을 포함한 발현벡터 구성에 대해서는 당업계에 상당한 양의 문헌이 축적되어 있으며, 예컨대 문헌 [Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, (2001)], 문헌[F M Ausubel et al, Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley amp; Sons, Inc. (1994)], 문헌 [Marston, F (1987) DNA Cloning Techniques] 등을 참조할 수 있다. 본 명세서에서 인용되는 모든 문헌은 명시적인 언급이 없더라도 본 명세서의 일부로서 간주 된다.
발현벡터는 상기 재조합 단백질 항원을 암호화하는 목적 유전자 이외에, 그 목적 유전자와 작동 가능하게 연결됨으로써 상기 목적 유전자의 전사와 번역에 영향을 미치는 조절서열을 포함한다.
이러한 조절서열에는 통상적으로 프로모터 서열, 전사종결 신호 서열(polyadenylation signal) 등이 포함된다. 여기서 "작동가능하게 연결된다"는 의미는 어떤 유전자의 전사 및/또는 번역이 영향을 받도록 연결된다는 의미이다. 예컨대 어떠한 프로모터가 그것에 연결된 어떤 유전자의 전사에 영향을 준다면 그 프로모터와 그 유전자는 작동가능하게 연결된 것이다.
본 명세서에서 "프로모터"는 당업계에 알려진 통상의 의미를 따르는데, 구체적으로는 어떤 유전자의 전사 개시점을 기준으로 상위(5'쪽)에 위치하고, DNA-의존 RNA 중합효소에 대한 결합 부위, 전사 개시점, 전사 인자 결합 부위 등을 포함하는, 하나 이상의 유전자의 전사를 제어하는 기능을 갖는 핵산 서열을 의미한다. 이러한 프로모터는 그것이 원핵생물 유래일 경우 전사 개시점 상위에 있는 Prib-now box(통상 전사 개시점(+1) -10 부근 위치), Hogness box(통상 전사 개시점(+1) -35 부근 위치)를 포함하며, 그것이 진핵생물 유래일 경우 전사 개시점 상위에 있는 TATA 박스(통상 전사 개시점(+1) -20 내지 -30 위치에 존재), CAAT 박스(통상 전사 개시 부위와 비교하여 대략 -75 위치에 존재), 인핸서, 전사 억제 인자 등을 포함한다.
프로모터는 그것에 연결된 목적유전자를 발현시킬 수 있는 프로모터라면 구성적 프로모터(특정 유기체에서 상시적으로 발현을 유도하는 프로모터), 유도성 프로모터(특정 외부 자극에 반응하여 목적 유전자의 발현을 유도하는 프로모터) 모두 사용 가능하며, 바람직하게는 특정 숙주 미생물에 적합한 프로모터를 사용하는 경우이다. 예컨대 대장균을 숙주 미생물로 사용할 경우 T7A1, T7A2, T7A3, λpL, λpR, lac, lacUV5, trp, tac, trc, phoA, rrnB, 1PL 등의 프로모터, 숙주 미생물로서 효모를 사용할 경우 GAL1, GAL10, ADH1, TDH3, PGK 등의 프로모터를 사용하는 것이 바람직할 수 있다.
상기 발현벡터는 프로모터 이외에 전사 종결 서열인 터미네이터 서열을 포함하여 구성되는데, 터미네이터 서열은 poly(A) 첨가 신호(polyadenylation signal)로 작용하는 서열로서 전사의 완결성 및 효율성을 높이기 위한 것이다. 숙주 미생물에 따라 적합한 터미네이터 서열은 당업계에 공지되어 있으며, 예컨대 숙주 미생물이 대장균일 경우 tac 터미네이터 서열, rrnB 터미네이터 서열 등을 사용할 수 있고, 숙주 미생물이 효모일 경우 ADH1 터미네이터 서열 등을 사용할 수 있다.
상기 발현벡터는 선별 마커 유전자를 추가로 포함할 수 있다. 선별 마커 유전자는 그러한 마커 유전자를 포함하는 숙주 미생물의 선별을 가능하게 하는 형질을 암호화하는 유전자로서 일반적으로는 항생물질 내성 유전자이다. 사용 가능한 항생물질 내성 유전자의 예로는 퓨로마이신 내성 유전자(예컨대 Streptomyces alboniger로부터 유래된 퓨로마이신 N-아세틸 트랜스퍼라제 유전자), 네오마이신 내성 유전자(예컨대 Streptomyces fradiae로부터 유래된 아미노글리코사이드 포스포트랜스퍼라제 유전자), 하이그로마이신 내성 유전자(Streptomyces hygroscopicus 로부터 유래된 하이그로마이신 포스포트랜스퍼라제 유전자), 블레오마이신 내성 유전자(Streptomyces verticillus로부터 유래된 블레오마이신 결합 단백질), 블라스티시딘 내성 유전자(예컨대 Streptomyces verticillum로부터 유래된 블라스티시딘 S-아세틸트랜스퍼라제 유전자), 하이그로마이신 내성 유전자(예컨대 Escherichia coli로부터 유래된 아미노사이클리톨 포스포트랜스퍼라제 유전자), 암피실린 내성 유전자(β-락타마제 유전자) 등을 들 수 있다.
본 발명의 방법에 있어서, 발현벡터는 또한 목적유전자의 용이한 클로닝을 위해서 제한효소 인식 부위(restriction enzyme recognition site)를 포함할 수 있다.
본 발명의 방법에 있어서, 상기 (a) 단계의 발현벡터를 제작한 후에는 이를 숙주 미생물에 형질전환시키는 (b) 단계가 수행되게 된다.
형질전환은 목적 유전자가 도입됨에 의한 숙주 미생물의 유전자형의 변형을 의미하는데, 그 도입된 왜래 유전자는 숙주 미생물의 게놈과 독립적으로 존재하거나 숙주 유기체의 게놈에 통합되어 존재할 수 있다.
상기 발현벡터를 숙주 미생물에 형질전환시키는 방법도 당업계에 공지되어 있으며, 공지된 방법 중 임의의 방법을 선택하여 사용할 수 있는데, 예컨대 숙주 미생물이 대장균 등 원핵세포인 경우, 형질전환은 CaCl2 방법, 하나한 방법, 전기 천공 방법, 칼슘 포스페이트 침전법 등을 사용할 수 있고, 숙주 미생물이 효모 등 진핵세포인 경우에, 미세 주입법, 칼슘 포스페이트 침전법, 전기 천공법, 리포좀-매개 형질감염법, DEAE-덱스트란 처리법, 유전자 밤바드먼트 등을 사용할 수 있다. 형질전환 방법과 관련하여 구체적인 사항은 문헌(Proc Natl Acad Sci U S A. 1972.69(8):2110), 문헌(J Mol Biol. 1983.166(4):557)), 문헌(Nucleic Acids Res. 1988.16(13):6127) (Cell. 1980.22(2 Pt 2):479), 문헌(Virology. 1973.52(2):456), 문헌(EMBO J. 1982;1(7):841)), 문헌(Gene. 1980.10(2):87), 문헌(Mol Cell Biol. 1985.5(5):1188), 문헌(Proc Natl Acad Sci U S A. 1990.87(24):9568)) 문헌(Maniatis et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1982)) 문헌(J Biol Chem. 1980.255(24):12073)), 문헌(Mol Microbiol. 1988.2(5):637) 등을 참조할 수 있다.
본 발명의 방법에서 형질전환에 사용될 수 있는 숙주 미생물은 원핵세포 또는 진핵세포일 수 있다. 원핵세포로서는 그람-양성 세균과 그람-음성 세균 모두 사용할 수 있다. 구체적으로 에세리키아(Escherichia) 속 세균을 포함하여 살모넬라(Salmonella) 속 세균, 쉬겔라(Shigella) 속 세균, 엔테로박터(Enterobacter) 속 세균, 세라티아(Serratia) 속 세균, 에르위니아(Erwinia) 속 세균, 세라티아(Serratia) 속 세균, 슈도모나스(Pseudomonas) 속 세균, 카울로박터(Caulobacter) 속 세균, 시네코시스티스(Synechocystis) 속 세균(예컨대 시네코시스티스 종 PCC 6803 또는 시네코콕코스 종 PCC 6301), 시네코콕코스(Synechococcus) 속의 세균, 바실러스 속의 세균(예컨대 Bacillus brevis, Bacillus subtilis, Bacillus thuringienesis 등), 락토콕코스(Lactococcus) 속의 세균(예컨대 Lactococcus lactis), 스트렙토마이세스(Streptomyces) 속 세균(예컨대 Streptomyces lividans, Streptomyces ambofaciens, Streptomyces fradiae, Streptomyces griseofuscus), 로도콕코스(Rhodococcus) 속 세균(예컨대 Rhodococcus erythropolis), 코리네박테리움(Corynebacterium)속 세균(예컨대 Corynebacterium gluamicum), 미코박테리움(Mycobacterium) 속 세균(예컨대 Mycobacterium smegmatis) 등을 사용할 수 있다.
진핵세포로서는 효모세포, 예컨대 피키아 속 효모(예컨대 Pichia pastoris), 사카로마이세스 속 효모(예컨대 Saccharomyces cerevisiae), 한세눌라 속 효모(예컨대 Hansenula polymorpha), 클루이베로마이세스 속 효모(예컨대 Kluyveromyces lactis), 스키조사카로마이세스 속 효모(예컨대 Schizosaccharomyces pombe) 등을 사용할 수 있다.
바람직하게는 대장균(Escherichia coli)을 사용하는 경우이다. 대장균에서의 발현은 다른 발현 숙주 미생물에 비해 비용, 수율 측면에서 여러 가지 장점을 제공할 수 있다. 목적유전자의 고수율의 발현을 위해 적합한 대장균으로서 대장균 W3110, 대장균 BL21, BL21(DE3), DH1, DH4I, DH5, DH5I, DH5IF', DH5IMCR, DH10B, DHIOB/p3, DH1 IS, C600, HB101, JM101, JM105, JM109, JM110, K38, RR1, Y1088, Y1089, CSH18, ER1451, ER1647, NovaBlue, DH5α, K12 RV308, K12 C600, K-12, MG1655, HB101 균주 등을 들 수 있다. 보다 자세한 것은 문헌(Brown, Molecular Biology Labfax, Academic Press (1991))을 참조할 수 있으며, 이 문헌도 마찬가지로 본 명세서의 일부로서 간주 된다.
대장균에서 목적 단백질 기능 발휘·유지를 위해서는 단백분해효소 활성이 손상된 대장균을 숙주 미생물로 사용하는 것이 바람직할 수 있다. 구체적인 사항은 문헌(Gottesman, S., Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, California, 119-128 (1990))을 참조할 수 있다.
또 대장균에서 목적유전자의 고수율의 발현을 위해서는 목적유전자의 서열을 대장균에서 선호되는 코돈으로 최적화시켜 이용할 수도 있다. 이와 관련해서는 문헌(Nucleic Acids Res. 1992.20 Suppl:2111))을 참조할 수 있다.
본 발명의 방법에 있어서, 전술한 바와 같이 형질전환된 숙주 미생물이 얻어지면 이 숙주 미생물을 배양하여 상기 재조합 단백질 항원을 생산하게 된다.
형질전환된 숙주 미생물의 배양도 당업계에 공지된 임의의 방법을 이용할 수 있다.
세포 배양에 사용되는 배지는 형질전환된 숙주 미생물이 효율적으로 이용할 수 있는 탄소원, 질소원, 미량원소 등을 포함하는 한, 천연 배지와 합성 배지 모두를 사용할 수 있다. 만일 숙주세포로서 동물세포를 사용할 경우, 예컨대 Eagles's MEM (Eagle's minimum essential medium, Eagle, H. Science 130:432(1959)), α-MEM (Nat New Biol. 1971.230(10):52)), Iscove's MEM (J Exp Med. 1978.147(3):92), DMEM (Virology. 1959.8(3):396)) 등을 사용하는 것이 바람직할 수 있다. 배지에 대해서 구체적인 것은 문헌 [R. Ian Freshney, Culture of Animal Cells, A Manual of Basic Technique, Alan R. Liss, Inc., New York]를 참조할 수 있다.
목적 단백질의 분리·정제 방법도 당업계에 공지되어 있으며, 공지된 임의의 방법을 이용할 수 있다. 예컨대 한외 여과, 겔 여과, 이온 교환 크로마토그래피, 친화도 크로마토그래피(표지 펩티드가 결합된 경우), HPLC, 소수성 크로마토그래피, 등전점 크로마토그래피 등의 방법이나 이들을 조합하는 방법이 사용될 수 있다.
DNA 재조합 기술에 의한 본 발명의 목적 단백질의 생산에 대해서는 본 명세서의 기재 내용 이외에 문헌[Sambrook 등, Molecular Cloning A Laboratory Mannual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, US(1989)], 문헌[Ausubel 등, Current Protocols in Molecular Biology, Jon Willey & Sons, US(1993)], 문헌[Sambrook, J. & Russel, D. 저, Molecular Cloning, A LABORATORY MANUAL, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001년 1월 15일 발행의 제1권 7.42 내지 7.45, 제2권 8.9 내지 8.17] 등을 참조할 수 있다.
다른 측면에 있어서, 본 발명은 상기 재조합 단백질 항원을 활성성분으로 포함하는 백신 조성물에 관한 것이다.
본 명세서에서, "백신"은 숙주인 사람에게서 해당 병원체에 대한 면역 반응을 유도함으로써 해당 병원체의 감염 또는 재감염의 예방, 해당 병원체에 의한 증상의 중증도 감소 또는 증상의 제거, 또는 해당 병원체나 그 병원체 의한 질환의 실질적 또는 완전한 제거를 포함하는 의미이다. 따라서 본 발명의 백신 조성물은 해당 병원체의 감염 전에 예방적으로 사람에게 투여되거나 해당 병원체의 감염 후에 치료적으로 사람에게 투여될 수 있다. 여기서 상기 "면역 반응"은 체액성 면역 반응, 세포성 면역 반응 또는 이들을 모두 포함하는 의미이다.
또 본 명세서에서, "활성성분"은 단독으로 면역 반응을 유도하거나 또는 그 자체로는 면역 반응을 유도할 수 없는 담체와 함께 면역 반응을 유도할 수 있는 성분을 의미한다. 따라서 활성성분은 스스로가 반드시 면역원성(면역 반응을 유도할 수 있는 능력)을 가질 필요는 없다. 본 발명에서 상기 활성성분은 필수적이지는 않지만 정제된 것이 바람직하다. 여기서 "정제된"은 그 대상 물질이 존재하는 원래의 유기체(즉 본 발명에서는 형질전환된 미생물)의 세포 성분 또는 그 배상액 성분 등(오염물임)이 실질적으로 감소되었거나 제거된 상태를 의미한다. 오염물이 실질적으로 감소되었거나 제거된 상태는 순도가 50% 이상, 바람직하게는 90% 이상, 더 바람직하게는 99% 이상을 의미한다. 순도는 크로마토그래피, 겔 전기영동, 면역학적 분석 등 당업계에 공지된 방법을 통하여 평가될 수 있으며, 정제 방법도 후수하는 바와 같이 당업계에 공지된 방법을 이용할 수 있다.
또 본 명세서에서, 상기 "쯔쯔가무시 균"은 오리엔티아 쯔쯔가무시로 분류·동정된 모든 미생물을 포함하는 의미이다. 구체적으로는 길리엄(Gilliam) 혈청형, 카프(Karp) 혈청형, 카토(Kato) 혈청형 및 보령(Boryoung) 혈청형을 포함하는 의미이다.
본 발명의 백신 조성물은 임의의 적절한, 약학적으로 허용되는 제제로 제조될 수 있다. 예컨대 즉석 투여 용액 또는 현탁액 형태이거나, 투여 전 희석에 적절한 농축된 원액이거나, 또는 재구성 가능한 형태 예컨대 동결건조, 냉동-건조, 또는 냉동 제제 형태로 제조될 수 있다.
본 발명의 백신 조성물은 약학적으로 허용되는 담체를 포함하여 제제화될 수 있다. 백신 조성물의 제제화를 위하여 사용될 수 있는 약학적으로 허용되는 담체는 대한민국 약전이나 제외국의 약전 특히 미국, 일본, 유럽의 약전에 열거·규정되어 있으며, 이들 약전을 참조할 수 있다.
이러한 담체는 통상 희석제, 부형제, 안정화제, 방부제 등을 포함할 것이다. 적절한 희석제로서는 프로필렌 글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브유, 땅콩유와 같은 식물성유 등의 비수성 용매나 염수(바람직하게는 0.8%의 염수), 완충 매질을 포함한 물(바람직하게는 0.05M의 인산염 완충액) 등의 수성 용매 등을 들 수 있고, 적절한 부형제로서는 전분, 글루코스, 락토스, 수크로스, 젤라틴, 맥아, 쌀, 밀가루, 백악, 실리카 겔, 나트륨 스테아레이트, 글리세롤 모노스테아레이트, 활석, 나트륨 클로라이드, 무수 탈지유, 글리세롤, 프로필렌, 글리콜, 물, 에탄올 등을 들 수 있으며, 적절한 안정화제로서는 소르비톨, 만니톨, 전분, 수크로스, 덱스트란, 글루타메이트, 글루코스 등의 탄수화물이나 분유, 혈청 알부민, 카제인 등의 동물성, 식물성 또는 미생물성 단백질 등의 단백질을 들 수 있다. 적절한 방부제로서는 티메로살, 메르티올레이트, 젠타마이신, 네오마이신, 니스타틴, 암포테리신 B, 테트라사이클린, 페니실린, 스트렙토마이신, 폴리믹신 B 등을 들 수 있다.
본 발명의 백신 조성물은 항원 보조제(adjuvant)를 추가로 포함할 수 있다. 항원 보조제는 항원에 대한 면역 반응을 증강시키는 하나 이상의 물질로 이루어진 것일 수 있다. 보조제는 항원을 서서히 방출시키는 조직 저장소로서 및/또는 면역 반응을 비특이적으로 증강시키는 임파성 시스템 활성자로서 기능할 수 있다(Hood et al., Immunology, Second Ed., 1984, benjamin/Cummings: Menlo Park, California, p.384). 항원 보조제는 예컨대 완전 프로인트(Freund), 불완전 프로인트, 사포닌, 겔 성상의 알루미늄 보조제, 표면 활성 물질(예: 리소레시틴, 플루론 글리콜, 다중 음이온, 펩티드, 오일 또는 탄화수소 에멀젼 등), 식물성 오일(면실유, 땅콩유, 옥수수유 등), 비타민 E 아세테이트 등일 수 있다.
현재 인체에 적용 가능한 항원 보조제 중에서 가장 널리 사용되고 있는 것은 알루미늄 보조제이며, 이러한 알루미늄 보조제는 인산알루미늄(Aluminum phosphate), Potassium aluminum sulfate, 수산화 알루미늄(Aluminum hydroxide) 등 알루미늄 염(Aluminium salts)의 겔 성상으로 사용되고 있다. 이러한 알루미늄 보조제는 일반적으로 Th2-type의 면역반응을 이끌어내어 백신 효과를 증강시키는 것으로 알려져 있다(Vaccine. 2007.25(23):4575; Pharm Res. 2004.21(9):1519) 본 발명의 실시예에서 사용한 Invivogen사의 Alhydrogel®은 수산화 알루미늄(Aluminium hydroxide)의 겔 형태 현탁액(colloidal)이다. 이러한 알루미늄 보조제는 그 제조 방법이 당업계에 공지되어 있어(Immunological Adjuvants and Vaccines. NATO ASI Series. 1989.179:35-41; Pharm Biotechnol. 1995.6:141; Methods in Molecular Medicine. 2000.42:65) 직접 제조하여 사용하거나, 상업적으로 유통되는 제품을 구입하여 사용할 수도 있다. 상업적으로 유통되는 제품으로서는 아래의 실시예에서 사용된 Invivogen사의 Alhydrogel® 2% 제품을 비롯하여 Sigma사의 Aluminum hydroxide Gel 제품, BRENNTAG사의 Alhydrogel™ 제품 등을 들 수 있다.
본 발명의 백신 조성물은 임의적 단위 용량으로 제조될 수 있다. 단위 용량은 사람에 1회 이상 투여되기 위한 용도로 포장된 낱개의 제품에 포함된 활성성분과 약학적으로 허용되는 담체의 양을 말하는 것으로, 이러한 활성성분과 담체의 적절한 양은 본 발명의 백신 조성물이 1회 이상 접종될 때 백신으로서 기능할 수 있는 양으로 이러한 양은 당업자의 통상의 능력 범위 내에서 비임상적 및 임상적으로 결정될 수 있다.
본 발명의 백신 조성물은 바람직하게는 비경구적으로 예컨대 직장, 경피, 정맥 내 주사, 동맥 내 주사, 근육 내 주사, 피 내 주사, 피하 주사, 복막 내 주사, 심실 내 주사 등을 통해 투여될 수 있다.
본 발명의 백신 조성물은 조절 방출 시스템으로 투여될 수 있다. 예컨대 그러한 조절 방출 시스템으로서는 리포좀, 이식 삼투성 펌프, 경피 패치 등의 방식 등을 들 수 있다. 바람직하게는 리포좀 방식으로 활성성분을 전달하는 경우이다. 리포좀 방식에 의해 활성성분을 전달하는 것과 관련해서는 문헌[Science. 1990.249(4976):1527)], 문헌[Treat at al., in Liposomes in the Therapy of Infectious Disease and Cancer, Lopez-Berestein and Fidler (des.), Liss, New York, pp. 353-365 (1989)] 등을 참조할 수 있다. 여타의 활성성분의 전달 방식과 관련해서는 문헌 [Crit Rev Biomed Eng. 1987.14(3):201], 문헌[Surgery. 1980.88(4):507], 문헌[N Engl J Med. 1989.321(9):574], 문헌[Controlled Drug Bioavailability. Drug Product Design and Performance, Smolen and Ball (eds.), Wiley, New York (1984)], 문헌[Ranger and Peppas, J. Macromol. Sci. Rev. Macromol. Chem. 23:61 (1983)], 문헌[During et al., Ann. Neurol. 25:351 (1989)], 문헌[J Neurosurg. 1989.71(1):105)] 등을 참조할 수 있다. 이들 문헌은 본 명세서의 일부로서 간주된다.
본 발명의 백신 조성물의 투여량은 의료인에 의해 나이, 체중, 성별, 증상, 합병증, 다른 질환의 이환 유무 등의 환자 특성을 고려하여 결정될 수 있다.
또한 투여의 시간적 간격과 횟수는 사용되는 제형이나 활성성분의 혈중 반감기 등을 고려하여 결정될 수 있다.
이처럼 투여량과 투여의 시간적 간격이나 횟수는 의료인의 판단에 따라 좌우되고 개인에 따라 결정되어야 하지만, 통상의 적절한 투여량은 1일 기준 개인 체중 1kg당 약 0.1 내지 10mg 범위 내에서 결정될 것이고 투여 간격은 3 내지 10일, 투여 횟수는 1 내지 5회 범위 내에서 결정될 것이다.
다른 측면에 있어서, 본 발명은 상기 재조합 단백질 항원을 포함하는 쯔쯔가무시 균의 특이 항체 검출용 조성물에 관한 것이다.
본 발명의 검출용 조성물은 생체 시료 중의 쯔쯔가무시 균의 특이 항체, 특히 ScaA 항원 대한 특이 항체를 검출하기 위한 것으로, 본 발명의 조성물은 생체 시료와 접촉하여 그 반응 정도를 측정함으로써 쯔쯔가무시 균의 감염자와 비감염자를 구분하기 위한 용도로 사용될 수 있다. 특히 쯔쯔가무시병의 발병 위험 기간 동안 쯔쯔가무시병과 동일·유사한 증상을 보이는 환자가 쯔쯔가무시 균의 감염자인지 또는 비감염자인지를 구분하기 위한 용도로 유용하게 사용될 수 있다.
본 명세서에서, "특이적 결합"이란 쯔쯔가무시 균에 대한 특이 항체, 특히 ScaA 항원 대한 특이 항체에 특이적으로 결합하는 상기 재조합 단백질 항원이 그 항체와만 결합하고 다른 단백질과는 실질적으로 결합하지 않는 경우를 의미한다. 여기서 "실질적으로"란 정도는 낮지만 비특이적인 결합체는 형성될 수 있다는 것을 의미하는데, 이러한 비특이적 결합은 후술하는 바와 같이 특이적 결합의 검출 이전에 세척 용액에 의하여 세척·제거될 수 있다.
또 본 명세서에서, "생체 시료"는 쯔쯔가무시 균에 대한 특이 항체, 특히 ScaA 항원 대한 특이 항체가 존재할 수 있는 시료로서 혈액, 혈청, 혈장, 타액, 눈물, 점액, 콧물, 질 분비물 등을 포함하며, 바람직하게는 혈청이다. 그것은 항체는 혈청 중에 높은 농도로 존재한다는 것이 당업계에 알려져 있기 때문이다.
본 발명의 조성물은 상기 재조합 단백질 항원이 그 가용성 용액 예컨대 탄산염 완충용액 또는 중탄산염 완충용액에 용해된 형태이거나 동결건조된 형태일 수 있다.
한편 본 발명의 조성물은 지지체에 고정되어 사용될 수 있으며, 사용될 수 있는 고체 지지체로는 예컨대 입자(수지 비드, 자기 비드, 금속 미립자, 금 콜로이드 등), 기판(마이크로 타이터 플레이트, 유리 기판, 실리콘 기판, 수지제 기판, 전극 기판, 막 등) 등을 들 수 있으나 이에 한정되는 것은 않는다. 지지체의 재료로서는 (i) 유리, 석영 유리, 알루미나, 사파이어, 포스테라이트(forsterite), 산화규소 등의 무기 재료나 (ii) 폴리에틸렌, 폴리비닐아세탈, 아크릴 수지, 폴리카보네이트, 페놀 수지, 우레아 수지, 에폭시 수지, 멜라민 수지, 실리콘 수지, 폴리페닐렌옥시드, 폴리술폰, 폴리에틸렌글리콜, 아가로스, 아크릴아미드, 니트로셀룰로오스, 나일론, 라텍스 등의 유기 재료가 사용될 수 있다.
본 발명의 조성물을 지지체에 고정하는 방법은 흡착(예컨대 코팅)에 의해서 직접적으로 고정될 수 있으며, 단백질과 지지체 모두에 결합하는 링커 등을 사용하여 간접적으로 고정될 수도 있다.
본 발명의 조성물을 지지체에 흡착시켜 사용할 경우, 이러한 흡착은 예컨대 pH 9.5인 0.06M 탄산염 완충용액 또는 중탄산염 완충용액으로 본 발명의 조성물을 희석하고 그 희석액을 지지체에 일정온도에서 일정시간 접촉시킴으로써 이루어질 수 있다. 여기서 흡착에 필요한 시간과 온도는 충분한 흡착이 이루어지는 한 특별한 제한이 없는데, 예컨대 4℃에서 흡착이 이루어질 경우 72시간 동안 수행될 수 있으며, 또한 예컨대 37℃에서 흡착이 이루어질 경우 2시간 동안 수행될 수 있다. 흡착된 후에는 증류수나 에탄올 등으로 세척할 수 있으며, PBS 등의 용액에 함유된 소 혈청 알부민(BSA) 등의 차단제로 코팅할 수도 있다. 차단제로 코팅한 후에는 증류수나 차단제를 함유하지 아니한 완충용액 등으로 세척할 수도 있다.
지지체에 흡착된 본 발명의 조성물(구체적으로 그 조성물에 포함된 상기 재조합 단백질 항원을 말함)은 지지체에 생체 시료를 처리할 경우 그 생체 시료 중의 쯔쯔가무시 균에 대한 특이 항체 특히 ScaA에 대한 특이 항체와 결합체를 형성하게 된다. 결합체를 형성을 유도한 후에는 비특이적으로 결합된 항체 등을 제거하거나 오염물질 등을 제거하기 위하여 Tween 20과 같은 세척 완충액이나 증류수 등의 세척제로 세척하는 것이 바람직할 수 있다.
상기 결합체는 다양한 방법을 통하여 검출함으로써 생체 시료 중의 쯔쯔가무시 균에 대한 특이 항체 특히 ScaA에 대한 특이 항체 존재 유무 및/또는 존재 정도를 정성적·정량적으로 확인할 수 있다. 이는 결과적으로 피검자가 쯔쯔가무시 균에 감염되었는지에 대해 유용한 정보를 제공하게 될 것이다.
상기 결합체는 검출제를 사용하여 검출할 수 있는데, 검출제는 예컨대 쯔쯔가무시 균에 대한 특이 항체 특히 ScaA에 대한 특이 항체와 결합하는 2차 항체일 수 있다. 2차 항체의 예로서는 항체(일차 항체)의 Fc 부분을 인식하는 것일 수 있으며, 이러한 2차 항체는 Fc 부분을 조류(예를 들면, 닭 등), 포유 동물(예를 들면, 토끼, 염소, 말, 양, 쥐 등) 등의 동물에 면역화시켜 그 동물의 혈액으로부터 분리·정제하여 얻어질 수 있다.
2차 항체는 검출 시그널을 제공하는 표지(label)나 효소와 접합됨으로써 검출을 편리하게 할 수 있다.
표지 접합은 검출 시그널을 제공할 수 있는 임의의 표지를 항체에 결합시키는 것이다. 그러한 표지로서는 트리티움, 요오드(131I,125I,123I,121I), 인(32P), 황(35S), 금속류(예를 들면, 68Ga, 67Ga, 68Ge, 54Mn, 99Mo, 99Tc, 133Xe 등) 등의 방사성 동위원소, 플루오레세인이소티오시아네이트, 테트라메틸로다민이소티오시아네이트, 치환 로다민이소티오시아네이트, 디클로로트리아진이소티오시아네이트, 알렉사(Alexa) 또는 알렉사플루오로(AlexaFluoro) 등의 형광성 물질 또는 형광단 등을 들 수 있다.
효소 접합은 항체에 퍼옥시다제(POD), 알칼리포스파타제, β-갈락토시다제, 우레아제, 카탈라제, 글루코스옥시다제, 락트산 탈수소 효소, 아밀라제 또는 비오틴-아비딘 복합체 등의 효소 등을 결합시키는 것으로, 이들 효소는 특정 기질과 반응할 경우 특정 검출 시그널을 제공한다. 예컨대 퍼옥시다제는 아미노살리실산과 과산화수소 또는 p-페닐렌디아민과 과산화수소와 반응하는 경우 자주색을 나타내며, 알칼리성 포스파타제는 디니트로페닐포스페이트와 반응하는 경우 황색을 나타내고, β-갈락토시다제는 O-니트로페닐-베타-D-갈락토피라노사이드와 반응하여 자주색을 나타낸다.
상기 표지나 효소는 바람직하게는 항체와 공유결합된다.
이들 2차 항체 등의 검출제를 사용하여 검출할 경우, 이들 2차 항체의 상기 결합체와의 반응 정도를 효소 면역 측정법, 형광 면역 측정법, 방사 면역 측정법, 발광 면역 측정법 등 다양한 당업계의 공지·관용된 면역학적 측정 방법을 사용하여 측정할 수 있다. 바람직하게는 효소 면역 측정법, 가장 바람직하게는 ELISA(enzyme-linked immunosorbent assay)를 사용하는 경우이다.
본 발명의 또 다른 측면에 있어서, 쯔쯔가무시 균 감염 여부 진단에 유용한 정보를 제공하기 위한 방법에 관한 것이다.
본 발명의 방법은 전술한 바의 생체 시료 중에 있는 쯔쯔가무시 균 특이 항체의 검출 방법과 동일한 단계를 포함하여 구성되며, 따라서 그 검출 방법에 대한 설명이 본 발명의 방법에 그대로 유효하다.
본 발명은 전술한 바와 같이, 쯔쯔가무시 균 감염 여부 등의 진단과 그 쯔쯔가무시 균에 대한 백신으로 유용하게 사용할 수 있는, ScaA 및 TSA56 항원 보존 부위 서열로부터 도출한 신규 재조합 단백질 항원을 제공할 수 있다.
본 발명의 신규 재조합 단백질 항원은 유전형 차이에 따른 방어 면역 유도능의 차이와 진단력의 차이를 극복할 수 있는 백신 조성물과 진단 조성물을 제공할 수 있을 것으로 기대된다.
도 1은 정제된 cScaA_F4-ucTSA56_V2재조합 단백질의 쿠마시 블루 염색 결과이다.
도 2는 쯔쯔가무시균 감염에 후 면역된 생쥐들의 생존율 분석 결과이다.
이하 본 발명을 실시예를 참조하여 설명한다. 그러나 본 발명의 범위가 이러한 실시예에 한정되는 것은 아니다.
<실시예> 시료 준비
<실시예1> ScaA의 보존블럭(conserved blocks) 동정
미국립생물정보학센터(National Center for Biotechnology Information)의 유전자서열 데이터베이스에서 15개의 ScaA 유전자 아미노산서열을 수집하였다[표 1]. 수집된 서열정보를 단백정렬 프로그램(Muscle program embedded in MEGA7 software)을 이용하여 정렬(Align) 하였다. 분류에 사용된 유전그룹 및 유전자형(genogroups, genotypes)은 TSA56 유전자 정보에 기반하여 결정되었다(PLoS Negl Trop Dis. 2017.11(3):e0005408).
15개 유전자들이 공통으로 보유하는 아미노산 서열이 보존된 구간을 정의하기 위하여 각 아미노산 서열위치에서 나타나는 변이의 수와 연속된 10개의 아미노산구간 서열에 나타나는 유전자간 변이의 평균값을 계산하였다. 그리고 전체 아미노산 서열 변이의 평균값보다 낮은 아미노산 서열이 10개 이상 이어진 13개의 보존블럭들(Conserved blocks;CB)을 규정하였다. 15개 유전자에서 확인된 13개 보존블럭 중 보존부위 13은 autotransporter domain을 포함하므로 제외하였으며 나머지 12개의 보존서열(consensus sequences)들의 위치와 아미노산 서열은 [표 1]에 나타내었다.
Conserved Blocks (CB) Amino acid position Amino acid sequence 서열번호
CB1 1 - 74 MKNSRKISLIFFTTLFTISNITITQTADNDPSASSSSSGGFTGSGASQSNNTTESSNDNQGDTGSGATSNPSNP 서열번호 1
CB2 139 -149 SNPSNPIEGAS 서열번호 2
CB3 179 - 214 GKKPKKSPFKKLKEFGSTLSLSGHTKPEEPSEGATG 서열번호 3
CB4 228 - 252 KQLASSTLSLSSTTPEEPKAPIVLS 서열번호 4
CB5 333 - 370 SDLKPTSPITSSVSMPNLSDTDVSSSSSPPTRRSSSII 서열번호 5
CB6 378 - 393 FDLSFFSSTTHGGKTE 서열번호 6
CB7 406 - 424 FVVQSPTIVSSDLKICGNI 서열번호 7
CB8 720 - 733 GGKIIVRNNGTLTH 서열번호 8
CB9 810 - 819 SQGSYSGNIG 서열번호 9
CB10 830 - 854 LLPKSKRPSLIEVEGSVHTNQCSIS 서열번호 10
CB11 909 - 941 KSKKGSSTNPEKFKKKPVTVFSINYTTNSDGTV 서열번호 11
CB12 1019 - 1103 FAGLVDKKKKDKGDDGASSSSGSSSVAPSARVSPEVSDDEEGGKGEDIQASTVSHLHSKDSAHSEQSQDKDHTEDPEDPTEAAIE 서열번호 12
쯔쯔가무시균 보령균주의 ScaA 단백질(Genbank accession no. WP_011944269)에서 보존블럭 8 ~ 12(CB8 ~12)을 포함하는 cScaA_F4를 선정하였으며, 이에 해당하는 아미노산 서열 정보는 [표 2]에 나타내었다
ScaA fragment Amino acid sequence
cScaA_F4
(서열번호13)
MKLFISYDKSVNKSSIFCSDIIFSHPEDTINILGNTDIKGNIGTKGNSGGKIIVRNNGTLTHSGGDIGNNKTSNSNSLQALLLCENASFISKPDSNSIPYTCNIKEITADKNSNIELNSNADWKTNIIPVGTGATVTMSQGSYSGNIGTKEKPMANVTLLPKSKRPSLIEVEGSVHTNQCSISDKSSAKGEVMLLGDYTVTAQTSDGSGSINVGNAKINLGLNTLTLASDNIIILGHKSKKGSSTNPEKFKKKPVTVFSINYTTNSDGTVKTQGKLKLSKYHDPNNKIIVNVNHQGDLRDLSKHGTQTVIQPVDIADTGGLNISNLVYICDGKCKWQLVPGSDGKFVFAGLVDKKKKDKGDDGASSSSGSSSVAPSARVSPEVSDDEEG
<실시예2> TSA56의 보존블럭(conserved blocks) 동정
미국립생물정보학센터(National Center for Biotechnology Information)의 염기서열 데이터베이스에서 1030개의 TSA56 유전자 염기서열을 수집하고, 이들 중에서 전체 TSA56 단백질을 암호화하는 부위의 85% 이상을 포함하고 있는 324개의 서열 중 206개의 유전자 서열을 선발하였다(미국립생물정보학센터에서 등재된 TSA56 유전자 서열 중에는 ORF 전체를 포함하는 서열과 그 일부만을 포함하는 서열이 존재하며, 따라서 이들 유전자 서열 중에서 해당 균주의 전장의 TSA 단백질 아미노산 서열과 비교하여 85% 이상의 아미노산 서열을 암호화하는 부위를 포함하는 유전자를 선발한 것임).
선발된 206개의 TSA56 유전자들을 아미노산 서열로 바꾸고 MAFFT 알고리즘(Multiple Alignment using Fast Fourier Transform; Molecular biology and evolution, 2013, 30, 772-780) 프로그램을 이용하여 다중서열정렬(Align) 하였다.
206개의 유전자들의 주요 아미노산 보존서열(major consensus sequences)들부터 추론된 17개 유전형의 보존 블럭들의 아미노산 서열을 [표3]에 정리하였다.
17 genotypes Amino acid sequence 서열번호
Karp_C SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDPADADGKKHLSLTTGLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLTNIKLTPPQPTIMPISIADRDFGIDRIAWLKNCAGIDYWRHLVVGLAALSNANKPSASPVKVLSDKITQIYSDIKLPNSASVEQIQNKMQELNDVLEELRDSFDGYISNAFANQIQLNFQATAQEAVAAAAVRLLNGNDQIAQLYKDLVKLQRHAGIKKAMEKLAAQEAEFDLSMIVGQVKLYADVMTTESFS 서열번호14
Karp_B SASAIELGDEGGLECGPYGKVGIVGGMITGVESTRLDSADAEGKKRLPLTTSMPFGGTLAAGMTIAQGFRAELGVMYLTNIKLTPPQPTIMPISIADRDFGIDRIAWLKNYAGIDYWRHLVVGLAALSNANKPSASPVKVLSDKITQIYSDVKLPNSASVEQIQNKMQELNDLLEELRESFDGYLGGNAFANQIQLNFQATAQEAVAAAAVRLLNGNDQIAQLYKDLVKLQRHAGIKKAMEKLAAQEAEFDLSMIVGQVKLYADLFITESFS 서열번호15
Karp_A SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDPADADGKKHLPLTTSMPFGGTLAAGMTIAQGFRAELGVMYLTNIKLTPPQPTIMPISIADRDFGIDRIAWLKNCAGIDYWRYLVVGLAALSNANKPSASPVKVLSDKITQIYSDIKLPNSASVEQIQNKMQELNDVLEELRESFDGYLGGNAFANQIQLNFQATAQEAVAAAAVRLLNGNDQIEQLYKDLVKLQRHAGIKKAMEKLAAQEAEFDLSMIVGQVKLYADVMITESFS 서열번호16
Staitama SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGAESARLDQADTTGKKHLPLTTSMPFGGTLNAGITITPWLRAELGVMYLRNIKLTPPQPTIMPISIADRDFAIDRVAWLKNYAGIDYWRYMVIGLAALSNANKPSDPPVKVLSDKITQIYNDIRLPNSASVEQIQNKMQELNELLEEVRDSFEGYIGGNAFANQIQLNFQATAQEAAAAAAVRLLNGNDQIVQLYKDLVKLKRHAGFKKSMDKLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLVATESFS 서열번호17
Boryong SASAIELEDEVGLECGPYAKVGVVGGMITGAESTRLDSTDSEGKKHLSLTTGLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLRNIKLTPPQPTMMPISIADRDFGIDRIAWLKNCAGIDYWRSLVVGLAALSNANKPSASPVKVLSDKIIQIYSDIKLPNSASIEQIQSKIQELGDTLEELRDSFDGYI-NNAFVNQIHLNFQATAQEAVAAAAVRLLNGSDQIAQLYKDLVKLQRHAGIRKAMEKLAAQETEFDLSMVVGQVKLYADLVTTESFS 서열번호18
JG-C SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDPADADGKKHLPLTTSMPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLRNIKLTPPQPTIMPISIADRDEGVDRIAWLKNYAGIDYWRHLVVGVTALSHANKPSVTPVKVLSDKITKIYSDIRLPNSASVEQIQAKMEELNNILEELRESFDGYLANAFANQIQLNFQVTAQDAAAAAAVRALNGNEQIIQLYKDLVKLQRHAGIRKAMEQLAVQETEFDLSMIVGQVKLYADLFTTESFS 서열번호19
Kawasaki SASAIELGDEGVLECGPYAKIGVVGGMVTGVESARLDPADVDCKKHLSLTTMLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLRNIKLTPPQPTIMPISIADRDLGVDRIAWLKNYAGIDYWRYLVVGVTALSNANKPSVSSVKVLSDKITQIYSDIRLPNSASVEQIQTKMQELNDVLEELRESFDGYLANAFANQIQLNFQVTAQEAAAAAAVRALNGNEQIIQLYKDLVKLQRHAGIRKAMEKLAAQEVELDLSMIVAQVKLYADVVATESFS 서열번호20
JG_B SASAMEFGDEGGGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDSADAGGKRYLPLTTGLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLRNIKLVPPQPTIMPISIADRDVGVDRIAWLKNYAGIDYWRHLVVGVTALSHANKPSVTPVKVLSDKITKIYSDIRLPNSASVEQIQAKMQELNNVLEELRESFEGYLANAFANQIQLNFQVTAQEAAAAAAVRALNGNEQIIQLYKDLVKLQRHAGISKAMEQLAAQETEFDLSMVVGQVKLYADLVATESFS 서열번호21
JG_A LASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDSADADGKKHLSLITGIPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLRNIKLTPPQPTIMPISIADRDVGVDRIAWLKDYAGIDYWRHLVVGVTALSHANKPSVTPVKVLSDKITKIYSDIRLPNSASVEQIQAKMQELNNVLEELRESFDGYLANAFVNQIQLNFQVTAQEAAAAAAVRALNGNEQIIQLYKDLVKLQRHAGIRKAMEQLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLFTTESFS 서열번호22
Gilliam SASAIELGEEGGLECGPYGKVGIVGGMITGAESTRLDSTDSEGKKHLSLTTGLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLRNIKLTPPQPTIMPISIADRDVGVDRIAWLKNYAGIDYWRHLVVGVTALSHANKPSVTPVKVLSDKITKIYSDIKLPNSASVEQIQSKMQELNDVLEDLRDSFDGYMGNAFANQIQLNFQATAQEAVAAAAVRLLNGNDQIAQLYKDLVKLQRHAGVKKAMEKLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLFTTESFS 서열번호23
TD SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGIITGVESARLDPADTNGKKLLPLTTSMPFGGTLAAGMTIAQGFRAELGVMYLRNIKITPPQPTIMSISIADRNAGVDRIAWLRNYAGIEYWRHLVVGVAAMSNANKPSTSAVKVLGDKISQIYCDIKLPNSASVEQIQGKMQELGDILEALRDSFEGYIANAFANQIQLNFQVTAQEAVAAAAVRALNRNEQIAQLYKDLVKLQRHAGIRKAMEKLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLMTTESFS 서열번호24
TA763_B SASAIELGDEGGLECGPYAKVGIVGGMITGAESTRLDSSDAEGKKRLSLTTSVPFGGTLAAGITIAQGFRAELGVMYLTNIKLTPPQPVIMPISTADRDMGVDRIAWLKQYAGIDYWRHLVVGIAALSNANKPSASPVKVLSDKITKIYSDIKLPNSASIEQIQRKMQELNDVLEGLRDAFDGYINNAFVDQIQLNFQATAQEAVAAAAVRLLNGNDQIVQLYKDLVKLQRHAGIKKAMEKLAAQEAEFDLSMIVGQVKLYADLMTTESFS 서열번호25
TA763_A SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESARLDPADHEGKKHLPLTTSMPFGGTLAAGMTIAQGFRAELGVMYLRNIKLTPPQPTIMPISIADRDFGVDRIAWLKEYAGIDYWRHLVVGVTALSNANKPSASPVKILSEKITQIYSDIRLPNSASVEQIQSKMQELSDLLEELRDSFDGYISNAFAGQIQLNFQATAQEAVAAAAVRLLNGNDQIAQLYKDLVKLQRHAGIRKAMEKLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLMTTESFS 서열번호26
Kato_B SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDPADAGGKKHLPLTTGLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLTNVKLTPPQPTIMPISIADRDLGVDRIAWLKNYAGIDYWRHIVVGVTAMSNANKPSVSPVKVLSDKIVQIYRDVKLPNSASVEQIQNKMQELNDILDDIRDSFDGCIGGNAFANQIQLNFQATAQEAAAAAAVRVLNNNDQIIQLYKDLVKLKRHAGIKKAMEELAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLFTTESFS 서열번호27
Kato_A SASAIELGEEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDPADVDGKKHLPLTTGLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLTNIKLTPPQPTIMPISIADRDFGVDRIAWLKEYAGIDYWRDMVVGITAMSNANKPSASPIKVLSDKISQIYDDIRLPNSASVEQIQSKMQELSETLEELRESFDGCIGNAFANQIQLDFQATVQEATAAAAVRVLNGNGQIIQLYKDLVKLKRHAGIKKAMEKLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLMTTESFS 서열번호28
Shimokashi SANAIEFDENSLECGPYAKVGIVGGVLSGVESARLDPADSEGKKHLPLIKGMPFGVTLAAGMTITPGVRAEISAMYLMNVKLTPPQPNIMPISIADRDIAVDRIAWLKNYAGIDYWRDVVVGITALSNANKPNVSAVKILSDKISQIYADIKLPDSASVDQIQNKVQELNKVLEDVRESFDGFILNAFAQPVRLNFAATAQEAAAAAAIRALNDGENNGIIQLYKDLYKLQRNVALKKSMKQLGDEEIEFDLHMAVGQVKLYADLFTIDSFS 서열번호29
TA586 SASAIELGDEGGLECGPYARVGVVGGMITGVESTRLDSTDPEGKKHLSLTTGLPFGGTLAAGMTIAPGFRAELGVMYLRNIKLTPPPAIVMPISIADRDLGVDRIAWLKEYAGIDYWRHLVVGIAALSNANKPNASPVKVLSDKISQIYKDIKLANSASVEQIQSKMQELNDILEDLRESFDGYISNAFANQIQLDFHATAQEAAAAAAVRVLNNNEQIIQLYKDLVKLKRHAGIRKAMEQLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADVFTTESFS 서열번호30
17개의 유전형에 포함된 유전자들의 7개 보존 블럭에 포함되는 아미노산 서열 중에서 가장 빈도수가 높은 각 위치의 아미노산으로 구성된 서열을 ucTSA56_V2로 하였으며, 해당 서열 정보는 [표 4]에 나타내었다.
TSA56 fragment Amino acid sequence
ucTSA56_V2
(서열번호31)
SASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDSADADGKKHAPGFRAELGVMYLTNIKLTPPQPTIMPISIADRDFGVDRIAWLKNYAGIDYWRHLVVGVTALSNANKPSVSPVKVLSDKITQIYSDIKLPNSASVEQIQNKMQELNDVLEELRDSFDGYIGNAFANQIQLNFQATAQEAAAAAAVRALNGNDQIIQLYKDLVKLQRHAGIKKAMEKLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLFTTESFSLE
<실시예3> cScaA_F4-ucTSA56_V2 발현 단백질 항원 제조
상기 <실시예1>의 cScaA_F4(이하 "F4") 및 <실시예2>의 ucTSA56_V2(이하 "V2") 각각을 암호화하는 핵산서열과, 이들의 융합 단백질인 cScaA_F4-ucTSA56_V2(이하, F4V2)을 암호화하는 핵산서열을 각각 화학적으로 합성하여 제작하고, 이들을 재조합 방법으로 제작, 분리, 정제한 후 F4와 V2의 혼합물과 F4V2을 백신 항원으로 사용하였다.
F4V2의 핵산 서열과 아미노산 서열은 아래의 [표 5]와 [표 6]에 나타내었다.
ScaA-ucTSA56 fragment Nucleic acid sequence
cScaA_F4-ucTSA56_V2
(서열번호32)
ATGAAACTGTTCATCTCTTACGACAAATCTGTTAACAAATCTTCTATCTTCTGCTCTGACATCATCTTCTCTCACCCGGAAGACACCATCAACATCCTGGGTAACACCGACATCAAAGGTAACATCGGTACCAAAGGTAACTCTGGTGGTAAAATCATCGTTCGTAACAACGGTACCCTGACCCACTCTGGTGGTGACATCGGTAACAACAAAACCTCTAACTCTAACTCTCTGCAGGCGCTGCTGCTGTGCGAAAACGCGTCTTTCATCTCTAAACCGGACTCTAACTCTATCCCGTACACCTGCAACATCAAAGAAATCACCGCGGACAAAAACTCTAACATCGAACTGAACTCTAACGCGGACTGGAAAACCAACATCATCCCGGTTGGTACCGGTGCGACCGTTACCATGTCTCAGGGTTCTTACTCTGGTAACATCGGTACCAAAGAAAAACCGATGGCGAACGTTACCCTGCTGCCGAAATCTAAACGTCCGTCTCTGATCGAAGTTGAAGGTTCTGTTCACACCAACCAGTGCTCTATCTCTGACAAATCTTCTGCGAAAGGTGAAGTTATGCTGCTGGGTGACTACACCGTTACCGCGCAGACCTCTGACGGTTCTGGTTCTATCAACGTTGGTAACGCGAAAATCAACCTGGGTCTGAACACCCTGACCCTGGCGTCTGACAACATCATCATCCTGGGTCACAAATCTAAAAAAGGTTCTTCTACCAACCCGGAAAAATTCAAAAAAAAACCGGTTACCGTTTTCTCTATCAACTACACCACCAACTCTGACGGTACCGTTAAAACCCAGGGTAAACTGAAACTGTCTAAATACCACGACCCGAACAACAAAATCATCGTTAACGTTAACCACCAGGGTGACCTGCGTGACCTGTCTAAACACGGTACCCAGACCGTTATCCAGCCGGTTGACATCGCGGACACCGGTGGTCTGAACATCTCTAACCTGGTTTACATCTGCGACGGTAAATGCAAATGGCAGCTGGTTCCGGGTTCTGACGGTAAATTCGTTTTCGCGGGTCTGGTTGACAAAAAAAAAAAAGACAAAGGTGACGACGGTGCGTCTTCTTCTTCTGGTTCTTCTTCTGTTGCGCCGTCTGCGCGTGTTTCTCCGGAAGTTTCTGACGACGAAGAAGGTTCTGCCAGCGCGATCGAACTGGGTGACGAAGGCGGTCTGGAATGTGGCCCGTATGCGAAAGTGGGCGTAGTTGGCGGCATGATTACCGGCGTCGAGTCCACCCGTCTGGATTCTGCGGATGCTGATGGTAAAAAACACGCGCCGGGCTTCCGTGCTGAACTGGGCGTGATGTACCTGACCAACATCAAGCTGACTCCGCCGCAGCCGACCATCATGCCGATCTCCATTGCCGATCGTGACTTCGGTGTTGACCGTATCGCCTGGCTGAAAAACTACGCCGGTATCGACTACTGGCGTCATCTGGTAGTAGGCGTTACCGCGCTTAGCAACGCGAATAAACCGTCCGTTTCTCCGGTAAAAGTTCTGTCAGACAAAATTACCCAGATTTACAGCGATATCAAACTGCCGAACAGCGCTTCTGTTGAACAAATCCAGAACAAAATGCAGGAGCTGAACGACGTGCTGGAAGAACTGCGCGACAGCTTCGACGGTTACATCGGCAACGCCTTTGCTAACCAGATTCAGCTGAACTTCCAGGCGACCGCTCAAGAAGCGGCAGCGGCAGCTGCTGTTCGCGCACTGAACGGTAACGATCAGATCATCCAACTGTACAAAGATCTTGTGAAACTCCAGCGTCATGCTGGCATTAAGAAAGCGATGGAGAAACTGGCGGCGCAGGAAACCGAGTTCGATCTGAGTATGATCGTGGGTCAGGTTAAACTGTATGCTGACCTGTTCACCACCGAATCTTTCTCCCTCGAGTGA
ScaA-ucTSA56 fragment Amino acid sequence
cScaA_F4-ucTSA56_V2
(서열번호33)
MKLFISYDKSVNKSSIFCSDIIFSHPEDTINILGNTDIKGNIGTKGNSGGKIIVRNNGTLTHSGGDIGNNKTSNSNSLQALLLCENASFISKPDSNSIPYTCNIKEITADKNSNIELNSNADWKTNIIPVGTGATVTMSQGSYSGNIGTKEKPMANVTLLPKSKRPSLIEVEGSVHTNQCSISDKSSAKGEVMLLGDYTVTAQTSDGSGSINVGNAKINLGLNTLTLASDNIIILGHKSKKGSSTNPEKFKKKPVTVFSINYTTNSDGTVKTQGKLKLSKYHDPNNKIIVNVNHQGDLRDLSKHGTQTVIQPVDIADTGGLNISNLVYICDGKCKWQLVPGSDGKFVFAGLVDKKKKDKGDDGASSSSGSSSVAPSARVSPEVSDDEEGSASAIELGDEGGLECGPYAKVGVVGGMITGVESTRLDSADADGKKHAPGFRAELGVMYLTNIKLTPPQPTIMPISIADRDFGVDRIAWLKNYAGIDYWRHLVVGVTALSNANKPSVSPVKVLSDKITQIYSDIKLPNSASVEQIQNKMQELNDVLEELRDSFDGYIGNAFANQIQLNFQATAQEAAAAAAVRALNGNDQIIQLYKDLVKLQRHAGIKKAMEKLAAQETEFDLSMIVGQVKLYADLFTTESFSLE
F4, V2 및 F4V2를 암호화하는 각 핵산서열을 PCR로 증폭한 후 대장균 발현벡터인 pET-28a(+)플라즈미드에 클로닝하고, Escherichia coli BL21(DE3)에 도입하였다. 이 재조합 대장균을 Kanamicin(50㎍/ml)이 함유 된 LB broth에서 OD600nm (Optical Density 600nm)의 값이 0.6-0.8에 도달 할 때까지 배양하였다. 이후, 0.1mM isopropyl β-D-thiogalactoside(IPTG)을 첨가 후, 16℃에서 18시간 동안 배양하여 단백질의 발현을 유도 하였다. 발현 유도가 끝난 균은, 10분 동안 1,000 x g의 속도로 원심분리 한 후 1mg/ml의 리소자임(lysozyme)을 포함하는 Ni-nitrilotriacetic acid (NTA) His-결합 완충액(300mM NaCl, 50 mM sodium phosphate buffer, 10mM imidazole)에 현탁 시켜 4℃에서 30분 동안 반응시켰다. 이후 얼음 위에서 5분간 초음파처리를 하였으며 이를 통해 얻어진 용해물을 1,600 x g로 4℃에서 20분간 원심 분리 하였다. 상층액을 수거하고 결합 완충액으로 미리 평형화시킨 Ni-nitrilotriacetic acid (NTA) His-결합 레진(Resin)과 4℃에서 60분 동안 반응시켰다. 레진은 50mM imidazole이 포함 된 결합 완충액으로 세척 후, 250mM imidazole이 포함된 결합 완충액으로 단백질을 정제하였다. 이후, Free imidazole을 제거하기 위하여 인산완충액(pH7.4)에 4℃에서 18시간동안 투석 (Dialysis)을 진행하였으며, 정제된 단백질의 내독소(Endotoxin)을 제거하기 위해 Endotoxin removal resin을 사용하였다. 정제된 단백질 용액의 내독소 농도가 EU<0.05/dose 수준으로 제거되는 것을 LAL(Limulus amebocyte lysate) assay을 통해 확인 하였다. 추출한 단백질은 쿠마시 블루 염색(Coomasie blue stain)으로 확인 하였으며 그 결과를 [도 1]에 나타내었다(F4V2에 대한 것만 제시되어 있음).
<실험예> 마우스 백신 후 감염 실험
상기 제조된 재조합 항원인 F4+V2 (F4와 V2의 혼합 백신, 각 5 ㎍/mouse), 그리고 F4V2 (5 ㎍/mouse) 백신 항원을 C57BL/6(6-8주령,암컷) 생쥐들(n = 5/group)에 면역보강제와 함께 피하(Subcutaneous) 주사하여 2주 간격으로 3회 면역하고, 3차 면역 2 주, 후 3가지 O. tsutsugamushi 유전형 (Boryong, Karp, Kato) 균주(각각 1000 x LD50)를 복강으로 감염시켰다. 감염 후 한달간 감염된 생쥐들의 생존율을 분석하였다 [도 2].
생존율 결과를 통계학적으로 분석하였을 때 (Survivial test, Log-rank (Mantel-Cox) Test), 모든 균주 감염 실험에서 F4V2 면역그룹이 면역을 하지않은 그룹에(Mock) 비하여 통계학적으로 유의한 생존율 향상 효과를 보였으며, F4+V2 면역그룹은 Boryong과 Karp 균주 감염에 대하여 통계학적으로 유의한 생존율 향상 효과를 나타냈다. 한편, F4V2 면역그룹은 F4+V2 면역그룹에 비하여 Karp 및 Kato 균주 감염실험에서 통계학적으로 유의한 생존율 향상효과를 보였다.
<110> CHO, NH <120> Novel Recombinant Protein Antigens of Orientia tsutsugamushi and the Vaccine Composition Using the Same <130> PP19-000 <160> 33 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 74 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB1 <400> 1 Met Lys Asn Ser Arg Lys Ile Ser Leu Ile Phe Phe Thr Thr Leu Phe 1 5 10 15 Thr Ile Ser Asn Ile Thr Ile Thr Gln Thr Ala Asp Asn Asp Pro Ser 20 25 30 Ala Ser Ser Ser Ser Ser Gly Gly Phe Thr Gly Ser Gly Ala Ser Gln 35 40 45 Ser Asn Asn Thr Thr Glu Ser Ser Asn Asp Asn Gln Gly Asp Thr Gly 50 55 60 Ser Gly Ala Thr Ser Asn Pro Ser Asn Pro 65 70 <210> 2 <211> 11 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB2 <400> 2 Ser Asn Pro Ser Asn Pro Ile Glu Gly Ala Ser 1 5 10 <210> 3 <211> 36 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB3 <400> 3 Gly Lys Lys Pro Lys Lys Ser Pro Phe Lys Lys Leu Lys Glu Phe Gly 1 5 10 15 Ser Thr Leu Ser Leu Ser Gly His Thr Lys Pro Glu Glu Pro Ser Glu 20 25 30 Gly Ala Thr Gly 35 <210> 4 <211> 25 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB4 <400> 4 Lys Gln Leu Ala Ser Ser Thr Leu Ser Leu Ser Ser Thr Thr Pro Glu 1 5 10 15 Glu Pro Lys Ala Pro Ile Val Leu Ser 20 25 <210> 5 <211> 38 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB5 <400> 5 Ser Asp Leu Lys Pro Thr Ser Pro Ile Thr Ser Ser Val Ser Met Pro 1 5 10 15 Asn Leu Ser Asp Thr Asp Val Ser Ser Ser Ser Ser Pro Pro Thr Arg 20 25 30 Arg Ser Ser Ser Ile Ile 35 <210> 6 <211> 16 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB6 <400> 6 Phe Asp Leu Ser Phe Phe Ser Ser Thr Thr His Gly Gly Lys Thr Glu 1 5 10 15 <210> 7 <211> 19 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB7 <400> 7 Phe Val Val Gln Ser Pro Thr Ile Val Ser Ser Asp Leu Lys Ile Cys 1 5 10 15 Gly Asn Ile <210> 8 <211> 14 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB8 <400> 8 Gly Gly Lys Ile Ile Val Arg Asn Asn Gly Thr Leu Thr His 1 5 10 <210> 9 <211> 10 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB9 <400> 9 Ser Gln Gly Ser Tyr Ser Gly Asn Ile Gly 1 5 10 <210> 10 <211> 25 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB10 <400> 10 Leu Leu Pro Lys Ser Lys Arg Pro Ser Leu Ile Glu Val Glu Gly Ser 1 5 10 15 Val His Thr Asn Gln Cys Ser Ile Ser 20 25 <210> 11 <211> 33 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB11 <400> 11 Lys Ser Lys Lys Gly Ser Ser Thr Asn Pro Glu Lys Phe Lys Lys Lys 1 5 10 15 Pro Val Thr Val Phe Ser Ile Asn Tyr Thr Thr Asn Ser Asp Gly Thr 20 25 30 Val <210> 12 <211> 85 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> CB12 <400> 12 Phe Ala Gly Leu Val Asp Lys Lys Lys Lys Asp Lys Gly Asp Asp Gly 1 5 10 15 Ala Ser Ser Ser Ser Gly Ser Ser Ser Val Ala Pro Ser Ala Arg Val 20 25 30 Ser Pro Glu Val Ser Asp Asp Glu Glu Gly Gly Lys Gly Glu Asp Ile 35 40 45 Gln Ala Ser Thr Val Ser His Leu His Ser Lys Asp Ser Ala His Ser 50 55 60 Glu Gln Ser Gln Asp Lys Asp His Thr Glu Asp Pro Glu Asp Pro Thr 65 70 75 80 Glu Ala Ala Ile Glu 85 <210> 13 <211> 389 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> cScaA_F4 <400> 13 Met Lys Leu Phe Ile Ser Tyr Asp Lys Ser Val Asn Lys Ser Ser Ile 1 5 10 15 Phe Cys Ser Asp Ile Ile Phe Ser His Pro Glu Asp Thr Ile Asn Ile 20 25 30 Leu Gly Asn Thr Asp Ile Lys Gly Asn Ile Gly Thr Lys Gly Asn Ser 35 40 45 Gly Gly Lys Ile Ile Val Arg Asn Asn Gly Thr Leu Thr His Ser Gly 50 55 60 Gly Asp Ile Gly Asn Asn Lys Thr Ser Asn Ser Asn Ser Leu Gln Ala 65 70 75 80 Leu Leu Leu Cys Glu Asn Ala Ser Phe Ile Ser Lys Pro Asp Ser Asn 85 90 95 Ser Ile Pro Tyr Thr Cys Asn Ile Lys Glu Ile Thr Ala Asp Lys Asn 100 105 110 Ser Asn Ile Glu Leu Asn Ser Asn Ala Asp Trp Lys Thr Asn Ile Ile 115 120 125 Pro Val Gly Thr Gly Ala Thr Val Thr Met Ser Gln Gly Ser Tyr Ser 130 135 140 Gly Asn Ile Gly Thr Lys Glu Lys Pro Met Ala Asn Val Thr Leu Leu 145 150 155 160 Pro Lys Ser Lys Arg Pro Ser Leu Ile Glu Val Glu Gly Ser Val His 165 170 175 Thr Asn Gln Cys Ser Ile Ser Asp Lys Ser Ser Ala Lys Gly Glu Val 180 185 190 Met Leu Leu Gly Asp Tyr Thr Val Thr Ala Gln Thr Ser Asp Gly Ser 195 200 205 Gly Ser Ile Asn Val Gly Asn Ala Lys Ile Asn Leu Gly Leu Asn Thr 210 215 220 Leu Thr Leu Ala Ser Asp Asn Ile Ile Ile Leu Gly His Lys Ser Lys 225 230 235 240 Lys Gly Ser Ser Thr Asn Pro Glu Lys Phe Lys Lys Lys Pro Val Thr 245 250 255 Val Phe Ser Ile Asn Tyr Thr Thr Asn Ser Asp Gly Thr Val Lys Thr 260 265 270 Gln Gly Lys Leu Lys Leu Ser Lys Tyr His Asp Pro Asn Asn Lys Ile 275 280 285 Ile Val Asn Val Asn His Gln Gly Asp Leu Arg Asp Leu Ser Lys His 290 295 300 Gly Thr Gln Thr Val Ile Gln Pro Val Asp Ile Ala Asp Thr Gly Gly 305 310 315 320 Leu Asn Ile Ser Asn Leu Val Tyr Ile Cys Asp Gly Lys Cys Lys Trp 325 330 335 Gln Leu Val Pro Gly Ser Asp Gly Lys Phe Val Phe Ala Gly Leu Val 340 345 350 Asp Lys Lys Lys Lys Asp Lys Gly Asp Asp Gly Ala Ser Ser Ser Ser 355 360 365 Gly Ser Ser Ser Val Ala Pro Ser Ala Arg Val Ser Pro Glu Val Ser 370 375 380 Asp Asp Glu Glu Gly 385 <210> 14 <211> 271 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Karp_C <400> 14 Ser Ala Ser Ala Ile Glu Leu Gly Asp Glu Gly Gly Leu Glu Cys Gly 1 5 10 15 Pro Tyr Ala Lys Val Gly Val 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115 120 125 Ala Asn Lys Pro Asn Val Ser Ala Val Lys Ile Leu Ser Asp Lys Ile 130 135 140 Ser Gln Ile Tyr Ala Asp Ile Lys Leu Pro Asp Ser Ala Ser Val Asp 145 150 155 160 Gln Ile Gln Asn Lys Val Gln Glu Leu Asn Lys Val Leu Glu Asp Val 165 170 175 Arg Glu Ser Phe Asp Gly Phe Ile Leu Asn Ala Phe Ala Gln Pro Val 180 185 190 Arg Leu Asn Phe Ala Ala Thr Ala Gln Glu Ala Ala Ala Ala Ala Ala 195 200 205 Ile Arg Ala Leu Asn Asp Gly Glu Asn Asn Gly Ile Ile Gln Leu Tyr 210 215 220 Lys Asp Leu Tyr Lys Leu Gln Arg Asn Val Ala Leu Lys Lys Ser Met 225 230 235 240 Lys Gln Leu Gly Asp Glu Glu Ile Glu Phe Asp Leu His Met Ala Val 245 250 255 Gly Gln Val Lys Leu Tyr Ala Asp Leu Phe Thr Ile Asp Ser Phe Ser 260 265 270 <210> 30 <211> 271 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> TA586 <400> 30 Ser Ala Ser Ala Ile Glu Leu Gly Asp Glu Gly Gly Leu Glu Cys Gly 1 5 10 15 Pro Tyr Ala Arg Val Gly Val Val Gly Gly Met Ile Thr Gly Val Glu 20 25 30 Ser Thr Arg Leu Asp Ser Thr Asp Pro Glu Gly Lys Lys His Leu Ser 35 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Val Lys Leu Tyr Ala Asp Val Phe Thr Thr Glu Ser Phe Ser 260 265 270 <210> 31 <211> 254 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> ucTSA56_V2 <400> 31 Ser Ala Ser Ala Ile Glu Leu Gly Asp Glu Gly Gly Leu Glu Cys Gly 1 5 10 15 Pro Tyr Ala Lys Val Gly Val Val Gly Gly Met Ile Thr Gly Val Glu 20 25 30 Ser Thr Arg Leu Asp Ser Ala Asp Ala Asp Gly Lys Lys His Ala Pro 35 40 45 Gly Phe Arg Ala Glu Leu Gly Val Met Tyr Leu Thr Asn Ile Lys Leu 50 55 60 Thr Pro Pro Gln Pro Thr Ile Met Pro Ile Ser Ile Ala Asp Arg Asp 65 70 75 80 Phe Gly Val Asp Arg Ile Ala Trp Leu Lys Asn Tyr Ala Gly Ile Asp 85 90 95 Tyr Trp Arg His Leu Val Val Gly Val Thr Ala Leu Ser Asn Ala Asn 100 105 110 Lys Pro Ser Val Ser Pro Val Lys Val Leu Ser Asp Lys Ile Thr Gln 115 120 125 Ile Tyr Ser Asp Ile Lys Leu Pro Asn Ser Ala Ser Val Glu Gln Ile 130 135 140 Gln Asn Lys Met Gln Glu Leu Asn Asp Val Leu Glu Glu Leu Arg Asp 145 150 155 160 Ser Phe Asp Gly Tyr Ile Gly Asn Ala Phe Ala Asn Gln Ile Gln Leu 165 170 175 Asn Phe Gln Ala Thr Ala Gln Glu Ala Ala Ala Ala Ala Ala Val Arg 180 185 190 Ala Leu Asn Gly Asn Asp Gln Ile Ile Gln Leu Tyr Lys Asp Leu Val 195 200 205 Lys Leu Gln Arg His Ala Gly Ile Lys Lys Ala Met Glu Lys Leu Ala 210 215 220 Ala Gln Glu Thr Glu Phe Asp Leu Ser Met Ile Val Gly Gln Val Lys 225 230 235 240 Leu Tyr Ala Asp Leu Phe Thr Thr Glu Ser Phe Ser Leu Glu 245 250 <210> 32 <211> 1932 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> cScaA_F4-ucTSA56_V2_N <400> 32 atgaaactgt tcatctctta cgacaaatct gttaacaaat cttctatctt ctgctctgac 60 atcatcttct ctcacccgga agacaccatc aacatcctgg gtaacaccga catcaaaggt 120 aacatcggta ccaaaggtaa ctctggtggt aaaatcatcg ttcgtaacaa cggtaccctg 180 acccactctg gtggtgacat cggtaacaac aaaacctcta actctaactc tctgcaggcg 240 ctgctgctgt gcgaaaacgc gtctttcatc tctaaaccgg actctaactc tatcccgtac 300 acctgcaaca tcaaagaaat caccgcggac aaaaactcta acatcgaact gaactctaac 360 gcggactgga aaaccaacat catcccggtt ggtaccggtg cgaccgttac catgtctcag 420 ggttcttact ctggtaacat cggtaccaaa gaaaaaccga tggcgaacgt taccctgctg 480 ccgaaatcta aacgtccgtc tctgatcgaa gttgaaggtt ctgttcacac caaccagtgc 540 tctatctctg acaaatcttc tgcgaaaggt gaagttatgc tgctgggtga ctacaccgtt 600 accgcgcaga cctctgacgg ttctggttct atcaacgttg gtaacgcgaa aatcaacctg 660 ggtctgaaca ccctgaccct ggcgtctgac aacatcatca tcctgggtca caaatctaaa 720 aaaggttctt ctaccaaccc ggaaaaattc aaaaaaaaac cggttaccgt tttctctatc 780 aactacacca ccaactctga cggtaccgtt aaaacccagg gtaaactgaa actgtctaaa 840 taccacgacc cgaacaacaa aatcatcgtt aacgttaacc accagggtga cctgcgtgac 900 ctgtctaaac acggtaccca gaccgttatc cagccggttg acatcgcgga caccggtggt 960 ctgaacatct ctaacctggt ttacatctgc gacggtaaat gcaaatggca gctggttccg 1020 ggttctgacg gtaaattcgt tttcgcgggt ctggttgaca aaaaaaaaaa agacaaaggt 1080 gacgacggtg cgtcttcttc ttctggttct tcttctgttg cgccgtctgc gcgtgtttct 1140 ccggaagttt ctgacgacga agaaggttct gccagcgcga tcgaactggg tgacgaaggc 1200 ggtctggaat gtggcccgta tgcgaaagtg ggcgtagttg gcggcatgat taccggcgtc 1260 gagtccaccc gtctggattc tgcggatgct gatggtaaaa aacacgcgcc gggcttccgt 1320 gctgaactgg gcgtgatgta cctgaccaac atcaagctga ctccgccgca gccgaccatc 1380 atgccgatct ccattgccga tcgtgacttc ggtgttgacc gtatcgcctg gctgaaaaac 1440 tacgccggta tcgactactg gcgtcatctg gtagtaggcg ttaccgcgct tagcaacgcg 1500 aataaaccgt ccgtttctcc ggtaaaagtt ctgtcagaca aaattaccca gatttacagc 1560 gatatcaaac tgccgaacag cgcttctgtt gaacaaatcc agaacaaaat gcaggagctg 1620 aacgacgtgc tggaagaact gcgcgacagc ttcgacggtt acatcggcaa cgcctttgct 1680 aaccagattc agctgaactt ccaggcgacc gctcaagaag cggcagcggc agctgctgtt 1740 cgcgcactga acggtaacga tcagatcatc caactgtaca aagatcttgt gaaactccag 1800 cgtcatgctg gcattaagaa agcgatggag aaactggcgg cgcaggaaac cgagttcgat 1860 ctgagtatga tcgtgggtca ggttaaactg tatgctgacc tgttcaccac cgaatctttc 1920 tccctcgagt ga 1932 <210> 33 <211> 643 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> cScaA_F4-ucTSA56_V2_P <400> 33 Met Lys Leu Phe Ile Ser Tyr Asp Lys Ser Val Asn Lys Ser Ser Ile 1 5 10 15 Phe Cys Ser Asp Ile Ile Phe Ser His Pro Glu Asp Thr Ile Asn Ile 20 25 30 Leu Gly Asn Thr Asp Ile Lys Gly Asn Ile Gly Thr Lys Gly Asn Ser 35 40 45 Gly Gly Lys Ile Ile Val Arg Asn Asn Gly Thr Leu Thr His Ser Gly 50 55 60 Gly Asp Ile Gly Asn Asn Lys Thr Ser Asn Ser Asn Ser Leu Gln Ala 65 70 75 80 Leu Leu Leu Cys Glu Asn Ala Ser Phe Ile Ser Lys Pro Asp Ser Asn 85 90 95 Ser Ile Pro Tyr Thr Cys Asn Ile Lys Glu Ile Thr Ala Asp Lys Asn 100 105 110 Ser Asn Ile Glu Leu Asn Ser Asn Ala Asp Trp Lys Thr Asn Ile Ile 115 120 125 Pro Val Gly Thr Gly Ala Thr Val Thr Met Ser Gln Gly Ser Tyr Ser 130 135 140 Gly Asn Ile Gly Thr Lys Glu Lys Pro Met Ala Asn Val Thr Leu Leu 145 150 155 160 Pro Lys Ser Lys Arg Pro Ser Leu Ile Glu Val Glu Gly Ser Val His 165 170 175 Thr Asn Gln Cys Ser Ile Ser Asp Lys Ser Ser Ala Lys Gly Glu Val 180 185 190 Met Leu Leu Gly Asp Tyr Thr Val Thr Ala Gln Thr Ser Asp Gly Ser 195 200 205 Gly Ser Ile Asn Val Gly Asn Ala Lys Ile Asn Leu Gly Leu Asn Thr 210 215 220 Leu Thr Leu Ala Ser Asp Asn Ile Ile Ile Leu Gly His Lys Ser Lys 225 230 235 240 Lys Gly Ser Ser Thr Asn Pro Glu Lys Phe Lys Lys Lys Pro Val Thr 245 250 255 Val Phe Ser Ile Asn Tyr Thr Thr Asn Ser Asp Gly Thr Val Lys Thr 260 265 270 Gln Gly Lys Leu Lys Leu Ser Lys Tyr His Asp Pro Asn Asn Lys Ile 275 280 285 Ile Val Asn Val Asn His Gln Gly Asp Leu Arg Asp Leu Ser Lys His 290 295 300 Gly Thr Gln Thr Val Ile Gln Pro Val Asp Ile Ala Asp Thr Gly Gly 305 310 315 320 Leu Asn Ile Ser Asn Leu Val Tyr Ile Cys Asp Gly Lys Cys Lys Trp 325 330 335 Gln Leu Val Pro Gly Ser Asp Gly Lys Phe Val Phe Ala Gly Leu Val 340 345 350 Asp Lys Lys Lys Lys Asp Lys Gly Asp Asp Gly Ala Ser Ser Ser Ser 355 360 365 Gly Ser Ser Ser Val Ala Pro Ser Ala Arg Val Ser Pro Glu Val Ser 370 375 380 Asp Asp Glu Glu Gly Ser Ala Ser Ala Ile Glu Leu Gly Asp Glu Gly 385 390 395 400 Gly Leu Glu Cys Gly Pro Tyr Ala Lys Val Gly Val Val Gly Gly Met 405 410 415 Ile Thr Gly Val Glu Ser Thr Arg Leu Asp Ser Ala Asp Ala Asp Gly 420 425 430 Lys Lys His Ala Pro Gly Phe Arg Ala Glu Leu Gly Val Met Tyr Leu 435 440 445 Thr Asn Ile Lys Leu Thr Pro Pro Gln Pro Thr Ile Met Pro Ile Ser 450 455 460 Ile Ala Asp Arg Asp Phe Gly Val Asp Arg Ile Ala Trp Leu Lys Asn 465 470 475 480 Tyr Ala Gly Ile Asp Tyr Trp Arg His Leu Val Val Gly Val Thr Ala 485 490 495 Leu Ser Asn Ala Asn Lys Pro Ser Val Ser Pro Val Lys Val Leu Ser 500 505 510 Asp Lys Ile Thr Gln Ile Tyr Ser Asp Ile Lys Leu Pro Asn Ser Ala 515 520 525 Ser Val Glu Gln Ile Gln Asn Lys Met Gln Glu Leu Asn Asp Val Leu 530 535 540 Glu Glu Leu Arg Asp Ser Phe Asp Gly Tyr Ile Gly Asn Ala Phe Ala 545 550 555 560 Asn Gln Ile Gln Leu Asn Phe Gln Ala Thr Ala Gln Glu Ala Ala Ala 565 570 575 Ala Ala Ala Val Arg Ala Leu Asn Gly Asn Asp Gln Ile Ile Gln Leu 580 585 590 Tyr Lys Asp Leu Val Lys Leu Gln Arg His Ala Gly Ile Lys Lys Ala 595 600 605 Met Glu Lys Leu Ala Ala Gln Glu Thr Glu Phe Asp Leu Ser Met Ile 610 615 620 Val Gly Gln Val Lys Leu Tyr Ala Asp Leu Phe Thr Thr Glu Ser Phe 625 630 635 640 Ser Leu Glu

Claims (8)

  1. 서열번호 1의 아미노산 서열로 이루어진, 오리엔티아 오리엔티아 쯔쯔가무시 균의 재조합 단백질 항원.
  2. 제1항 기재의 재조합 단백질 항원을 암호화하는 유전자.
  3. (i) 제2항 기재의 유전자 포함하는 발현벡터를 제조하는 단계, (ii) 이 발현벡터를 숙주세포에 형질전환시키는 단계, (iii) 형질전환된 숙주세포를 배양하는 단계, 및 (iv) 그 배양물로부터 제1항 기재의 재조합 단백질 항원을 분리·정제하는 단계를 포함하는, 제1항 기재의 재조합 단백질 항원의 제조 방법.
  4. 제1항 기재의 재조합 단백질 항원을 활성성분으로 포함하는 오리엔티아 쯔쯔가무시 균에 대한 백신 조성물.
  5. 제4항에 있어서,
    상기 조성물은 약학적으로 허용되는 담체를 포함하는 것을 특징으로 하는 오리엔티아 쯔쯔가무시 균에 대한 백신 조성물.
  6. 제5항에 있어서,
    상기 약학적으로 허용되는 담체는 희석제, 부형제, 안정화제 및 방부제로 구성된 군에서 선택된 하나 이상을 포함하는 것을 특징으로 하는 오리엔티아 쯔쯔가무시 균에 대한 백신 조성물.
  7. 제4항에 있어서,
    상기 조성물은 항원 보조제를 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는 오리엔티아 쯔쯔가무시 균에 대한 백신 조성물.
  8. 제7항에 있어서,
    상기 항원 보조제는 겔 상의 알루미늄염인 것을 특징으로 하는 오리엔티아 쯔쯔가무시 균에 대한 백신 조성물.

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