KR20080042761A

KR20080042761A - 렙틴을 이용한 줄기세포 증식방법

Info

Publication number: KR20080042761A
Application number: KR1020070115056A
Authority: KR
Inventors: 문찬일; 양현원
Original assignee: 문찬일
Priority date: 2006-11-10
Filing date: 2007-11-12
Publication date: 2008-05-15
Also published as: WO2008056963A1

Abstract

본 발명은 렙틴을 이용한 줄기세포 증식방법에 관한 것으로, 구체적으로 다양한 골수 및 혈액 유래 줄기세포에 렙틴을 첨가 배양함으로써 세포 계대배양 수를 늘리지 않고도 줄기세포를 대량 증식할 수 있는 방법에 관한 것이다. 본 발명의 증식방법은 배양 시간을 단축시키고 계대배양 시 세포가 변화되는 것을 막아 안정적인 배양이 가능하므로 경제적이고 안정적으로 줄기세포를 증식하는데 이용될 수 있을 것이다.

렙틴, 줄기세포, 계대배양.

Description

렙틴을 이용한 줄기세포 증식방법{Method for proliferating stem cells with leptin}

본 발명은 렙틴을 이용한 줄기세포 증식방법에 관한 것으로, 구체적으로 다양한 골수 및 혈액 유래 줄기세포에 렙틴을 첨가 배양함으로써 세포 계대배양 수를 늘리지 않고도 줄기세포를 대량 증식할 수 있는 방법에 관한 것이다.

줄기세포(stem cell)는 분화가 끝나지 않은 미성숙 세포로 적당한 조건에서 특정 조직이나 기관으로 성장할 수 있는 능력을 갖고 있는 세포이다. 이런 줄기세포를 시험관에서 배양하고 분화시킬 경우, 여러 종류의 질환 치료에 도움이 되는 필요한 특정 세포를 얻을 수 있다(Petit-Zeman S., Regenerative medicine. Nat. Biotechnol. 19: 201-206, 2001). 지금까지의 현대의학은 장기에 문제가 생긴 경우 장기를 떼어내고 건강한 장기를 이식해 주는 치료법을 위주로 발전해 왔다. 이러한 장기이식 방법은 기증되는 장기가 절대 부족하고, 환자뿐만 아니라 장기 기증자도 힘든 수술과정을 거쳐야 하는 큰 문제점이 있다. 그러나 줄기세포를 이용한 세포치료 방법은 이런 문제점 없이 특정세포의 투여만으로 치료가 가능해지고 이 줄기세포를 이용한 장기의 재생은 다양한 종류의 난치병을 치료할 수 있을 것으로 기대된다. 예를 들어 당뇨병의 경우, 지금까지는 매일 인슐린 주사를 맞거나 뇌사자의 췌장을 이식해 주어야 했으나 세포치료법을 이용하면 줄기세포에서 인슐린을 분비하는 췌장의 췌도세포로 분화시켜 이것을 인체에 주입함으로써 치료가 가능해진다. 또 다른 예로 파킨슨병의 경우 신경전달물질인 도파민을 분비하는 뇌세포로, 심근경색증의 경우 죽은 심장근육을 대신할 수 있는 심장근육세포로 분화시켜 주입하면 효과적인 치료결과를 기대할 수 있게 되었다. 이러한 기술은 암 치료에도 이용이 가능한데, 암의 세포자멸사(apoptosis)에 관여하는 세포치료제의 개발 뿐 아니라, 암이 발생한 장기를 수술로 잘라내더라도 제거된 장기와 동일한 역할을 할 수 있는 줄기세포의 투여로 장기의 역할을 대신할 수도 있다. 또한 최근에 개발되고 있는 조직공학(tissue engineering) 기술은 줄기세포를 이용한 인공 장기 개발을 가능케 하고 있다(Petit-Zeman S., Regenerative medicine. Nat. Biotechnol. 19: 201-206, 2001, Gussoni E. et al., Nature 401: 390-394, 1999; 김병수, 바이오인더스트 리. 통권 31호, 조직공학과 줄기세포를 이용한 인공장기 개발, 2002).

이 같은 줄기세포를 이용한 여러 종류의 세포치료법은 각종 난치성 질환의 치료를 위한 새롭고도 강력한 전략이라 할 수 있으며, 더욱이 줄기세포를 이용한 치료의 긍정적인 결과는, 손상된 장기의 기능 회복이라는 희망에 환자와 보호자, 임상의, 과학계와 제약업계 등의 즉각적이고 각별한 관심을 끌기에 충분한 것이었 다. 그러나 줄기세포를 이용한 전 임상시험 및 소수의 임상시험에서 보여준 결과는 줄기세포치료법의 긍정적인 면에도 불구하고 아직 많은 문제점을 보여주고 있다. 그 중 가장 큰 문제는 치료를 위한 충분한 양의 세포를 확보가 어렵다는 것과 투여된 세포들이 장기간 생착에 실패한다는 것이다. 이러한 문제점들을 해결하기 위해서 많은 연구자들이 줄기세포 증식을 위한 새로운 증식물질들을 발굴하고, 타가이식 및 세포 투여량의 증가와 반복 투여 등 다양한 연구들을 진행하고 있으나, 아직까지 뚜렷한 문제 해결의 방법을 찾지 못하고 있는 실정이다(Petit-Zeman S. Regenerative medicine. Nat. Biotechnol. 19: 201-206, 2001; 김병수, 바이오인더스트 리. 통권 31호, 조직공학과 줄기세포를 이용한 인공장기 개발, 2002).

현재 줄기세포의 증식기술들은 여러 종류의 줄기세포를 다양한 방법으로 분리하여 최소 5가지의 공정단계와 10여 가지의 증식에 관여된 인자들의 첨가한 후 10일에서 14일간 세포를 배양하는 방법으로 충분한 양의 줄기세포 증식에는 미치지 못하고 있다. 더욱이 보다 많은 세포증식을 위하여 무리하게 세포계대 수를 늘리는 경우, 많은 배양시간이 소요되며 세포표면 표식자 검사를 통하여 볼 때, 원초세포와 최종 완성세포의 상이성이 높아져 있어 처음에 기대한 세포치료 효과에 대한 우려가 대두되고 있다.

렙틴(Leptin)은 주로 지방세포에서 분비되고 식욕 및 물질대사(energy metabolism)에 관여하는 싸이토카인 유사 단백질(cytokine like protein)로 주로 비만 및 식욕 조절에 관여하는 것으로 알려져 왔다. 최근 렙틴 수용체(Leptin receptor, Ob-R)가 포만감을 인식하는 시상하부 이외에 면역세포와 조혈모 줄기세 포에서도 발현되는 것이 확인되면서 렙틴이 조혈모 줄기세포 증식과 분화에 관여한다는 사실이 알려지게 되었다(F. Elefteriou et al., PNAS vol.101 No 9, 3258 ~ 3263, 2004; Stefan R. et al., Diabetes Vol 49, 532~538, 2000; Tartaglia L., The journal of Biological chemistry. vol. 272, No. 10, 6093~6096, 1997; Ahima R., Physiology & behavior. vol. 81 223~241. 2004). 특히, 렙틴 수용체는 gp130 계열의 사이토카인 수용체들과 구조적으로 유사한 형태를 보임으로써 줄기세포 증식에 절대적으로 필요한 Epo, G-CSF, GM-CSF 등과 같은 조혈모 줄기세포 사이토카인의 역할을 렙틴이 대신할 수 있을 것으로 기대할 수 있다.

이에, 본 발명자들은 생체 내 단백질인 렙틴이 여러 종류의 줄기세포의 증식에 관여하는 것을 확인하고 렙틴과 기존의 배양기법의 조합을 통하여 안정적이며 효과적인 줄기세포의 고속 대량 증식 공정을 확립함으로써 본 발명을 완성하였다.

본 발명의 목적은 렙틴을 이용하여 기존의 줄기세포 증식 방법에 비하여 혈청을 포함한 별도의 성장인자나 첨가물 없이 빠른 시간에 대량의 세포를 증식시키는 방법을 제공하는 것이다.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 렙틴, 그의 유사체 또는 유도체가 함유된 세포배양용 배지에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는 줄기세포 증식방법을 제공한다.

본 발명은 각종 줄기세포의 증식에 렙틴을 이용함으로써 이전에 알려진 증식 방법보다 빠른 시간에 충분한 양의 줄기세포 증식이 가능하게 하여 기존의 세포증식 방법에 비하여 월등히 높은 증식 속도와 안정성 및 그에 따른 경제성을 갖는 증식방법이다. 따라서 본 발명의 렙틴을 이용한 고속 대량 줄기세포배양기술은 줄기세포 치료의 기간이 되는 중요한 것으로, 이를 사업화할 경우, 세포치료기술에 대한 원천 기술 확보로 국가 경쟁력이 증대될 수 있으며, 이를 통하여 각종 난치병 세포치료제 개발의 중요한 한 축을 이룸으로 고부가가치 산업 창출도 가능할 것이다. 또 한정적일 수밖에 없는 시간과 비용의 절감 효과로 보다 첨예한 전세계 줄 기세포 치료의 분야에서 보다 빠르게 유리한 고지를 선점할 수 있을 것이다.

본 발명은 랩틴, 그의 유사체 또는 유도체가 함유된 세포배양용 배지에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는 줄기세포 증식방법을 제공한다.

렙틴은 지방세포에서 분비되며 주로 비만 및 식욕에 관해 작용하는 것으로 알려져 왔으나 최근 렙틴에 대한 연구가 심화되면서 조혈모 줄기세포 증식에도 관여하는 것이 밝혀지고 있다. 본 발명에서는 배양액에 렙틴을 첨가하여 배양하면 여러 차례의 계대배양 없이도 다양한 줄기세포를 대량으로 증식하는 것이 가능함을 확인하였다. 줄기세포 배양과 동시에 렙틴 1회 투여만으로 세포 회수 시까지 다른 줄기세포 증식과정에서 보여지는 여러 차례의 공정이 필요치 않아 보다 안정적이며 간편하게 줄기세포치료제를 생산할 수 있어, 기존의 증식 방법에서 사용되는 여러 물질, 인원, 장비 등의 경비를 획기적으로 줄일 수 있을 것으로 기대된다.

구체적으로, 본 발명자들은 먼저 인간 골수 유래 줄기세포, 인간 골수 유래 조혈모세포, 인간 혈액 유래 줄기세포, 인간 혈액 유래 조혈모세포 및 인간 제대혈 유래 줄기세포 등 5종류의 인간 조혈모 줄기세포와 생쥐 골수 유래 줄기세포를 분리하여 표 1과 같이 혈청 배지, 무혈청 배지, 렙틴을 넣은 군과 넣지 않은 군, 성장인자를 넣은 군과 넣지 않은 군 등으로 나누어 세포배양 후 세포수를 측정하였다.

그 결과, 인간 골수 유래 줄기세포(CD105+, CD166+, CD29+, CD44+, CD14-, CD34- 및 CD45- 표지자를 갖는 골수세포)를 무혈청 배지에 배양한 경우 렙틴을 첨가하여 배양하면 대조군에 비해 4배 이상 세포수가 증가하였고 성장인자를 첨가하여 배양한 것보다도 효과가 우수하였다(도 1). 혈청 배지에서 배양한 경우에는 이보다 더 월등한 효과를 나타내어 대조군에 비해 7배 이상의 증식효과가 있었다(도 2). 한편, 인간 제대혈 유래 줄기세포를 사용한 실험(혈청 배지)에서도 대조군에 비해 4배 이상의 증식효과를 나타내었다(도 3). 한편, 실험용 쥐 골수 유래 줄기세포를 사용한 실험(무혈청 배지)에서도 대조군에 비해 5배(도 4) 이상 증시효과가 있음을 확인하였다.

상기 실험 결과를 종합해 보면, 본 발명의 렙틴을 이용한 증식방법은 다른 성장인자를 첨가하거나 첨가하지 않은 배양방법에 비해 다양한 종류의 줄기세포 수를 현저히 증가시킴을 확인할 수 있었다.

본 발명의 대상이 되는 줄기세포는 골수유래 줄기세포, 골수유래 조혈모세포, 혈액내 줄기세포, 혈액내 조혈모세포, 제대혈유래 줄기세포, 태아줄기세포 또는 지방세포 유래 줄기세포이나 이에 한정되지 않고 모든 종류의 줄기세포를 포함한다. 또한, 렙틴을 단독사용하거나 기존의 증식방법에 추가적으로 사용가능하고 다른 성장인자, 예를 들어, 에리스로포이에틴(erythropoietin), G-CSF, GM-CSF, LIF, IL-3 등과도 함께 사용할 수 있으나 성장인자가 이에 한정되는 것은 아니다. 렙틴 뿐 아니라 렙틴의 유사체 또는 렙틴 유도체(미국 특허 US2003092126, 렙틴의 기능성 단편)도 줄기세포 증식효과를 나타낼 수 있으며, 증식에 사용되는 배지는 무혈청 배지, 혈청 배지가 모두 가능하고 또한 일반적으로 사용하는 동물세포 배양 용 배지(예:Dulbeco's medium 또는 셀룰로스가 포함된 특수배지(예: stem cell technology Inc.사의 배지) 등이 사용될 수 있다.

본 발명의 증식방법은 기존의 세포 증식 방법에 비하여 별도의 성장인자나 첨가물 없이 빠른 시간에 대량의 줄기세포를 증식할 수 있는 방법으로 상기 실험 결과와 같이 기존의 세포 증식 방법에 비하여 동기간의 비교에 따르면 약 8배의 많은 세포를 확보할 수 있고(2주 배양시, 7.17배 대 58.87배), 동세포수의 비교에 따르면 약 64%의 기간 단축을 이룰 수 있다. 이와 같은 고속 증식을 통하여 다수의 세포를 얻음으로 임상적용 시 치료에 충분한 세포의 양을 얻을 수 있으며, 부족한 세포 수로 인한 여러 차례의 줄기세포 추출과정과 세포치료제 생산 과정을 줄일 수 있다. 또한 타가이식으로 인한 면역억제 치료나 타인으로 부터의 악성 전염병의 전파에 대한 우려를 줄일 수 있을 것으로 기대된다. 또한 불필요한 공정과 기간을 줄임으로써 기존의 방법에 비해 줄기세포에 줄 수 있는 스트레스를 줄일 수 있고 자가분화 또는 세포자멸사 등에 따른 원초 세포와 최종 세포 간의 불일치에 대한 우려를 현저히 감소시킬 수 있을 것으로 사료된다.

따라서 본 발명의 고속 대량 줄기세포 증식기술을 통하여 최종 산물인 세포치료제 완성을 간결화 함으로써 기존 증식방법의 문제점을 해결하기 위한 기술의 오버슈팅(overshooting)을 방지할 수 있는 최초의 우수한 경제적 공정의 확립을 기대할 수 있다.

이하, 본 발명을 실시 예에 의해 상세히 설명한다.

단, 하기 실시 예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 내용을 한정하지는 않는다.

<실시예 1> 인간 골수 유래 줄기세포 증식

<1-1> 실험재료

본 실험에는 CD105+, CD166+, CD29+, CD44+, CD14-, CD34- 및 CD45- 표지자를 갖는 인간 골수 유래 줄기세포를 사용하였다. 세포배지는 Iscove's Modified Dubelcco's Medium(Gibco-BRL, USA)과 셀룰로즈를 포함한 줄기세포 배양용 특수 배지(stem cell technology Inc.)를 사용하였다. 이 외에 세포 배양에 필요한 소량의 인슐린, 트랜스페린, 글루타민, 우태아 혈청과 렙틴(leptin)(이상 Sigma, USA), 증식인자인 G-CSF, 에리스로포이에틴(erythropoietin)(이상 Gibco, USA) 등을 사용하였다.

<1-2> 줄기세포 분리 및 배양

기증자(20~40세의 당뇨, 고혈압, 간염, 급만성 감염이나 염증의 과거력이 없는자)로부터 혈액(11 ml)과 소변(약 10 ml)을 채취하여 임상병리 검사기관에 의뢰하여 감염증의 유무를 확인하는 혈액 사전 검사를 실시하였다. 감염이 없는 것으로 확인된 기증자로부터 10 ml의 골수를 취한 후 채취된 골수는 재빨리 항응고제가 들어있는 채혈관으로 옮기고 채혈관은 항응고제가 잘 섞이도록 2 내지 3 회 회전하 여 혼합하였다.

채혈관은 약 20회 정도 잘 흔들어 내용물이 균질하게 혼합되도록 한 후, 3000 rpm, 20℃로 horizontal rotor(swing-out head, Beckman Coulter Inc, USA)에서 20 분간 원심분리하였다(골수채취 시점으로부터 2시간 이내). 채혈관에서 분리된 첫 번째 층의 혈장을 분리하고, 그 중 0.5 ml를 검체조사용 동결용 바이알에 담았다. 세포층과 소량 남아있는 혈장을 피펫으로 잘 섞어 50 mL 튜브로 옮기고, 생리식염수를 가하여 45 ml로 맞추었다. 약 10회 전도혼화한 후 50 μl를 취하여 세포수를 측정하고 또 다른 50 μl는 유세포 분석을 위하여 보관하였다. 세포수 측정과 유세포 분석을 위해 준비하고 남은 부분이 담긴 튜브를 1500 rpm, 상온에서 5분간 원심분리하여 상층액을 제거하고, 배양액을 일부 취하여 세포를 부유시켰다. 부유시킨 세포와 배양액을 골수세포 유래 줄기세포 표면표식자를 이용한 분리를 위하여 CD105, CD166, CD29, CD44, CD14, CD34 및 CD45 항체(Sigma, USA)를 부착하고 유세포분석기(Flow cytometry analyser, Beckman Coulter Inc. USA)로 세포의 특성을 파악한 후, CD105+, CD166+, CD29+, CD44+, CD14-, CD34- 및 CD45-의 표지자를 갖는 세포만을 분리하였다. 이 중 50 μl는 다시 세포수 측정을 위하여 분리하여 두었다.

준비된 배양액을 15 ml 배양용기에 5 ml 씩 담고 이미 지정해 놓은 시험군에 따라 렙틴, 혈청, 그 밖의 증식인자들을 정해진 양(EPO 3 IU/ml, G-CSF 10 ng/ml, 렙틴 100 nM)을 투여 후, 분리한 세포들을 지정해 놓은 시험군(표 1)에 따라 배지 에 1 ml 당 10⁶ 개씩 접종하였다. 37℃ 온도와 5% CO₂ 농도가 유지되는 배양기 내에서 14 일간 배양한 후 회수하여 1500 rpm, 상온에서 5분간 원심분리한 후 상층액을 버리고 다시 배양액 및 세포를 모아 1500 rpm, 상온에서 5분간 원심분리하여 하트만 덱스 액(중외제약회사, 한국) 또는 세척용 세포배양액 Iscove's MDM으로 세포를 2회 세척하였다. 하트만 덱스 액 20 ml을 넣어 세포를 잘 풀어주고, 세포 스트레이너(cell strainer)를 이용하여 이물질을 거른 후 약 10회 전도혼합하고 마이크로 피펫으로 검체 100 μl를 취한 후, 이 중 50 μl를 취하여 세포수 시험 검체로 사용하고 50 ul는 유세포 분석의 검체로 사용하였다.

실험에 사용된 배지, 혈청, 렙틴 및 사이토카인 처리

일반배지(Iscove's MDM 배지)				특수배지(셀룰로스 배지)
혈청(+)		혈청(-)		혈청(+)		혈청(-)
렙틴(+)	렙틴(-)	렙틴(+)	렙틴(-)	렙틴(+)	렙틴(-)	렙틴(+)	렙틴(-)
+G-CSF	+G-CSF	+G-CSF	+G-CSF	+G-CSF	+G-CSF	+G-CSF	+G-CSF
+G-CSF +EPO	+G-CSF +EPO	+G-CSF +EPO	+G-CSF +EPO	+G-CSF +EPO	+G-CSF +EPO	+G-CSF +EPO	+G-CSF +EPO
+EPO	+EPO	+EPO	+EPO	+EPO	+EPO	+EPO	+EPO

<1-3> 세포수 측정 및 유세포시험

먼저 세포수 시험을 위해 검체 50 μl를 200배 희석한 후, 5 ml 유리튜브에 희석액 50 μl를 옮기고 여기에 0.1% 트립판블루 50 μl를 첨가하여 교반해주었다(총 400배 희석). 희석액 중 10 μl를 취하여 혈구계산반 (hemacytometer)에 접종하고 세포가 골고루 퍼져 있는가를 현미경으로 확인한 후, 가장자리 4칸의 생세포수를 측정하였다. 동일한 방법을 3회 실시하고 그 평균을 구하여 그 결과는 도 1 및 2에 나타내었다.

<실시예 2> 인간 골수 유래 조혈모세포 증식

상기 실시 예 1과 같이 혈액 사전검사 후 10ml의 골수를 채취하여 동일한 과정을 거친 후, CD34(+) 세포만을 분리하였다(CD34+ progenitor cell isolation kit, MACS, Miltenyi Biotec, Germany)

<실시예 3> 인간 혈액유래 줄기세포

혈액사전 검사를 실시한 후. 홀더에 Vacuum needle과 Scalp needle을 연결하고 대상자의 팔에 토니켓을 묶은 후 적절한 부위를 선정하여 채혈하고 채혈관은 항응고제가 잘 섞이도록 2 내지 3 회 돌리면서 섞어주었다.

채혈관은 혈액채취 시점으로부터 2 시간 이내에 원심분리하였다. 원심분리 전 채혈관을 약 20회 정도 전도혼화 한 후, 3000 rpm, 20℃ 조건에서 horizontal rotor (swing-out head), 20 분간 원심분리하였다. 채혈관에서 분리된 첫 번째 층(buffy coat 층 0.5 cm 위까지)의 혈장을 15 ml 튜브로 분리하고, 그 중 0.5 mL를 검체조사용 동결용 바이알에 담았다. Buffy coat 층의 림프구와 혈장을 피펫으로 잘 섞어 50 ml 튜브로 옮기고, 생리식염수를 가하여 45 mL로 맞추었다. 약 10회 전도혼화 한 후 50 μl를 취하여 세포수를 측정하고 다른 50 ul는 유세포분석을 위하여 준비해두었다.

세포수 측정과 유세포 분석을 위해 준비하고 남은 부분이 담긴 튜브를 1500 rpm, 상온에서 5분간 원심분리하였다. 상층을 제거한 후 배양액을 일부 취하여 세포를 부유시킨 후 피콜 중량 비중분리액(Focoll hypaque)과 잘 혼합하여 원심분리하였다. 비중분리 원심법을 통하여 줄기세포로 알려진 부유액 중 중간 1/3에 포함되는 층의 세포를 조심스럽게 분리하였다.

<실시예 4> 인간 혈액 유래 조혈모세포 증식

상기 실시예 1과 같이 혈액사전검사 후 10mL의 골수를 채취하여 동일한 과정을 거친 후, CD34(+) 세포만을 분리하였다(CD34+ progenitor cell isolation kit(MACS, Miltenyi Biotec, Germany).

<실시예 5>　인간 제대혈 유래 줄기세포

분만이 완전히 이루어진 분만 4기에 태반과 탯줄이 나온 후 준비된 멸균된 제대혈 채취 키트를 이용하여 제대혈을 취하였다. 즉, 키트에 포함된 항응고제가 포함된 채혈관으로 신속하게 옮기고 채혈관은 항응고제가 잘 섞이도록 2 내지 3 회 돌리면서 혼합하였다. 이후의 과정은 상기 실시예 3와 동일하게 진행하였다. 세포 분리 및 증식 후 실험결과는 도 3에 나타내었다.

<실시예 6> 실험용 쥐 골수 유래 줄기세포 증식

생쥐(Charles River, USA)는 펜토바비탈 50mg/kg 복강내 주사로 전신마취하고 뒷다리로부터 경골을 분리해내어 경골의 앞과 뒷 끝을 잘라낸 후 한 쪽 끝에 23G 주사 바늘을 삽입하고 배양액을 주입하면서 골수를 채취하였다. 획득된 골수 덩어리는 멸균된 일회용 파스테르 파이펫을 이용하여 배지를 위 아래로 움직이면서 단일 세포로 만들었다. 골수 세포가 포함된 배양액을 15 ml 배양용기에 담고 1300 rpm, 5 분간 원심분리한 후 상층액을 버린 후 배양용기 바닥에 가라앉아 있는 세포들을 흔들어서 풀어주고 배지 1 ml을 첨가하여 세포들을 부유시켰다. 이 후, 상기 실시예 3와 동일한 과정을 거쳐 줄기세포를 분리 및 배양하였다.

배양 14일째, 일반 배양액을 사용한 경우에는 배양용기를 1300 rpm에서 5분간 원심분리하고 특수 배양액을 사용한 경우에는, 배양용기에 먼저 냉장에서 보관된 차가운 세척용 세포배양액 Iscove's MDM을 5 ml 첨가한 후 30분간 4℃에서 방치하였다. 반고체상태의 배양액이 완전히 액체로 변한 것을 확인하고 1300 rpm에서 5분간 원심분리한 후 상층액을 버리고 다시 세척용 배양액 5ml을 첨가한 후 1300 rpm에서 5분간 원심분리하고 하트만 덱스 액을 이용하여 2회 세포를 세척하였다. 이 후, 실시예 3와 동일한 방법으로 세포를 분리하고 세포수를 측정하였다. 세포 분리 및 증식 후 실험결과는 도 4 및 5에 나타내었다. 아울러 렙틴이 조혈모 줄기세포 사이토카인 분비에 미치는 영향을 알아보기 위하여 렙틴 처리 24시간에 배양액 내 사이토카인을 측정하였다. 그 결과는 도 6에 나타내었다.

상기 실험 결과를 종합해 보면, 본 발명의 렙틴을 이용한 증식방법은 다른 성장인자를 첨가한 배양방법에 비해 다양한 종류의 줄기세포수를 현저히 증가시킴을 확인할 수 있다.

도 1은 인간 골수 유래 줄기세포를 무혈청 배지에서 배양시 렙틴의 유무에 따른 세포수 측정 결과 그래프이다.

도 2는 인간 골수 유래 줄기세포를 혈청 배지에서 배양시 렙틴의 유무에 따른 세포수 측정 결과 그래프이다.

도 3은 인간 제대혈 유래 줄기세포를 혈청 배지에서 배양시 렙틴의 유무에 때른 세포수 측정 결과 그래프이다.

도 4는 실험용 생쥐 골수 유래 줄기세포를 무혈청 배지에서 배양시 렙틴의 유무에 따른 세포수 측정 결과 그래프이다.

도 5는 실험용 생쥐 골수 유래 줄기세포를 무혈청 배지에서 배양시 렙틴의 유무에 따른 세포수 차이를 나타내는 배양 세포 사진이다.

도 6은 실험용 생쥐 골수 오래 줄기세포에서 렙틴의 유무에 따른 사이토카인 분비를 조사한 결과 그래프이다.

Claims

렙틴, 그의 유사체 또는 유도체가 함유된 세포배양용 배지에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는 줄기세포 증식방법.
제 1항에 있어서, 줄기세포는 골수유래 줄기세포, 골수유래 조혈모세포, 혈액내 줄기세포, 혈액내 조혈모세포, 제대혈유래 줄기세포, 태아줄기세포 또는 지방세포유래 줄기세포인 것을 특징으로 하는 줄기세포 증식방법.
제 2항에 있어서, 줄기세포는 인간 또는 마우스에서 유래하는 것을 특징으로 하는 줄기세포 증식 방법.
제 1항에 있어서, 줄기세포는 CD34-인 다능 줄기세포(pluripotent stem cell)인 것을 특징으로 하는 증식방법.
제 1항에 있어서, 세포 배양용 배지는 추가적으로 성장인자를 포함하는 것을 특징으로 하는 줄기세포 증식방법.
제 5항에 있어서, 성장인자는 에리스로포이에틴(erythropoietin), G-CSF(granulocyte-colony stimulating factor), GM-CSF(granulocyte macrophage-colony stimulating factor), LIF(leukemia inhibitory factor) 및 IL-3(interleukin-3)로 이루어진 군으로부터 선택되는 것을 특징으로 하는 줄기세포 증식방법.
제 1항에 있어서, 세포배양용 배지는 혈청 배지 또는 무혈청 배지를 사용하는 것을 특징으로 하는 줄기세포 증식방법.
제 1항에 있어서, 세포배양용 배지는 동물세포 배양배지 또는 셀룰로즈가 포함된 특수배지인 것을 특징으로 하는 줄기세포 증식방법.