KR20080036561A - 조직 플라스미노겐 활성제의 재조합 형태의 제조 방법 - Google Patents

조직 플라스미노겐 활성제의 재조합 형태의 제조 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 인간 조직 플라스미노겐 활성제 변이체의 가용성 형태의 제조에 사용되는 재조합 방법에 관한 것이다. 이 변이체에서, 내생의 조직 플라스미노겐 활성제의 103 위치의 트레오닌은 아스파라긴으로 치환되어 새로운 글리코실화 자리를 생성한다. 내생의 조직 플라스미노겐 활성제의 117 위치에서, 아스파라긴은 글루타민으로 치환되어 N 연결된 글리코실화 자리의 제거를 이끈다. 296-299 위치에서, 아미노산 라이신, 히스티딘, 아르기닌 및 아르기닌은 4 개의 알라닌 아미노산으로 치환된다. 본 발명은 또한 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 핵산 서열의 드 노보 합성, 구축된 핵산 서열의 컴피턴트 박테리아로의 형질전환, 및 원하는 단백질의 발현을 위한 그의 포유류 발현 벡터로의 서브-클로닝에 관한 것이다. 목적 유전자와 연관된 제어 요소를 포함하는 DNA 구축물이 개시된다. 본 발명에 따른 재조합 인간 조직 플라스미노겐 활성제 및 그의 염 및 기능성 유도체는 심장발작 및 심장마비 환자 치료의 치료용 약학 조성물의 유효 성분을 포함할 수 있다. 이들 조성물은 본 발명의 또다른 측면이다.

Description

조직 플라스미노겐 활성제의 재조합 형태의 제조 방법{A METHOD FOR OPTIMIZED PRODUCTION OF A RECOMBINANT FORM OF TISSUE PLASMINOGEN ACTIVATOR}
본 발명은 인간 조직 플라스미노겐 활성제 변이체의 가용성 형태의 제조에 사용되는 재조합 방법에 관한 것이다. 이 변이체에서, 내생의 조직 플라스미노겐 활성제의 103 위치의 트레오닌은 아스파라긴으로 치환되어 새로운 글리코실화 자리를 생성한다. 내생의 조직 플라스미노겐 활성제의 117 위치에서, 아스파라긴은 글루타민으로 치환되어 N 연결된 글리코실화 자리의 제거를 이끈다. 296-299 위치에서, 아미노산 라이신, 히스티딘, 아르기닌 및 아르기닌은 4 개의 알라닌 아미노산으로 치환된다.
본 발명은 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 핵산 서열의 드 노보 합성, 구축된 핵산 서열의 컴피턴트 박테리아로의 형질전환, 및 원하는 단백질의 발현을 위한 그의 포유류 발현 벡터로의 서브-클로닝에 관한 것이다.
목적 유전자와 연관된 제어 요소를 포함하는 DNA 구축물이 개시된다.
본 발명에 따른 재조합 인간 조직 플라스미노겐 활성제 및 그의 염 및 기능성 유도체는 심장발작 및 심장마비 환자 치료의 치료용 약학 조성물의 유효 성분을 포함할 수 있다. 이 조성물도 본 발명의 또다른 측면이다.
플라스미노겐 활성제는, 지모겐 플라스미노겐을 활성화하여, 피브린을 분해하는 세린 프로테아나제 플라스민을 생성하는 효소이다. 플라스미노겐 활성제 중, 스트렙토키나아제, 유로키나아제 및 인간 조직 플라스미노겐 활성제 (t-PA)가 연구되었다. 이들 플라스미노겐 활성제 각각의 활성 메카니즘은 상이하다. 스트렙토키나아제는 플라스미노겐과 복합체를 형성하여 플라스민 활성을 생성하고, 유로키나아제는 플라스미노겐을 직접적으로 분할하고, t-PA 는 피브린 및 플라스미노겐과 삼원 (ternary) 복합체를 형성하여, 혈전 (clot) 위치에서 플라스미노겐을 활성화시킨다.
다중 도메인 (multidomain), 글리코실화된 세린 프로테아제인, 조직 유형 플라스미노겐 활성제 (t-PA)는 플라스미노겐의 피브린 특이적 활성제이자 매우 효과적인 혈전용해제이다. t-PA 는 재조합 단백질로, 그 일차적 적용이 심장발작 및 심장마비 환자의 치료이다. 이는 그의 높은 피브린 특이성 및 생체 내에서 혈전을 용해시키는 강한 능력으로 인해, 각종 혈관 질환들의 치료에 중요하고 유력한 생물학적 약제로서 1979년 처음 특징화되었다.
천연 t-PA 는 약 6 분 이하의 혈장 반감기를 갖는다. 순환으로부터 이의 신속한 클리어런스(clearance)로 인하여, 혈전용해를 달성하기 위해 t-PA 는 주입되어져야 한다. t-PA의 증가된 농도가 프론트 로딩된(front loaded) 투약은, 표준 주입 프로토콜에 비해 보다 신속하고 완전한 용해를 나타내었으며, 초기 효능은 개선된 생존률과 상관된다. 볼러스 (bolus) 투여는 타겟 혈전을 보다 높은 농도의 효소에 신속히 노출시킴에 의해 용해속도를 더욱 개선할 수 있으나, 천연 또는 야 생형 (wt) t-PA의 단일한 볼러스 투여는, 이의 클리어런스 속도로 인해 일반적으로 사용될 수 없다.
많은 연구자들은 볼러스로서 투여될 수 있는 t-PA의 보다 긴 반감기 형태를 제조하였으나, 이러한 변이체는 거의 모두 현저히 저하된 피브린 분해 활성을 갖는 것으로 나타났다.
따라서, 본 발명의 목적은, 완전한 피브린 분해 활성을 유지하는 한편, 감소된 클리어런스 속도를 갖는 분자의 제조에 사용되는 재조합 방법을 제공하는 것이며, 계통적 돌연변이 연구가 t-PA에 그의 다양한 도메인 상에 적용되었다. 그러한 약물은 새로운 혈전에 대해, 보다 큰 친화성으로, 높은 특이성을 가질 수도 있을 것이며, 보다 적게 순환하는 플라스민을 생산할 것이다. 결과적으로, ICH 및 기타 비-대뇌성 출혈의 빈도가 보다 낮을 것이다. 이러한 약물은 PA1-1에 대한 내성을 가질 것이며, 또한 비용효과적일 것이다.
발명의 개요
본 발명은 인간 조직 플라스미노겐 활성제 변이체의 가용성 형태의 제조에 사용되는 재조합 방법에 관한 것이다. 이 변이체에서, 내생의 조직 플라스미노겐 활성제의 103 위치의 트레오닌은 아스파라긴으로 치환되어 새로운 글리코실화 자리를 생성한다. 내생의 조직 플라스미노겐 활성제의 117 위치에서, 아스파라긴은 글루타민으로 치환되어, N 연결된 글리코실화 자리의 제거를 이끈다. 296-299 위치에서, 아미노산 라이신, 히스티딘, 아르기닌 및 아르기닌은 4 개의 알라닌 아미노산으로 치환된다.
본 발명의 특정 측면은 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 핵산의 드 노보 합성, 구축된 핵산 서열의 컴피턴트 박테리아로의 형질전환, 및 원하는 단백질의 발현을 위한 그의 포유류 발현 벡터로의 서브-클로닝에 관한 것이다.
본 발명의 또다른 측면은, 본 발명의 DNA 서열을 포함하는 신규의 생물학적 기능적으로 필수적인 환형 플라스미드 DNA 벡터, 및 상기 벡터로 안정하게 형질전환 또는 형질감염된 숙주 유기체를 제공한다.
이에 대응하여, 그러한 형질전환된 숙주 세포, 특히 포유류 세포의, 외생의 벡터 유래된 DNA-서열의 대규모 발현을 촉진하는 조건 하에서의 배양 성장을 포함하는 유용한 폴리펩티드 제조 및 그 성장 배지로부터 원하는 폴리펩티드의 분리를 위한 신규 방법이 본 발명에 의해 제공된다.
도 및 서열의 상세한 설명
도 1. 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 DNA 뉴클레오티드 서열의 비-최적화 및 코돈-최적화된 형태의 짝 서열 정렬.
도 2. TNK-tPA 유전자의 확립된 서열과, 드 노보 합성된 TENECT cDNA (synthetic_TNK-tPA)의 서열 정렬.
도 3. TNK-tPA-Opt 유전자의 확립된 서열과 드 노보 합성된 TENECT-Opt cDNA (synthetic TNK-tPA-Opt)의 서열 정렬.
도 4: TENECT, TENECT-Opt 및 pcDNA3.1D/V5-His의 겔 정제된 제한효소 절단된 단편.
도 5: pcDNA3.1-TENECT D/V5-His/TNK-tPA 및 pcDNA3.1-TENECT-Opt /V5-His/TNK-tPA-Opt 의 추정적인 클론의 제한효소 절단 분석.
도 6: TENECT 및 TENECT-Opt cDNAs 를 절단하는 효소를 사용하는, PcDNA3.1-TENECT/V5-His/TNK-tPA 및 PcDNA3.1-TENECT-Opt/V5-His/TNK-tPA-Opt 의 제한효소 절단 분석.
도 7. 구축 맵: PcDNA3.1-TENECT/V5-His/TNK-tPA
도 8. 구축 맵: PcDNA3.1 -TENECT-Opt /V5-His/TNK-tPA-Opt
서열번호 1. 재조합 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 뉴클레오티드 서열
서열번호 2. 재조합 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 뉴클레오티드 서열의 코돈-최적화된 형태
발명의 상세한 설명
보다 고등의 진핵 시스템에서 재조합 단백질의 발현을 위한 몇몇 방법이 설명되어 왔다. CHO-K1, HEK293 (및 변이체) 세포 발현 시스템은 이제 포유류 단백질 발현을 위한 유력한 시스템 선택으로서 확립되었다. 벡터 구축의 정밀화 (refinments), 선택가능한 마커의 선택, 및 유전자-타겟팅 (gene-targeting) 및 높은 처리량의 스크리닝 전략에서의 진보는, 고특이적 생산성을 갖는 재조합 세포주의 확립을 비교적 일반적으로 만들었으며, 세포주 개발에 요구되는 시간을 감소시켰다. 전통적인 바이러스성-프로모터에 기초한 발현 벡터를 사용하는 발현 기술에서의 최근 진보는, 내부 리보솜 도입 자리 (IRES) 서열 또는 선택적인 접합 중 하나를 사용하는 비-시스트로닉 발현 전략의 발전 및 정밀화를 포함한다.
실시예 1
조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 DNA 서열을 드 노보 시도에 의해 합성하였다. 이 시도는 사용되는 특정 포유류 세포주에 대하여, 더 나은 코돈 최적화를 가능하게 한다. 나아가, 합성 DNA는, 천연적으로 존재하는 t-PA 의 생물학적 성질 뿐만 아니라 t-PA 의 생체 내 및 시험관 내 생물학적 활성 모두를 나타내는 분리가능한 양의 폴리펩티드를 제공하는 진핵성/원핵성 발현의 대상이 되었다.
재조합 조직 플라스미노겐 활성제 (TENECT 1)를 암호화하는 뉴클레오티드 서열을 서열번호 1 에 나타내었다. CHO K1 및 HEK 293 과 같은 포유류 세포주에서의 최적 재조합 단백질 발현을 보장하기 위하여 코돈-최적화 공정의 일부로서 변경된 조직 플라스미노겐 활성제의 코딩 DNA 서열 중의 코돈을 대문자로 강조하여 나타내었다. 서열번호 2는 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 코돈 최적화된 뉴클레오티드 서열을 나타낸다 (TENECT 2).
조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 비-최적화 및 코돈 최적화된 뉴클레오티드의 짝 서열 정렬을 도 1에 나타내었다.
실시예 2: 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는 드 노보 합성된 cDNA 의 진정성(authenticity)의 확인
상용 서비스 제공자에 의해 제공된 것과 같은 드 노보 합성된 cDNA 분자의 진정성의 확인을, 자동화 DNA 서열결정에 의해 수행하고, 수득된 결과를 도 2 및 3에 나타내었다.
실시예 3: pcDNA3 .1D/ V5 - His 포유류 세포-특이적 발현 벡터 내로의 TENECT TENECT - Opt cDNAs 의 서브- 클로닝
상기 나타낸 것과 같은 자동화 DNA 서열결정에 의해 드 노보 합성된 cDNA 분자 (TENECT 및 TENECT-Opt)의 진정성의 확인에 이어, TENECT 및 TENECT-Opt 를 포유류 세포-특이적 발현 벡터 pcDNA3.1D/V5-His 내로 각각 서브-클로닝하여 형질감염-준비된 구축물을 생성하였다. 사용된 과정의 상세한 내용을 아래 나타내었다:
A. 시약 및 효소:
I: QIAGEN 겔 추출 키트 및 PCR 정제 키트
2. pcDNA 3.1D/V5-His 벡터 DNA (Invitrogen)
효소 공급자 U/μl 10x buffer
1. BamHI 2. Xhol 3. HindIII 4. Xhol 5. T4 DNA 리가아제 Bangalore Genei Bangalore Genei Bangalore Genei Bangalore Genei Bangalore Genei 10 10 20 10 40 버퍼 E 버퍼 E 버퍼 E 버퍼 E 리가아제 버퍼
모든 반응은 제조자에 의해 권장된 바에 따라 실시하였다. 각 반응에 대해, 공급된 10x 반응 버퍼를 1x 의 최종 농도로 희석하였다.
B. 벡터 및 인서트의 제한효소 절단:
● 과정
하기 DNA 시료 및 제한 효소가 사용되었다:
DNA 샘플 제한 효소
Rxn # 1 벡터 (TNK-tPA 클로닝용) Rxn # 2 벡터 (TNK-tPA-Opt 클로닝용) Rxn # 3 pBSK/ TNK-tPA (#5) Rxn # 4 pBSK/ TNK-tPA-Opt (#18) BamHI/XhoI HindIII/XhoI BamHI/XhoI HindIII/XhoI
● 제한 효소 절단 반응:
성분 최종 농도 Rxn #1 Rxn # 2 Rxn # 3 Rxn # 4
물 10x 버퍼 DNA BamHI XhoI HindIII XhoI 10xBSA 최종 부피 - 1x - 0.5U 0.5U 1.0U 0.5U 1x 20μl 2μl 2μl 12μl 1μl 1μl - - 2l 20μl 2μl 2μl 12μl - - 1μl 1μl 2μl 20μl 2μl 2μl 12μl 1μl 1μl - - 2μl 20μl 9μl 2μl 5μl - - 1μl 1μl 2μl 20μl
반응물을 혼합하고, 스핀 다운시키고 (spun down), 37℃ 에서 2 시간 동안 인큐베이션하였다. 제한효소 절단을 아가로오스 겔 전기영동에 의해 분석하였다. 예측된 절단 패턴이 관찰되었으며 이는 약 1700 pb 의 유전자 단편 탈락 (fall out) (Rxn #3 및 4 에 대해) 및 벡터의 경우 약 5.5 kb 의 벡터 주쇄 단편 (Rxn #1 및 2)이 나타나는 것으로 특징지어졌다. TENECT 및 TENECT-Opt cDNAs 를 나타내는 약 1700 bp DNA 단편을 QIAGEN 겔 추출 키트를 사용하는 겔 추출 방법에 의해 별도로 정제하였다. pcDNA3.1D/V5-His 포유류 발현 벡터의 약 5.5kb 절단된 벡터 주쇄도 동일한 키트를 사용하여 정제하였다. 필요 cDNA 및 벡터 DNA 단편의 제한효소 절단 및 겔 추출에 이어, 각 정제된 DNA 샘플의 분액 (1~2 마이크로리터)을 아가로오스 겔 전기영동을 사용하여 분석하여, 아래 도 4에 나타낸 것과 같이 순도 및 온전성 (integrity)을 확인하였다:
C. pcDNA3 .1D/ V5 - His 주쇄의 TENECT TENECT - Opt cDNAs 와의 라이게이션 :
절단 및 정제된 벡터 및 인서트 단편의 DNA 농도를 평가하였다 (상기 도 4 참조) 및 라이게이션을 하기 방식으로 설정하였다:
성분 최종 농도 Rxn #1 (T-V) Rxn # 2 ((T-V+1) Rxn # 3 (T-Opt-V) Rxn # 4 (T-Opt-V+1)
물 10x Rxn 버퍼 벡터 인서트 T4 DNA 리가아제 최종 부피 - 1 50ng 10ng/8ng 15U 20μl 15μl 2μl 2μl - 1μl 20μl 10μl 2μl 2μl 5μl 1μl 20μl 15μl 2μl 2μl - 1μl 20μl 9μl 2μl 2μl 6μl 1μl 20μl
반응물을 부드럽게 혼합하고, 스핀다운하고 실온에서 2~3 시간 동안 인큐베이션하였다. DH1O 컴피턴트 세포를 라이게이션 반응 혼합물의 내용물로 형질전환시켰다.
D. pcDNA3 .1- TENECT / V5 - His / TNK - tPA 및 pcDNA3.1D-TENECT-Opt/V5-His/TNK-tPA-Opt의 추정적인 클론의 제한효소 절단 분석.
암피실린을 함유하는 L.B. 한천 플레이트 상에서 수득된 콜로니로부터 플라스미드 DNA를 개별적으로 정제하였으며, 도 5에 나타낸 것과 같이, 분리된 플라스미드 DNA의 제한효소 절단 분석에 의해 원하는 cDNA 인서트의 존재를 확인하였다.
pcDNA3.1-TENECT/V5-His/TNK-tPA 및 pcDNA3.1-TENECT-Opt/V5-His/TNK-tPA-Opt를 함유하는 몇몇 추정적인 클론의 제한효소 절단 후 수득된 결과에 따라, 바람직한 제한 패턴을 나타낸 클론 중 일부를, TENECT 및 TENECT-Opt cDNAs 를 내부적으로 절단하여 도 6에 나타낸 것과 같은 다양한 크기의 단편을 생성하는 제한 효소를 사용하는 추가의 제한효소 절단 분석을 위해 선발하였다.
제한 맵핑 분석을 위해 선발된 대부분의 PcDNA3.1-TENECT/V5-His/TNK-tPA 및 PcDNA3.1-TENECT-Opt/V5-His/TNK-tPA-Opt 클론은, 알고있는 내부 제한 자리의 존재에 기초하여 예측된 단편 크기를 산출하였으며, 이에 따라 이들 클론은 DNA 서열결정 분석에 의해 더욱 확인될 것이다.
드 노보 합성된 TENECT 및 TENECT-Opt cDNAs 를 사용하여 만들어진 재조합 발현 구축물의 맵을 도 7 및 8에 그림으로 나타내었다.
실시예 4: 인간 t- PA 구축물의 유지 및 증식:
인간 t-PA를 암호화하는 cDNA 구축물의 유지 및 증식은 표준 박테리아 배지에서 수행될 것이다. 모든 클론의 글리세롤 스톡(stock)은 -70℃에서 유지 및 저장될 수 있다.
실시예 5: CHO - K1 세포에서의 일시적이며 안정한 재조합 단백질 발현:
FDA가 치료적 단백질의 제조에 대해 승인한 포유류 세포주인, 중국 햄스터 난소 세포 (CHO)를 사용하여 인간 t-PA 의 일시적이고 안정한 발현을 수행하였다. 일시적인 발현은 구축물의 발현의 확인 및 소량의 재조합 단백질을 신속히 수득하는데 유용하다.
시험관 내 생분석 또는 ELISA 와 같은 수단을 사용하는, t-PA 의 발현을 위해 안정한 형질전환체를 스크리닝하고, 최고의 제조자 (producer)를 선발할 것이다. 동종의 안정한 세포주를 클론 희석하여 선발할 수 있으며, 그 후 증폭 및 동결하였다.
단백질 발현은, 웨스턴 블롯, ELISA, 및 기능적 분석과 같은 분석 수단을 이용하여 더욱 분석할 수 있다.
실시예 6: 재조합 조직 플라스미노겐 활성제의 정제
규제관할 기관의 지침에 따른, 바람직한 재조합 단백질을 과잉발현하는, 오염물이 없는 세포주의 수립에 뒤이어, 정제 전략은 정제 전략은 주요 목적으로서 프로세스 경제학, 시장에 대한 속도, 확장성(scalability), 재현성, 및 기능적 안정성 및 구조적 온전성을 갖는 제품의 최대 순도를 겨냥할 것이다. 이러한 취지로, 여과 (정상 및 접선 흐름 여과) 및 크로마토그래피 양자를 갖는 조합 접근이 개발될 것이다. 프로세스 자격 요건 및 수용 기준 연구를 3개의 배취에 대해 수행할 것이다.
따라서, 현재 발명은 정제 공정에서 또는 그 자체로서 알려진 표준 방법들의 하기 단계를 고려한다.
a. 정상 및 접선 흐름 여과 과정을 사용하는 조생의 배양액의 초기 정화 및 농축
b. 한외 여과/투석 여과 (접선 흐름 여과에 기초)
c. 크로모(chromo) 단계 - I: 헤파린, 라이신, 금속 (아연)킬레이트, 세파로오스 및 세파로오스에 고정화된 mab을 이용하는 친화성 크로마토그래피. 보다 바람직하게는, 라이신 세파로오스가 다운스트림 단위 조작에서 사용될 것이다.
e. 크로모 단계 - II: DEAE 셀룰로오스를 이용하는 음이온 교환 크로마토그래피.
f. 바이러스 제거 및 멸균 여과
g. 내독소 제거
주: 추가적으로, 셀루파인 설페이트와 같은 플로 쓰루(flow through) 기재의 음이온 교환기가 공정 오염물, 내생/외래 미생물 바이러스 및 컬럼 추출가능물의 선택적인 결합에 사용될 것이다.
실시예 7: 생화학적, 면역학적 및 이화학적 방법을 이용한 표적 단백질의 동일성의 확립:
각 단계에서 총 단백질의 회수율은 비신코닌산(BCA) 절차/브래드포드 염료 결합 방법을 이용하여 정량화될 것이다. 표적 단백질 농도는 정제의 각 단계에서 천연 서열 t-PA 에 대해 표준화된 폴리클로날/모노클로날 항-tPA 항체를 사용하는 포획 ELISA 와 같은 매우 특이적이고, 신뢰성 있는 효소 기재 면역분석법을 이용하여 일과적으로 결정될 것이다. 정성적이고 표적 특이적인 웨스턴 분석이 각 단계에서 따를 것이다. 역상 크로마토그래피, 등전점 포커싱 및 2차원 겔 전기영동을 정제된 산물을 평가하기 위해 이용할 것이다. 2차 구조 분석은 원자외선 원평광 이색성을 이용하여 조사할 수 있다. 분자 질량 및 올리고머 상태를 크기 배제 및 MALDI-TOF를 이용하여 조사할 것이다. 상기 조사는 또한 pH 및 온도에 대한 단백질의 안정성에 집중할 것이다.
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Claims (9)

  1. 하기 단계를 포함하는, 생체 내 생물학적으로 활성인 조직 플라스미노겐 활성제의 제조 방법:
    (a) 하기로 이루어지는 군으로부터 선택된 분리된 DNA 서열로 형질전환 또는 형질감염된 숙주세포를, 적절한 영양 조건 하에서, 배양하는 단계: (i) 서열번호 1 및 서열번호 2에 나타낸 DNA 서열, 또는 (ii) 상기 (i) 및 (ii)에 정의된 DNA 서열에 엄격한 조건 하에서 혼성화하는 DNA 서열 또는 그의 상보 가닥; 및
    (b) 상기 재조합 조직 플라스미노겐 활성제 생성물을 그로부터 분리하는 단계.
  2. 조직 플라스미노겐 활성제를 암호화하는, 서열번호 1 또는 2에 나타낸 합성 DNA 서열로 숙주 세포를 형질전환하고, 상기 숙주 세포 또는 그의 성장 배지로부터 상기 생성물을 분리하는 단계를 포함하는 생체 내 생물학적으로 활성인 조직 플라스미노겐 활성제 생성물의 제조방법.
  3. 제 1 항 또는 제 2 항에 있어서, 숙주 세포가 포유류 세포인 것을 특징으로 하는 방법.
  4. 제 1 항 또는 제 2 항에 있어서, 숙주 세포가 바람직하게는 CHO K1 세포인 것을 특징으로 하는 방법.
  5. 하기 단계를 포함하는, 심장발작 및 심장마비를 치료하는 생체 내 생물학적 성질을 갖는 조직 플라스미노겐 활성제의 가용성 형태의 제조방법:
    a) 조직 플라스미노겐 활성제 프로모터 DNA 외에, 서열번호 3의 성숙한 에리트로포이에틴 아미노산 서열을 암호화하는 DNA에 작동적으로 연결된 프로모터 DNA 를 포함하는 포유류 세포를 적절한 영양 조건 하에서 배양하는 단계; 및
    b) 상기 세포에 의해 발현된 글리코실화된 에리트로포이에틴 폴리펩티드를 분리하는 단계.
  6. 제 5 항에 있어서, 프로모터 DNA 가 바이러스성 프로모터 DNA 인 것을 특징으로 하는 방법.
  7. 도 7 또는 8의 벡터 구축물로 숙주 세포를 형질전환하는 단계 및 상기 숙주 세포 또는 그의 성장 배지로부터 조직 플라스미노겐 활성제 생성물을 분리하는 단계를 포함하는 생체 내 생물학적으로 활성인 조직 플라스미노겐 활성제 생성물의 제조 방법.
  8. 제 7 항에 있어서, 상기 벡터가 포유류 세포 특이적 벡터이고, 가장 바람직하게는 도 7 및 8에 나타낸 것과 같은 벡터인 것을 특징으로 하는 방법.
  9. 배양물에서 키운 포유류 세포로부터 정제된, 치료학적 유효량의 인간 조직 플라스미노겐 활성제 및 약학적으로 허용가능한 희석제, 보조제 또는 담체를 포함하는 약학 조성물.
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