KR20040015508A - 유전자 이입을 이용하여 새로운 단백질이 발현되는 엑소좀및 이의 활용 방법 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 특정 항원을 인위적으로 세포내에 도입하여 그 세포로부터 분리한 엑소좀(exosome)에 상기 도입한 특정 항원이 안정하게 발현되어 세포 밖으로 방출되도록 하는 엑소좀 및 이러한 엑소좀을 활용하는 방법에 관한 것이다.
본 발명에 따른 엑소좀은 유전자 이입을 이용하여 외래 항원을 목표 세포주내로 도입하여 상기 도입된 항원이 안정하게 발현되어 목표 세포주의 엑소좀을 통하여 세포밖으로 방출되도록 하는데 그 특징이 있다.
본 발명에 따르면 유전자 이입에 의해 외래 항원을 종양세포의 엑소좀으로 유도하여 면역원으로 이용함으로써 쉽게 면역체계에 변화를 유도할 수 있는 효과가 있다.
Description
본 발명은 유전자 이입을 이용하여 새로운 단백질이 발현되는 엑소좀 및 이의 활용 방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 특정 항원에 대한 유전자를 세포내로 도입하여 그 세포로부터 분리한 엑소좀(exosome)에 상기 도입한 특정 항원이 안정하게 발현되어 세포 밖으로 방출되도록 하는 엑소좀 및 이러한 엑소좀을 활용하는 방법에 관한 것이다.
엑소좀은 원래 적혈구가 성숙되어가는 마지막 단계에서 불필요한 단백질을 제거, 배출하는 방법으로서, 그러한 단백질을 가지고 세포 밖으로 분비되어지는 50-90nm 크기의 컵모양을 띤 막구조의 작은 소낭을 가리킨다. 이러한 엑소좀은 전자현미경을 통한 연구에서 원형질막(plasma membrane)으로부터 직접 떨어져 나가는 것이 아니라 다낭체(multivesicular bodies, MVBs)라고 불리는 세포내 특정 구획에서 기원하여 세포밖으로 방출, 분비되는 것으로 관찰되었다. 즉, 다낭체와 원형질막의 융합이 일어나면, 그러한 소낭들은 세포밖 환경으로 방출되는데, 이것을 엑소좀이라고 부른다. 이러한 엑소좀이 어떤 분자적 기작에 의해 만들어지는 지는 확실히 밝혀진 바가 없으나, 적혈구 세포 뿐만이 아니라 B-림프구, T- 림프구, 수지상세포, 혈소판, 대식세포 등을 포함한 다양한 종류의 면역 세포들과 종양세포 등도 살아 있는 상태에서 엑소좀을 생산하여 분비한다고 알려져 있다. 특히, 항원제시세포(antigen presenting cell, APC)에서는 다낭체를 포함해 막구조를 가지는 세포 내 구획에서 항원 펩티드가 MHC(major histocompatibility complex) 클래스 II 분자에 선적되기 때문에 이로부터 기원되는 엑소좀도 항원 펩티드-MHC 클래스 II 컴플렉스를 가지고 있다. 따라서, 엑소좀은 면역원(immunogen)의 수송체로서 CD4+ T 림프구에 항원 펩티드를 제시할 수 있고, 그에 따라 T 림프구의 증식과 같은 면역 반응을 유도할 수 있다. 또한, 엑소좀에는 MHC 클래스 I, 열충격 단백질(HSPs;heat-shock proteins) 등 면역 반응을 자극시킬 수 있는 능력을 가진 분자들이 농축되어 있기 때문에 자가면역 질환(autoimmune disease)이나 종양 치료에 있어서 면역증강 또는 감소의 목적으로 이용될 수 있다.
이에 본 발명은 유전자 이입 기술을 이용하여 외래 항원을 종양세포에 도입함으로써 도입한 외래 항원이 종양세포내에서 안정하게 발현되어 세포 밖으로 방출되도록 하는 엑소좀을 제공하는데 그 목적이 있다.
본 발명의 다른 목적은 상기 엑소좀을 이용하여 분리가 어려운 단백질을 정제하거나 다양한 면역원의 운반체로서 이용하는 등의 활용 방법을 제공하는 것이다.
도1은 본 발명에 따른 새로운 단백질이 발현된 엑소좀을 얻는 과정을 개략적으로 나타낸 반응 흐름도이다.
도2는 본 발명에 따른 목표 세포주와 그로부터 얻은 엑소좀의 단백질 구성을 비교한 SDS-PAGE 전기 영동 분석 결과이다.
도3은 본 발명에 따라 유전자 이입된 외래 항원이 목표 세포주의 세포 표면에 실제로 노출됨을 보여주는 형광표지 세포분리기(FACS) 분석 결과이다.
도4는 본 발명에 따라 유전자 이입된 외래 항원이 목표 세포주에서 분리한 엑소좀의 표면에 존재함을 보여 주는 웨스턴 블롯 실험 결과이다.
도5는 본 발명의 일 실시예에 따라 외래 항원을 도입시키지 않고 원래부터 종양항원을 갖는 사람의 종양세포주에서 분리한 엑소좀에 종양항원이 존재함을 보여 주는 웨스턴 블롯 실험 결과이다.
상기 목적을 달성하기 위한 본 발명에 따른 엑소좀은 특정 항원에 대한 유전자를 유전자 이입에 의해 목표 세포주내로 도입함으로써 상기 도입된 유전자의 단백질이 상기 목표 세포주내에서 안정하게 발현되어 세포 밖으로 방출되도록 하는데 그 특징이 있다.
또한, 본 발명에 따른 엑소좀을 이용하여 분리가 어려운 단백질을 구조적 기능적 손상없이 자연 상태로 분리하는데 활용할 수 있으며, 유전자 이입을 이용하여 외래 항원을 면역원으로 이용하여 면역체계에 변화를 유도하고자 할 때 상기 엑소좀을 면역원의 운반체로서 활용할 수 있다.
이하 본 발명을 첨부된 도면을 참조하여 보다 상세히 설명한다.
엑소좀의 기원이 소포체(Endoplasmic Reticulum, ER)에서부터 골지체(Golgi apparatus)를 거쳐 생성되는 세포내 막구조에 비롯된 것으로 이 장소는 항원과 MHC와의 결합이 일어나 분비경로를 따라 원형질막과 융합하여 외부로 방출되는 곳이다. 한편, 세포내에서 생성되는 세포표면분자나 세포특이항원 등은 소포체에서 생산되어 막구조의 분비경로를 따라 세포표면에 도달, 존재하게 되어 세포밖 환경에 노출된다. 이와 마찬가지로, 세포내에서 새롭게 생성되는 항원 단백질도 막구조의 분비경로를 따라 세포 표면에 노출되거나 엑소좀에 실려서 세포밖으로 분비될 가능성이 높다. 이에 착안하여, 본 발명자들은 특정 항원에 대한 유전자를 세포내로 도입하고 그 세포로부터 엑소좀을 분리하여 도입한 특정 항원이 세포에서 안정하게 발현하여 엑소좀에 실려 세포밖으로 방출되는지를 확인하였다.
본 발명에 따른 유전자 이입에 의해 새로운 단백질이 발현되는 엑소좀을 얻는 과정은 도1에 개략적으로 나타낸 바와 같이 단계별로 정리하면 다음과 같다.
(1) 인간 muc1 유전자를 pLXIN의 BamHI 사이트에 클로닝하여 재조합 백터를 얻는 단계
(2) 상기 재조합 백터를 PA317이라는 패키징 셀라인(packaging cell line)내로 도입하여 muc1 유전자를 포함하는 바이러스 파티클(virus particle)을 생산하는 단계
(3) 상기 바이러스 파티클을 목표 세포주에 형질감염시키는 단계
(4) 상기 형질감염된 세포를 초원심분리하여 엑소좀을 얻는 단계
이상의 (4)단계에서 얻은 엑소좀에 대하여 도입된 항원 유전자가 발현되고 있는지확인하기 위하여 형광물질을 이용하거나 단백질 전기영동을 통해 분석한 결과, 도입해준 항원 단백질이 목표 세포주내에서 안정하게 발현하였으며 엑소좀에 존재하여 세포밖으로 방출됨을 확인하였다.
본 발명에서 인위적으로 도입된 외래 항원으로 Muc1이라는 종양항원 이외 다른 종류의 종양항원을 사용하여 그 적용범위를 넓힐 수 있다.
본 발명에 따른 엑소좀에 포함된 외래 항원은 단백질 3차 구조상의 변화(conformational change)나 분해(degradation)가 없는 원형 그대로의 단백질로서, 실제로 종양이 우리의 생체내에서 발생하였을 경우 면역체계에 노출되어지는 단백질의 형태 그대로이다. 따라서, 외래 항원을 이용하여 면역체계에 변화를 유도하고자 할 때 이러한 엑소좀이 상기 면역원의 운반체로서 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 본 발명에 따라 엑소좀을 이용하여 단백질을 획득하는 방법은 지금까지 분리, 정제가 어려웠던 세포 표면에서 발현하는 막단백질, 거대 분자량을 지니거나 당잔기에 의해 변형되는 단백질, 접힘(folding) 과정이 복잡한 단백질들을 기능적, 구조적 손상 없이 자연상태로 분리, 정제하는데 활용할 수 있다.
이하에서 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명할 것이다. 그러나, 이하의 실시예는 단지 예시를 위한 것이므로 본 발명의 범위를 국한시키는 것으로 이해되어서는 안 될 것이다.
[실시예1]
1. Muc1을 발현하는 안정한 세포주 확립
인간muc1유전자를 pLXIN(Clontech)의 BamHI site에 클로닝하고, 이것을 리포좀에 싸서 PA317이라는 패키징 셀라인(packaging cell line)내로 도입하여 muc1 유전자를 포함하는 바이러스 파티클(virus particle)을 얻은 후, 이 바이러스를 목표 세포주인 CT26(murine colon cancer)에 감염(infection)시켰다. 유전자 도입이 제대로 된 세포만을 선택하기 위하여 배지에 1200㎍/ml의 제네티신을 첨가하여 DNA 도입이 잘 된 세포들만 계속 자라게 하여 세포 군체(colony)를 형성하게 한 후, 도입이 잘 된 클론 CT26 pLXIN-muc1 N1010을 얻었다.
2. SDS-PAGE 및 효소반응을 이용한 Muc1 발현 분석
상기 세포 1×107을 취하여 RIPA buffer 500㎕를 넣고 얼음에서 10분간 방치하여 세포를 용해시킨 후, 원심분리를 통해 단백질을 포함하는 상등액을 얻었다. 이 상등액으로부터 BCA method(PIERCE)를 이용하여 얻은 단백질과 초원심분리를 이용하여 얻은 엑소좀의 양을 측정하였다. 얻어진 단백질 20㎍에 1차 항체로 mouse anti-muc1 IgG를 사용하였고, 2차 항체로 HRP(horseradish peroxidase)가 부착된 HRP-anti-Mouse antibody를 사용하여 상기 효소에 대한 기질을 첨가시 발색되어지는 것을 확인하였다.
SDS-PAGE 전기영동 분석 결과, CT26 N1010세포와 그로부터 얻은 엑소좀의 단백질 구성이 서로 다름을 확인하였으며 이로써 도입된 Muc1 유전자가 엑소좀에 발현되어 있슴을 추정할 수 있다.(도2a)
3. 형광물질을 이용한 Muc1 발현 분석
상기 세포의 표면에 Muc1이 실제로 노출되는지를 확인하기 위하여, 2×105개의 세포을 취하여 0.1% BSA-containing PBS(posphate buffered saline)에 부유한 후 얼음에 놓았다. 여기에 1차 항체 (mouse anti-muc1 IgG)를 2㎕ 넣고 1시간 30분간 반응시킨 후, PBS를 넣고 씻어 반응하지 않은 항체를 제거하였다. 여기에 형광물질이 부착된 2차 항체 (FITC-tagged anti-mouse Ig)를 1㎕씩 첨가하여 얼음에서 1시간 동안 반응시킨 다음, PBS를 넣고 씻은 후, 최종적으로 고정용액(cold 2% PFA-containing PBS) 200㎕를 첨가하였다. 준비된 샘플을 Coulter FACScan으로 형광강도(flourescence intensity)를 측정하였다.
이상의 실험 결과, CT26 세포에 pLXIN-Muc1을 도입한 클론에서 세포표면 단백질인 Muc1이 실제로 이들 세포주의 표면에 노출됨을 확인하였다.(도3a)
4. 웨스턴 블롯 실험을 이용한 Muc1 발현 분석
상기 세포주에서 분리한 엑소좀에 muc1 단백질이 포함되어 있는지를 확인하기 위하여 분리한 엑소좀과 세포 용해질을 가각 20㎍씩 전기영동한 후 분리된 단백질들을 나일론막으로 옮겨 Muc1, HSP70 단백질들을 인지하는 각각의 항체를 처리하여 화학감광으로 인지된 단백질을 확인하였다.
이상의 웨스턴 블롯 실험을 통해 Muc1이 도입된 CT26 pLXIN-muc1 N1010 클론에서 분리한 엑소좀의 표면에 Muc1 단백질이 박혀 있슴을 확인하였다.(도4a)
[실시예2]
실시예1의muc1이 도입된 CT26 세포주로부터 얻은 다른 클론 CT26 pLXIN-muc1N1019에서 엑소좀을 분리하였다. 얻어진 엑소좀에 Muc1이 실제로 노출되었는지를 SDS-PAGE 전기영동 분석 결과(도2a), FACS 분석 결과(도3a) 및 웨스턴 블롯 실험 결과(도4a)를 통하여 확인하였다.
[실시예3]
목표 세포주로 TA3HA를 사용한 것을 제외하고는 실시예1과 동일한 방법을 반복하여 muc1이 도입된 TA3HA 세포주를 얻었다. 이 세포주로부터 얻은 클론 TA3HA pLXIN-muc1 615에서 엑소좀을 분리한 후, 얻어진 엑소좀에 Muc1이 실제로 노출되었는지를 SDS-PAGE 전기영동 분석 결과(도2b), FACS 분석 결과(도3b) 및 웨스턴 블롯 실험 결과(도4b)를 통하여 확인하였다.
[실시예4]
실시예3의muc1이 도입된 TA3HA 세포주로부터 얻은 다른 클론 TA3HA pLXIN-muc1 617에서 엑소좀을 분리하였다. 얻어진 엑소좀에 Muc1이 실제로 노출되었는지를 SDS-PAGE 전기영동 분석 결과(도2b), FACS 분석 결과(도3b) 및 웨스턴 블롯 실험 결과(도4b)를 통하여 확인하였다.
[실시예5]
종양항원으로 CEA와 Muc1을 가지고 있는 사람위암 세포주 KATO Ⅲ을 배양한 후, 그 배양액을 초원심분리하여 엑소좀을 얻었다. 얻어진 엑소좀을 웨스턴 블롯 실험하여 엑소좀내에 상기 종양항원이 존재하고 있슴을 확인하였다.(도5)
[실시예6]
종양항원으로 Muc1을 가지고 있는 사람유방암 세포주 MCF7을 배양한 후, 그 배양액을 초원심분리하여 엑소좀을 얻었다. 얻어진 엑소좀을 웨스턴 블롯 실험하여 엑소좀내에 상기 종양항원이 존재하고 있슴을 확인하였다.(도5)
이상의 실시예1 내지 4에서 임의의 외래 항원 Muc1을 목표 세포주에 인위적으로 도입하여 목적하는 항원이 엑소좀과 함께 분비됨을 확인하였다. 이로써 백신 등과 같은 면역반응에 이용하기 위한 목적 항원을 쉽고 안전하게 확보할 수 있다.
또한, 실시예 5 및 6에서와 같이 인위적으로 목적 항원을 외부에서 도입하지 않고, 원래부터 종양항원들을 발현하고 있는 종양세포주로부터 분비되는 엑소좀에 종양항원이 실려 나옴을 확인하였다. 이를 이용하여 다른 종류의 종양항원을 발현하고 있는 다양한 종양세포주들로부터 엑소좀을 분리, 정제함으로써 각각의 세포들이 가지고 있는 다양한 종양항원을 확보하여 다양한 종류의 항원저수지(antigen pool) 또는 항원은행(bank)을 구축할 수 있을 것으로 기대된다.
본 발명에 따르면 유전자 이입에 의해 새로운 단백질이 발현되는 엑소좀을 이용하여 종양백신 개발 시 백신의 기초 재료가 되는 항원단백질을 일일이 합성, 분리 및 정제해야 하는 시간적, 경제적 낭비를 획기적으로 줄일 수 있는 효과가 있다.
또한, 본 발명에 따라 엑소좀을 이용하여 단백질을 자연 상태로 분리, 정제함으로써 단백질의 변형으로 인한 생체내 면역반응의 부작용 및 실험적인 오차들을 극복할 수 있는 효과가 있다.
이상에서 본 발명은 기재된 구체예에 대해서만 상세히 설명되었지만 본 발명의 범위내에서 다양한 변형 및 수정이 가능함은 당해업계에서 통상적인 기술을 가진 자에게는 명백한 것이며, 이러한 변형 및 수정이 첨부된 특허청구범위에 속함은 당연한 것이다.
Claims (3)
- 특정 항원에 대한 유전자를 유전자 이입에 의해 목표 세포주내로 도입함으로써 상기 도입된 유전자의 단백질이 상기 목표 세포주내에서 안정하게 발현되어 세포 밖으로 방출되도록 하는 유전자 이입에 의해 새로운 단백질이 발현된 엑소좀.
- 제1항의 엑소좀을 이용하여 분리가 어려운 단백질을 구조에 영향없이 자연그대로의 형태로 분리하는데 활용하는 방법.
- 새로운 항원 유전자를 면역원으로 이용하고자 할 때, 상기 제1항의 엑소좀을 상기 면역원의 운반체로서 활용하는 방법.
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