KR102661905B1 - Tusc2 면역요법을 위한 방법 및 조성물 - Google Patents

Abstract

면역 체크포인트 억제제와 함께 종양 억제 요법, 예를 들어, TUSC2 요법을 투여하는 단계를 포함하는 암을 갖는 대상체의 치료 방법. 암 요법에 사용하기 위한 키트 및 시약도 또한 제공된다.

Description

TUSC2 면역요법을 위한 방법 및 조성물

본원은 2016년 10월 12일자로 출원된 미국 가 특허원 제62/407,329호의 이익을 주장하고, 이의 전체 내용은 본원에 참조로 인용된다.

본원에 제공된 본 구현예는 일반적으로 분자 생물학, 면역학 및 암 요법 분야에 관한 것이다.

종양 형성의 분자 및 유전 기전이 보다 잘 설명됨에 따라, 암 요법의 초점은 조직으로부터 유전 수준으로 이동되었다(참조: Bishop, 1991). 두 가지 주요 유전자 부류인 암 유전자 및 종양 억제 유전자(TSG)의 돌연변이는 종양 형성 과정에서 중추적인 역할을 한다. TSG는 불활성화를 위한 동형접합성 결실 또는 돌연변이를 요구하는 것으로 보이고, TSG 발현의 복원은 인간 종양에서 실현 가능하다(참조: Lowe et al., 2004; Roth, 2006). 폐암 세포주 및 원발성 폐 종양의 3p21.3 영역에서 동형접합성 결실은 이 영역으로부터 종양 억제 활성을 갖는 다수의 유전자의 동정을 유도했다(참조: Lerman et al., 2000). 이러한 결실은 표적화된 항암 요법의 개발을 유도했다. 그러나, 이러한 요법의 효능이 어떻게 강화될 수 있는지는 여전히 불분명하다.

제1 구현예에서, 면역 체크포인트 억제제(immune checkpoint inhibitor)와 함께 종양 억제 요법(예: TUSC2 요법)을 투여하는 단계를 포함하는, 암을 갖는 대상체의 치료 방법이 제공된다. 따라서, 암을 갖는 대상체를 치료하는 방법이 제공되고, 여기서 상기 대상체는 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제로 치료되고 (또는 이전에 투여되고), 상기 방법이 종양 억제 요법, 예를 들어, TUSC2 요법을 대상체에게 투여하는 단계를 포함한다. 예를 들어, TUSC2 요법으로 치료되는 대상체는 TUSC2 요법 투여 1시간, 6시간, 12시간, 1일, 3일, 1주 또는 2주 전에 면역 체크포인트 억제제가 투여된 대상체일 수 있다. 본원에 사용된 바와 같이, TUSC2 요법은 암 세포에서 TUSC2 폴리펩타이드의 발현을 제공하거나 일으키는 임의 유형의 요법일 수 있다(참조: 예를 들어, 본원에 참조로 인용된 미국 특허 제7,902,441호). 예를 들어, TUSC2 요법은 TUSC2 폴리펩타이드 또는 TUSC2 발현 벡터를 암 세포에 전달하는 것을 포함할 수 있다. 요법은, 예를 들어, 나노입자를 통해, 또는 핵산 발현 벡터의 경우, 바이러스성 벡터의 사용을 통해 전달될 수 있다.

특정 구현예에서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제와 함께 TUSC2 요법을 대상체에게 투여하는 단계를 포함하는, 암을 갖는 대상체의 치료 방법이 제공된다. 예를 들어, TUSC2 요법은 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제 전, 후 또는 본질적으로 동시에 투여될 수 있다. 따라서, 일부 구현예에서, TUSC2 치료제 및 면역 체크포인트 억제제를 암을 치료하기 위한 치료적 유효량으로 포함하는 조성물이 제공된다.

일부 양태에서, 적어도 하나의 체크포인트 억제제는 CTLA-4, PD-1, PD-L1, PD-L2, LAG-3, BTLA, B7H3, B7H4, TIM3, KIR 또는 A2aR의 억제제로부터 선택된다. 특정 양태에서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제는 인간 프로그램된 세포사 1(PD-1) 축-결합 길항제이다. 일부 양태에서, PD-1 축-결합 길항제는 PD-1 결합 길항제, PDL1-결합 길항제 및 PDL2-결합 길항제로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 특정 양태에서, PD-1 축 결합 길항제는 PD-1-결합 길항제이다. 일부 양태에서, PD-1-결합 길항제는 PD-1의 PDL1 및/또는 PDL2에의 결합을 억제한다. 특정 양태에서, PD-1-결합 길항제는 모노클로날 항체 또는 이의 항원 결합 단편이다. 특정 양태에서, PD-1-결합 길항제는 니볼루맙, 펨브롤리주맙, 피딜리주맙, KEYTRUDA®, AMP-514, REGN2810, CT-011 또는 AMP-224이다. 일부 양태에서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제는 항-CTLA-4 항체이다. 특별한 양태에서, 항-CTLA-4 항체는 트레멜리무맙, YERVOY® 또는 이필리무맙이다. 특정 양태에서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제는 항-킬러-세포 면역글로불린 유사 수용체(KIR) 항체이다. 일부 양태에서, 항-KIR 항체는 리릴루맙이다. 특정 양태에서, 대상체는 하나 이상의 면역 체크포인트 억제제, 예를 들어, 항-PD1 항체 및 항-CTLA4 항체를 투여받았거나 투여받고 있다.

특정 구현예에서, TUSC2 요법의 투여는 TUSC2 발현 벡터, 예를 들어, TUSC2를 인코딩하는 DNA 플라스미드의 투여를 포함할 것이다. 본원에 제공된 구현예에 따라 사용하기 위한 발현 벡터는 일반적으로 TUSC2 코딩 서열의 발현을 위한 조절 요소를 포함할 것이다. 예를 들어, 벡터는 관심 있는 암 세포의 발현에 효과적인 프로모터 및 인핸서 요소를 포함할 수 있다. 특정 양태에서, 예를 들어, TUSC2 발현은 CMV 프로모터 또는 이의 재조합 버전, 예를 들어, 본원에 참조로 인용된 미국 특허 공보 제20070092968호에 기재된 CMV 프로모터 작제물(construct)에 의해 제공된다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 벡터는 변형된 CMV 프로모터를 포함한다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 벡터는 미니-CMV 프로모터를 포함한다. 추가의 발현 조절 요소에는, 예를 들어, 인트론, 약물 반응 요소, RNA 안정화 또는 탈안정화 서열, 세포 편재화 신호, 폴리아데닐화 신호 서열 및/또는 최적화된 번역 개시 코돈이 포함될 수 있다. 플라스미드 DNA 벡터는 복제의 세균성 기원 및/또는 약물 내성 마커와 같은 DNA 생산을 촉진시키는데 도움이 되는 서열을 또한 포함할 수 있다. 특정 특이적 양태에서, TUSC2 발현 벡터는 pLJ143/KGB2/FUS1 플라스미드이다.

발현 벡터를 세포에 전달하는 방법(예: 생체내 전달)은 당업계에 익히 공지되어 있고, 제한 없이, 나노입자(예: 리포좀 나노입자), 지질 접합체 및 바이러스성 벡터를 포함한다. 특정 양태에서, TUSC2 발현 벡터는 나노입자, 예를 들어, N-[1-(2,3-디올레오일옥시)프로필]-N,N,N-트리메틸암모늄 클로라이드(DOTAP):콜레스테롤 리포좀 나노입자로 투여된다. 당업자는 리포좀의 다양한 특성을 조정하여 벡터 전달을 최적화할 수 있다는 것을 인식할 것이다. 예를 들어, 리포좀을 조정하여 특정 크기 범위 및/또는 DNA 대 지질; DNA 대 콜레스테롤; 또는 지질 대 콜레스테롤의 특정 비를 가질 수 있다. 예를 들어, DOTAP:콜레스테롤 리포좀의 경우에, DOTAP:콜레스테롤 비는 약 1.5:1 내지 1:1.5, 예를 들어, 약 10:9로서 정의될 수 있다. 추가의 양태에서, TUSC2 발현 벡터는 리포좀 나노입자로 제공되고, 여기서 상기 나노입자는 약 50 내지 약 500nm(예: 200-500nm)의 평균 입자 크기를 포함한다. 추가의 양태에서, TUSC2-나노입자 제형은 그들의 광학 밀도(OD)에 의해, 예를 들어, 약 0.65 내지 0.95의 OD₄₀₀을 갖는 것으로 정의될 수 있다.

추가의 구현예에서, TUSC2 요법은 TUSC2 폴리펩타이드의 투여 단계를 포함할 수 있다. TUSC2 폴리펩타이드의 투여 방법은, 예를 들어, 본원에 참조로 인용된 미국 공보 제20060251726호 및 제20090023207호에 기재되어 있다. TUSC2 폴리펩타이드는 변형되어 이의 활성 및/또는 암 세포에 들어가는 능력을 향상시킬 수 있다. 예를 들어, 폴리펩타이드는 지질 잔기(예: 미리스토일화됨)로 변형될 수 있다. 특정 양태에서, TUSC2는 나노입자(예: 지질계 나노입자), 예를 들어, 초상자성 나노입자, 나노셸, 반도체 나노결정, 양자점, 중합체계 나노입자, 규소계 나노입자, 실리카계 나노입자, 금속계 나노입자, 풀러린 또는 나노튜브로서 제공된다.

본원에 제공된 구현예에 따르는 TUSC2 요법 및/또는 면역 체크포인트 억제제는 전형적으로 약제학적으로 허용되는 담체로 제형화된다. 구현예에 따르는 요법은, 예를 들어, 정맥내, 피내, 동맥내, 복강내, 병변내, 두개내, 관절내, 전립선내, 흉막내, 기관내, 비내, 유리체내, 질내, 직장내, 국소, 종양내, 근육내, 복강내, 피하, 결막하, 소포내, 점막, 심막내, 배꼽밑, 안내, 경구, 국소, 국부, 흡입을 통해(예: 에어로졸 흡입), 주사 또는 주입 전달될 수 있고, 전달 경로는 치료될 암의 종류에 의존할 수 있다. 예를 들어, DOTAP:콜레스테롤 리포좀과 복합체화된 TUSC2 발현 벡터는 정맥내 주입을 통해 투여될 수 있다. 특정의 특이적 양태에서, TUSC2 요법은 약 0.01mg/kg 내지 약 0.10mg/kg의 투여량, 예를 들어, 약 0.02, 0.03, 0.04, 0.05, 0.06, 0.07, 0.08, 0.09 또는 0.10mg/kg의 투여량으로 정맥내 투여된다. 추가의 양태에서, TUSC2 요법은 2회 이상(예: 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 또는 10회) 투여될 수 있다. 이러한 요법의 투여량 사이의 타이밍은 가변적일 수 있고, 제한 없이, 투여량 사이에 약 1, 2 또는 3일, 약 1, 2 또는 3주 또는 1개월 또그 이상을 포함할 수 있다.

여전히 추가의 구현예에서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제와 함께 및/또는 하나 이상의 소염제와 함께 대상체에게 TUSC2 요법을 투여하는 단계를 포함하는, 암을 갖는 대상체의 치료 방법이 제공된다. 예를 들어, 소염제는 TUSC2 요법 전, 후 또는 동안에 투여될 수 있다. 추가의 양태에서, 항히스타민제 또는 코르티코스테로이드의 투여와 같은 하나 이상의 소염제가 투여된다. 따라서, 특정의 특이적 양태에서, TUSC2 요법과 함께 사용하기 위한 소염제는 디펜하이드라민 및/또는 덱사멕타손이다.

추가의 구현예에서, 본원에 제공된 방법은 추가의 항암 요법을 투여하는 단계를 추가로 포함한다. 추가의 항암 요법은, 제한 없이, 수술 요법, 화학 요법(예: 단백질 키나제 억제제 또는 EGFR-표적화 요법의 투여), 방사선 요법, 냉동 요법, 발열 요법 치료, 광선 요법, 방사선 절제 요법, 호르몬 요법, 면역 요법, 소분자 요법, 수용체 키나제 억제제 요법, 항혈관형성 요법, 사이토카인 요법 또는 생물학적 요법, 예를 들어, 모노클로날 항체, siRNA, 안티센스 올리고뉴클레오타이드, 리보자임 또는 유전자 요법일 수 있다. 제한 없이, 생물학적 요법은 유전자 요법, 예를 들어, 종양 억제 유전자 요법, 세포사 단백질 유전자 요법, 세포 주기 조절 유전자 요법, 사이토카인 유전자 요법, 독소 유전자 요법, 면역원 요법, 자살 유전자 요법, 프로드럭 유전자 요법, 항세포 증식 유전자 요법, 효소 유전자 요법 또는 항혈관형성 인자 유전자 요법일 수 있다.

따라서, 여전히 추가의 구현예에서, 면역 체크포인트 억제제 및 추가의 항암제, 예를 들어, 화학요법제와 함께 TUSC2 요법(예: TUSC2 폴리펩타이드 또는 TUSC2 발현 벡터)을 대상체에게 투여하는 단계를 포함하는, 암을 갖는 대상체를 치료하기 위한 조성물, 요법 및 방법이 본원에 제공된다. 예를 들어, 화학요법제는 단백질 키나제 억제제, 예를 들어, Src 또는 Akt 키나제 억제제일 수 있다. 일부 양태에서, 화학요법제는 표피 성장 인자 수용체(EGFR) 억제제이다.

따라서, 특정 구현예에서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제 및, 임의로, 단백질 키나제 억제제와 함께 TUSC2 요법을 대상체에게 투여하는 단계를 포함하는, 암을 갖는 대상체의 치료 방법이 제공된다. 예를 들어, TUSC2 요법 및/또는 면역 체크포인트 억제제는 단백질 키나제 억제제 전, 후 또는 본질적으로 동시에 투여될수 있다. 따라서, 일부 구현예에서, TUSC2 치료제, 면역 체크포인트 억제제 및 단백질 키나제 억제제를 암을 치료하기 위한 치료적 유효량으로 포함하는 조성물이 제공된다. 구현예에 따라 사용하기 위한 단백질 키나제 억제제는, 제한 없이, EGFR, VEGFR, AKT, Erb1, Erb2, ErbB, Syk, Bcr-Abl, JAK, Src, GSK-3, PI3K, Ras, Raf, MAPK, MAPKK, mTOR, c-Kit, eph 수용체 또는 BRAF 억제제를 포함한다. 예를 들어, 단백질 키나제 억제제는 아파티닙, 악시티닙, 베바시주맙, 보수티닙, 세툭시맙, 크리조티닙, 다사티닙, 에를로티닙, 포스타마티닙, 게피티닙, 이마티닙, 라파티닙, 렌바티닙, 무브리티닙, 닐로티닙, 파니투무맙, 파조파닙, 페갑타닙, 라니비주맙, 룩솔리티닙, 사라카티닙, 소라페닙, 수니티닙, 트라스투주맙, 반데타닙, AP23451, 베무라페닙, CAL101, PX-866, LY294002, 라파마이신, 템시롤리무스, 에베롤리무스, 리다포롤리무스, 알보시딥, 제니스테인, 셀루메티닙, AZD-6244, 바탈라닙, P1446A-05, AG-024322, ZD1839, P276-00, GW572016 또는 이들의 혼합물일 수 있다. 특정 양태에서, 단백질 키나제 억제제는 AKT 억제제(예: MK-2206, GSK690693, A-443654, VQD-002, 밀테포신 또는 페리포신)이다.

구현예에 따라서 사용하기 위한 EGFR-표적화된 요법은 EGFR/ErbB1/HER, ErbB2/Neu/HER2, ErbB3/HER3, 및/또는 ErbB4/HER4의 억제제를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 광범위한 범위의 이러한 억제제는 공지되어 있고, 제한 없이, 수용체(들) 및 EGFR-결합 항체 또는 앱타머(aptamer)에 대해 활성인 티로신 키나제 억제제를 포함한다. 예를 들어, EGFR 억제제는 게피티닙, 에를로티닙, 세툭시맙, 마투주맙, 파니투무맙, AEE788; CI-1033, HKI-272, HKI-357 또는 EKB-569일 수 있다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 조성물 및 요법은 전신 또는 국소 투여된다. 하나의 구현예에서, 본원에 제공된 조성물 및 요법은 전신 투여된다. 특정 양태에서, EGFR 억제제는 TUSC2 요법 전, 후 또는 본질적으로 동시에 환자에게 투여된다. 예를 들어, 요법은 정맥내 주입으로 공투여하는 것과 같이 공투여될 수 있다. 특정 구현예에서, TUSC2 및 EGFR 억제제는 암을 치료하기에 효과적인 임의의 양으로 투여될 수 있다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 조성물, 요법 및 방법은 단독으로 투여된 어느 하나의 조성물보다 적은 용량으로 TUSC2 및 EGFR 억제제를 투여하는 단계를 포함한다. 특정 구현예에서, 조성물, 요법 및 방법은 부작용을 감소시키는 적은 용량으로 TUSC2 및 EGFR 억제제를 투여하는 단계를 포함한다. 특정 구현예에서, 조성물, 요법 및 방법은 단독으로 투여된 어느 하나의 조성물에 의해 제공된 것보다 부가적, 협동적 또는 상승적 효과를 제공하기에 효과적인 투여량으로 TUSC2 요법, 면역 체크포인트 억제제 및 EGFR 억제제를 투여하는 단계를 포함한다. 특정 양태에서, 이러한 요법으로 치료하기 위한 암은 본원에 기재된 것들 중 어느 하나, 예를 들어, 폐암(예: 비소세포 폐암)일 수 있다. 특정의 바람직한 양태에서, 병용 요법으로 치료하기 위한 암은 EGFR-발현 암이다. 특정 구현예에서, EGFR-발현 암은 적어도 1%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의 EGFR 발현 종양 세포를 포함한다.

여전히 추가의 구현예에서, 암을 갖는 대상체를 치료하는 방법이 본원에 제공되고, 여기서 암이 EGFR을 발현시킨다는 것이 이전에 결정되었고, 상기 방법은 면역 체크포인트 억제제 및 EGFR 억제제와 함께 TUSC2 요법을 대상체에게 투여하는 단계를 포함한다. 특정 구현예에서, 암이 EGFR 억제제를 발현시키는지를 결정하는 단계 및 TUSC2, 면역 체크포인트 억제제 및 EGFR 억제제를 대상체에게 투여하는 단계를 포함하는, 암을 갖는 대상체의 치료 방법이 본원에 제공된다. 암의 EGFR-발현 상태를 평가하는 방법은, 예를 들어, 본원에 참조로 인용된 미국 특허 공보 제20110052570호에 기재되어 있다. 특정 양태에서, EGFR-발현 암은 돌연변이체 EGFR를 발현시키는 암, 예를 들어, L858R 및/또는 T790M 돌연변이를 갖는 EGFR을 발현시키는 암일 수 있다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 조성물 및 요법은 적어도 1%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 또는 99%의 EGFR 발현 종양 세포를 포함하는 EGFR-발현 암을 갖는 환자에게 투여된다. 추가의 양태에서, 치료 대상체는 EGFR을 발현시키는 것으로 이전에 결정된 암을 갖고, 암 세포의 적어도 10%가 세포사멸적이다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 방법은 EGFR-발현 암 세포의 적어도 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%가 세포사멸적인지를 결정하는 단계를 추가로 포함한다.

특정 구현예에서, 치료 또는 평가하기 위한 암은 종양, 예를 들어, 원발성 또는 전이성 종양으로서 존재할 수 있다. 암은 초기 단계 암일 수 있거나, 전이성 또는 후기 단계 암일 수 있다. 특정 양태에서, 암은 구강암, 구인두암, 비인두암, 호흡기 암, 비뇨생식기암, 위장 암, 중추 또는 말초 신경계 조직 암, 내분비 또는 신경내분비 암, 조혈 암, 신경교종, 육종, 암종, 림프종, 흑색종, 섬유종, 수막종, 뇌암, 구인두암, 비인두암, 신장암, 담도암, 전립선암, 크롬 친화성 세포종, 췌장 섬 세포암, 리-프라우메니(Li-Fraumeni) 종양, 갑상선암, 부갑상선암, 뇌하수체 종양, 부신 종양, 골형성 육종 종양, 다중 신경내분비 유형 I 및 유형 II 종양, 유방암, 폐암(예: 비소세포 폐암(NSCLC) 또는 소세포 폐암(SCLC)), 두경부암, 전립선암, 식도암, 기관암, 피부암, 뇌암, 간암, 방광암, 위암, 췌장암, 난소암, 자궁암, 자궁경부암, 고환암, 결장암, 직장암 또는 피부암이다. 추가의 양태에서, 암은 하나 이상의 항암 요법에 내성인 암, 예를 들어, 화학 요법 내성 암으로서 정의될 수 있다. 예를 들어, 암은 백금계 화학 요법제, 예를 들어, 시스플라틴에 내성인 암일 수 있다.

상기 구현예 중 일부 양태에서, TUSC2 요법 및 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제를 투여하면 종양에서 NK 및/또는 CD8⁺ T 세포 밀도를 증가시킨다. 특정 양태에서, CD8+ T 세포 밀도는 적어도 3배까지, 예를 들어, 4-, 5-, 6-, 7-, 8-, 9- 또는 10-배까지 증가한다. 일부 양태에서, TUSC2 요법 및 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제를 투여하면 CcL3, CcL4, CcL21a, 및/또는 CcL19 혈청 수준을 생성한다.

여전히 추가의 구현예에서, TUSC2 치료제 및 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제를 포함하는 키트(kit)가 본원에 제공된다. 예를 들어, 일부 양태에서, 본원에 제공된 키트는 TUSC2 치료제, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제 및 TUSC2 치료제 및/또는 면역 체크포인트 억제제에 대한 반응을 결정하기 위해 대상체를 시험하기 위한 시약을 포함한다. 예를 들어, TUSC2 치료제에 대한 반응을 결정하기 위해 대상체를 시험하기 위한 시약은 대상체의 암 세포에서 세포사멸 수준을 결정하기 위한 시약일 수 있다. 추가의 양태에서, 키트는 하나 이상의 소염제 또는 키나제 억제제를 추가로 포함한다. 추가의 양태에서, 키트는 약제학적으로 허용되는 희석제, 시린지(syringe), 주입 백(infusion bag), 주입 라인 및/또는 키트의 사용 설명서 세트를 포함하지만, 이에 제한되지 않는 하나 이상의 추가의 성분을 포함할 수 있다.

본원에 기재된 임의의 방법 또는 조성물은 본원에 기재된 임의의 다른 방법 또는 조성물과 관련하여 구현될 수 있음이 고려된다. 마찬가지로, 대상체를 치료하는 방법의 맥락에서 논의된 본 구현예의 양태는 대상체에서 반응을 예측하는 방법에 동등하게 적용 가능하고, 그 반대도 마찬가지이다.

청구범위 및/또는 명세서에서 "포함하는"이란 용어와 함께 사용될 경우, 단어 단수 ("a" 또는 "an")의 사용은 "하나"를 의미할 수 있지만, 또한 "하나 이상", "적어도 하나" 및 "하나 이상"의 의미와 일치한다.

본원에 사용된 바와 같이, 특정 성분의 관점에서 "본질적으로 함유하지 않는"은 본원에서 특정 성분 중 어느 것도 의도적으로 조성물로 제형화되지 않고/않거나 단지 오염물로서 또는 미량으로 존재한다는 것을 의미하기 위해 사용된다. 따라서, 조성물의 임의의 의도되지 않은 오염으로 인한 특정 성분의 총량은 0.01% 미만이다. 가장 바람직한 것은 특정 성분의 양이 표준 분석 방법으로 검출될 수 없는 조성물이다.

본원 명세서 및 청구범위에서 사용된 바와 같이, 단수("a" 또는 "an")는 하나 이상을 의미할 수 있다. 본원 명세서 및 청구범위에서 사용된 바와 같이, 단어 "포함하는"과 함께 사용될 때, 단수("a" 또는 "an") 단어는 하나 이상을 의미할 수 있다. 본원 명세서 및 청구범위에서 사용된 바와 같이, "또 하나의" 또는 "추가의"는 적어도 제2 또는 그 이상을 의미할 수 있다.

본원 명세서 및 청구범위에서 사용된 바와 같이, 용어 "약"은 값이 장치, 값을 결정하기 위해 사용된 방법 또는 연구 대상체 사이에 존재하는 변화에 대한 고유 오차의 변화를 포함하는 것을 나타내기 위해 사용된다.

본 발명의 다른 목적, 특징 및 이점은 다음 상세한 설명으로부터 명백해질 것이다. 그러나, 본 발명의 특정 구현예를 나타내는 상세한 설명 및 특정 실시예는 본 발명의 취지 및 범위 내의 다양한 변화 및 변형이 이 상세한 설명으로부터 당업자에게 명백해질 것이기 때문에 단지 예시로써 제공된다는 것이 이해되어야 한다.

다음 도면은 본 명세서의 일부를 형성하고, 본 발명의 특정 양태를 추가로 입증하기 위해 포함된다. 본 발명은 본원에 제공된 특정 구현예의 상세한 설명과 함께 이들 도면 중 하나 이상을 참조하여 더 잘 이해될 수 있다.
도 1a-1e: 향상된 항-종양 활성은 CMT167 피하 모델에서 TUSC2 및 항-PD1 병용 치료에 의해 발견되었다. (a) 종양 접종, 치료 스케쥴 및 투여량, 면역 세포 분석을 위한 혈액 및 비장 수집 및 면역조직화학 뿐만 아니라 RNA 단리를 위한 종양 수거를 보여주는 순차적 치료 전략. (b) CMT167-luc 세포 상의 PD-L1의 표면 발현 수준은 유동 세포 계측법에 의해 결정되었다. (c),(d) 4개의 상이한 치료 그룹(N=10 마우스/그룹)의 종양 성장 곡선은 IVIS 200에 의한 작은 동물 이미징으로부터 생성된 종양 용적 & 생물발광 강도에 기초하여 결정되었다. 대조군은 빈(TUSC2 유전자 부재) 벡터가 적재된 나노소포체로 처리되었다. TUSC2+PD1 요법이 최고 종양 성장 억제를 유도했고, TUSC2, PD1 및 대조군이 뒤따랐다. (e) IVIS 200 이미징으로 촬영된 생물발광 신호로 각 치료 그룹의 종양 보유 마우스의 대표적인 이미지. 데이터는 4개의 독립적 실험의 대표이다. SAS에서 PROC MIXED 절차의 CONTRAST 성명서를 사용하여 치료 그룹간 이미징 강도를 비교했다. SAS 버전9.4 및 S-Plus 버전 8.04를 사용하여 모든 분석에 대한 계산을 수행했다. 통계는 달리 언급되지 않는 한 p<0.05의 유의 수준에서 나타났다. *, P <0.05, **, P < 0.01, ***, P < 0.001
도 2a-2f: 조합된 TUSC2 및 항-PD1은 천연 킬러 및 세포독성 T 세포를 상향 조절하고, 조절 세포를 하향 조절한다. TUSC2+항-PD1 치료는 말초 혈액 및 비장에서 면역 세포 집단을 변화시켰다. 대조군은 빈(TUSC2 유전자 부재) 벡터가 적재된 나노소포체로 처리되었다. (a) 종양 비함유 마우스에서 NK, T 세포 및 B 세포에 대한 TUSC2의 효과. n=3 마우스/그룹의 풀링 샘플이 유동 세포 계측법 분석에 사용되었다. TUSC2 나노소포체의 생체내 흡수는 외인성 TUSC2 발현에 기초하여 결정되었다 TUSC2 나노소포체의 정맥내 주입 24시간 후에, 4개의 상이한 면역 집단(T 세포, B 세포, NK 세포 & Lin 음성 세포)이 비장으로부터 분류되었고, RT-PCR을 수행하여 TUSC2의 발현을 결정했다. (b) 종양 이식 2주째에 천연 킬러(NK), T 세포 및 B 세포에 대한 TUSC2 및 TUSC2+항-PD1 치료 효과. (c) TUSC2 치료는 MDSC 상태를 변화시켰다. 단핵구 및 과립구 MDSC는 다음 게이팅 전략을 사용하여 결정되었다; CD45+>CD3->MHCII 저(low) > CD11b+ > Gr-1+. CD11b+ Gr-1 고(high)는 과립구 MDSC로서 간주되었고, CD11b+Gr-1 저는 단핵구 MDSC로서 간주되었다. 데이터는 평균 백분율 ±SD, n=5로서 제시된다. *, P < 0.05; **, P <0.01; *** P <0.001 (d) 말초 혈액 및 비장 세포에서 Treg에 대한 치료 효과. T 림프구 집단의 CD4+CD25+ 이중 양성은 Treg로서 간주되었다. 데이터는 평균 백분율 ±SD, n=5, **, P <0.01; *** P <0.001로서 제시된다. (e) T 림프구에 대한 PD1, CTLA4 및 Tim-3의 표면 발현. 데이터는 CD3+PD1+/CLTA4+/Tim-3+의 평균 백분율 ± SD, n=5; *, P < 0.05; **, P <0.01; *** P <0.001로서 제시된다. (f) TUSC2 및 항-PD1의 치료 효과는 말초 혈액 백혈구 중 NK/MDSC 세포 뿐만 아니라 CD8 T 이펙터/Treg 세포의 비로서 제시된다. 데이터는 평균±SD, n=5으로서 제시되고, 유동 데이터의 통계적 분석은 일반적인 선형 회귀 모델 및 SAS에서 PROC GENMOD 절차의 CONTRAST 성명서로 수행되었다. *, P < 0.05; **, P <0.01; *** P <0.001.
도 3a-3c: 항-PD1과 TUSC2 조합은 NK 및 CD8 T 세포의 침윤을 증가시키고, MDSC 및 Treg의 침윤을 방해했다. (a) 피하 종양은 빈(TUSC2 유전자 부재) 벡터가 적재된 나노소포체(대조군), TUSC2 나노소포체, 항-PD1 및 TUSC2+항-PD1로 처리하였다. 포르말린 고정 절제된 종양은 항-CD8, 활성화된 NK 세포를 위한 항-NKp46, MDSC를 위한 항-Gr-1, Treg를 위한 항-Foxp3으로 면역 염색시켰다. Vectra 자동화 이미징 시스템을 사용하여 종양 면적의 25%의 이미징으로 고해상도 이미지(20X)를 촬영했다. N=5 종양 절편/그룹을 이미지화하였다. 치료 그룹당 약 100개의 이미지를 H-스코어링을 위해 InForm 소프트웨어로 분석했다. 일반화된 선형 회귀 모델을 치료 그룹 중 H 스코어의 통계적 분석용으로 사용했다. 복합 대칭 공분산 구조(compound symmetry covariance structure)를 사용하여 마우스간 변동성과 데이터의 반복 측정 특성을 설명했다. SAS에서 PROC MIXED 절차의 ESTIMATE 성명서를 사용하여 각 치료 그룹 쌍 사이의 H 스코어를 비교했다. *, P < 0.05; **, P <0.01; *** P <0.001. (b) RNA는 치료 그룹(n=3 종양/치료 그룹)으로부터 새로 절제된 종양으로부터 추출하고, 케모카인의 유전자 발현은 NanoString 기술로 결정하였다. 데이터를 표준화하고, 발현의 배수 변화는 nCounter 분석 소프트웨어로 분석하였다. 배수 변화는 대조군 샘플과 비교했다. 막대 그래프는 평균 배수 변화(n=3)를 나타낸다. (c) TUSC2 치료에 의해 유도된 혈청 중의 CCL4 및 CCL5 케모카인의 수준이 도시된다. 피하 종양 보유 마우스는 방법에 기재된 프로토콜에 따라 TUSC2로 처리했다. 치료 10일 후에 혈청을 수집하고, luminex multiplex ELISA를 수행했다. 선형 회구 모델을 사용하여 치료 그룹 사이의 케모카인을 비교했다. SAS의 PROC MIXED 절차의 ESTIMATE 성명서를 사용하여 각 치료 그룹 쌍 사이의 케모카인을 비교했다. SAS 버전 9.4 및 S-Plus 버전 8.04를 사용하여 모든 분석에 대한 계산을 수행했다. 데이터; 평균 ± SD; N=3; ***, P < 0.001.
도 4a-4f: Th1-매개된 면역 반응을 생성하는 천연 킬러 세포에 대한 TUSC2의 항종양 활성의 의존성. 사이토카인 IL-15 및 IL-18은 천연 킬러 세포 조절과 관련되었다. (a) NK 세포의 고갈은 치료 효능 및 항종양 면역 반응을 폐기했다. 종양 생물발광 강도 그래프는 NK 고갈 및 비고갈 마우스에서 TUSC2 및 조합으로 처리된 종양으로부터 생성되는 신호를 나타낸다. NK1.1 항체는 NK 세포의 고갈을 위해 3일마다 5회 주사했다. 대조군은 빈(TUSC2 유전자 부재) 벡터가 적재된 나노소포체로 처리했다. *, P < 0.05; **, P <0.01. (b) TUSC2+항-PD1 치료의 항종양 활성은 종양 강도 그래프(n=5 마우스/그룹)로 나타낸 CD8 T 세포 고갈에 의해 영향을 받았다. (c) 치료 10일 후, NK 고갈 및 비고갈 마우스에서 IFN-γ 및 IL-4 사이토카인의 혈청 수준은 luminex 검정으로 결정되었고, 막대 그래프는 IFN-γ (Th1) 및 IL-4 (Th2)의 비로서 제시된다. 데이터는 평균±SD, n=3으로 제시된다. *, P < 0.05, **, P <0.01, ***, P < 0.001, ****, P < 0.0001 (d) IL-18 및 IL-15 사이토카인의 수준은 NK 고갈 및 비고갈 마우스에서 치료 후 변한다. Luminex 검정을 사용하여 혈청 사이토카인을 측정하였다. 데이터는 평균 pg/ml±SD, n=3으로서 제시된다. *, P < 0.05, **, P <0.01, ***, P < 0.001, ****, P < 0.0001 (e) 대조군과 비교하여 TUSC2로 처리된 마우스로부터 분류된 NK 세포에서 IL-15Ra 및 IL-18R1의 배수 발현. 데이터는 평균±SD, n=3으로 제시되고; * P < 0.05, **, P < 0.01은 다중 t-테스트로 결정되었다. (f) IL-15Ra 및 IL-18R1의 mRNA 발현의 배수 변화를 비교하기 위한 TUSC2 및 TUSC2+PD1로 처리된 종양의 NanoString 분석.
도 5a-5i: 조합된 TUSC2 및 항-PD1 치료는 KRAS-돌연변이체 폐 전이 마우스 모델에서 생존율을 현저하게 향상시키고, 종양 보유 폐에서 천연 킬러 세포를 모집했다. (a) 344SQ-luc 세포는 KrasG12D 대립유전자와 Trp53R172H△G 대립유전자의 녹-인을 갖는 이 실험 전이 모델을 위해 사용되었다. PD-L1 발현 수준은 유동 세포 계측법에 의해 결정되었고, CMT167-luc 세포의 것과 비교되었다. (b) 체크포인트 차단(항-PD1 및 항-CTLA4) 및 TUSC2의 순차적 치료가 개략적으로 도시된다. (c) 생존율은 치료 후 카플란 마이어(Kaplan Meier) 곡선으로 도시된다. 344SQ 세포를 정맥내 주사하고, 마우스를 TUSC2 및 체크포인트 차단 단독으로 또는 조합하여(그룹으로 도시됨) 처리했다. 대조군은 빈(TUSC2 유전자 부재) 벡터가 적재된 나노소포체로 처리하였고, 생존율을 기록했다(n=10 마우스/그룹). 일변량 Cox 모델을 통계 분석에 사용하여 치료 그룹 사이의 전반적인 생존율을 비교했다. 가장 높은 생존율은 TUSC2+PD1 그룹(좌측)에서 관찰되었고, TUSC2, PD1 및 대조군이 뒤따랐다. 유사하게, 가장 높은 생존율은 TUSC2+PD1+CTL4 그룹(우측)에서 관찰되고, TUSC2, PD1+CTLA4 및 대조군이 뒤따랐다. (d) IVIS 200으로 촬영된 종양 보유 마우스의 생물발광 이미지는 종양 세포의 폐 특이적 콜론화를 나타냈다. 신호 강도의 수준이 치료 그룹 간에 도시된다. 3개의 독립적 실험의 대표가 도시된다. (e) 해부된 폐 이미지는 종양 이식 2주 후에 종양 결절 상태를 나타냈다. (f)(g)(h)&(i) 단일 세포는 방법에서 기재된 프로토콜에 따라 상이한 그룹의 전이된 폐로부터 제조되었고, CD49b+ NK 세포, CD4+CD25+ Treg, Gr-1+ MDSC 및 PD-L-1 및 PD-L2 (+)ve 백혈구 침윤은 유동 세포 계측법으로 결정하였다. 데이터는 종양 조직 1g당 기준으로 표준화되었다. NK 세포는 CD45+CD3-CD19-로부터 게이팅되었고; MDSC는 다음과 같이 게이팅되었다: CD45+>CD3->MHCII 저>CD11b+>GR-1+. PD+CT는 항-PD1 및 항-CTLA4 치료를 나타낸다. 데이터는 세포/조직의 g ±SD, n=5로서 제시된다. *, P < 0.05, **, P <0.01, ***, P < 0.001. SAS에서 PROC GENMOD 절차의 CONTRAST 성명서를 사용하여 통계 분석을 위한 유동 데이터를 비교했다.
도 6a-6f: 조합된 TUSC2 및 항-PD1 치료는 종양 미세환경에서 면역 유전자 발현 프로파일을 변화시켰다. 776개의 유전자의 NanoString 전암(pan-cancer) 면역 패널의 유전자 발현 분석은 4개의 치료 그룹(빈 벡터 나노소포체, TUSC2, 항-PD1 및 조합)으로부터 12개 샘플(n=3/치료 그룹)에 대해 수행했다. nCounter 시스템에 의해 생성된 데이터는 유전자 프로파일 및 통계 분석을 정량화하기 위해 사용되기 전에 표준화된다. 양성 대조군, 하우스키핑 유전자 및 음성 대조군을 사용하여 샘플 제조 변동, 배경 노이즈 및 RNA 함량 변동을 조정한다. 선형 모델을 사용하여 전반적인 치료 효과를 평가하고, 콘트라스트를 사용하여 관심 있는 쌍별 비교를 수행한다. 생성되는 p 값은 베타-균일 혼합물(BUM) 모델을 사용하여 모델화하여 허위 발견률(FDR) 컷오프를 결정하고 상당히 차별적으로 발현된 유전자를 동정한다. (a) 히트 맵(heat map)은 치료 그룹 중 전반적인 유의한 유전자를 보여준다. 33개의 유전자가 치료에 따라 유의하게 변화되었다. (b) TUSC2+항-PD1 및 항-PD1 사이의 쌍별 비교는 또 다른 13개 유전자 세트를 동정했다. 볼케이노 플롯은 치료에 의해 상향조절되고 하향조절된 유전자의 분리를 나타낸다. 통계적으로 유의한 유전자는 색상으로 도시된다. (c) 항-종양 면역 반응에 대해 공지된 선택된 유전자는 단일 제제 치료와 비교하여 병용 치료 그룹에서 적어도 2배로 매우 상향조절되었다. (d), (e) & (f)는 대조군과 비교하여 각각 TUSC2, 항-PD1 및 병용 치료에 의한 CD8, INF-γ & 전사 인자(Tbx21, Gata3) 발현의 배수 변화를 도시한다. 여기서 제시된 모든 유전자 발현 데이터는 NanoString 기술에 의해 생성되었다.
도 7: 말초 혈액 백혈구 및 비장 세포의 게이팅(gating) 전략을 제시하여 다색 유동 세포 계측법 검정을 위한 면역 하위집단을 결정하였다 .
도 8a-8b: 다른 면역 세포에 대한 NK 고갈 항체(NK1.1)의 효과. NK1.1의 복강내 주사는 방법에 기재된 프로토콜에 따라 5회 수행하였다. NK 고갈 효율은 최종 주사 3일 후에 평가되었다. 비장세포를 유동 세포 계측법으로 T 세포, B 세포 및 NK 세포에 대해 분석했다. (a) 분석에 사용된 게이팅 전략. (b) CD45, CD3, CD19, CD49b 항체를 염색하기 위해 N = 3 마우스 샘플을 함께 풀링하고, 각 집단의 백분율은 막대 그래프로 나타낸다. 대표적인 산포도는 NK 고갈 효율을 나타낸다.
도 9: 다른 면역 세포에 대한 CD8 T 고갈의 효과. CD8 T 세포 고갈 항체의 복강내 주사는 방법에 기재된 프로토콜에 따라 5회 수행하였다. NK 고갈 효율은 최종 주사 3일 후에 평가되었다. 비장세포를 유동 세포 계측법으로 T 세포, B 세포 및 NK 세포에 대해 분석했다. 대표적인 산포도는 다른 세포에 영향을 미치지 않고 CD8 T 세포 고갈 효율을 나타낸다.
도 10: 종양 미세환경에서 NanoString 유전자 발현 분석. PD1 및 TUSC2+PD1 병용 치료 사이의 쌍별 비교는 13개의 유의하게 변경된 유전자를 나타냈다. 모두 13개의 유전자의 P-값 및 배수 변화가 나열되었다. 선형 모델을 사용하여 전반적인 치료 효과를 평가하고, 콘트라스트를 사용하여 관심 있는 쌍별 비교를 수행한다. 생성되는 p 값은 베타-균일 혼합물(BUM) 모델을 사용하여 모델화하여 허위 발견률(FDR) 컷오프를 결정하고 상당히 차별적으로 발현된 유전자를 동정한다.

암의 발달에는 정상적인 세포 성장을 조절하는 수많은 세포 경로의 탈조절(deregulation)이 포함된다. 건강한 세포는 분자 게이트키퍼(molecular gatekeeper)로서 작용하고 조절되지 않은 세포 분열을 예방하는 수많은 종양 억제 유전자를 발현한다. 따라서, 암 세포 발달에서 중요한 단계는 종양 억제 인자 신호 전달 경로의 파괴이다. 이러한 관점에서, 암 요법을 위한 하나의 유망한 방안은 정상 세포 성장 조절을 회복시키기 위해 암 세포에서 종양 억제 유전자의 발현을 포함한다. 그러나, 지금까지 TUSC2 요법과 같은 종양 억제 요법의 효능을 향상시키기 위해 어떤 유형이 작용할지는 공지되어 있지 않았다.

본 특허원의 연구는 TUSC2 요법이 면역 체크포인트 억제제와 함께 투여될 때 특히 효과적이라는 것을 처음으로 입증한다. 면역 체크포인트 억제제, 예를 들어, 항-PD1 요법은 종양 성장을 억제하기 위해 개체 자체의 면역 세포를 강화시킴으로써 작동한다. 반대로, 종양 억제제, 예를 들어, TUSC2 요법을 사용하는 종양의 치료적 치료는 암 세포의 형질전환된 표현형을 역전시키는 것을 의미한다. 이후의 요법이 오히려 종양 세포가 "덜 형질전환되고", 아마도 덜 면역원성이도록 하기 때문에, 그것은 이전에는 면역 체크포인트 억제제를 사용하는 TUSC2 요법을 사용하려는 시도에 직관적인 반대였을 것이다. 그럼에도 불구하고, 여기에 제시된 연구는 요법이 TUSC2 요법과 함께 병용될 때 면역 체크포인트 억제제(예: 항-PD1 및/또는 CTLA4)의 항종양 효능이 실제로 상당히 향상된다는 것을 입증한다(참조: 예를 들면, 도 1).

구체적으로, 본 연구에서, 항-PD1은 다양한 수준의 PDL-1 발현을 갖는 폐 선암종의 2개의 Kras-돌연변이체, G12V 및 G12D 동종 마우스 모델에서 종양 성장을 억제하고 생존을 연장하는데 제한된 효능을 나타냈다. 그러나, TUSC2 유전자 복원과 병용하면, 종양 퇴행 및 생존에 대한 영향이 훨씬 더 컸다. TUSC2는 선천적 및 적응성 면역 세포 집단 모두를 변경시켰다. 이는 순환성 NK 및 CD8+ T 세포의 현저한 증가와 골수 유래 억제 세포(MDCS), 조절 T 세포(Treg), B 세포, T 세포체크포인트 수용체 PD1 및 T-림프구 관련 단백질 4(CTLA-4), 및 뮤신-도메인 함유-3(TIM-3)의 감소에 의해 입증되었다. 종양 침윤성 NK 및 CD8+T 세포의 밀도는 TUSC2-항-PD1 조합에 의해 유도되었다. NK 또는 CD8+T 세포의 생체내 고갈은 조합의 효능을 각각 완전히 및 부분적으로 완화시켜 CD8+T 세포가 항-PD1에 대한 TUSC2-증강된 감수성에 기여할 수 있지만, NK 세포가 이 상승작용에 필요하다는 것을 시사한다. 인터페론 감마(IFNγ), 인터류킨 15 및 18 (IL15 및 IL18)의 사이토카인 수준은 TUSC2 복원 후 상당히 증가되었고, 이는 또한 이중 체크포인트 차단, 항-PD1+항-CTLA-4에 의한 생존율도 향상시켰다. 유전자 발현 프로파일 분석은 TUSC2-항-PD1 병용 치료에 의해 변경된 종양 미세환경을 나타냈다. 이들 데이터는, 이러한 신규 병용 요법이 Kras 돌연변이체 폐 선암종을 치료하기 위한 잠재적인 전략일 수 있다는 것을 나타낸다.

따라서, 본원에 구체화된 방법은 면역 체크포인트 억제제 및 종양 억제제(예: TUSC2 요법)의 병용 사용으로 암을 치료하기 위한 효과적인 방법을 처음으로 제공한다.

I. 면역 체크포인트 차단

용어 "면역 체크포인트"는 면역 반응을 조절하기 위해 성분에 억제성 신호를 제공하는 면역계의 성분을 지칭한다. 공지된 면역 체크포인트 단백질은 CTLA-4, PD-l 및 이의 리간드 PD-Ll 및 PD-L2 및 또한 LAG-3, BTLA, B7H3, B7H4, TIM3, KIR을 포함한다. LAG3, BTLA, B7H3, B7H4, TIM3 및 KIR을 포함하는 경로는 CTLA-4 및 PD-1 의존성 경로와 유사하게 면역 체크포인트 경로를 구성하는 것으로 당업계에서 인식된다(참조: 예를 들어, Pardoll, 2012, Nature Rev Cancer 12:252-264; Mellman et al., 2011, Nature 480:480- 489).

용어 "PD-1 축 결합 길항제"는 T-세포 기능(예: 증식, 사이토카인 생산, 표적 세포 사멸)을 복원하거나 향상시키는 결과와 함께 PD-1 신호전달 축 상의 신호전달로부터 발생하는 T-세포 기능 장애를 제거하기 위해 PD-1 축 결합 파트너와 이의 결합 파트너 중 하나 이상과의 상호작용을 억제하는 분자를 지칭한다. 용어 "PD-1" 축"은 PD-1 면역 체크포인트(예: PD-1, PD;-L1 및 PD-L2)의 임의의 성분을 지칭한다. 본원에 사용된 바와 같이, PD-1 축 결합 길항제는 PD-1 결합 길항제, PD-Ll 결합 길항제 및 PD-L2 결합 길항제를 포함한다.

용어 "PD-1 결합 길항제"는 PD-1과 그의 결합 파트너(binding partner) 중 하나 이상, 예를 들어, PD-Ll 및/또는 PD-L2의 상호작용으로부터 생성되는 신호 전달을 감소시키거나, 차단하거나, 억제하거나 폐기하거나 방해하는 분자를 지칭한다. PD-1 결합 길항제는 PD-1과 이의 결합 파트너 중 하나 이상과의 결합을 억제하는 분자일 수 있다. 특정 양태에서, PD-1 결합 길항제는 PD-1과 PD-Ll 및/또는 PD-L2의 결합을 억제한다. 예를 들어, PD-1 결합 길항제는 PD-1과 PD-Ll 및/또는 PD-L2의 상호작용으로부터 생성되는 신호 전달을 감소시키거나 차단하거나 억제하거나 폐기하거나 방해하는 항-PD-1 항체, 이의 항원 결합 단편, 면역접합체(immunoadhesins), 융합 단백질, 올리고펩타이드 및 다른 분자를 포함한다. 예시적인 PD-1 결합 길항제는 항-PD-1 항체이다. 예를 들어, PD-1 결합 길항제는 MDX-1106(니볼루맙), MK-3475(펨브롤리주맙), CT-011(피딜리주맙) 또는 AMP-224이다.

용어 "PD-L1 결합 길항제"는 PD-L1과 이의 결합 파트너 중 하나 이상, 예를 들어, PD-1 또는 B7-1의 상호작용으로부터 생성되는 신호 전달을 감소시키거나 차단하거나 억제하거나 폐기하거나 방해하는 분자를 지칭한다. 예를 들어, PD-L1 결합 길항제는 PD-L1과 그의 결합 파트너의 결합을 억제하는 분자이다. 특정 양태에서, PD-L1 결합 길항제는 PD-L1과 PD-1 및/또는 B7-1의 결합을 억제한다. PD-L1 결합 길항제는 PD-1과 하나 이상의 이의 결합 파트너, 예를 들어, PD-1 또는 B7-1의 상호작용으로부터 생성되는 신호 전달을 감소시키거나 차단하거나 억제하거나 폐기하거나 방해하는 항-PD-L1 항체, 이의 항원 결합 단편, 면역접합체, 융합 단백질, 올리고펩타이드 및 다른 분자를 포함할 수 있다. 예를 들어, PD-L1 결합 길항제는 기능 장애 T-세포를 기능 장애가 덜하도록 하기 위해(예: 항원 인식에 대한 이펙터 반응을 향상시키기 위해) PD-L1을 통한 T 림프구 매개된 신호전달시 발현된 세포 표면 단백질에 의해 또는 이를 통해 매개되는 음성 공자극성 신호를 감소시킨다. 하나의 예에서, PD-L1 결합 길항제는 항-PD-Ll 항체이다. 항-PD-Ll 항체는 YW243.55.S70, MDX-1105, MPDL3280A 또는 MEDI4736일 수 있다.

용어 "PD-L2 결합 길항제"는 PD-L2와 하나 이상의 이의 결합 파트너, 예를 들어, PD-1의 상호작용으로부터 생성되는 신호 전달을 감소시키거나 차단하거나 억제하거나 폐기하거나 방해하는 분자를 지칭한다. PD-L2 결합 길항제는 PD-L2와 하나 이상의 이의 결합 파트너의 결합을 억제하는 분자일 수 있다. 예를 들어, PD-L2와 하나 이상의 이의 결합 파트너, 예를 들어, PD-1의 상호작용으로부터 생성되는 신호 전달을 감소시키거나 차단하거나 억제하거나 폐기하거나 방해하는 항-PD-L2 항체, 이의 항원 결합 단편, 면역접합체, 융합 단백질, 올리고펩타이드 및 다른 분자를 포함하는 PD-L2 길항제와 같은 PD-L2 결합 길항제는 PD-L2와 PD-1의 결합을 억제한다.

"면역 체크포인트 억제제"는 면역 체크포인트 단백질의 기능을 억제하는 임의의 화합물을 지칭한다. 억제는 기능의 감소 및 완전 차단을 포함한다. 특히, 면역 체크포인트 단백질은 인간 면역 체크포인트 단백질이다. 따라서, 면역 체크포인트 단백질 억제제는 특히 인간 면역 체크포인트 단백질의 억제제이다.

따라서, 본 발명은 종양 억제제, 예를 들어, TUSC2 요법의 투여로 면역 체크포인트 차단 효능을 향상시키는 방법을 제공한다. 상기 논의된 바와 같이, 면역 체크포인트는 신호(예: 공자극성 분자)를 올리거나 신호를 낮춘다. 면역 체크포인트 차단에 의해 표적화될 수 있는 억제성 면역 체크포인트 분자는 아데노신 A2A 수용체(A2AR), B7-H3(또한 CD276으로서 공지됨), B 및 T 림프구 감쇠제(BTLA), 세포독성 T-림프구 관련 단백질 4(CTLA-4, 또한 CD152로서 공지됨), 인돌아민 2,3-디옥시게나제(IDO), 킬러-세포 면역글로불린(KIR), 림프구 활성화 유전자-3(LAG3), 프로그램된 사망 1(PD-1), T-세포 면역글로불린 도메인 및 뮤신 도메인 3(TIM-3) 및 T 세포 활성화의 V-도메인 Ig 억제 인자(VISTA)를 포함한다. 특히, 면역 체크포인트 억제제는 PD-1 축 및/또는 CTLA-4를 표적화한다.

면역 체크포인트 억제제는 소분자, 리간드 또는 수용체의 재조합 형태, 또는 항체, 예를 들어, 인간 항체(예: 국제 특허 공보 제WO2015016718호; Pardoll, Nat Rev Cancer, 12(4): 252-64, 2012; 모두 본원에 참조로 인용됨)와 같은 약물일 수 있다. 면역 체크포인트 단백질의 공지된 억제제 또는 이의 유사체가 사용될 수 있고, 특히 키메라, 인간화 또는 인간 형태의 항체가 사용될 수 있다. 당업자가 아는 바와 같이, 대안적 및/또는 등가의 명칭이 본 발명에서 언급된 특정 항체에 대해 사용될 수 있다. 이러한 대안적 및/또는 등가의 명칭은 본 발명의 맥락에서 상호 교환 가능하다. 예를 들어, 램브롤리주맙은 또한 대안적이고 등가의 명칭 MK-3475 및 펨브롤리주맙하에 공지되어 있다는 것이 공지되어 있다.

면역 반응을 자극하기 위해 당업계에 공지되어 있는 임의의 면역 체크포인트 억제제가 사용될 수 있다는 것이 고려된다. 이것은 항원 특이적 T 림프구를 직접적으로 또는 간접적으로 자극하거나 향상시키는 억제제를 포함한다. 이러한 면역 체크포인트 억제제는, 제한 없이, PD-L2, LAG3, BTLA, B7H4 및 TIM3을 포함하는 면역 체크포인트 단백질 및 경로를 표적화하는 제제를 포함한다. 예를 들어, 당업계에 공지된 LAG3 억제제는 가용성 LAG3(본원에 참조로 인용된 WO2009044273에 개시된 IMP321, 또는 LAG3-Ig) 뿐만 아니라 인간 LAG3을 차단하는 마우스 또는 인간화 항체(예: 본원에 참조로 인용된 WO2008132601에 개시된 IMP701) 또는 인간 LAG3을 차단하는 완전 인간 항체(예: 본원에 참조로 인용된 EP 2320940에 개시됨)를 포함한다. 또 다른 예는 제한 없이, 리간드(예: 본원에 참조로 인용된 WO2011014438에 개시된 4C7)와 인간 BTLA 상호작용을 차단하는 항체를 포함하여 BTLA에 대한 차단제의 사용에 의해 제공된다. 또 다른 예는 제한 없이 인간 B7H4에 대한 항체(각각 본원에 참조로 인용된 WO 2013025779, 및 WO2013067492에 개시됨) 또는 B7H4의 가용성 재조합 형태(예: 본원에 참조로 인용된 US20120177645에 개시됨)를 포함하여 B7H4를 중화시키는 제제의 사용에 의해 제공된다. 또 다른 예는 제한 없이 인간 B7-H3을 중화시키는 항체(예: 본원에 참조로 인용된 US 20120294796에서 BRCA84D로서 개시된 MGA271 및 유도체)를 포함하는 B7-H3을 중화시키는 제제에 의해 제공된다. 또 다른 예는 제한 없이 인간 TIM3을 표적화하는 항체(예: WO 2013006490 A2에 개시되거나 문헌(참조: Jones et al., J Exp Med. 2008; 205(12):2763-79)에 개시된 항체 F38-2E2를 차단하는 항-인간 TIM3, 각각 본원에 참조로 인용됨)를 포함하여 TIM3을 표적화하는 제제에 의해 제공된다.

A. PD-1 축 길항제

T 세포 기능장애 또는 아네르기(anergy)는 억제성 수용체 프로그램된 사망 1 폴리펩타이드(PD-1)의 유도되고 지속된 발현과 동시에 발생한다. 따라서, PD-1 및 PD-1과의 상호작용을 통해 신호하는 다른 분자, 예를 들어, 프로그램된 사망 리간드 1(PD-Ll) 및 프로그램된 사망 리간드 2(PD-L2)를 표적화하는 치료제가 본원에 제공된다. PD-Ll이 많은 암에서 과발현되고, 흔히 불량한 예후와 관련된다(참조: Okazaki T et al., Intern. Immun. 2007 19(7):813). 따라서, 종양 억제제, 예를 들어, TUSC2 요법의 투여와 함께 PD-Ll/PD-1 상호작용을 억제함으로써 암을 치료하는 방법이 개선된다.

예를 들어, PD-1 축 결합 길항제는 PD-1 결합 길항제, PDL1 결합 길항제 및 PDL2 결합 길항제를 포함한다. "PD-1"의 대안적인 명칭은 CD279 및 SLEB2를 포함한다. "PDL1"의 대안적인 명칭은 B7-H1, B7-4, CD274 및 B7-H를 포함한다. "PDL2"의 대안적인 명칭은 B7-DC, Btdc 및 CD273을 포함한다. 일부 구현예에서, PD-1, PDL1 및 PDL2는 인간 PD-1, PDL1 및 PDL2이다.

일부 구현예에서, PD-1 결합 길항제는 PD-1과 이의 리간드 결합 파트너의 결합을 억제하는 분자이다. 특정 양태에서, PD-1 리간드 결합 파트너는 PDL1 및/또는 PDL2이다. 또 다른 구현예에서, PDL1 결합 길항제는 PDL1과 이의 결합 파트너의 결합을 억제하는 분자이다. 특정 양태에서, PDL1 결합 파트너는 PD-1 및/또는 B7-1이다. 또 다른 구현예에서, PDL2와 이의 결합 파트너의 결합을 억제하는 분자이다. 특정 양태에서, PDL2 결합 파트너는 PD-1이다. 길항제는 항체, 이의 항원 결합 단편, 면역접합체, 융합 단백질 또는 올리고펩타이드일 수 있다. 예시적인 항체는 미국 특허 제US8735553호, 제US8354509호 및 제US8008449호에 기재되어 있고, 모두 본원에 참조로 인용된다. 본원에 제공된 방법에 사용하기 위한 다른 PD-1 축 길항제는 모두 본원에 참조로 인용된 미국 특허원 제US20140294898호, 제US2014022021호 및 제US20110008369호에 기재된 것과 같이 당업계에 공지되어 있다.

일부 구현예에서, PD-1 결합 길항제는 항-PD-1 항체(예: 인간 항체, 인간화 항체 또는 키메라 항체)이다. 일부 구현예에서, 항-PD-1 항체는 니볼루맙, 펨브롤리주맙 및 CT-011로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, PD-1 결합 길항제는 면역접합체(예: 불변 영역(예: 면역글로불린 서열의 Fc 영역)에 융합된 PDL1 또는 PDL2의 세포외 또는 PD-1 결합 부분을 포함하는 면역접합체)이다. 일부 구현예에서, PD-1 결합 길항제는 AMP-224이다. MDX-1106-04, MDX-1106, ONO-4538, BMS-936558 및 OPDIVO^®로서 공지되기도 한 니볼루맙은 WO2006/121168에 기재된 항-PD-1 항체이다. MK-3475, Merck 3475, 램브롤리주맙, KEYTRUDA^® 및 SCH-900475로서 공지되기도 한 펨브롤리주맙은 WO2009/114335에 기재된 항-PD-1 항체이다. hBAT 또는 hBAT-1로서 공지되기도 한 CT-011은 WO2009/101611에 기재된 항-PD-1 항체이다. B7-DCIg로서 공지되기도 한 AMP-224는 WO2010/027827 및 WO2011/066342에 기재된 PDL2-Fc 융합 가용성 수용체이다. 추가의 PD-1 결합 길항제는 CT-011로서 공지되기도 한 피딜리주맙, AMP-514로서 공지되기도 한 MEDI0680, 및 REGN2810을 포함한다.

일부 구현예에서, 면역 체크포인트 억제제는 PD-L1 길항제, 예를 들어, MEDI4736으로 공지되기도 한 두르발루맙, MPDL3280A로서 공지되기도 한 아테졸리주맙, MSB00010118C로서 공지되기도 한 아벨루맙, BMS 936559 또는 MPDL328OA이다. 특정 양태에서, 면역 체크포인트 억제제는 PD-L2 길항제, 예를 들어, rHIgM12B7이다. 일부 양태에서, 면역 체크포인트 억제제는 LAG-3 길항제, 예를 들어, 제한되지 않고, IMP321 및 BMS-986016이다. 면역 체크포인트 억제제는 아데노신 A2a 수용체(A2aR) 길항제, 예를 들어, PBF-509일 수 있다.

일부 구현예에서, 본원에 기재된 항체(예: 항-PD-1 항체, 항-PDLl 항체 또는 항-PDL2 항체)는 인간 또는 뮤린 불변 영역(murine constant region)을 추가로 포함한다. 추가의 양태에서, 인간 불변 영역은 IgGl, IgG2, IgG2, IgG3 및 IgG4로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 추가의 특정 양태에서, 인간 불변 영역은 IgGl이다. 추가의 양태에서, 뮤린 불변 영역은 IgGl, IgG2A, IgG2B 및 IgG3으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 추가의 특정 양태에서, 항체는 감소되거나 최소의 이펙터 기능을 갖는다. 추가의 특정 양태에서, 최소 이펙터 기능은 원핵 세포에서의 생산으로부터 생성된다. 추가의 특정 양태에서, 최소 이펙터 기능(effector function)은 "이펙터 없는 Fc 돌연변이" 또는 비글리코실화(aglycosylation)로부터 생성된다.

따라서, 본원에 사용된 항체는 비글리코실화될 수 있다. 항체의 글리코실화는 전형적으로 N-결합되거나 O-결합된다. N-결합된은 탄수화물 잔기가 아스파라긴 잔기의 측쇄에 부착되는 것을 지칭한다. 트리펩타이드 서열인 아스파라긴-X-세린 및 아스파라긴-X-트레오닌(여기서, X는 프롤린이 아닌 임의의 아미노산이다)은 탄수화물 잔기의 아스파라긴 측쇄에의 효소 부착을 위한 인식 서열이다. 따라서, 폴리펩타이드에서 이러한 트리펩타이드 서열 중 어느 하나의 존재는 잠재적인 글리코실화 부위를 생성한다. O-결합된 글리코실화는 당 N-아세틸갈락토사민, 갈락토스 또는 크실로스 중 하나의 하이드록시 아미노산, 가장 통상적으로 세린 또는 트레오닌에의 부착을 지칭하지만, 5-하이드록시프롤린 또는 5-하이드록시 리신이 또한 사용될 수 있다. 항체로부터 글리코실화 부위의 제거는 상기한 트리펩타이드 서열 중 하나(N-결합된 글리코실화 부위의 경우)가 제거되도록 아미노산 서열을 변경함으로써 편리하게 달성된다. 변경은 글리코실화 부위 내의 아스파라긴, 세린 또는 트레오닌 잔기를 또 다른 아미노산 잔기(예: 글리신, 알라닌 또는 보존적 치환체)로 치환함으로써 수행될 수 있다.

항체 또는 이의 항원 결합 단편은 당업계에 공지된 방법, 예를 들어, 이전에 기재된 항-PDLl, 항-PD-1 또는 항-PDL2 항체 중 임의의 것 또는 항원 결합 단편을 인코딩하는 핵산을 함유하는 숙주 세포를 이러한 항체 또는 단편을 생성하기에 적합한 조건하에 발현에 적합한 형태로 배양하는 단계 및 항체 또는 단편을 회수하는 단계를 포함하는 공정에 의해 제조될 수 있다.

B. CTLA-4

본원에 제공된 방법에서 표적화될 수 있는 또 다른 면역 체크포인트는 CD152로서 공지되기도 한 세포독성 T-림프구 관련 단백질 4(CTLA-4)이다. 인간 CTLA-4의 완전 cDNA 서열은 Genbank 수탁 번호 L15006을 갖는다. CTLA-4는 T 세포의 표면에서 발견되고, 항원 제시 세포의 표면에서 CD80 또는 CD86에 결합될 때 "오프" 스위치로서 작용한다. CTLA4는 헬퍼(Helper) T 세포의 표면에서 발현되는 면역글로불린 수퍼패밀리(superfamily)의 구성원이고, 억제 신호를 T 세포에 전달한다. CTLA4는 T-세포 공자극성 단백질인 CD28과 유사하고, 두 분자는 항원 제시 세포 상에서 각각 B7-1 및 B7-2로 지칭되기도 하는 CD80 및 CD86에 결합한다. CTLA4는 억제 신호를 T 세포에 전달하는 반면, CD28은 자극 신호를 전달한다. 세포내 CTLA4는 또한 조절 T 세포에서 발견되고, 그들의 기능에 중요할 수 있다. T 세포 수용체 및 CD28을 통한 T 세포 활성화는 B7 분자의 억제 수용체인 CTLA-4의 발현을 증가시킨다.

일부 구현예에서, 면역 체크포인트 억제제는 항-CTLA-4 항체(예: 인간 항체, 인간화 항체 또는 키메라 항체), 이의 항원 결합 단편, 면역접합체, 융합 단백질 또는 올리고펩타이드이다.

본 방법에 사용하기에 적합한 항-인간-CTLA-4 항체 (또는 그것으로부터 유도된 VH 및/또는 VL 도메인)는 당업계에 익히 공지된 방법을 사용하여 생성될 수 있다. 대안적으로, 기술분야 인식된 항-CTLA-4 항체가 사용될 수 있다. 예를 들어, 문헌[참조: US 8,119,129, WO 01/14424, WO 98/42752; WO 00/37504 (CP675,206, 트레멜리무맙으로 공지되기도 함; 이전에 티실리무맙), 미국 특허 제6,207,156호; Hurwitz et al., 1998]에 기재된 항-CTLA-4 항체는 본원에 개시된 방법에 사용될 수 있다. 상기 공보 각각의 교시는 본원에 참조로 인용된다. CTLA-4에 대한 결합을 위해 이러한 기술 분야 인식된 항체 중 어느 하나와 경쟁하는 항체도 또한 사용될 수 있다. 예를 들어, 인간화 CTLA-4 항체는 국제 특허 출원 제WO2001014424호, 제WO2000037504호, 및 미국 특허 제US8017114호에 기재되어 있고; 모두 본원에 참조로 인용된다.

예시적인 항-CTLA-4 항체는 이필리무맙(10D1, MDX-010, MDX-101 및 Yervoy®로서 공지되기도 함) 또는 이의 항원 결합 단편 및 변이체이다(참조: 예를 들어, WO0 1/14424). 다른 구현예에서, 항체는 이필리무맙의 중쇄 및 경쇄 CDR 또는 VR을 포함한다. 따라서, 하나의 구현예에서, 항체는 이필리무맙의 VH 영역의 CDR1, CDR2 및 CDR3 도메인, 및 이필리무맙의 VL 영역의 CDR1, CDR2 및 CDR3 도메인을 포함한다. 또 하나의 구현예에서, 항체는 상기한 항체와 CTLA-4 상의 동일한 에피토프와 결합에 대해 경쟁하고/하거나 이에 결합한다. 또 다른 구현예에서, 항체는 상기한 항체와 적어도 약 90% 가변 영역 아미노산 서열 동일성(예: 이필리무맙과 적어도 약 90%, 95% 또는 99% 가변 영역 동일성)을 갖는다.

CTLA-4를 조절하기 위한 다른 분자는 모두 본원에 참조로 인용된 미국 특허 제US5844905호, 제US5885796호 및 국제 특허 출원 제WO1995001994호 및 제WO1998042752호에 기재된 것과 같은 가용성 CTLA-4 리간드 및 수용체; 및 본원에 참조로 인용된 미국 특허 제US8329867호에 기재된 것과 같은 면역접합체(immunoadhesin)를 포함한다.

C. 킬러 면역글로불린 유사 수용체(KIR)

본 발명에 사용하기 위한 또 다른 면역 체크포인트 억제제는 항-KIR 항체이다. 본 방법에 사용하기에 적합한 항-인간-KIR 항체 (또는 이로부터 유도된 VH/VL 도메인)는 당업계에 익히 공지된 방법을 사용하여 생성될 수 있다.

대안적으로, 기술 분야 인식된 항-KIR 항체가 사용될 수 있다. 항-KIR 항체는 다수의 억제성 KIR 수용체와 교차 반응성일 수 있고, 이들 수용체 중 하나 이상을 보유하는 NK 세포의 세포독성을 강화시킬 수 있다. 예를 들어, 항-KIR 항체는 KIR2D2DL1, KIR2DL2 및 KIR2DL3 각각에 결합할 수 있고, 임의의 또는 모든 이러한 KIR에 의해 매개되는 NK 세포 세포독성의 억제를 감소시키거나 중화시키고/시키거나 역전시킴으로써 NK 세포 활성을 강화시킨다. 일부 양태에서, 항-KIR 항체는 KIR2DS4 및/또는 KIR2DS3에 결합하지 않는다. 예를 들어, 교시가 본원에 참조로 인용된 WO 2006/003179에 기재된 모노클로날 항체 1-7F9(IPH2101로서 공지되기도 함), 14F1, 1-6F1 및 1-6F5가 사용될 수 있다. KIR에 대한 결합에 대해 이러한 기술 분야 인식된 항체 중 어느 하나와 경쟁하는 항체도 또한 사용될 수 있다. 사용될 수 있는 추가의 기술 분야 인식된 항-KIR 항체는, 예를 들어, 모두 본원에 참조로 인용된 WO 2005/003168, WO 2005/009465, WO 2006/072625, WO 2006/072626, WO 2007/042573, WO 2008/084106, WO 2010/065939, WO 2012/071411 및 WO 2012/160448에 개시된 것들을 포함한다.

예시적인 항-KIR 항체는 리릴루맙(BMS-986015 또는 IPH2102로서 지칭되기도 함)이다. 다른 구현예에서, 항-KIR 항체는 리릴루맙의 중쇄 및 경쇄 상보성 결정 영역(CDR) 또는 가변 영역(VR)을 포함한다. 따라서, 하나의 구현예에서, 항체는 리릴루맙의 중쇄 가변(VH) 영역의 CDR1, CDR2 및 CDR3 도메인, 및 리릴루맙의 경쇄 가변(VL) 영역의 CDR1, CDR2 및 CDR3 도메인을 포함한다. 또 다른 구현예에서, 항체는 리릴루맙과 적어도 약 90% 가변 영역 아미노산 서열 동일성을 갖는다.

II. 종양 억제 요법

특정 양태에서, 핵산 또는 폴리펩타이드를 세포에 전달하기 위한 조성물 및 방법에 관한 것이다. 특히, 나노입자-핵산 또는 나노입자-폴리펩타이드 복합체 및 이러한 복합체를 대상체에게 투여하는 방법이 본원에 제공된다. 복합체는 나노입자와 결합하여 TUSC2 폴리펩타이드 및/또는 핵산을 포함한다. 본원에 사용된 바와 같이, "결합"은 물리적 결합, 화학적 결합 또는 둘 다를 의미한다. 예를 들어, 결합은 공유 결합, 소수성 상호작용, 캡슐화, 표면 흡착 등을 포함할 수 있다.

폴리펩타이드 및 핵산은 전형적으로 세포막을 교차하는데 어려움을 갖는다. 두 가지 유형의 분자는 세포 내의 막 결합 및 막 수송을 방해하는 하전된 잔기를 포함한다. 본 구현예는 세포 흡수를 촉진시키는 나노입자 복합체(nanoparticle complex)를 제공함으로써 이러한 어려움을 극복한다.

본 구현예에 따라서, 폴리펩타이드 및/또는 핵산은 나노입자와 결합하여 나노입자 복합체를 형성할 수 있다. 일부 구현예에서, 나노입자는 리포좀 또는 다른 지질계 나노입자, 예를 들어, 지질계 소포(예: DOTAP:콜레스테롤 소포)이다. 암 요법에 사용된 바와 같이, 리포좀은 암 신생혈관에서 증가된 천공을 이용하여 종양 부위에서 리포좀 농도를 증가시킨다.

다른 구현예에서, 나노입자가 비지질 나노입자, 예를 들어, 철-산화물 기반 초상자성 나노입자이다. 직경이 약 10 내지 100nm 범위인 초상자성 나노입자는 비장에 의한 격리를 피할 만큼 충분히 작지만, 간에 의한 클리어런스(clearance)를 피할 만큼 충분히 크다. 이 크기의 입자는 매우 작은 모세관을 관통할 수 있고, 신체 조직에 효과적으로 분포될 수 있다. 초상자성 나노입자 복합체를 MRI 콘트라스트 제제(contrast agent)로서 사용하여 치료 복합체를 차지하는 세포를 동정하고 추적할 수 있다. 특정 구현예에서, 나노입자는 반도체 나노결정 또는 반도체 양자점이고, 이들 둘 다는 광학적 이미징에 사용될 수 있다. 추가의 구현예에서, 나노입자는 실리카 코어 위에 금층을 포함하는 나노셸일 수 있다. 나노셸의 한 가지 이점은 폴리펩타이드 또는 핵산이 표준 화학을 사용하여 금 층(gold layer)에 접합될 수 있다는 점이다. 다른 구현예에서, 나노입자는 풀러린(fullerene) 또는 나노튜브일 수 있다(침조: Gupta et al., 2005).

본 구현예에 따라서, 나노입자 복합체는 특정 조직 및 세포에서 표적화될 수 있다. 이는 세포 표적화 잔기를 나노입자에 접합시킴으로써 달성될 수 있다. 표적화 잔기는 단백질, 펩타이드, 지질, 스테로이드, 당, 탄수화물 또는 합성 화합물일 수 있지만, 이에 제한되지 않는다. 세포 표적화 잔기, 예를 들어, 리간드는 세포의 표면 상의 그들의 동족체 수용체를 인식하고 결합한다. 유사하게, 항체는 세포 표면 상에서 그들의 동족체 수용체를 인식함으로써 세포 표적화 잔기로서 작용할 수 있다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 표적화 나노입자 복합체는 질환 치료의 특이성을 향상시키고, 표적화 세포로 진입하는 치료제의 양을 증가시킬 수 있다.

A. 나노입자

본원에 사용된 바와 같이, 용어 "나노입자"는 1 내지 1,000nm 범위의 치수를 갖는 임의의 물질을 지칭한다. 일부 구현예에서, 나노입자는 50 내지 500nm 범위의 치수를 갖는다. 본 구현예에 사용된 나노입자는 이러한 나노규모 물질을 지질계 나노입자, 초상자성 나노입자, 나노셸(nanoshell), 반도체 나노결정, 양자점(quantum dot), 중합체계 나노입자, 규소계 나노입자, 실리카계 나노입자, 금속계 나노입자, 풀러린 및 나노튜브로서 포함한다(참조: Ferrari, 2005). 폴리펩타이드 또는 핵산의 나노입자에의 접합은 표적화 전달, 조절 방출, 향상된 세포 흡수 및 세포내 트래피킹 및 시험관내 및 생체내에서 치료용 펩타이드의 분자 이미징에 대한 잠재적 적용을 갖는 구조를 제공한다(참조: West, 2004; Stayton et al., 2000; Ballou et al., 2004; Frangioni, 2003; Dubertret et al., 2002; Michalet et al., 2005; Dwarakanath et al., 2004).

1. 지질계 나노입자

지질계 나노입자는 리포좀, 지질 제제 및 지질계 소포(예: DOTAP:콜레스테롤 소포)를 포함한다. 지질계 나노입자는 양으로 하전되거나 음으로 하전되거나 중성일 수 있다. 특정 구현예에서, 지질계 나노입자는 중성으로 하전된다(예: DOPC 리포좀).

"리포좀"은 밀폐된 지질 이중층 또는 응집체의 생성에 의해 형성된 다양한 단일 및 다중 층 지질 비히클(vehicle)을 포함하는 일반적인 용어이다. 리포좀은 일반적으로 인지질을 포함하는 이중층 막 및 일반적으로 수성 조성물을 포함하는 내부 매질을 갖는 소포 구조를 갖는 것으로 특성화될 수 있다. 본원에 제공된 리포좀은 단일박막 리포좀, 다중박막 리포좀 및 다소포성 리포좀을 포함한다. 본원에 제공된 리포좀은 양으로 하전되거나, 음으로 하전되거나 중성으로 하전될 수 있다. 특정 구현예에서, 리포좀은 중성 전하이다.

다중박막 리포좀(multilamellar liposome)은 수성 매질에 의해 분리되는 다수의 지질 층을 갖는다. 그들은 인지질을 포함하는 지질이 과량의 수용액에 현탁될 때 동시에 형성된다. 지질 성분은 밀폐된 구조의 형성 전에 자기 재배열을 거쳐 지질 이중층 사이에 물과 용해된 용질을 포획한다(참조: Ghosh and Bachhawat, 1991). 친유성 분자 또는 친유성 영역을 갖는 분자는 지질 이중층에 용해되거나 이와 결합될 수 있다.

특정 양태에서, 폴리펩타이드 또는 핵산은, 예를 들어, 리포좀의 수성 내부에 캡슐화되고, 리포좀의 지질 이중층 내에 산재되고, 리포좀 및 폴리펩타이드/핵산 모두와 결합된 연결 분자를 통해 리포좀에 부착되고, 리포좀에 포획되고 리포좀과 복합체화될 수 있고, 등등이다.

본 구현예에 따라 사용된 리포좀은 당업자에게 공지된 바와 같이 상이한 방법으로 제조될 수 있다. 예를 들어, 중성 인지질 디올레오일포스파티딜콜린(DOPC)과 같은 인지질(Avanti Polar Lipids, Alabaster, AL)을 3차 부탄올에 용해시킨다. 이어서, 지질(들)을 폴리펩타이드, 핵산 및/또는 다른 성분(들)과 혼합한다. Tween 20이 조성물 중량의 약 5%이도록 지질 혼합물에 Tween 20을 첨가한다. 3차 부탄올의 용적이 적어도 95%이도록 과량의 3차 부탄올을 이 혼합물에 첨가한다. 혼합물을 와동시키고, 드라이 아이스/아세톤 욕에서 냉동시키고 밤새 동결 건조시킨다. 동결 건조된 제제는 -20℃에서 저장하고 최대 3개월까지 사용할 수 있다. 필요한 경우, 동결 건조된 리포좀은 0.9% 식염수로 재구성된다.

대안적으로, 리포좀은 유리, 배모양 플라스크(pear-shaped flask)와 같은 용기 내에서 지질을 용매 중에서 혼합함으로써 제조될 수 있다. 용기는 리포좀의 예상된 현탁액 용적보다 10배 더 큰 용적을 가져야 한다. 회전 증발기를 사용하여 용매를 부압하에 약 40℃에서 제거한다. 용매는 일반적으로 리포좀의 목적하는 용적에 따라 약 5분 내지 2시간 이내에 제거된다. 조성물은 진공하에 데시케이터(desiccator) 내에서 추가로 건조될 수 있다. 건조된 지질은 일반적으로 경시적으로 저하되는 경향 때문에 약 1주일 후에 폐기된다.

건조된 지질은 모든 지질막이 재현탁될 때까지 진탕시켜 멸균 발열원 부재 물에서 약 25 내지 50mM 인지질로 수화될 수 있다. 이어서, 수성 리포좀을 분액으로 분리하고, 각각 바이알(vial)에 배치하고 동결 건조시키고 진공하에 밀봉시킬 수 있다.

상기한 바와 같이 제조된 건조된 지질 또는 동결 건조된 리포좀은 탈수시키고, 단백질 또는 펩타이드의 용액으로 재구성하고 적합한 용매, 예를 들어, DPBS를 사용하여 적합한 농도로 희석시킬 수 있다. 이어서, 혼합물을 와동 혼합기에서 격렬하게 진탕시킨다. 비캡슐화된 추가의 물질, 예를 들어, 호르몬, 약물, 핵산 작제물 등을 포함하지만, 이에 제한되지 않는 제제는 29,000 x g에서 원심분리로 제거하고, 리포좀 펠렛을 세척한다. 세척된 리포좀은 적합한 총 인지질 농도, 예를 들어, 약 50-200mM로 제현탁시킨다. 캡슐화된 추가의 물질 또는 활성제의 양은 표준 방법에 따라 결정될 수 있다. 리포좀 제제에 캡슐화된 추가의 물질 또는 활성제의 양의 결정 후, 리포좀을 적합한 농도로 희석시키고 사용시까지 4℃에서 저장할 수 있다. 리포좀을 포함하는 약제학적 조성물은 일반적으로 무균의 약제학적으로 허용되는 담체 또는 희석제, 예를 들어, 물 또는 식염수 용액을 포함할 것이다.

다른 대안적인 방법에서, 리포좀은 다른 공지된 실험실 절차에 따라 제조될 수 있다(참조: Bangham　et al.,　1965; Gregoriadis, 1979; Deamer and Uster, 1983; Szoka and Papahadjopoulos, 1978, 각각 관련 부분에 참조로 인용된다). 본 구현예에 유용할 수 있는 추가의 리포좀은, 예를 들어, WO02/100435A1, 미국 특허 제5,962,016호, 미국 출원 2004/0208921, WO03/015757A1, WO04029213A2, 미국 특허 제5,030,453호 및 미국 특허 제6,680,068호에 기재된 바와 같은 양이온성 리포좀을 포함하고, 이들 모두는 면책 조항 없이 전체가 본 명세서에 참조로 인용된다. 리포좀을 제조하는 방법은 또한 WO04/002453A1에 기재되어 있다. 중성 지질을 양이온성 리포좀에 혼입할 수 있다(참조: Farhood et al., 1995). 특정 구현예에 유용할 수 있는 다양한 중성 리포좀은 본원에 참조로 인용된 미국 특허 제5,855,911호에 개시되어 있다. 이들 방법은 수성 물질 및 각각의 수성 공간 대 지질 비(aqueous sapce-to-lipid ratio)를 포획하는 그들 각각의 능력이 상이하다.

리포좀의 크기는 합성 방법에 따라 다양하다. 본 구현예에서 리포좀은 다양한 크기일 수 있다. 특정 구현예에서, 리포좀은 작다, 예를 들어, 외부 직경이 약 100nm 미만, 약 90nm 미만, 약 80nm 미만, 약 70nm 미만, 약 60nm 미만 또는 약 50nm 미만이다. 예를 들어, 일반적으로, 핵산 혼입 전에, 본 구현예에 따라 사용하기 위한 DOTAP:콜레스테롤 리포좀은 약 50 내지 500nm의 크기를 포함한다. 이러한 리포좀 제형은 또한 입자 전하(제타 전위) 및/또는 광학 밀도(OD)에 의해 정의될 수 있다. 예를 들어, DOTAP:콜레스테롤 리포좀 제형은 전형적으로 핵산 혼입 전에 0.45 미만의 OD₄₀₀을 포함할 것이다. 마찬가지로, 용액 중 이러한 입자의 전체 전하는 약 50-80mV의 제타 전위(zeta potential)로 정의될 수 있다.

이러한 리포좀을 제조하는 데 있어서, 본원에 기재된 임의의 프로토콜 또는 당업자에게 공지되어 있는 바와 같은 임의의 프로토콜이 사용될 수 있다. 리포좀을 제조하는 추가의 비제한적인 예는 문헌(참조: 미국 특허 제4,728,578호, 제4,728,575호, 제4,737,323호, 제4,533,254호, 제4,162,282호, 제4,310,505호 및 제4,921,706호; 국제 출원 PCT/US85/01161 및 PCT/US89/05040; 영국 특허원 GB 2193095 A; Mayer et al., 1986; Hope et al., 1985; Mayhew et al. 1987; Mayhew et al., 1984; Cheng et al., 1987; 및 Liposome Technology, 1984, 각각 본원에 참조로 인용된다)에 기재되어 있다.

특정 구현예에서, 지질계 나노입자는 중성 리포좀(예: DOPC 리포좀)이다. 본원에 사용된 바와 같이, "중성 리포좀" 또는 "비하전된 리포좀"은 본질적으로 중성인 순 전하(실질적으로 비하전됨)를 생성하는 하나 이상의 지질 성분을 갖는 리포좀으로서 정의된다. "본질적으로 중성" 또는 "본질적으로 비하전된"이란, 소정의 집단(예: 리포좀의 집단) 내에, 존재하는 경우, 소수의 지질 성분이 다른 성분의 반대 전하에 의해 상쇄되지 않는 전하를 포함한다(즉, 10% 미만, 더욱 바람직하게는 5% 미만, 가장 바람직하게는 1% 미만의 성분이 비상쇄 전하를 포함한다)는 것을 의미한다. 특정 구현예에서, 중성 리포좀은 생리학적 조건하(즉, 약 pH 7)에서 자체로 중성인 지질 및/또는 인지질을 주로 포함할 수 있다.

본 구현예의 리포좀 및/또는 지질계 나노입자는 인지질을 포함할 수 있다. 특정 구현예에서, 단일 종류의 인지질이 리포좀의 생성에 사용될 수 있다(예를 들어, DOPC와 같은 중성 인지질이 사용되어 중성 리포좀을 생성할 수 있다). 다른 구현예에서, 1종 이상의 인지질이 사용되어 리포좀을 생성할 수 있다.

인지질은, 예를 들어, 포스파티딜콜린, 포스파티딜글리세롤 및 포스파티딜에탄올아민을 포함하고; 포스파티딜에탄올아민 및 포스파티딜 콜린이 생리학적 조건하(즉, 약 pH 7)에서 비하전되기 때문에, 이들 화합물은 중성 리포좀을 생성하는데 특히 유용할 수 있다. 특정 구현예에서, 인지질 DOPC를 사용하여 비하전된 리포좀을 생성한다. 특정 구현예에서, 인지질이 아닌 지질(예: 콜레스테롤)이 사용될 수 있다.

인지질은 글리세로인지질 및 특정 스핑고지질(sphingolipid)을 포함한다. 인지질은 디올레오일포스파티딜콜린("DOPC"), 난(egg) 포스파티딜콜린("EPC"), 디라우릴로일포스파티딜콜린("DLPC"), 디미리스토일포스파티딜콜린("DMPC"), 디팔미토일포스파티딜콜린("DPPC"), 디스테아로일포스파티딜콜린("DSPC"), 1-미리스토일-2-팔미토일 포스파티딜콜린("MPPC"), 1-팔미토일-2-미리스토일 포스파티딜콜린("PMPC"), 1-팔미토일-2-스테아로일 포스파티딜콜린("PSPC"), 1-스테아로일-2-팔미토일 포스파티딜콜린("SPPC"), 디라우릴로일포스파티딜글리세롤("DLPG"), 디미리스토일포스파티딜글리세롤("DMPG"), 디팔미토일포스파티딜글리세롤("DPPG"), 디스테아로일포스파티딜글리세롤("DSPG"), 디스테아로일 스핑고미엘린("DSSP"), 디스테아로일포스파티딜에탄올아민("DSPE"), 디올레오일포스파티딜글리세롤("DOPG"), 디미리스토일 포스파티드산("DMPA"), 디팔미토일 포스파티드산("DPPA"), 디미리스토일 포스파티딜에탄올아민("DMPE"), 디팔미토일 포스파티딜에탄올아민("DPPE"), 디미리스토일 포스파티딜세린("DMPS"), 디팔미토일 포스파티딜세린("DPPS"), 뇌 포스파티딜세린("BPS"), 뇌 스핑고미엘린("BSP"), 디팔미토일 스핑고미엘린("DPSP"), 디미리스틸 포스파티딜콜린("DMPC"), 1,2-디스테아로일-sn-글리세로-3-포스포콜린("DAPC"), 1,2-디아라키도일-sn-글리세로-3-포스포콜린("DBPC"), 1,2-디에이코세노일-sn-글리세로-3-포스포콜린("DEPC"), 디올레오일포스파티딜에탄올아민("DOPE"), 팔미토일오에오일 포스파티딜콜린("POPC"), 팔미토일오에오일 포스파티딜에탄올아민("POPE"), 리소포스파티딜콜린, 리소포스파티딜에탄올아민, 및 디리놀레오일포스파티딜콜린을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다.

인지질은 중성 또는 합성 공급원으로부터 유래될 수 있다. 그러나, 천연 공급원, 예를 들어, 난 또는 대두 포스파티딜콜린, 뇌 포스파티드산, 뇌 또는 식물 포스파티딜이노시톨, 심장 카디올리핀 및 식물 또는 세균성 포스파티딜에탄올아민으로부터의 인지질은, 특정 구현예에서 (즉, 전체 포스파티드 조성물의 50% 이상을 구성하는) 1차 포스파티드로서 사용되지 않는데, 이것이 생성되는 리포좀의 불안정성 및 누출을 초래할 수 있기 때문이다.

2. DOTAP:콜레스테롤 나노입자

특정 구현예에서, 지질계 소포는 DOTAP:콜레스테롤 나노입자이다. DOTAP:콜레스테롤 나노입자는 양이온성 지질 DOTAP(1,2-비스(올레오일옥시)-3-(트리메틸암모니오)-프로판)를 콜레스테롤과 혼합함으로써 제조된다. DNA를 사용하여 제조된 소포는 구조("샌드위치"로 지칭됨)를 형성할 수 있고, 여기서 DNA는 두 개의 지질 이중층 사이에 응축되는 것으로 나타난다(미국 특허 제6,770,291호 및 제6,413,544호).

DOTAP:콜레스테롤-핵산 복합체는 다음 비제한적인 실시예에서와 같이 제조될 수 있다. DOTAP:콜레스테롤(DC) 나노입자(50 내지 500nm 크기)는 이전에 기재된 바와 같이 합성된다(미국 특허 제6,770,291호 및 제6,413,544호; Templeton, 1997). 간단히, 420mg의 DOTAP 및 208mg의 콜레스테롤을 측정하고 30ml의 클로로포름과 함께 혼합한다. 이어서, 혼합물을 회전 증발기 상에서 30분 동안 건조시키고, 15분 동안 동결 건조시킨다. 건조된 혼합물을 50℃에서 45분 동안 및 37℃에서 10분 동안 와동시켜 30ml의 D5W로 재구성한다. 혼합물을 5분 동안 저주파 초음파로 10회 처리하여 리포좀을 형성한다. 이어서, DOTAP:콜레스테롤 리포좀을 50℃로 가열하고, 1.0, 0.45, 0.2 및 0.1㎛ 무균 왓트만 필터를 통해 순차적으로 여과시킨다. 합성된 나노입자를 4℃에서 저장하고, 나노입자 복합체를 제조하는데 사용한다. 제형화된 DOTAP:콜레스테롤 리포좀은 50-250nm의 입자 크기, 0.45 미만의 OD₄₀₀ 및 50-80mV의 제타 전위로 균일하게 분산되어야 한다. 잔류 CHCl₃ 수준은 60ppm 미만이어야 한다.

DOTAP:콜레스테롤-핵산 나노입자를 제조하기 위해, 240㎕의 리포좀(상기 참조)은 실온에서 360㎕ D5W로 희석시킨다. DNA(약 5mg/ml)를 혼합물에 총 용적 600 ㎕로 첨가한다. 혼합물을 피펫으로 위 아래로 이동시켜 혼합한다. 침강되면, 혼합물은 0.65 내지 0.95의 OD₄₀₀, 200-500nm의 입자 크기를 가져야 하고, 그램 오염 음성으로 확인되어야 한다. 리포좀 복합체는 3℃ 내지 28℃에 저장하고, 가능한 한 적게 진탕시킨다.

B. 나노입자의 표적화

표적화 전달은 그들의 적재물을 전달하는 나노입자의 능력을 손상시키지 않고 리간드의 첨가로 달성된다. 이것은 특정 세포, 조직 및 기관으로의 전달을 가능하게 할 것으로 예상된다. 리간드계 전달 시스템의 표적화 특이성은 상이한 세포 유형 상의 리간드 수용체의 분포에 기초한다. 표적화 리간드는 비공유적으로 또는 공유적으로 나노입자와 결합될 수 있고, 본원에서 논의된 바와 같은 다양한 방법에 의해 나노입자에 접합될 수 있다.

나노입자를 표적화하는데 사용될 수 있는 단백질 또는 펩타이드의 예는 트랜스페린, 락토페린, TGF-α, 신경 성장 인자, 알부민, HIV Tat 펩타이드, RGD 펩타이드 및 인슐린 뿐만 아니라 다른 것들을 포함한다(참조: Gupta et al., 2005; Ferrari, 2005).

C. TUSC2 발현 벡터

용어 "벡터"는 복제될 수 있는 세포 내로 도입하기 위해 핵산 서열이 삽입될 수 있는 담체 핵산 분자를 지칭하기 위해 사용된다. 핵산 서열은 "외인성"일 수 있고, 이는 그것이 벡터가 도입되는 세포에 대해 외래적이거나, 서열이 세포 내이지만 서열이 통상적으로 발견되지 않는 숙주 세포 핵산 내의 위치의 서열에 성동성임을 의미한다. 벡터는 플라스미드, 코스미드, 바이러스(박테리오파지, 동물 바이러스 및 식물 바이러스) 및 인공 염색체(예: YAC)를 포함한다. 당업자는 표준 재조합 기술을 통해 벡터를 작제하기 위해 충분히 준비할 것이다(참조: 예를 들어, Maniatis et al., 1989 및 Ausubel et al., 1994, 모두 본원에 참조로 인용된다).

용어 "발현 벡터"는 전사될 수 있는 RNA를 코딩하는 핵산을 포함하는 임의 유형의 유전 작제물을 지칭한다. 일부 경우에, RNA 분자는 이어서 단백질, 폴리펩타이드 또는 펩타이드로 번역된다. 다른 경우에, 이러한 서열은, 예를 들어, 안티센스 분자 또는 리보자임의 생산에서 번역되지 않는다. 발현 벡터는 특정 숙주 세포에서 작동가능하게 연결된 코딩 서열의 전사 및 아마도 번역에 필요한 핵산 서열을 지칭하는 다양한 "조절 서열"을 함유할 수 있다. 전사 및 번역을 제어하는 조절 서열 이외에, 벡터 및 발현 벡터는 또한 다른 기능을 제공하는 핵산 서열을 함유할 수 있고, 하기에 기재된다.

특정 구현예에서, 핵산 TUSC2 코딩 서열의 사용이 본원에 제공된다. 예를 들어, 이러한 벡터는 TUSC2 폴리펩타이드의 재조합 생산 및/또는 대상체에서 TUSC2의 생체내 발현을 위해 사용될 수 있다. 서열은 동일한 단백질 또는 폴리펩타이드를 인코딩하면서, 단일 아미노산을 인코딩하는 다수의 상이한 코돈(codon)의 능력을 감안하여 변형될 수 있다. 코돈 선택의 최적화는 또한 재조합 발현에 사용된 특정 유기체를 고려하여 수행될 수 있거나 인간 세포(예: 암 세포)에서 최대 발현을 위해 최적화될 수 있다. 본 구현예에 따라 사용하기 위한 벡터는 유전자 발현을 조절하고/하거나 벡터 생산 및 정제를 돕는 요소를 추가로 포함한다.

1. 프로모터(promoter) 및 인핸서(enhancer)

"프로모터"는 전사 개시 및 속도가 조절되는 핵산 서열의 영역인 조절 서열이다. 그것은 조절 단백질 및 분자가 결합할 수 있는 유전적 요소, 예를 들어, RNA 폴리머라제 및 다른 전사 인자를 함유하여 핵산 서열의 특정 전사를 개시할 수 있다. "작동가능하게 위치된", "작동가능하게 연결된", "조절하" 및 "전사 조절하"라는 구는 프로모터가 핵산 서열과 관련하여 정확한 기능적 위치 및/또는 배향에 있어 그 서열의 전사 개시 및/또는 발현을 조절한다는 것을 의미한다.

프로모터는 일반적으로 RNA 합성을 위한 개시 부위를 위치시키는 기능을 하는 서열을 포함한다. 이의 가장 잘 공지된 예는 TATA 박스이지만, 예를 들어, 포유류 말단 데옥시뉴클레오티딜 트랜스퍼라제 유전자에 대한 프로모터 및 SV40 후기 유전자에 대한 프로모터와 같은 TATA 박스가 결여된 일부 프로모터에서, 개시 부위 자체 위에 놓이는 별개의 요소는 개시 장소를 고정시키는 것을 돕는다. 추가의 프로모터 요소는 전사 개시 빈도를 조절한다. 전형적으로, 다수의 프로모터가 또한 개시 부위의 하류에 기능적 요소를 함유하는 것으로 나타났지만, 이들은 개시 부위의 30-110　bp 상류 영역에 위치한다. 프로모터의 "조절하"에 코딩 서열을 가져 오기 위해, 선택된 프로모터의 전사 판독 프레임 "하류"(즉, 3')의 전사 개시 부위의 5' 말단을 위치시킨다. "상류" 프로모터는 DNA의 전사를 자극하고, 인코딩된 RNA의 발현을 촉진한다.

프로모터 요소 사이의 간격은 종종 유연하여 요소가 역전되거나 서로에 대해 이동될 때 촉진제 기능이 보존되도록 한다. tk 프로모터에서, 프로모터 요소 사이의 간격은 활성이 감소하기 시작하기 전에 50bp 간격으로 증가될 수 있다. 프로모터에 따라, 개별 요소가 전사를 활성화시키기 위해 협력적으로 또는 독립적으로 기능할 수 있는 것으로 보인다. 프로모터는 핵산 서열의 전사 활성화에 관여하는 시스-작용성 조절 서열을 지칭하는 "인핸서"와 함께 사용될 수 있거나 사용되지 않을 수 있다.

프로모터는 코딩 세그먼트(coding segment) 및/또는 엑손(exon)의 상류에 위치된 5' 비코딩 서열을 단리시킴으로써 수득될 수 있는 바와 같이, 핵산 서열과 자연적으로 결합된 것일 수 있다. 이러한 프로모터는 "내인성" 또는 "상동성"으로서 지칭될 수 있다. 유사하게, 인핸서는 그 서열의 하류 또는 상류에 위치된 핵산 서열과 자연적으로 결합된 것일 수 있다. 대안적으로, 자연 환경에서 핵산 서열과 정상적으로 결합되지 않는 프로모터를 지칭하는 재조합, 외인성 또는 이종성 프로모터의 조절하에 코딩 핵산 세그먼트를 위치시킴으로써 달성될 것이다. 재조합 또는 이종성 인핸서는 또한 자연 환경에서 핵산 서열과 정상적으로 결합되지 않는 인핸서를 지칭한다. 이러한 프로모터 또는 인핸서는 바이러스 프로모터 및 인핸서, 예를 들어, CMV 프로모터를 포함할 수 있다.

당연히, 발현을 위해 선택된 세포소기관, 세포, 조직, 기관 또는 유기체에서 DNA 세그먼트의 발현을 효과적으로 지시하는 프로모터 및/또는 인핸서를 이용하는 것이 중요할 것이다. 분자 생물학 분야의 당업자는 일반적으로 단백질 발현을 위한 프로모터, 인핸서 및 세포 유형 조합의 사용을 알고 있다(참조: 예를 들어, Sambrook et al. 1989, 본원에 참조로 인용됨). 사용된 프로모터는 재조합 단백질 및/또는 펩타이드의 대규모 생산에서 유리한 것과 같이 도입된 DNA 세그먼트의 높은 수준의 발현을 지시하기에 적절한 조건하에 구성적, 조직 특이적, 유도성 및/또는 유용할 수 있다. 프로모터는 이종성 또는 내인성일 수 있다.

추가로, 임의의 프로모터/인핸서 조합(예를 들어, 진핵생물 프로모터 데이터 베이스 EPDB, www.epd.isb-sib.ch/에 따라)은 또한 발현을 유도하는데 사용될 수 있다. T3, T7 또는 SP6 세포질 발현 시스템의 사용은 또 다른 가능한 구현예이다. 진핵생물 세포는 적절한 세균성 폴리머라제가 전달 복합체의 일부로서 또는 추가의 유전적 발현 작제물로서 제공되는 경우, 특정 세균성 프로모터로부터의 세포질 전사를 지지할 수 있다.

2. 번역 개시 신호

특이적 개시 신호가 또한 코딩 서열의 효율적인 번역에 필요할 수 있다. 이러한 신호는 ATG 개시 코돈 또는 인접 서열을 포함한다. ATG 개시 코돈을 포함하는 외인성 번역 조절 신호가 제공될 필요가 있을 수 있다. 당업자는 이를 쉽게 결정할 수 있고 필요한 신호를 제공할 수 있다. 개시 코돈은 전체 삽입물의 번역을 보장하기 위해 목적하는 코딩 서열의 판독 프레임과 함께 "프레임 내"이어야 한다는 것은 익히 공지되어 있다. 외인성 번역 조절 신호 및 개시 코돈은 천연 또는 합성일 수 있다. 발현 효율은 적절한 전사 인핸서 요소를 포함시킴으로써 향상될 수 있다.

3. 다중 클로닝 부위

벡터는 다수의 제한 효소 부위를 함유하는 핵산 영역인 다중 클로닝 부위(MCS)를 포함할 수 있고, 이들 중 임의의 것은 표준 재조합 기술과 함께 사용되어 벡터를 소화시킬 수 있다(참조: 예를 들어, Carbonelli et al., 1999, Levenson et al., 1998, and Cocea, 1997, 본원에 참조로 인용됨). "제한 효소 소화"는 핵산 분자 중 특정 위치에서만 기능하는 효소에 의한 핵산 분자의 촉매적 분해를 지칭한다. 이들 제한 효소의 다수가 시판되고 있다. 이러한 효소의 사용은 당업자에게 널리 이해된다. 종종, 벡터는 MCS 내에서 절단하여 외인성 서열이 벡터에 결찰되도록 하는 제한 효소를 사용하여 선형화되거나 단편화된다. "결찰"은 서로 인접하거나 인접하지 않을 수 있는 2개의 핵산 단편 사이에 포스포디에스테르 결합을 형성하는 과정을 지칭한다. 제한 효소 및 결찰 반응을 포함하는 기술은 재조합 기술 분야의 당업자에게 익히 공지되어 있다.

4. 스플라이싱 부위(Splicing Site)

대부분의 전사된 진핵생물 RNA 분자는 RNA 스플라이싱을 거쳐 인트론을 1차 전사체로부터 제거한다. 게놈 진핵생물 서열을 함유하는 벡터는 단백질 발현을 위한 전사체의 적절한 처리를 보장하기 위한 공여체 및/또는 수용체 스플라이싱 부위를 필요로 할 수 있다(참조: 예를 들어, Chandler et al., 1997, 본원에 참조로 인용됨). 이러한 스플라이스 부위의 포함은 또한 생성되는 RNA 전사체의 비감각 매개된 붕괴를 회피함으로써 발현을 향상시킬 수 있다.

5. 종결 신호

본 구현예의 벡터 또는 작제물(construct)은 일반적으로 적어도 하나의 종결 신호를 포함할 것이다. "종결 신호" 또는 "종결자"는 RNA 폴리머라제에 의한 RNA 전사체의 특이적 종결에 관련된 DNA 서열로 구성된다. 따라서, 특정 구현예에서, RNA 전사체의 생산을 종결시키는 종결 신호가 고려된다. 목적하는 메시지 수준을 달성하기 위해 생체내에서 종결자가 필요할 수 있다.

본 구현예에서 사용하기 위해 고려되는 종결자는 유전자의 종결 서열, 예를 들어, 소 성장 호르몬 종결자 또는 바이러스성 종결 서열, 예를 들어, SV40 종결자를 포함하지만, 이에 제한되지 않는 본원에 기재되거나 당업자에게 공지된 임의의 공지된 전사 종결자를 포함한다. 특정 구현예에서, 종결 신호는 서열 절단에 기인하는 것과 같이 전사가능하거나 번역가능한 서열의 부재일 수 있다.

6. 폴리아데닐화 신호

발현, 특히 진핵생물 발현시, 전형적으로 전사체의 적절한 폴리아데닐화를 수행하기 위한 폴리아데닐화 신호를 포함할 것이다. 폴리아데닐화 신호의 특성은 본 구현예의 성공적인 실시에 결정적인 것으로 간주되지 않고, 임의의 이러한 서열이 사용될 수 있다. 바람직한 구현예는 다양한 표적 세포에서 편리하고 잘 기능하는 것으로 공지된 SV40 폴리아데닐화 신호 또는 소 성장 호르몬 폴리아데닐화 신호를 포함한다. 폴리아데닐화는 전사체의 안정성을 증가시킬 수 있거나 세포질 전달을 촉진시킬 수 있다.

7. 복제의 기원

숙주 세포에서 벡터를 증식시키기 위해, 복제가 개시되는 특이적 핵산 서열인 하나 이상의 복제 부위 기원(종종 "ori"로 지칭됨)을 함유할 수 있다. 대안적으로, 자율 복제 서열(ARS)은 숙주 세포가 효모인 경우에 사용될 수 있다.

8. 선택 가능하고 스크리닝 가능한 마커

특정 구현예에서, 본원에 제공된 핵산 작제물을 함유하는 세포는 발현 벡터에 마커를 포함시킴으로써 시험관내 또는 생체내에서 동정될 수 있다. 이러한 마커는 발현 벡터를 함유하는 세포의 용이한 동정을 허용하는 세포에 확인가능한 변화를 부여한다. 일반적으로, 선택가능한 마커는 선택을 허용하는 특성을 부여하는 마커이다. 양성 선택가능한 마커는 마커의 존재가 선택을 허용하는 것이고, 음성 선택가능한 마커는 그이 존재가 그의 선택을 방해하는 것이다. 양성 선택가능한 마커의 예는 약물 내성 마커이다.

일반적으로, 약물 선택가능한 마커를 포함시키면 형질전환체의 클로닝 및 동정을 돕고, 예를 들어, 네오마이신, 퓨로마이신, 하이그로마이신, DHFR, GPT, 제오신 및 히스티딘올에 대한 내성을 부여하는 유전자가 유용한 선택가능한 마커이다. 조건의 구현에 기초하는 형질전환체의 식별을 허용하는 표현형을 부여하는 마커 이외에, 비색 분석이 기초인 GFP와 같은 스크리닝가능한 마커를 포함하는 다른 유형의 마커도 또한 고려된다. 대안적으로, 단순 포진 바이러스인 티미딘 키나제(tk) 또는 클로르암페니콜 아세틸트랜스퍼라제(CAT)와 같은 스크리닝가능한 효소가 사용될 수 있다. 당업자는 아마도 FACS 분석과 함께 면역학적 마커를 사용하는 방법을 또한 알고 있을 것이다. 사용된 마커는, 유전자 생성물을 인코딩하는 핵산과 동시에 발현될 수 있는 한, 중요한 것으로 간주되지 않는다. 선택가능하고 스크리닝가능한 마커의 추가의 예는 당업자에게 익히 공지되어 있다.

9. 플라스미드 벡터

특정 구현예에서, 플라스미드 벡터는 숙주 세포를 형질전환시키는데 사용하기 위해 고려된다. 일반적으로, 숙주 세포와 양립가능한 종으로부터 유래된 레플리콘 및 조절 서열을 함유하는 플라스미드 벡터는 이들 숙주와 함께 사용된다. 벡터는 통상적으로 형질전환된 세포에서 표현형 선택을 제공할 수 있는 마킹 서열 뿐만 아니라 복제 부위를 수반한다. 비제한적인 실시예에서, 이. 콜라이(E. coli)는 종종 이. 콜라이 종으로부터 유래된 플라스미드인 pBR322의 유도체를 사용하여 형질전환된다. pBR322는 암피실린 및 테트라사이클린 내성 유전자를 함유하고, 따라서 형질전환된 세포를 동정하기 위한 용이한 수단을 제공한다. pBR 플라스미드, 또는 다른 미생물 플라스미드 또는 파지는 또한, 예를 들어, 자체 단백질의 발현을 위해 미생물 유기체에 의해 사용될 수 있는 프로모터를 함유하거나 함유하도록 변형되어야 한다.

또한, 숙주 미생물과 양립할 수 있는 레플리콘 및 조절 서열을 함유하는 파지 벡터(phage vector)는 이들 숙주와 함께 형절전환 벡터로서 사용될 수 있다. 예를 들어, 파지 람다 GEM^TM-11은 이. 콜라이 LE392와 같은 숙주 세포를 형질전환시키는데 사용될 수 있는 재조합 파지 벡터를 제조하는데 사용될 수 있다.

추가의 유용한 플라스미드 벡터는 이후 정제 및 분리 또는 절단을 위한 글루타티온 S-트랜스퍼라제(GST) 가용성 융합 단백질을 생성하는데 사용하기 위한 pIN 벡터(참조: Inouye　et al.,　1985); 및 pGEX 벡터를 포함한다. 다른 적합한 융합 단백질은 β-갈락토시다제, 유비퀴틴 등을 갖는 것들이다.

발현 벡터를 포함하는 세균성 숙주 세포, 예를 들어, 이. 콜라이(E. coli)는 다수의 적합한 배지 중 임의의 것, 예를 들어, LB에서 성장시킨다. 특정 벡터에서 재조합 단백질의 발현은, 당업자가 이해할 수 있는 바와 같이, 숙주 세포를 특정 프로모터에 특이적인 제제와 접촉시킴으로써, 예를 들어, IPTG를 배지에 첨가함으로써 또는 더 높은 온도로 배양을 스위칭함으로써 유도될 수 있다. 세균을 추가의 시간 동안, 일반적으로 2 내지 24시간 동안 배양한 후, 세포를 원심분리로 수집하고 세척하여 잔류 배지를 제거한다.

10. 바이러스성 벡터

수용체 매개된 엔도시토시스(endocytosis)를 통해 세포를 감염시키거나 세포에 들어가고 숙주 세포 게놈에 통합되어 바이러스성 유전자를 안정하고 효율적으로 발현시키는 특정 바이러스의 능력은 외래 핵산을 세포(예: 포유류 세포)로 전달하기 위한 매력적인 후보이도록 하였다. 따라서, TUSC2를 인코딩하고 발현시키는 바이러스가 이용될 수 있다. TUSC2 핵산을 전달하는데 사용될 수 있는 바이러스 벡터의 비제한적인 예는 이하 기재된다.

아데노바이러스성 벡터. 핵산 전달을 위한 특정 방법은 아데노바이러스 발현 벡터의 사용을 포함한다. 아데노바이러스 벡터가 게놈 DNA로의 통합 능력이 낮은 것으로 공지되어 있지만, 이러한 특징은 이들 벡터에 의해 제공되는 유전자 전달의 높은 효율로 균형이 잡힌다. "아데노바이러스 발현 벡터"는 (a) 작제물의 패키징을 지지하고, (b) 거기에 클로닝된 조직 또는 세포 특이적 작제물을 궁극적으로 발현시키기에 충분한 아데노바이러스 서열을 함유하는 작제물을 포함하는 것을 의미한다. 유전적 조직 또는 36kb의 선형 이본쇄 DNA 바이러스인 아데노바이러스에 대한 지식은 아데노바이러스성 DNA의 큰 조각의 최대 7kb의 외래 서열로의 치환을 가능하게 한다(참조: Grunhaus and Horwitz, 1992).

AAV 벡터. 핵산은 아데노바이러스 보조 형질감염을 사용하여 세포에 도입될 수 있다. 증가된 형질감염 효율은 아데노바이러스 커플링된 시스템을 사용하여 세포계에서 보고되었다(참조: Kelleher and Vos, 1994; Cotten　et al.,　1992; Curiel, 1994). 아데노 관련 바이러스(AAV)는 높은 빈도의 통합을 갖고, 그것은 비분열 세포를 감염시켜, 예를 들어, 조직 배양(참조: Muzyczka, 1992)에서 또는 생체내에서 유전자를 포유류 세포로 전달하는데 유용하게 한다. AAV는 감염성에 대한 광범위한 숙주 범위를 갖는다(참조: Tratschin　et al.,　1984; Laughlin　et al.,　1986; Lebkowski　et al.,　1988; McLaughlin　et al.,　1988). rAAV 벡터의 생성 및 사용에 관한 세부사항은 미국 특허 제5,139,941호 및 제4,797,368호에 기재되어 있고, 이들 각각은 본원에 참조로 인용된다.

레트로바이러스성 벡터. 레트로바이러스는 그들의 유전자를 숙주 게놈에 통합하고 다량의 외래 유전 물질을 옮기고 광범위한 종 및 세포 유형을 감염시키고, 특수 세포주에 패키징되는 능력을 갖고 있다(참조: Miller, 1992). 레트로바이러스 벡터를 작제하기 위해, 핵산(즉, 관심 있는 단백질을 인코딩하는 것)을 특정 바이러스 서열 대신에 바이러스성 게놈에 삽입하여 복제 결함이 있는 바이러스를 생산한다. 비리온을 생산하기 위해, gag, pol 및 env 유전자를 함유하지만, LTR 및 패키징 성분이 없는 패키징 세포주가 작제된다(참조: Mann　et al.,　1983). 레트로바이러스 LTR 및 패키징 서열과 함께 cDNA를 함유하는 재조합 플라스미드가 특수 세포주(예: 예를 들어, 인산칼슘 침전에 의해)에 도입되면, 패키징 서열은 재조합 플라스미드의 RNA 전사체가 바이러스성 입자에 패키징되도록 허용하고, 이어서 배양 배지로 분비된다(참조: Nicolas and Rubinstein, 1988; Temin, 1986; Mann　et al.,　1983). 이어서, 재조합 레트로바이러스를 함유하는 배지를 수집하고, 임의로 농축시키고 유전자 전달을 위해 사용한다. 레트로바이러스 벡터는 다양한 세포 유형을 감염시킬 수 있다. 그러나, 통합 및 안정한 발현은 숙주 세포의 분할을 필요로 한다(참조: Paskind　et al.,　1975).

렌티바이러스는 통상적인 레트로바이러스 유전자인 gag, pol 및 env 이외에 조절성 또는 구조적 기능을 갖는 다른 유전자를 함유하는 복잡한 레트로바이러스이다. 렌티바이러스성 벡터는 당업계에 익히 공지되어 있다(참조: 예를 들어, Naldini et al., 1996; Zufferey et al., 1997; Blomer et al., 1997; 미국 특허 제6,013,516호 및 제5,994,136호). 렌티바이러스의 일부 예는 인간 면역결핍 바이러스(Human Immunodeficiency Viruses)인 HIV-1, HIV-2 및 심미안 면역결핍 바이러스인 SIV를 포함한다. 렌티바이러스성 벡터는 HIV 독성 유전자를 다수회 감쇠시킴으로써 생성되었고, 예를 들어, 유전자 env, vif, vpr, vpu 및 nef가 결실되어 벡터를 생물학적으로 안전하게 한다.

다른 바이러스성 벡터. 다른 바이러스성 벡터가 본 구현예에서 백신 작제물로서 사용될 수 있다. 백시니아 바이러스(참조: Ridgeway, 1988; Baichwal and Sugden, 1986; Coupar　et al.,　1988), 신드비스 바이러스, 사이토메갈로바일러스 및 단순 포진 바이러스와 같은 바이러스로부터 유래된 벡터가 사용될 수 있다. 그들은 다양한 포유류 세포에 대한 몇몇 매력적인 특징을 제공한다(참조: Friedmann, 1989; Ridgeway, 1988; Baichwal and Sugden, 1986; Coupar　et al.,　1988; Horwich　et al.,　1990).

변형된 바이러스. 전달될 핵산은 특이적 결합 리간드를 발현하도록 조작된 감염성 바이러스 내에 하우징될 수 있다. 따라서, 바이러스 입자는 표적 세포의 동족체 수용체에 특이적으로 결합하고 세포에 내용물을 전달할 것이다. 레트로바이러스성 벡터의 특이적 표적화를 가능하게 하도록 설계된 새로운 접근법은 바이러스성 엔벨로프에 락토스 잔기의 화학적 첨가에 의한 레트로바이러스의 화학적 변형에 기초하여 개발되었다. 이 변형은 시알로글리코단백질 수용체를 통한 간세포의 특이적 감염을 허용할 수 있다.

레트로바이러스성 엔벨로프 단백질 및 특이적 세포 수용체에 대한 비오티닐화 항체가 사용된 재조합 레트로바이러스의 표적화에 대한 다른 접근법이 설계되었다. 항체는 스트렙타비딘을 사용함으로써 비오틴 성분을 통해 커플링되었다(참조: Roux　et al.,　1989). 주요 조직적합성 복합체 부류 I 및 부류 II 항원에 대한 항체를 사용하여, 그들은 시험관내에서 동종지향성 바이러스와 함께 표면 항원을 보유한 다양한 인간 세포의 감염을 입증했다(참조: Roux　et al.,　1989).

III. 약제학적 제형

본원에 제공된 약제학적 조성물은 유효량의 하나 이상의 TUSC2 치료제 및/또는 면역 체크포인트 억제제 및, 임의로, 약제학적으로 허용되는 담체에 용해되거나 분산된 추가의 제제를 포함한다. "약제학적 또는 약리학적으로 허용되는"이란 구는, 적합한 경우, 동물, 예를 들어, 인간에게 투여될 때 불리한, 알레르기성 또는 다른 부반응을 생성하지 않는 분자 본체 및 조성물을 지칭한다. 적어도 TUSC2 핵산, 펩타이드 또는 나노입자 복합체 또는 추가의 활성 성분을 함유하는 약제학적 조성물의 제조는 본원에 참조로 인용된 문헌(참조: Remington's Pharmaceutical Sciences, 18th Ed. Mack Printing Company, 1990)에 의해 예시된 바와 같이, 본 발명을 고려하여 당업자에게 공지될 것이다. 또한, 동물(예: 인간) 투여의 경우, FDA 생물 표준국에 의해 요구되는 바와 같이 무균성, 발열성, 일반적 안정성 및 순도 표준을 충족시켜야 한다는 것이 이해될 것이다.

본원에 사용된 바와 같이, "약제학적으로 허용되는 담체"는 당업자에게 공지된 바와 같이 임의의 모든 용매, 분산 매질, 코팅제, 계면활성제, 항산화제, 방부제(예: 항균제, 항진균제), 등장성 제제, 흡수 지연제, 염, 방부제, 약물, 약물 안정화제, 겔, 결합제, 부형제, 붕해제, 윤활제, 감미제, 향미제, 염료, 이러한 유사 물질 및 이들의 조합을 포함한다(참조: 예를 들어, Remington's Pharmaceutical Sciences, 18th Ed. Mack Printing Company, 1990, pp. 1289-1329, 본원에 참조로 인용됨). 임의의 통상적인 담체가 활성 성분과 양립불가능한 경우를 제외하고, 치료제 또는 약제학적 조성물에서의 이의 용도가 고려된다.

특정 구현예에서, 약제학적 조성물은 고체, 액체 또는 에어로졸 형태로 투여될 것인지의 여부 및 주사와 같은 투여 경로에 대해 멸균될 필요가 있는지의 여부에 따라 상이한 유형의 담체를 포함할 수 있다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 약제학적 조성물은 정맥내, 피내, 동맥내, 복강내, 병변내, 두개내, 관절내, 전립선내, 흉막내, 기관내, 비내, 유리체내, 질내, 직장내, 국소, 종양내, 근육내, 복강내, 피하, 결막하, 소포내, 점막, 심막내, 배꼽밑, 안내, 경구, 국소, 국부, 흡입(예: 에어로졸 흡입), 주사, 주입, 연속 주입, 직접 표적 세포를 세척하는 국소화 관류, 카테터를 통해, 세척을 통해, 크림, 지질 조성물(예: 리포좀)로 또는 당업자에게 공지된 바와 같은 다른 방법 또는 상기한 것들의 임의의 조합으로 투여될 수 있다(참조: 예를 들어, Remington's Pharmaceutical Sciences, 18th Ed. Mack Printing Company, 1990, 본원에 참조로 인용됨).

특정 구현예에서, 약제학적 조성물은 복강내로 투여된다. 추가의 구현예에서, 약제학적 조성물은 복강내로 투여되어 암(예: 암성 종양)을 치료한다. 예를 들어, 약제학적 조성물은 복강내로 투여되어 위장 암을 치료할 수 있다. 특정 구현예에서, 약제학적 조성물을 종양 내 또는 종양 근처에 투여하는 것이 바람직할 수 있다.

특정의 바람직한 구현에에서, 약제학적 조성물은 경구 투여되어 암(예: 위장 암)을 치료한다.

특정 구현예에서, 환자에게 투여된 조성물의 실제 투여량은 체중, 상태의 중증도, 치료될 질환의 유형, 이전 또는 동시 치료적 중재, 환자의 특발성 및 투여 경로와 같은 물리적 및 생리학적 인자에 의해 결정될 수 있다. 투여에 책임이 있는 종사자는 어떠한 경우에도 조성물 내 활성 성분(들)의 농도 및 개별 대상체에 대한 적절한 투여량(들)을 결정할 것이다.

특정 구현예에서, 약제학적 조성물은, 예를 들어, 적어도 약 0.1%의 활성 화합물을 포함할 수 있다. 다른 구현예에서, 활성 화합물은 단위 중량의 약 2% 내지 약 75%, 또는, 예를 들어, 약 25% 내지 약 60%, 그 중에서 유도가능한 임의의 범위를 포함할 수 있다. 다른 비제한적인 예에서, 투여량은 또한 투여당 약 1㎍/kg/체중, 약 5㎍/kg/체중, 약 10㎍/kg/체중, 약 15㎍/kg/체중, 약 20㎍/kg/체중, 약 25㎍/kg/체중, 약 30㎍/kg/체중, 약 35㎍/kg/체중, 약 0.04mg/kg/체중, 약 0.05mg/kg/체중, 약 0.06mg/kg/체중, 약 0.07mg/kg/체중, 약 0.08mg/kg/체중, 약 0.09mg/kg/체중, 약 0.1mg/kg/체중, 약 0.2mg/kg/체중 내지 약 0.5mg/kg/체중 이상 및 그 중에서 유도가능한 임의의 범위를 포함할 수 있다. 본원에 나열된 수치로부터 유도가능한 범위의 비제한적인 예에서, 상기한 수치에 기초하여 약 0.01mg/kg/체중 내지 약 0.1mg/kg/체중, 약 0.04㎍/kg/체중 내지 약 0.08mg/kg/체중 등의 범위가 투여될 수 있다.

임의의 경우에, 조성물은 하나 이상의 성분의 산화를 지연시키기 위해 다양한 항산화제를 포함할 수 있다. 추가로, 미생물의 작용의 예방은 파라벤(예: 메틸파라벤, 프로필파라벤), 클로로부탄올, 페놀, 소르브산, 티메로살 또는 이들의 조합을 포함하지만, 이에 제한되지 않는 다양한 항균제 및 항진균제와 같은 방부제에 의해 발생될 수 있다.

하나 이상의 펩타이드, 나노입자 복합체 또는 추가의 제제는 유리 염기, 중성 또는 염 형태의 조성물로 제형화될 수 있다. 약제학적으로 허용되는 염은 산 부가 염, 예를 들어, 단백질성 조성물의 유리 아미노 그룹으로 형성된 것들 또는 무기산, 예를 들어, 염산 또는 인산, 또는 유기산, 예를 들어, 아세트산, 옥살산, 타르타르산 또는 만델산으로 형성된 것들을 포함한다. 유리 카복실 그룹으로 형성된 염은 또한 무기 염기, 예를 들어, 나트륨, 칼륨, 암모늄, 칼슘 또는 수산화제2철; 또는 유기 염기, 예를 들어, 이소프로필아민, 트리메틸아민, 히스티딘 또는 프로카인으로부터 유래될 수 있다.

조성물이 액체 형태로 존재하는 구현예에서, 담체는 물, 에탄올, 폴리올(예: 글리세롤, 프로필렌 글리콜, 액체 폴리에틸렌 글리콜 등), 지질(예: 트리글리세라이드, 식물성 오일, 리포좀) 및 이들의 조합을 포함하지만, 이에 제한되지 않는 용매 또는 분산 매질일 수 있다. 적절한 유동성은, 예를 들어, 코팅제, 예를 들어, 레시틴의 사용, 담체, 예를 들어, 액체 폴리올 또는 지질에서의 분산에 의해 필요한 입자 크기의 유지; 계면활성제, 예를 들어, 하이드록시프로필셀룰로스의 사용; 또는 이러한 방법과 이들의 조합에 의해 유지될 수 있다. 많은 경우에, 등장성 제제, 예를 들어, 당, 염화나트륨 또는 이들의 조합을 포함하는 것이 바람직할 것이다.

다른 구현예에서, 점안액, 비강 용액 또는 스프레이, 에어로졸 또는 흡입제를 본 구현예에서 사용할 수 있다. 이러한 조성물은 일반적으로 표적 조직 유형과 양립가능하도록 설계된다. 비제한적인 예에서, 비강 용액은 일반적으로 점적제 또는 스프레이로 비강에 투여되도록 설계된 수용액이다. 비강 용액은 많은 면에서 비강 분비물과 유사하도록, 정상적인 섬모 작용이 유지되도록 제조된다. 따라서, 바람직한 구현예에서, 비강 수용액은 일반적으로 등장성이거나 약 5.5 내지 약 6.5의 pH를 유지하도록 약간 완충된다. 또한, 필요할 경우, 안과 제제, 약물 또는 적합한 약물 안정화제에 사용되는 것들과 유사한 항균성 방부제가 제형에 포함될 수 있다. 예를 들어, 다양한 상업적 비강 제제가 공지되어 있고, 항생제 또는 항히스타민제와 같은 약물을 포함한다.

특정 구현예에서, 하나 이상의 폴리펩타이드, 핵산 또는 나노입자 복합체는 경구 소화와 같은 경로에 의한 투여용으로 제조된다. 이러한 구현예에서, 고체 조성물은, 예를 들어, 용액, 현탁액, 에멀젼, 정제, 환제, 캡슐제(예: 경질 또는 연질 셸화 젤라틴 캡슐), 서방출 제형, 구강 조성물, 트로키제, 엘릭서제, 현탁액, 시럽, 웨이퍼 또는 이들의 조합을 포함할 수 있다. 경구 조성물은 식이 식품과 함께 직접 혼입될 수 있다. 경구 투여용으로 바람직한 담체는 불활성 희석제, 동화가능한 식용 담체 또는 이들의 조합을 포함한다. 다른 양태에서, 경구 조성물은 시럽 또는 엘릭서제로서 제조될 수 있다. 시럽 또는 엘릭서제는, 예를 들어, 적어도 하나의 활성제, 감미제, 방부제, 향미제, 염료, 방부제 또는 이들의 조합을 포함할 수 있다.

특정의 바람직한 구현예에서, 경구 조성물은 하나 이상의 결합제, 부형제, 붕해제, 윤활제, 향미제 및 이들의 조합을 포함할 수 있다. 특정 구현예에서, 조성물은 다음 중 하나 이상을 포함할 수 있다: 결합제, 예를 들어, 트라가칸트 고무, 아카시아, 옥수수 전분, 젤라틴 또는 이들의 조합; 부형제, 예를 들어, 인산이칼슘, 만니톨, 락토스, 전분, 마그네슘 스테아레이트, 나트륨 사카린, 셀룰로스, 탄산마그네슘 또는 이들의 조합; 붕해제, 예를 들어, 옥수수 전분, 감자 전분, 알긴산 또는 이들의 조합; 윤활제, 예를 들어, 마그네슘 스테아레이트; 감미제, 예를 들어, 수크로스, 락토스, 사카린 또는 이들의 조합; 향미제, 예를 들어, 페퍼민트, 윈터그린 오일, 체리 향료, 오렌지 향료 등; 또는 상기한 것들의 조합. 투여 단위 형태가 캡슐이면, 그것은 상기 유형의 물질 이외에, 담체, 예를 들어, 액체 담체를 함유할 수 있다. 다양한 다른 물질이 코팅제로서 또는 투여 단위의 물리적 형태를 변형시키기 위해 존재할 수 있다. 예를 들어, 정제, 환제 또는 캡슐은 셸락(shellac), 당(sugar) 또는 이 둘 다로 코팅될 수 있다.

다른 투여 방식에 적합한 추가의 제형은 좌제를 포함한다. 좌제는 직장, 질 또는 요도에 삽입하기 위해 일반적으로 약물화된 다양한 중량 및 모양의 고체 투여 형태이다. 삽입 후, 좌제는 공동 유체에서 연화되고, 용융되거나 용해된다. 일반적으로, 좌제의 경우, 전통적인 담체는, 예를 들어, 폴리알킬렌 글리콜, 트리글리세라이드 또는 이들의 조합을 포함할 수 있다. 특정 구현예에서, 좌제는, 예를 들어, 활성 성분을 약 0.5% 내지 약 10%, 바람직하게는 약 1% 내지 약 2%의 범위로 함유하는 혼합물로부터 형성될 수 있다.

멸균 주사가능한 용액은 필요에 따라 적절한 용매에 상기 열거된 다양한 다른 성분과 함께 필요한 양으로 활성 화합물을 도입한 후, 여과 멸균함으로써 제조된다. 일반적으로, 분산액은 다양한 무균화된 활성 성분을 염기성 분산 매질 및/또는 다른 성분을 함유하는 멸균성 비히클에 혼입함으로써 제조된다. 멸균 주사가능한 용액, 현탁액 또는 에멀젼의 제조를 위한 멸균 분말의 경우에, 바람직한 제조 방법은 활성 성분의 분말 + 이전에 멸균 여과된 이의 액체 매질로부터의 임의의 추가의 목적하는 성분을 생성하는 진공 건조 또는 동결 건조 기술이다. 액체 매질은 필요할 경우 적합하게 완충되어야 하고, 액체 희석제는 충분한 식염수 또는 글루코스를 주사하기 전에 먼저 등장성이도록 한다. 직접 주사를 위한 매우 농축된 조성물의 제조도 또한 고려되고, 여기서 용매로서 DMSO의 사용은 매우 신속한 침투를 초래하여 고농도의 활성제를 작은 영역으로 전달하도록 계획된다.

조성물은 제조 및 저장 조건하에 안정해야 하고, 세균 및 진균과 같은 미생물의 오염 작용에 대해 보존되어야 한다. 내독소 오염은 안전한 수준, 예를 들어, 0.5ng/mg 단백질로 최소한 유지되어야 한다는 것이 이해될 것이다.

특정 구현예에서, 주사가능한 조성물의 연장 흡수는, 예를 들어, 알루미늄 모노스테아레이트, 젤라틴 또는 이들의 조합과 같은 흡수를 지연시키는 제제의 조성물에서의 사용에 의해 유발될 수 있다.

IV. 병용 요법

본 구현예의 핵산, 폴리펩타이드 또는 나노입자 복합체의 효능을 증가시키기 위해, 관심 있는 질환의 치료에 효과적인 다른 제제와 이들 조성물을 조합하는 것이 바람직할 수 있다.

비제한적 예로서, 암의 치료는 다른 항암제와 함께 TUSC2 치료제 및/또는 본 구현예의 면역 체크포인트 억제제로 실시할 수 있다. "항암"제는, 예를 들어, 암 세포를 사멸시키고, 암 세포에서 세포사멸사를 유도하고, 암 세포의 성장 속도를 감소시키고, 전이의 발생률 또는 수를 감소시키고, 종양 크기를 감소시키고, 종양 성장을 억제하고, 종양 또는 암 세포에 대한 혈액 공급을 감소시키고, 암 세포 또는 종양에 대한 면역 반응을 촉진시키고, 암의 진행을 예방 또는 억제시키거나, 암을 갖는 대상체의 수명을 증가시킴으로써 대상체의 암에 악영향을 미칠 수 있다. 보다 일반적으로, 이들 기타 조성물은 세포의 증식을 사멸 또는 억제하기에 효과적인 조합된 양으로 제공될 것이다. 이러한 과정은 세포를 항암 펩타이드 또는 나노입자 복합체 및 제제(들) 또는 복수의 인자(들)와 동시에 접촉시키는 단계를 포함할 수 있다. 이는 세포를 양 제제를 포함하는 단일 조성물 또는 약리학적 제형과 접촉시키거나, 세포를 2개의 별개의 조성물 또는 제형과 동시에 접촉시킴으로써 달성될 수 있고, 여기서 하나의 조성물은 항암 펩타이드 또는 나노입자 복합체를 포함하고 다른 하나는 제2 제제(들)를 포함한다. 특정 구현예에서, 항암 펩타이드는 하나의 제제일 수 있고, 항암 나노입자 복합체는 다른 제제일 수 있다.

항암 펩타이드 또는 나노입자-복합체를 사용한 치료는 수 분 내지 수 주 범위의 간격에 의해 다른 제제 치료에 선행하거나 후속할 수 있다. 다른 제제 및 항암 펩타이드 또는 나노입자 복합체가 세포에 별도로 적용되는 구현예에서, 제제와 항암 펩타이드 또는 나노입자 복합체가 여전히 세포에 대해 유리하게 조합된 효과를 발휘할 수 있도록, 각 전달 시간 사이에서 유의한 기간이 만료하지 않았음을 일반적으로 보장한다. 이러한 경우에, 서로 약 12 내지 24시간 이내, 보다 바람직하게는 서로 약 6 내지 12시간 이내에 세포를 양 양식과 접촉시킬 수 있는 것으로 고려된다. 일부 상황에서, 수일(예: 2, 3, 4, 5, 6 또는 7일) 내지 수주(예: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 또는 8주)가 각 투여 사이에 경과하는 경우, 치료 기간을 현저히 연장하는 것이 바람직할 수 있다.

마찬가지로, 특정 양태에서, TUSC2 요법은 면역 체크포인트 억제제와 조합하여 투여된다. 다양한 조합이 사용될 수 있고, 여기서 TUSC2 요법은 "A"이고, 면역 체크포인트 억제제는 "B"이다:

A/B/A B/A/B B/B/A A/A/B A/B/B B/A/A A/B/B/B B/A/B/B

B/B/B/A B/B/A/B A/A/B/B A/B/A/B A/B/B/A B/B/A/A

B/A/B/A B/A/A/B A/A/A/B B/A/A/A A/B/A/A A/A/B/A

특정 구현예에서, 환자에 대한 본 구현예의 TUSC2 요법 및/또는 면역 체크포인트 억제제의 투여는, 임의로, 벡터의 독성을 고려하여, 화학요법제의 투여를 위한 일반적 프로토콜에 따를 것이다. 치료 사이클은 필요에 따라 반복할 수 있을 것으로 예상된다. 기재된 과증식성 세포 요법과 조합하여, 외과적 개입 뿐만 아니라 다양한 표준 요법이 적용될 수 있는 것도 고려된다.

a. 화학요법

암 치료는 또한 다양한 병용 요법을 포함한다. 일부 양태에서, 상기 구현예의 TUSC2 치료제 및/또는 면역 체크포인트 억제제는 화학요법제와 조합하여 투여(또는 제형화)된다. 예를 들어, 일부 양태에서, 화학요법제는 단백질 키나제 억제제, 예를 들어, EGFR, VEGFR, AKT, Erb1, Erb2, ErbB, Syk, Bcr-Abl, JAK, Src, GSK-3, PI3K, Ras, Raf, MAPK, MAPKK, mTOR, c-Kit, eph 수용체 또는 BRAF 억제제이다. 단백질 키나제 억제제의 비제한적 예는 아파티닙(Afatinib), 악시티닙(Axitinib), 베바시주맙(Bevacizumab), 보수티닙(Bosutinib), 세툭시맙(Cetuximab), 크리조티닙(Crizotinib), 다사티닙(Dasatinib), 에를로티닙(Erlotinib), 포스타마티닙(Fostamatinib), 게피티닙(Gefitinib), 이마티닙(Imatinib), 라파티닙(Lapatinib), 렌바티닙(Lenvatinib), 무브리티닙(Mubritinib), 닐로티닙(Nilotinib), 파니투무맙(Panitumumab), 파조파닙(Pazopanib), 페갑타닙(Pegaptanib), 라니비주맙(Ranibizumab), 룩소리티닙(Ruxolitinib), 사라카티닙(Saracatinib), 소라페닙(Sorafenib), 수니티닙(Sunitinib), 트라스투주맙(Trastuzumab), 반데타닙(Vandetanib), AP23451, 베무라페닙(Vemurafenib), MK-2206, GSK690693, A-443654, VQD-002, 밀테포신(Miltefosine), 페리포신(Perifosine), CAL101, PX-866, LY294002, 라파마이신(rapamycin), 템시롤리무스(temsirolimus), 에베롤리무스(everolimus), 리다포롤리무스(ridaforolimus), 알보시딥(Alvocidib), 게니스테인(Genistein), 셀루메티닙(Selumetinib), AZD-6244, 바탈라닙(Vatalanib), P1446A-05, AG-024322, ZD1839, P276-00, GW572016 또는 이들의 혼합물을 포함한다.

여전히 추가의 병용 화학요법제는, 예를 들어, 알킬화제, 예를 들어, 티오페타 및 사이클로포스파미드; 알킬 설포네이트, 예를 들어, 부설판, 임프로설판 및 피포설판; 아지리딘, 예를 들어, 벤조도파, 카보쿠온, 메투레도파 및 우레도파; 알트레트아민, 트리에틸렌멜라민, 트리에틸렌포스포르아미드, 트리에티일렌티오포스포르아미드 및 트리메틸올로멜라민을 포함하는 에틸렌이민 및 메틸아멜라민; 아세토게닌(특히 불라타신 및 불라타시논); 캄프토테신(합성 유사체 토포테칸을 포함); 브리오스타틴; 칼리스타틴; CC-1065(이의 아도젤레신, 카르젤레신 및 비젤레신 합성 유사체를 포함); 크립토피신(특히 크립토피신 1 및 크립토피신 8); 돌라스타틴; 두오카르마이신(합성 유사체, KW-2189 및 CB1-TM1을 포함); 엘레우테로빈; 판크라티스타틴; 사르코딕티인; 스폰기스타틴; 질소 머스타드, 예를 들어, 클로람부실, 클로르나파진, 콜로포스파미드, 에스트라무스틴, 이포스파미드, 메클로르에타민, 메클로르에타민 옥사이드 하이드로클로라이드, 멜팔란, 노벰비킨, 페네스테린, 프로드니무스틴, 트로포스파미드, 우라실 머스타드; 니트로스우레아, 예를 들어, 카르무스틴, 클로로조토신, 포테무스틴, 로무스틴, 니무스틴 및 라님누스틴; 항생제, 예를 들어, 에네딘 항생제(예: 칼리케아미신, 특히 칼리케아미신 감마II 및 칼리케아미신 오메가II); 다이네미신 A를 포함하는 다이네미신; 비스포스포네이트, 예를 들어, 클로드로네이트; 에스페라미신; 뿐만 아니라 네오카르지노스타틴 크로모포어 및 관련 크로모단백질 에네디인 항생제 크로모포어, 아클라시노마이신, 액티노마이신, 오트라마이신, 아자세린, 블레오마이신, 칵티노마이신, 카라비신, 카르미노마이신, 카르지노필린, 크로모마이시니스, 닥티노마이신, 다우노루비신, 데토루비신, 6-디아조-5-옥소-L-노르류신, 독소루비신(모르폴리노-독소루비신, 시아노모르폴리노-독소루비신, 2-피롤리노-독소루비신 및 데옥시독소루비신을 포함), 에피루비신, 에소루비신, 이다루비신, 마르셀로마이신, 미토마이신, 예를 들어, 미토마이신 C, 마이코페놀산, 노갈라마이신, 올리보마이신, 페플로마이신, 포트피로마이신, 푸로마이신, 쿠엘라마이신, 로도루비신, 스트렙토니그린, 스트렙토조신, 투베르시딘, 우베니멕스, 지노스타틴, 조루비신; 항-대사물질, 예를 들어, 메토트렉세이트 및 5-플루오로우라실(5-FU); 엽산 유사체, 예를 들어, 데노프테린, 프테로프테린, 트리메트렉세이트; 퓨린 유사체, 예를 들어, 플루다라빈, 6-머캅토퓨린, 티아미프린, 티오구아닌; 피리미딘 유사체, 예를 들어, 안시타빈, 아자시티딘, 6-아자우리딘, 카르모푸르, 시타라빈, 디데옥시우리딘, 독시플루리딘, 에노시타빈, 플록수리딘; 안드로겐, 예를 들어, 칼루스테론, 드로모스타놀론 프로피오네이트, 에피티오스타놀, 메피티오스탄, 테스토락톤; 항-아드레날린제, 예를 들어, 미토탄, 트릴로스탄; 엽산 보충제, 예를 들어, 프롤린산; 아세글라톤; 알도포스파미드 글리코사이드; 아미노레불린산; 에닐우라실; 암사크린; 베스트라부실; 비산트렌; 에다트락세이트; 데포파민; 데메콜신; 디아지쿠온; 엘포르미틴; 엘립티늄 아세테이트; 에포틸론; 에토글루시드; 질산갈륨; 하이드록시우레아; 렌티난; 로니다이닌; 마이탄시노이드, 예를 들어, 마이탄신 및 안사미토신; 미토구아존; 미토크산트론; 모피단몰; 니트라에린; 펜토스타틴; 페나메트; 피라루비신; 로소크산트론; 포도필린산; 2-에틸하이드라지드; 프로카르바진; PSK 폴리사카라이드 복합체; 라족산; 리족신; 시조피란; 스피로게르마늄; 테누아존산; 트리아지쿠온; 2,2',2"-트리클로로트리에틸아민; 트리코테센(특히 T-2 독소, 베라쿠린 A, 로리딘 A 및 안구이딘); 우레탄; 빈데신; 다카르바진; 만노무스틴; 미토브로니톨; 미토락톨; 피포브로만; 가시토신; 아라비노사이드("Ara-C"); 사이클로포스파미드; 탁소이드, 예를 들어, 파클리탁셀 및 도세탁셀 겜시타빈; 6-티오구아닌; 머캅토퓨린; 백금 배위 착물, 예를 들어, 시스플라틴, 옥살리플라틴 및 카르보플라틴; 빈블라스틴; 백금; 에토포사이드(VP-16); 이포스파미드; 미토크산트론; 빈크리스틴; 비노렐빈; 노반트론; 테니포사이드; 에다트렉세이트; 다우노마이신; 아미노프테린; 젤로다; 이반드로네이트; 이리노테칸(예: CPT-11); 토포아이소머라제 억제제 RFS 2000; 디플루오로메틸로르니틴(DMFO); 레티노이드, 예를 들어, 레티노산; 카페시타빈; 카르보플라틴, 프로카르바진, 플리코마이신, 겜시타비엔, 나벨빈, 파르네실-단백질 트랜스퍼라제 억제제, 트랜스플라티늄, 및 상기 임의의 약제학적으로 허용되는 염, 산 또는 유도체를 포함한다. 특정 구현예에서, 본원에 제공된 조성물은 게피티닙과 조합하여 사용될 수 있다. 다른 구현예에서, 본 구현예는 글리벡(예: 약 400 내지 약 800mg/일의 글리벡(Gleevac)이 환자에게 투여될 수 있다)과 조합하여 실시될 수 있다. 특정 구현예에서, 하나 이상의 화학요법제가 본원에 제공된 조성물과 조합하여 사용될 수 있다.

b. 방사선요법

DNA 손상을 유발하고 광범위하게 사용되는 기타 인자는 γ-선, X-선으로 통상 공지되어 있는 것, 및/또는 종양 세포에 대한 방사성 동위원소의 직접 전달을 포함한다. 마이크로파 및 UV-조사 등의 기타 형태의 DNA 손상 인자가 또한 고려된다. 이들 인자 모두는 DNA, DNA의 전구체, DNA의 복제 및 수복 및 염색체의 조립 및 유지에 광범위한 손상을 입힐 가능성이 가장 크다. X-선의 선량 범위는 연장된 기간(3 내지 4주) 동안 50 내지 200 뢴트겐(roentgen)의 1일 선량(dose)으로부터 2000 내지 6000 뢴트겐의 단일 선량까지의 범위이다. 방사성 동위원소의 선량 범위는 광범위하게 달라지고, 동위원소의 반감기, 방출된 방사선의 강도 및 유형, 및 신생물 세포에 의한 흡수에 의존한다.

용어 "접촉된" 및 "노출된"은, 세포에 적용될 때, 치료적 조성물 및 화학요법제 또는 방사선요법제가 표적 세포에 전달되거나 표적 세포와 직접 병치하여 배치되는 과정을 기재하기 위해 본원에서 사용된다. 세포 사멸 또는 정지를 달성하기 위해, 양 제제는 세포를 사멸시키거나 이것이 분열하는 것을 방지하기에 효과적인 조합 양으로 세포에 전달된다.

c. 면역요법

면역요법제는 일반적으로 암 세포를 표적화하고 파괴하기 위해 면역 이펙터 세포 및 분자의 사용에 의존한다. 면역 이펙터는, 예를 들어, 종양 세포의 표면 상의 일부 마커에 특이적인 항체일 수 있다. 항체 단독은 치료법의 이펙터로서 작용할 수 있거나, 그것은 다른 세포를 모집하여 실제로 세포 사멸을 수행할 수 있다. 항체는 또한 약물 또는 독소(화학요법제, 방사성 핵종, 리신 A 쇄, 콜레라 독소, 백일해 독소 등)에 접합될 수 있고, 단지 표적화 제제로서 작용할 수 있다. 또는, 이펙터는 종양 세포 표적과 직접적으로 또는 간접적으로 상호작용하는 표면 분자를 운반하는 림프구일 수 있다. 다양한 이펙터 세포는 세포독성 T 세포 및 NK 세포를 포함한다.

따라서, 면역요법은 본 구현예의 TUSC2 요법과 조합하여 병용 요법의 일부로서 사용될 수 있다. 병용 요법을 위한 일반적 접근법은 하기 논의되어 있다. 일반적으로, 종양 세포는 표적화가 용이한, 즉 다른 세포의 대부분에 존재하지 않는 일부 마커를 보유해야 한다. 다수의 종양 마커가 존재하고, 이들 중 임의의 것은 본 구현예의 문맥에서 표적화에 적합할 수 있다. 일반적 종양 마커는 암 배아 항원, 전립선 특이적 항원, 비뇨기 종양 관련 항원, 태아 항원, 티로시나제(p97), gp68, TAG-72, HMFG, 시알릴 루이스(Sialyl Lewis) 항원, MucA, MucB, PLAP, 에스트로겐 수용체, 라미닌 수용체, erb B 및 p155를 포함한다.

d. 유전자 요법

추가로 또 다른 구현예에서, 2차 치료는 치료적 폴리뉴클레오타이드가 치료적 조성물의 투여 전에, 후에 또는 동시에 투여되는 유전자 요법이다. 유전자 생성물의 발현을 위한 바이러스성 벡터는 당업계에 공지되어 있고, 진핵생물 발현 시스템, 예를 들어, 아데노바이러스, 아데노 관련 바이러스, 레트로바이러스, 헤르페스바이러스, 렌티바이러스, 백시니아 바이러스를 포함하는 폭스바이러스, SV40을 포함하는 유두종 바이러스를 포함한다. 또는, 발현 작제물의 투여는 지질계 벡터, 예를 들어, 리포좀 또는 DOTAP:콜레스테롤 소포로 달성될 수 있다. 이들 방법 모두는 당업계에 익히 공지되어 있다[참조: Sambrook et al., 1989; Ausubel et al., 1998; Ausubel, 1996].

하기 유전자 생성물 중의 하나를 인코딩하는 벡터의 전달은 표적 조직에 대한 조합된 항-과증식성 효과를 가질 것이다. 다양한 단백질이 본 구현예에 포함되고, 이의 일부는 하기에 기재되어 있다.

i. 세포 증식 억제제

상술한 바와 같이, 종양 억제 암유전자는 과도한 세포 증식을 억제하는 기능을 한다. 이들 유전자의 불활성화는 이들의 억제 활성을 파괴하여 비조절된 증식을 일으킨다.

본 구현예에 따라 2차 치료로서 사용될 수 있는 유전자는 p53, p16, Rb, APC, DCC, NF-1, NF-2, WT-1, MEN-I, MEN-II, zac1, p73, VHL, MMAC1/PTEN, DBCCR-1, FCC, rsk-3, p27, p27/p16 융합, p21/p27 융합, 항-혈전성 유전자(예: COX-1, TFPI), PGS, Dp, E2F, ras, myc, neu, raf, erb, fms, trk, ret, gsp, hst, abl, E1A, p300, 혈관신생에 관여하는 유전자(예: VEGF, FGF, 트롬보스폰딘, BAI-1, GDAIF, 또는 이들의 수용체), MCC 및 표 IV에 나열된 기타 유전자를 포함한다.

ii. 프로그램된 세포사(Cell Death)의 조절인자

세포사멸사 또는 프로그램된 세포사는 정상 배아 발생, 성체 조직의 항상성 유지 및 발암 억제에 필수적인 과정이다[참조: Kerr et al., 1972]. 단백질의 Bcl-2 패밀리 및 ICE-유사 프로테아제는 다른 시스템에서 세포사멸사의 중요한 조절인자 및 이펙터인 것으로 입증되었다. 여포성 림프종과 관련하여 발견된 Bcl-2 단백질은 세포사멸사의 조절, 및 다양한 세포사멸사 자극에 반응하여 세포 생존의 증강에 중요한 역할을 담당한다[참조: Bakhshi et al., 1985; Cleary and Sklar, Proc. Nat'l. Acad. Sci. USA, 82(21):7439-43, 1985; Cleary et al., 1986; Tsujimoto et al., 1985; Tsujimoto and Croce, 1986]. 진화적으로 보존된 Bcl-2 단백질은 현재, 사망 효능제 또는 사망 길항제로서 분류될 수 있는 관련 단백질의 패밀리의 구성원인 것으로 인식되고 있다.

이의 발견에 계속하여, Bcl-2는 다양한 자극에 의해 유발된 세포사를 억제하는 작용을 하는 것으로 나타났다. 또한, 현재, 공통적인 구조 및 서열 상동성을 공유하는 Bcl-2 세포사 조절 단백질의 패밀리가 존재한다는 것은 명백하다. 이들 상이한 패밀리 구성원은 Bcl-2(예: Bcl_XL, Bcl_W, Bcl_S, Mcl-1, A1, Bfl-1)와 유사한 기능을 보유하거나 Bcl-2 기능에 역작용하고 세포사(예: Bax, Bak, Bik, Bim, Bid, Bad, Harakiri)를 촉진하는 것으로 나타났다.

e. 수술

암 환자의 대략 60%는, 예방, 진단 또는 스테이징, 치유 및 완화적 수술을 포함하는 일부 유형의 수술을 받는다. 치유적 수술은 다른 요법, 예를 들어, 본원에 제공된 치료, 화학요법, 방사선 요법, 호르몬 요법, 유전자 요법, 면역요법 및/또는 대체 요법과 병용하여 사용될 수 있는 암 치료이다.

치유적 수술은, 암 조직의 전부 또는 일부가 물리적으로 제거, 절제 및/또는 파괴되는 절제를 포함한다. 종양 절제는 종양의 적어도 일부의 물리적 제거를 지칭한다. 종양 절제에 추가하여, 수술에 의한 치료는 레이저 수술, 냉동수술, 전기수술 및 현미경 조절 수술(모스 수술)을 포함한다. 본 구현예는 표재성 암, 전암 또는 우발적 양의 정상 조직의 제거와 병용하여 사용될 수 있다는 것이 추가로 고려된다.

모든 암 세포, 조직 또는 종양의 일부의 절제시, 공동이 신체에 형성될 수 있다. 치료는 추가의 항암 요법을 사용하여 관류, 직접 주사 또는 영역의 국소 적용에 의해 달성될 수 있다. 이러한 치료는, 예를 들어, 1, 2, 3, 4, 5, 6 또는 7일마다, 또는 1, 2, 3, 4 또는 5주마다 또는 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 또는 12개월마다 반복할 수 있다. 이들 치료는 또한 상이한 투여량의 것일 수 있다.

f. 소염제

특정 양태에서, TUSC2 요법 및/또는 면역 체크포인트 억제제는 소염제와 병용하여 투여된다. 소염제는, 대상체에서 염증의 치료 또는 예방에 유익한 것으로 공지되거나 의심되는 제제를 지칭하기 위해 본원에서 정의된다. 코르티코스테로이드는 소염제의 주요 부류이다. 코르티코스테로이드는 단시간, 중시간 또는 장시간 작용성일 수 있고, 다양한 방법으로 전달될 수 있다. 본 구현예에서 고려된 코르티코스테로이드의 비제한적 목록은 경구 코르티코스테로이드, 예를 들어, 코르티손, 하이드로코르티손, 프레드니손 및 덱사메타손을 포함한다.

소염제의 또 다른 주요 부류는 비-스테로이드성 소염제이다. 비-스페로이드성 소염제는 염증 및 동통의 치료에 사용된 약물 부류를 포함한다. 이러한 약물 부류의 정확한 작용 방식은 공지되어 있지 않다. 이들 부류의 제제의 구성원의 예는 이부프로펜, 케토프로펜, 플루르비프로펜, 나부메톤, 피록시캄, 나프록센, 디클로페낙, 인도메타신, 설린닥, 톨메틴, 에토돌락, 플루페남산, 디플루니살, 옥사프로진, 로페콕시브 및 셀레콕시브를 포함하지만, 이들로 한정되지 않는다. 당업자는 이들 제제에 친숙할 것이다. 이러한 카테고리에는 살리실레이트 및 살리실레이트의 유도체, 예를 들어, 아세틸 살리실산, 나트륨 살리실레이트, 콜린 살리실레이트, 콜린 마그네슘 살리실레이트 및 디플루니살이 포함된다.

기타 소염제는 항-류마티스성 제제, 예를 들어, 금 염(예: 금 나트륨 티오말레이트, 오로티오글루코즈 및 오라노핀), 항-류마티스성 제제(예: 클로로퀸, 하이드록시클로로퀸 및 페니실라민), 항히스타민제(예: 디펜하이드라민, 클로르페니라민, 클레마스틴, 하이드록시진 및 트리프롤리딘), 및 면역억제제(예: 메토트렉세이트, 메클로르에타민, 사이클로포스파미드, 클로람부실, 사이클로스포린 및 아자티오프린)를 포함한다. 본 구현예에 의해 고려되는 기타 면역억제제는 타크롤리무스 및 에베롤리무스이다. 타크롤리무스는 T-세포 활성화와 관련된 인터류킨-2 생산을 억제하고, 세포독성 T 세포의 분화 및 증식을 억제한다. 현재, 그것은 전세계적으로 면역억제 요법의 초석으로서 인식되고 있다. 당업자는 이들 제제, 및 이들 제제 부류의 다른 구성원, 또한 이들 제제의 작용 기전 및 이들 제제의 사용을 위한 표시에 친숙할 것이다.

g. 기타 제제

기타 제제가 치료의 치료 효능을 향상시키기 위해 본원에 제공된 조성물과 병용하여 사용될 수 있다는 것이 고려된다. 이들 추가 제제는 면역조절제, 세포 표면 수용체 및 GAP 접합의 상향조절에 영향을 미치는 제제, 세포 증식 억제제 및 분화제, 세포 부착 억제제, 또는 세포사멸사 유도인자에 대한 과증식성 세포의 감수성을 증가시키는 제제를 포함한다. 면역조절제는 종양 괴사 인자; 인터페론 알파, 베타 및 감마; IL-2 및 기타 사이토카인; F42K 및 기타 사이토카인 유사체; 또는 MIP-1, MIP-1베타, MCP-1, RANTES, 및 기타 케모카인을 포함한다. 세포 표면 수용체 또는 이들의 리간드, 예를 들어, Fas/Fas 리간드, DR4 또는 DR5/TRAIL의 상향조절은 과증식성 세포에 대한 오토크린 또는 파라크린 효과의 확립에 의해 본원에 제공된 조성물의 세포사멸사 유도 능력을 증강시킨다는 것이 추가로 고려된다. GAP 접합 수를 증가시킴으로써 세포내 신호전달을 증가시키는 것은 인접하는 과증식성 세포 집단에 대한 항-과증식성 효과를 증가시킬 것이다. 다른 구현예에서, 세포 증식 억제제 또는 분화제는 치료의 항-과증식성 효과를 개선시키기 위해 본원에 제공된 조성물과 병용하여 사용될 수 있다. 세포 부착 억제제는 본 발명의 효능을 향상시킬 것으로 고려된다. 세포 부착 억제제의 예는 국소 부착 키나제(FAK) 억제제 및 로바스타틴이다. 추가로, 세포사멸사에 대한 과증식성 세포의 감수성을 증가시키는 다른 제제, 예를 들어, 항체 c225가 치료 효능을 향상시키기 위해 본원에 제공된 조성물과 병용하여 사용될 수 있다는 것이 추가로 고려된다.

특정 구현예에서, 호르몬 요법은 또한 본 구현예와 조합하여 또는 전술한 임의의 기타 암 요법과 조합하여 사용될 수 있다. 호르몬의 사용은 테스토스테론 또는 에스트로겐과 같은 특정 호르몬의 수준을 저하시키거나 이의 효과를 차단하기 위해 특정 암, 예를 들어, 유방암, 전립선암, 난소암 또는 자궁경부암의 치료에 사용될 수 있다. 이러한 치료는 종종 치료 옵션으로서 적어도 하나의 기타 암 요법과 병용하여 또는 전이 위험을 감소시키기 위해 사용된다.

V. 실시예

하기 실시예는 본 발명의 바람직한 구현예를 입증하기 위해 포함된다. 하기 실시예에 개시된 기술은 본 발명의 실시에서 충분히 기능하도록 본 발명자에 의해 발견된 기술을 나타내고, 따라서 이의 실시를 위한 바람직한 방식을 구성하는 것으로 고려될 수 있다는 것을 당업자는 이해해야 한다. 그러나, 당업자는, 본 개시에 비추어, 개시된 특정 구현예에서 다수의 변경이 이루어질 수 있고, 여전히 본 발명의 취지 및 범위로부터 벗어나지 않고서 동일하거나 유사한 결과를 수득할 수 있다는 것을 이해해야 한다.

실시예 1 - 면역 체크포인트 억제제와 조합된 TUSC2 요법

TUSC2 및 항-PD1과의 병용 치료는 G12V Kras-돌연변이체 공통 유전자 폐 피하 모델에서 종양 성장을 효과적으로 억제한다: Kras G12 돌연변이 및 낮은 수준의 TUSC2 발현을 갖는 뮤린 폐 암종 세포주 CMT/167-루시퍼라제를 C57BL/6 마우스에 피하 이식했다. 10마리 마우스를 각 그룹으로 할당했다: DOTAP: 콜레스테롤(DC)-빈 벡터/아이소타입; 항-PD1 항체; DC-TUSC2 나노입자; 및 DC-TUSC2 나노입자 + 항-PD1 항체. 랜덤화된 TUSC2(i.v.) 및 항-PD1(i.p.)의 순차적 치료는 도 1a에 도시되어 있다. 병용 치료와 관련된 독성은 없었다. 종양 용적 및 생물발광 강도는 각각 캘리퍼스 및 IVIS 이미징으로 측정했다. CMT/167 세포에서 PD-L1의 발현은 23.7%이다(도 1b). 항-PD1은 종양 성장을 억제하는데 제한된 효과를 나타낸 반면, TUSC2는 종양 성장을 유의적으로 억제했다(도 1c). 조합은 추가로 TUSC2에 의한 종양 퇴화를 추가로 강화시켰다. 아이소타입 대조군, 항-PD1, TUSC2, 및 TUSC2 + 항-PD1에 대한 평균 용적은 각각 800mm³, 600mm³, 300mm³ 및 180mm³이다(*p<0.05; **p<0.01; 및 ***p<0.001). 1초당 총 플럭스(total flux)로서 종양 내의 생물발광 강도를 측정하는 IVS 이미징(imaging)은 또한 조합의 효능을 나타낸다(도 1d-e). TUSC2와 항-PD1 사이의 협조 효과의 사후 확률은 99%를 초과했다. 이들 결과는 이러한 모델에서 TUSC2가 종양 성장의 감소에서 항-PD1과 상승작용하는 것을 시사한다.

TUSC2 및 항-PD1과의 병용 치료는 NK 및 CD8 ⁺ T 세포의 밀도를 증가시키고 조절 세포를 억제시킨다: 항-PD1과의 TUSC2 조합의 면역 효과를 묘사하기 위해, 말초 혈액 백혈구(PBL) 및 비장세포에서 주요 면역 집단을 10개 색 패널 유동 세포 계측법을 사용하여 프로파일링했다. 종양 비함유 마우스에서 말초 NK, B 및 T 세포에 대한 TUSC2 나노소포체의 정맥내 전달 효과는 도 2a에 도시되어 있다. 종양 비함유 마우스에서 TUSC2와 TUSC2 + 항-PD1 사이에 차이는 없었다. 유동 세포 계측법에 대한 게이팅 전략은 도 1 보충에 도시되어 있다. 종양 세포 접종 후, TUSC2는 각각 NK 및 CD8⁺T 세포의 밀도를 현저히 및 온화하게 유도했고(p<0.001 및 p<0.05), B 세포, MDSC, Treg, 및 PD1, CTLA4 및 Tim3을 발현하는 T 세포에서 현저한 부수적 감소를 수반했다(도 2b-e). 항-PD1은 NK, T 및 B 세포에 대한 명백한 효과가 없었지만, MDSC, Treg, 및 PD1, CTLA4 및 Tim3을 발현하는 T 세포를 감소시켰다. 병용 치료는 TUSC2 단독과 동일한 효과를 가졌다. 병용 치료에서 최대 차이는 MDSC에 대한 NK 세포 및 Treg에 대한 CD8⁺T 세포의 비율을 증강시키는데 있었다(p<0.001)(도 2f). 함께 고려하면, 이들 결과는 TUSC2-항-PD1 상승작용이 NK 및 CD8+T 세포의 증가된 확장과 관련될 가능성이 있다는 것을 나타낸다.

TUSC2 및 항-PD1과의 병용 치료는 NK 및 CD+8T 세포의 종양-침윤성을 증강시킨다: TUSC2+항-PD1 치료가 보다 고밀도 종양 면역-세포 침윤과 관련되는지를 결정하기 위해, 면역 침윤물은 각 종양 면적의 25%를 커버하는 벡트라 고-처리량 병리 시스템(Vectra high-throughput pathology system)을 사용하여 분석했다(치료 그룹당 N = 5 종양). 전체 피하 종양은 처리를 위해 균일하게 절제하고, 각 종양으로부터의 몇몇 절편을 분석하여 상이한 치료 그룹 사이의 상이한 종양 크기를 고려하여 임의의 잠재적 샘플링 바이어스를 배제했다. 양성 세포의 백분율과 함께 염색 강도를 고려하여 H-스코어 값을 사용했다. 대조군 또는 항-PD1과 비교하는 경우, 조합은 각각 10배 및 3배까지 종양 내의 CD8⁺T 세포 밀도를 증가시켰다(p < 0.0001; 도 3a). TUSC2 그룹 중의 CD8⁺T 침윤물은 유의적이지는 않지만, 조합보다 낮았다. 활성화된 NK 세포의 침윤은 TUSC2(p<0.0001)에서 가장 높았고, 조합(p<0.0001)이 뒤따랐다(도 3a). 항-PD1은 TUSC2 또는 조합과 비교하여, NK 침윤물을 약간 증가시켰다. 역으로, TUSC2 및 TUSC2+항-PD1은 Treg에 의해 발현된 마커인 종양-침윤된 Foxp3 양성 T 세포(p<0.0001), 및 종양 억제성 과립구 마커 1(Gr-1)를 갖는 MDSC(p<0.0001)를 유의적으로 억제시켰다. 항-PD1은 Foxp3 밀도를 약간 감소시켰지만(p = 0.18), GR1에 대한 효과는 없었다. 이들 결과는 TUSC2 및 조합이 종양 면역 미세환경을 변화시켰음을 시사한다.

TUSC2 및 항-PD1을 사용한 병용 치료는 NK 세포 및 T 림프구와 관련된 케모카인 발현을 증강시켰다: 혈청 케모카인의 발현 프로파일은 나노스트링 기술을 사용하여 분석했다. TUSC2 및 조합에 대한 노출 후에 T 림프구 및 NK 세포의 이동과 관련되는 케모카인 유전자 세트의 상향조절이 발견되었다(도 3b). CCR5 인식을 통해 NK 세포 이동에 관여하는 CcL3 및 CcL4의 발현은 2배 이상인 반면, CCR7 수용체와 상호작용하고 T 세포 및 수지상 세포를 종양으로 모집하는 CcL21a 및 CcL19[참조: Viola et al., 2012; Griffith et al., 2014]는 처리되지 않은 대조군과 비교하여 4배 이상 증가했다. CcL4 및 CcL5 혈청 케모카인 수준은 또한 대조군 그룹과 비교하여 TUSC2 및 TUSC2+항-PD1 치료에 의해 증가했다(도 3c).

NK 또는 CD8+T 세포의 고갈은 조합의 항-종양 효과를 각각 완전히 및 부분적으로 폐지한다: NK 및 CD⁺8 둘 다의 밀도가 병용 요법 후에 상향-조절되었다는 발견은 CD8⁺T 세포 및 NK 세포가 TUSC2+항-PD1-유도된 종양 퇴화를 조절한다는 것을 강력히 시사했다. 이러한 가설을 확인하기 위해, NK 또는 CD8⁺T 세포는 항-NK1.1 또는 항-CD8⁺T 세포 항체의 복강내 주사를 통해 CMT167 종양-보유 마우스에서 고갈되었다(도 8, 9). 도 4a에 도시된 바와 같이, 항-NK1.1 항체를 사용한 치료는 조합에 의한 종양 퇴화를 완전히 폐지한 반면, 항-CD8⁺T 항체를 사용한 치료는 이를 부분적으로 손상시켰다(도 4b). 또한, NK 세포 고갈은 TUSC2-유도된 종양 성장 억제를 폐지했지만, CD8⁺T 세포 고갈은 어떠한 효과도 갖지 않았다. 고갈은 항-PD1 반응에 어떠한 효과도 갖지 않았다. 이들 발견은 CD8+T 세포가 항-PD1에 대한 TUSC2-증강된 감수성에 기여할 수 있지만, NK 세포는 이러한 상승작용에 불가결하다는 것을 시사한다.

이어서, 루미넥스 검정을 사용한 혈청 사이토카인의 분석은 TUSC2 및 조합 둘 다가 강력한 Th1-매개된 면역 반응을 유도했음을 나타냈다(대조군 대 TUSC2: p<0.0001; 대조군 대 조합: p=0.007 (도 4c), NK 고갈에 의해 폐지된 효과(TUSC2 대 TUSC2/NK1.1: p = 0.008; 조합 대 조합/NK1.1: p = 0.0009)). 이는 NK 세포가 TUSC2 및 조합에 대한 Th1-매개된 면역 반응을 유도하는 데 중요하다는 것을 시사한다. 그러나, NK 고갈의 존재 또는 부재하에, 이들 2개 처리 그룹에서 Th1/Th2 비의 유의차는 없었다. TUSC2+항-PD1 요법은, 이들의 처리되지 않은된 또는 항-PD1-처리된 상대물과 비교하여 IL-15(p=0.0001) 및 IL-18(p< 0.0001) 사이토카인의 보다 높은 수준을 촉진시켰다(도 4d). IL-15는 TUSC2 및 조합 그룹에서 동일한 수준을 유도한 반면, IL-18 수준은 조합의 것보다 TUSC2에서 유의적으로 더 높았다. NK 세포가 고갈되는 경우, IL-15(대조군 대 TUSC2: p=0.03) 및 IL-18(대조군 대 TUSC2: p=0.0005)의 수준은 유의적으로 감소했다. NK 고갈의 존재 또는 부재하에, TUSC2 및 조합 사이의 IL-18의 수준에서 유의차가 있었지만, IL-15의 경우에는 없었다. 최종적으로, qPCR 및 나노스트링 기술을 사용하여 분류된 NK 세포 및 종양 조직의 발현 프로파일은 이들의 처리되지 않은된 및 항-PD1-처리된 상대물의 것들보다 TUSC2-처리된 것에서 IL-15R 및 IL-18R의 유의적으로 높은 발현을 나타냈다(각각 p=0.01 및 p=0.001; 도 4e, f).

TUSC2 및 항-PD1을 사용한 병용 치료는 공통 유전자 G12D Kras-돌연변이체 폐 전이 모델의 생존을 증강시켰다: TUSC2-항-PD1의 효능은 K rasG120D 돌연변이를 수용하는 344SQ-루시퍼라제 폐암 세포를 정맥내 접종한 129Sv 마우스를 사용하여 이차 Kras 전이성 모델에서 평가했다. 344SQ 세포에서 PD-L1 발현의 수준은 단지 4.5%였다(도 5a). 순차적 치료 전략은 도 5b에 도시되어 있다. 치료 그룹은, 2개 그룹, 항-CTLA4와의 항-PD1 조합 및 항-PD1 및 항-CTLA4와의 TUSC2 조합을 추가한 선행 모델과 유사했다. 전자의 조합은 각 약물 단독과 비교하여 증강된 임상 효능의 보고 때문에 이 실험에 사용되었다[참조: Larkin et al., 2015]. TUSC2는 처리되지 않은, 항-PD1 및 항-PD1+항-CTLA4-처리 그룹과 비교하여 생존을 유의적으로 향상시켰다(TUSC2 대 대조군: p<0.0001; TUSC2 대 항-PD1: p<0.001; TUSC2 대 항-PD1+항-CTLA4: p<0.001)(도 5c). TUSC2를 항-PD1과 조합하는 경우, 생존은 유의적으로 연장되었다(조합 대 대조군: p<0.0001; 조합 대 항-PD1: p<0.001; 조합 대 TUSC2: p=0.024). TUSC2와 항-PD1 및 항-CTLA4를 조합하면 TUSC2+항-PD1 치료에 비해 생존을 수일 연장시켰다. 종양의 생물발광 이미징은 이들 발견을 지지했다(도 5d). 도 5e는 2주째에 TUSC2+항-PD1을 제공한 폐에서 종양 결절의 인상적인 클리어런스를 도시한다. 이들 결과는 TUSC2+항-PD1 조합의 효능을 확인하고, 이중 체크포인트 차단, 항-PD1 및 항-CTLA4와의 TUSC2 조합이 번역 값을 갖는다는 것을 시사한다.

단일-세포 분석을 사용한 면역-세포 침윤의 분석은, 항-CTLA4-처리 그룹에 의한 대조군 또는 항-PD1 조합과 비교하여 TUSC2에 의한 보다 높은 NK 세포 침윤을 나타냈다(p<0.001)(도 5f). TUSC2+항-PD1 또는 TUSC2+항-PD1+항-CTLA4의 효과는 TUSC2의 것보다 약간 더 높았다. 대조적으로, Treg 및 MDSC 세포 침윤물은 항-PD1에 의해 유의적으로 억제되었고(p=0.004; p=0.0003), 그 효과는 TUSC2 및 조합에 의해 추가로 증강되었다(도 5g 및 5h). 이들 결과는 CMT 167 피하 종양 모델의 평가에서 관찰된 것들과 일치했다(도 2).

항-PD1과의 TUSC2 조합은 종양 미세환경에서 면역 유전자 발현 프로파일을 변화시켰다: TUSC2+항-PD1 조합에서 차등적으로 발현된 특이적 면역 유전자를 동정하기 위해, 종양 샘플의 RNA는 40 하이스키핑 대조군(NanoString Technologies Inc.)을 사용하여 적응성 및 선천적 반응 둘 다를 커버하는 770 마우스 면역 유전자로 이루어진 마우스 pan-암 패널을 사용한 디지탈 다중 프로파일링에 제공했다. 오류 발견률(q　<　0.05) 보정을 수반하는 웰치(Welch) t-시험을 적용하여 치료 그룹 사이의 통계적으로 유의한 유전자 발현 차이를 유도했다. <　0.05의 p-값은 유의한 것으로 간주했다. 볼케이노 플롯 및 히트맵을 사용하여 결과를 가시화했다(도 6a, b). TUSC2 첨가가 항-PD1 치료에 대한 반응을 증강시켰기 때문에, 항-PD1과 TUSC2+항-PD1 그룹 사이의 쌍별 비교를 수행했다. 쌍별 비교는 또한 다른 모든 그룹 사이에서 수행했다. 먼저, 6개 유전자 클러스터는 조합 그룹에서 유의적으로 상향조절되는 것으로 밝혀졌다. 이는 Cd1d2, Ltf, Klra21, H60a, Tnfsf18 및 Bcl6을 포함한다. 또 다른 클러스터는 유의적으로 하향조절되는 것으로 밝혀졌고, Egr3, Cd46, Ncr1, Klra5, Ccl1, Il12rb2 및 Cd59b로 이루어진다(도 6b). 이들 모든 유전자는 NK 및 CD8⁺T 세포 조절에 중요하다[참조: Deng et al., 2013; Shevach and Stephens, 2006; Orr et al., 2009]. 조합 치료는 또한 종양 미세환경에서 T 세포-매개된 항종양 기능과 관련된 유전자의 발현을 상향조절했다(도 6d-f). 이들 결과는 NK 및 CD8⁺T 면역프로파일링 및 종양 침윤 데이터를 지지한다(도 2-3).

실시예 2 - 재료 및 방법

세포 배양 및 시약: KRasG12/CMT167-luc 및 K-RasG12D/344SQ-luc 세포는 닥터 알란 필드(Drs. Alan Fields)(Mayo Clinic), 프랭크 알. 지릭(Frank R. Jirik)(University of Calgary)에 의해 친절하게 제공되었다. 세포는 10% 태아 소 혈청(Atlanta Biological, GA) 및 1% 페니실린 및 스트렙토마이신(life science technologies)이 보충된 둘베코 변형된 이글 배지에서 배양했다. 아이소타입, 항-PD1, 항-CTLA4, InVivoPlus 항-NK1.1(클론 PK136) 및 항-CD8⁺T(클론 2.43) 항-마우스 모노클로날 항체는 바이오 X 셀(Bio X Cell)(West Lebanon, NH)에서 구매했다. DOTAP 및 콜레스테롤은 아반티 폴라 리피드(Avanti Polar Lipids)(Albaster, AL)에서 구매했다. DC-TUSC2의 합성 및 제조는 이전에 기재되어 있다[참조: Ito et al., 2004].

동물 연구: 모든 동물 절차는 텍사스 대학 MD 앤더슨 암 센터의 동물 관리 및 사용 위원회(the Animal Care and Use Committee of The University of Texas MD Anderson Cancer Center)에 의해 검토되고 승인되었다. CMT167-luc 공통 유전자 모델을 위해, 6 내지 8주령 암컷 C57BL/6-엘리트(Elite) 마우스(Charles River Laboratories, Houston, TX)의 우측 옆구리에 1×10⁶ CMT167-luc 세포를 피하 주사하고, 다음과 같이 각각 10마리 마우스의 치료 그룹으로 랜덤화했다: 대조군(빈-벡터 나노소포체, 아이소타입 항체), 항-PD1, TUSC2 나노소포체 및 TUSC2+항-PD1. 요약하면, 25㎍의 TUSC2를 3주기 동안 48시간마다 정맥내 주사하고, 0.25mg의 항-PD1 항체를 3주기 동안 4일마다 복강내(i.p.) 주사했다. 종양 용적은 식 1/2(길이 × 폭²)에 따라 계산했다. 종양-세포 주사후 3 내지 4주째에 마우스를 안락사시키고, 종양 및 비장을 수거했다. 344SQ 전이 모델의 경우, 6 내지 8주령의 암컷 129/Sv 마우스에게 100,000 344SQ-luc 세포를 정맥내 주사했다. 치료 그룹/각각 10마리는 다음과 같다: 대조군(빈-벡터 나노소포체, 아이소타입 항체), 항-PD1, TUSC2, 항-CTLA4, TUSC2+항-PD1, 항-PD1+항-CTLA4 및 TUSC2+항-PD1+항-CTLA4. 두 모델의 경우, 동물을 통상적으로 모니터링하고, 종양은 IVIS를 사용하여 이미지화했다. 모든 치료 및 측정은 이중 맹검이었다. 면역 표현형 분석을 위해, 동물은 종양-세포 주사후 2주째에 도살하고, 폐를 수거하고, 말초 혈액을 심장 천공을 통해 수집했다.

NK 또는 CD8 ⁺ T 세포의 고갈: 종양-보유 CMT167 마우스에서 NK 세포 또는 CD8⁺T 세포를 고갈시키기 위해, 중화 모노클로날 항체 항-NK1.1(클론 PK136) 또는 항-CD8+T(클론 2.43) 항-마우스 모노클로날 항체를, 종양 세포의 피하 접종후 0일째에 개시하여 4주기 동안 3일마다 마우스(100㎍, i.p.)에게 주사했다. NK 또는 CD8⁺T 세포 고갈 상태를 비장세포의 유동 세포 계측법 분석에 의해 모니터링했다. 종양 용적을 측정하고, 종양 생물발광 강도를 IVIS로 정량화했다.

다색 유동 세포 계측법: PBL을 단리하고, 세포를 유동 세포 계측법을 위한 표준 프로토콜에 따라 염색했다. 다색 패널은 갈리오스 유동 세포계측 연구 시스템(Gallios Flow Cytometer Research System)(Beckman Coulter, Brea, CA)을 사용하여 개발 및 최적화했다. 마우스 항체는 바이오레전드(BioLegend)(San Diego, CA)로부터 구매했다. 단일-세포 현탁액을 형광-활성화된 세포 분류 염색 완충액으로 세척하고, 10분 동안 마우스 Fc 수용체-결합 억제제와 함께 배양하고, 지시된 항체로 염색했다. 데이터는 플로우조(FlowJo) 소프트웨어 버젼 10(FlowJo, Ashland, OR)을 사용하여 분석했다.

면역조직화학: CMT167-수거된 종양을 10% 파라포름알데하이드에서 고정시키고, 포르말린-고정된 파라핀-매립된 조직의 8㎛ 절편을 항-CD8, 항-Foxp3, 항-Gr-1 및 항-NKp46 마우스 항체로 염색했다. 모든 면역조직화학 분석은 MD 앤더슨 히스톨로지 코어 라보라토리(MD Anderson Histology Core Laboratory)(Smithville, TX)에서 수행했다. 각 그룹으로부터 적어도 5개 종양 샘플을 각 항체에 대해 염색하고, MD 앤더슨(Houston, TX)의 이미징 코어 파실러티(Imaging Core Facility)에서 200-슬라이드 벡트라 3.0 자동화 정량 병리 이미징 시스템(200-slide Vectra 3.0 Automated Quantitative Pathology Imaging System)(PerkinElmer, Waltham, MA)을 사용하여 이미지화하고 분석했다. 0 내지 +3 범위의 H-스코어는 세포당 생성되었다.

정량적 PCR: 전체 RNA는 RNeasy 미니 키트(Mini Kit)(Qiagen, Hilden, Germany)를 사용하여 추출하고, SuperScript III 키트(Invitrogen, Carlsbad, CA)를 사용하여 역전사시켰다. 정량적 PCR은 SYBR 그린 PCR 마스터 믹스(Master Mix)(Applied Biosystems, Foster City, CA)로 수행했다. 상대적 발현 수준을 표준화하고, 발현 수준을 ABI Viia7 실시간(Real-Time) PCR 시스템(Applied Biosystems)으로 측정했다. 상대적 정량화는 제조업자에 의해 기재된 비교 CT 방법을 사용하여 수행했다.

루미넥스 검정(Luminex Assay): 혈청 사이토카인 및 케모카인을 동정하기 위해, 아피메트릭스(eBioscience) 프로카르타플렉스(ProcartaPlex) 36-plex 면역검정(Affymetrix, Santa Clara, CA)을 제조업자의 설명서에 따라 사용했다. 치료 그룹당 3개 샘플을 이중으로 분석했다. 요약하면, 7개 표준을 제조업자의 프로토콜에 따라 제조하고, 25㎕의 혈청 샘플을 지시된 항체-코팅된 비드와 혼합하고, 500rpm에서 진탕시키면서 실온에서 2시간 동안 배양했다. 프로카르타플렉스 멀티플렉스 면역검정(ProcartaPlex Multiplex Immunoassays)은 루미넥스(Luminex) xMAP(다중-분석물 프로파일링) 기술을 사용했다. 플레이트는 루미넥스 200 시스템(Luminex, Austin, TX)을 사용하여 판독하여, 표준 곡선을 플롯팅했다. 프로카르타플렉스 어낼리스트 소프트웨어 버젼(ProcartaPlex Analyst software version) 1.0을 사용하여 데이터를 분석했다.

유전자 발현 분석: Qiagen RNeasy 미니 키트를 사용하여, 각각 3개 복제물로 이루어진 치료 그룹으로부터 추출된 전체 종양 RNA를, 품질 관리 및 나노스트링 기술에 의한 발현 프로파일 분석을 위해 베일러 의과 대학(Baylor College of Medicine)(Houston, TX)의 게놈 코어 파실러티(Genomic Core Facility)에 제출했다. 나노스트링 판캔서 마우스 면역 프로파일링 패널은 특이적 면역-세포 유형 및 면역-세포 기능과 관련된 프로파일 776 유전자를 사용했다. 데이터는 MD 앤더슨의 바이오인포매틱스 코어 파실러티(Bioinformatics Core Facility)에서 분석했다.

통계 분석: CMT167 모델의 경우, 일반화된 선형 회귀 모델을 사용하여 종양 성장을 분석했다. 모든 데이터는 평균±SD로 제시하고, 치료 사이의 차이의 통계적 유의성은 2원 ANOVA 및 테일드(tailed) t 시험에 의해 시험되었고; P < 0.05를 유의한 것으로 간주했다. 344SQ 모델의 경우, 전체 생존(OS)의 분포는 카플란-마이어(Kaplan-Meier) 방법에 의해 평가했다. 로그-랭크 시험을 수행하여 그룹 사이의 생존율의 차이를 시험했다. Cox 비례 위험 모델에 기초한 생존 데이터의 회귀 분석은 치료 개시로부터 사망시까지로 정의된 OS에서 수행되었다.

유동 세포 계측법 및 루미넥스 데이터의 통계적 분석은 상이한 치료 그룹을 비교하기 위해 일반적 선형 회귀 모델에 의해 수행했다. 면역조직화학 데이터의 경우, 일반화된 선형 회귀 모델을 치료 그룹 사이의 H 스코어의 통계적 분석에 사용했다. SAS의 PROC MIXED 절차에서 ESTIMATE 성명서가 각 쌍 사이에 사용되었다. 나노스트링 분석의 경우, 데이터를 사용 전에 표준화하여 유전자 프로파일 및 통계적 분석을 정량화했다. 양성 대조군, 하우스키핑 유전자 및 음성 대조군을 사용하여 샘플 제조 변동, 배경 노이즈 및 RNA 함량 변동을 조정했다. 선형 모델을 사용하여 전체 치료 효과를 평가하였고, 콘트라스트를 사용하여 관심 있는 쌍별 비교를 수행했다. 생성되는 p 값은 베타-균일 혼합물(BUM) 모델을 사용하여 모델화하여 오류 발견률(FDR) 컷오프을 결정하고 유의적으로 차별적으로 발현된 유전자를 동정했다. 모든 통계적 분석은 R 통계 소프트웨어를 사용하여 수행했다.

* * *

본원에 개시되고 특허청구된 모든 방법은 본 개시에 비추어 과도한 실험을 하지 않고도 이루어지고 수행될 수 있다. 본 발명의 조성물 및 방법은 바람직한 구현예와 관련하여 기재되었지만, 본 발명의 개념, 취지 및 범위로부터 벗어나지 않고 본원에 기재된 방법 및 방법 단계 또는 방법 단계의 순서에 변형이 이루어질 수 있음이 당업자에게 명백할 것이다. 보다 구체적으로, 화학적 및 생리학적으로 관련되는 특정 제제가 동일하거나 유사한 결과를 달성하면서 본원에 기재된 제제를 대체할 수 있음이 명백할 것이다. 당업자에게 명백한 이러한 모든 유사한 치환체 및 변형은 첨부된 특허청구범위에 의해 정의된 본 발명의 취지, 범위 및 개념 내에 있는 것으로 간주된다.

참조문헌

다음 참조 문헌은 본원에 제시된 것들에 보충적인 예시적 절차 또는 다른 세부사항을 제공하는 정도로 본원에 구체적으로 참조로 인용된다.

미국 특허 제4,162,282호

미국 특허 제4,310,505호

미국 특허 제4,533,254호

미국 특허 제4,554,101호

미국 특허 제4,728,575호

미국 특허 제4,728,578호

미국 특허 제4,737,323호

미국 특허 제4,921,706호

미국 특허 제5,030,453호

미국 특허 제5,397,987호

미국 특허 제5,855,911호

미국 특허 제5,962,016호

미국 특허 제6,413,544호

미국 특허 제6,610,657호

미국 특허 제6,680,068호

미국 특허 제6,770,291호

미국 특허 제6,770,291호

미국 특허 제7,902,441호

미국 공개공보 제2004/0208921호

미국 공개공보 제2006/0251726호

미국 공개공보 제2007/0092968호

미국 공개공보 제2009/0023207호

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Aksentijevich et al., Human Gene Therapy, 7:1111-22, 1996.

Arap et al., Cancer Res., 55(6):1351-1354, 1995.

Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., New York, N.Y., 1996; 1998

Bakhshi et al., Cell, 41(3):899-906, 1985.

Ballou et al., Bioconjugate Chemistry, 15:79-86, 2004.

Ben-Neriah et al., Science, 233:212-214, 1986.

Bishop, Cell, 64:235-48, 1991.

Blankenberg, Cancer Biology & Therapy, 7(10):1525-1532, 2008.

Brady and Dodson, Nature, 368:692-693, 1994.

Buchhagen et al., Head and Neck, 18:529-537, 1996.

Butturini et al., Leukemia Res., 20(6):523-529, 1996.

Caldas et al., Nat. Genet., 8(1):27-32, 1994.

Chapman et al., Nucleic acid Res, 19: 3979-3986, 1991.

Cheng et al., Cancer Res., 54(21):5547-5551, 1994.

Cheng et al., Invest. Radiol., 22(1):47-55, 1987.

Clayman et al., Journal of Clinical Oncology, 16:2221-32, 1998.

Cleary and Sklar, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82(21):7439-43, 1985.

Cleary et al., J. Exp. Med., 164(1):315-320, 1986.

Colledge and Scott, Trends in Cell Biology, 9:216-221, 1999.

Daly et al., Oncogene, 8:1721-1729, 1993.

Deng et al., Cancer Res., 67:709-17, 2007.

Deng et al., Oncogene, 32:4273-83, 2013.

Drin et al., AAPS Pharm. Sci., 4(4):1-7, 2002.

Du et al., J. Pept. Res., 51:235-243, 1998.

Dubertret et al., Science, 298:1759-1762, 2002.

Dwarakanath et al., Biochem. Biophysical Res. Commun., 325:739-743, 2004.

Eggermont et al., EMBO J., 12: 2539-2548, 1993.

Ellerby et al. Nature Med., 9:1032-1038, 1999.

Farhood et al., Biochim. Biophys. Act, 289-295, 1995.

Ferrari, Nature Reviews, 5:161-171, 2005.

Fidler and Ellis, Cell, 79(2):185-188 , 1994.

Folkman and Shing, J. Biol. Chem., 267(16):10931-10934 , 1992.

Folkman, Nature Med., 1:27-31, 1995.

Frangioni, Current Opin. Chem. Biol., 7:626-634, 2003.

Gazdar et al. In: Sym. Quant. Biol., Cold Spring Harbor, 59:565-572, 1994.

Gazdar et al., Intl. J. Cancer, 78:766-774, 1998.

Ghosh and Bachhawat, In: Liver Diseases, Targeted Diagnosis and Therapy Using Specific Receptors and Ligands, Wu et al. (Eds.), Marcel Dekker, NY, 87-104, 1991.

Goodwin et al., J. Biol Chem., 267: 16330-16334, 1992.

Gorunova et al., Genes Chrom. Cancer, 23:81-99, 1998.

Great Britain Appln. 2193095 A

Griffith et al., Annual review of immunology, 32:659-702, 2014.

Gupta et al., Biomaterials, 26:3995-4021, 2005.

Gupta et al., Biomaterials, 26:3995-4021, 2005.

Gupta et al., Biomaterials, 26:3995-4021, 2005.

Gupta, IEEE Trans.Nanobioscience., 3:66-73, 2004.

Hanahan and Folkman, Cell, 86(3):353-364 , 1996.

Hantschel et al., Cell, 112:845-857, 2003.

Hollstein et al., Science, 253(5015):49-53, 1991.

Hope et al., 1985

Horowitz, In: MRI Physics for Radiologists: A Visual Approach, 1995

Hughson et al., Cancer Genet. Cytogenet., 106:93-104, 1998.

Hussussian et al., Nat. Genet., 8(1):15-21, 1994.

Hvalby et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91:4761-4765, 1994.

Ito et al., Mol Ther., 7:409-18, 2003.

Ito et al., Cancer Gene Ther., 11:733-9, 2004.

Ivanova et al, J Pathol, 211: 591-601, 2007.

Jameson et al., Nature 368: 744-746, 1994

Ji et al., Cancer Res., 62:2715-2720, 2000.

Ji et al., Cancer Res., 62:2715-20, 2002.

Ji et al., Future Oncology, 1:79-92, 2005.

Ji et al., Journal of Thoracic Oncology., 327-30 10.1097/JTO.0b013e31816bce65, 2008.

Johnson et al., J. Virol., 67:438-445, 1993.

Kamb et al., Nat. Genet., 8(1):23-26, 1994.

Kamb et al., Science, 2674:436-440, 1994.

Kerr et al., Br. J. Cancer, 26(4):239-257, 1972.

Kerr et al., Br. J. Cancer, 26(4):239-257, 1972.

Kersemaekers et al., Intl. J. Cancer, 79:411-417, 1998.

Kloetzer et al., Virology, 140(2):230-238, 1985.

Kohno et al., Cancer, 85:341-347, 1999.

Kondo et al., Oncogene, 20:6258-6262, 2001.

Kondo et al., Oncogene, 20:6258-6262, 2001.

Kyte and Doolittle, J. Mol. Biol., 157(1):105-132, 1982.

Lerman et al., Cancer Res., 60:6116-33, 2000.

Lewin et al., Nat. Biotechnol., 18:410-414, 2000.

Lin et al., Oncogene, 20:1873-1881, 2001.

Ling et al., Cancer Res., 63:298-303, 2003.

Liposome Technology, Gregoriadis (Ed.), Boca Raton, FL, CRC Press, 1984.

Lowe et al., Nature, 2004;432:307-15, 2004.

Mabry et al., In: Lung Cancer in the Genetic Basis of Human Cancer, Vogelstein and Kinzler (Eds.), McGraw Hill, 671-679, 1998.

Mayer et al., Biochim. Biophys. Acta, 858(1):161-168, 1986.

Mayhew et al., Biochim. Biophys. Acta, 775(2):169-174, 1984.

Mayhew et al., Methods Enzymol., 149:64-77, 1987.

Michalet et al., Science, 307:538-544, 2005.

Miller et al., Cancer, 47:207-214, 1981.

Miller et al., Oncogene, 22:6006-6013, 2003.

Minna et al., In: Cancer: Principles and Practice of Oncology, 5^th Ed., Philadelphia: Lippincott, 849-857, 1997.

Morawski et al., Current Opinion Biotech., 16, 89-92, 2005.

Mori et al., Cancer Res., 54(13):3396-3397, 1994.

Nishihara et al., Cancer Letter, 180(1):55-61, 2002.

Nobri et al., Nature (London), 368:753-756, 1995.

Obenauer et al., Nucleic Acids Res., 31(13):3635-3641, 2003.

Okamoto et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91(23):11045-11049, 1994.

Orlow et al., Cancer Res, 54(11):2848-2851, 1994.

Orlow et al., Int. J. Oncol., 15(1):17-24, 1994.

Orr et al., The Journal of experimental medicine, 206:807-17, 2009.

O'Quigley J et al., Biometrics, 46:33-48, 1990.

PCT 출원 PCT/US85/01161

PCT 출원 PCT/US89/05040

PCT 출원 WO 02/100435A1

PCT 출원 WO 03/015757A1

PCT 출원 WO 04/002453A1

PCT 출원 WO 04029213A2

Pure & Appl. Chem., 63(3):427-463, 1991.

Ramesh et al., Mol Ther., 3:337-50, 2001.

Remington's Pharmaceutical Sciences" 15th Edition, pages 1035-1038 and 1570-1580, 1990.

Roberts et al., Adv. Drug Del. Rev., 54(4):459-476, 2002.

Rojas et al., J. Biol. Chem., 271:27456-27461, 1996.

Rojas et al., Nature Biotechnol., 16:370-375, 1998.

Roth et al., Nat Med., 2:985-91, 1996.

Roth, Forum, 8:368-376, 1998.

Roth, Expert Opinion on Biological Therapy, 6:55-61, 2006.

Sambrook et al., In: Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Ed., Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, NY, 1989

Schwarze et al., Science, 285:1569-1572, 1999.

Schwarze et al., Trends Cell Biol., 10:290-295, 2000.

Sekido et al., Biochimica. Biophysica. Acta, 1378:F21-F59, 1998.

Sekido et al., Oncogene, 16:3151-3157, 1998.

Sekido et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 93:4120-4125, 1996.

Serrano et al., Nature, 366:704-707, 1993.

Serrano et al., Science, 267(5195):249-252, 1995.

Sestier et al., Electrophoresis, 19:1220-1226, 1998.

Shevach and Stephens, Nature reviews Immunology, 6:613-8, 2006.

Simberg et al., Human Gene Therapy, 16:1087-96, 2005.

Simberg et al., Proceedings of the National Academy of Sciences, 104:932-6, 2007.

Spandidos et al., Anticancer Res., 9(2):383-386, 1989.

Stayton et al., J. Controlled Release, 65:203-220, 2000.

Sun et al., Biopolymers, 60(1):61-75, 2001.

Swisher et al., J Natl Cancer Inst., 91:763-71, 1999.

Templeton, Nature Biotech., 15:647-652, 1997.

Templeton, Nature Biotechnology, 15:647-652, 1997.

Travali et al., FASEB J., 4(14):3209-3214, 1990.

Tsujimoto and Croce, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 83(14):5214-5218, 1986.

Tsujimoto et al., Science, 228(4706):1440-1443, 1985.

Uno et al., Cancer Research, 64:2969-2976, 2004.

Uzawa et al., Cancer Genet. Cytogenet., 107:125-131, 1998.

Viola et al., Trends in immunology. 33:496-504, 2012.

Virmani et al., Genes Chrom Cancer, 21:308-319, 1998.

Wang, Oncogene, 19(49):5643-5650, 2000.

Weinberg, Science, 254(5035):1138-1146, 1991.

Weinberg, Science, 254:1138-1146, 1991.

Wen and Van Etten, Genes and Development, 11:2456-2467, 1997.

West, Methods in Molec. Biol., 238:113-122, 2004.

Wilhelm et al., Biomaterials, 24:1001-1011, 2003.

Wistuba et al., Cancer Res., 57:3154-3158, 1997.

Wistuba et al., Cancer Res., 59:1973-1979, 1999.

Wistuba et al., Oncogene, 18:643-650, 1999.

Woodring et al., J. Cellular Science, 116(Pt.13):2613-2626, 2003.

Zbar et al., Nature, 327:721-724, 1987.

Yang et al., Gene Ther., 4:950-60, 1997.

Zhao, Anti-Cancer Agents in Medicinal Chemistry, 9:1018-1023, 2009.

Claims (47)

1. TUSC2 요법을 위한 TUSC2 치료제를 포함하는, 암을 갖는 대상체를 치료하기 위한 약제학적 조성물로서, 상기 약제학적 조성물이 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제(immune checkpoint inhibitor)와 병용하여 대상체에게 투여되고, 상기 대상체가 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제로 치료 받았거나 치료 받고 있고,
   상기 TUSC2 치료제가 TUSC2 폴리펩타이드, TUSC2 핵산, 또는 TUSC2 발현 벡터를 포함하고,
   상기 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제가 항-PD1 항체 또는 항-PDL1 항체를 포함하는, 약제학적 조성물.
2. 삭제
3. 제1항에 있어서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제가 TUSC2 요법 전에 대상체에게 투여되는, 약제학적 조성물.
4. 제1항에 있어서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제가 TUSC2 요법 후에 또는 이와 동시에 대상체에게 투여되는, 약제학적 조성물.
5. 제1항에 있어서, TUSC2 요법 전 2주 이내에 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제가 대상체에게 투여되는, 약제학적 조성물.
6. 제1항에 있어서, 항-PD1 항체가 니볼루맙, 펨브롤리주맙, 피딜리주맙, AMP-514, REGN2810, 또는 CT-011인, 약제학적 조성물.
7. 제1항에 있어서, 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제가 항-CTLA-4 항체를 추가로 포함하는, 약제학적 조성물.
8. 제7항에 있어서, 항-CTLA-4 항체가 트레멜리무맙 또는 이필리무맙인, 약제학적 조성물.
9. 제1항에 있어서, 항-PDL1 항체가 두르발루맙, 아테졸리주맙, 아벨루맙, BMS 936559, 또는 MPDL328OA인, 약제학적 조성물.
10. 제1항에 있어서, 대상체가 i) 항-PD1 항체 및 항-CTL4 항체, ⅱ) 항-PDL1 항체 및 항-CTL4 항체, 또는 iii) 항-PD1 항체 및 항-PDL1 항체의 2개의 면역 체크포인트 억제제로 치료 받았거나 치료 받고 있는, 약제학적 조성물.
11. 제1항에 있어서, TUSC2 치료제가 TUSC2 발현 벡터를 포함하는, 약제학적 조성물.
12. 제11항에 있어서,
    a) TUSC2 발현 벡터가 TUSC2 발현 플라스미드 DNA 또는 pLJ143/KGB2/FUS1이거나;
    b) TUSC2 발현 벡터가 리포좀 또는 DOTAP:콜레스테롤 리포좀 내에 제공되거나;
    c) TUSC2 발현 벡터가 DOTAP:콜레스테롤 리포좀 내에 제공되고, DOTAP:콜레스테롤 중량비(w/w)가 1.5:1 내지 1:1.5 또는 10:9이거나; 또는
    d) TUSC2 발현 벡터가 DOTAP:콜레스테롤 리포좀 내에 제공되고, TUSC2 발현 벡터 및 DOTAP:콜레스테롤 리포좀이 0.01mg/kg 내지 0.10mg/kg의 투여량으로 대상체에게 투여되는, 약제학적 조성물.
13. 제1항에 있어서, 약제학적 조성물이 2회 이상 투여되는, 약제학적 조성물.
14. 제1항에 있어서, 소염제와 병용하여 대상체에게 투여되는, 약제학적 조성물.
15. 제1항에 있어서, TUSC2 치료제가 미리스토일화되거나 미리스토일화되지 않은 TUSC2 폴리펩타이드를 포함하는, 약제학적 조성물.
16. 제15항에 있어서, TUSC2 폴리펩타이드가 나노입자, 지질계 나노입자, 초상자성 나노입자, 나노셸(nanoshell), 반도체 나노결정, 양자점(quantum dot), 중합체계 나노입자, 규소계 나노입자, 실리카계 나노입자, 금속계 나노입자, 풀러린(fullerene), 또는 나노튜브에 포함되는, 약제학적 조성물.
17. 제1항에 있어서, 추가의 항암 요법, 화학 요법, 방사선 요법, 유전자 요법, 수술, 호르몬 요법, 항혈관형성 요법 또는 사이토카인 요법; 또는 항혈관형성 요법으로서 EGFR 억제제와 병용하여 대상체에게 투여되는, 약제학적 조성물.
18. 제1항에 있어서, 암이 구강암, 구강인두암, 비인두암, 호흡기암, 비뇨생식기암, 위장암, 중추 또는 말초 신경계 조직암, 내분비암 또는 신경내분비암 또는 조혈암, 신경교종, 육종, 암종, 림프종, 흑색종, 섬유종, 수막종, 뇌암, 신장암, 담도암, 크롬친화성세포종, 췌장섬세포암, 리-프라우메니(Li-Fraumeni) 종양, 갑상선암, 부갑상선암, 뇌하수체 종양, 부신 종양, 골형성 육종 종양, 다발성 신경내분비 유형 I 및 유형 II 종양, 유방암, 폐암, 두경부암, 전립선암, 식도암, 기관암, 간암, 방광암, 위암, 췌장암, 난소암, 자궁암, 자궁경부암, 고환암, 결장암, 직장암, 피부암, 비소세포폐암, 또는 전이성 폐암인, 약제학적 조성물.
19. 제1항에 있어서, 암이 적어도 제1 화학 요법 또는 백금계 화학 요법에 내성인, 약제학적 조성물.
20. 제1항에 있어서, TUSC2 요법과 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제의 병용이
    (a) 종양에서 NK 세포 및/또는 CD8⁺ T 세포 밀도의 증가;
    (b) CD8⁺ T 세포 밀도의 적어도 3배 증가; 또는
    (c) CcL3, CcL4, CcL21a 및/또는 CcL19 혈청 수준
    을 유발하는, 약제학적 조성물.
21. TUSC2 치료제 및 면역 체크포인트 억제제를 포함하는, 암을 갖는 대상체를 치료하기 위한 키트로서,
    상기 TUSC2 치료제가 TUSC2 폴리펩타이드, TUSC2 핵산, 또는 TUSC2 발현 벡터를 포함하고,
    상기 적어도 하나의 면역 체크포인트 억제제가 항-PD1 항체 또는 항-PDL1 항체를 포함하는, 키트.
22. 삭제
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