KR102330571B1 - 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 유효성분으로 포함하는 세포자멸 억제용 조성물 - Google Patents

Abstract

본 발명은 크기배제 크로마토그래피를 이용한 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 분리 방법 및 이를 이용하여 분리된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 포함하는 유효성분으로 포함하는 세포자멸 억제용 조성물에 관한 것으로, 본 발명의 분리방법으로 제조된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체는 세포 내 투과가 잘 이루어지고, 전달된 세포밖 소포체가 세포자멸 억제 효과가 있음을 밝힘과 동시에 카스파아제-3 억제하여 내재성 세포자멸 경로에 대한 저항성을 가지고 있으므로, 세포자멸 관련 질병의 치료 또는 예방에 유용하게 이용될 수 있다.

Description

배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 유효성분으로 포함하는 세포자멸 억제용 조성물{A Composition for Inhibiting Apoptosis Comprising Brassica Species-Derived Extracellular Vesicles as Active Ingredients}

본 발명은 크기배제 크로마토그래피를 이용한 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 분리 방법 및 이를 이용하여 분리된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 포함하는 유효성분으로 포함하는 세포자멸 억제용 조성물에 관한 것이다.

세포밖 소포체는 다양한 크기를 가지며, 특히 이중 크기가 가장 작은 엑소좀(exosome)은 50~150 nm의 작은 세포막성 수포이다. 세포밖 소포체는 인간과 동물은 물론, 곤충, 식물, 미생물 세포에서 분비된다. 특히 이들은 세포가 갖고 있는 단백질, 핵산, 지질, 탄수화물 등 특정 분자들을 포함하고 있으며, 지질이중층으로 둘러싸여 있어 이들 분자들을 안정적으로 보호하면서, 분비 후 다른 세포로 이들을 전달할 수 있는 특징이 있다. 생체 내 혈액, 소변, 침 등과 같은 체액에서 고농도로 발견되는 세포밖 소포체는 이런 특징으로 인해 새로운 생물학적 소재로서 가능성을 갖고 있다.

상기 세포밖 소포체는 1) 천연물질로 부작용 이슈가 매우 적으며; 2) 경구투여를 통해 대장 도달이 가능할 뿐 아니라; 3) 음식으로 직접 식용하는 것에 비해 편의성이 높아 유아나 소아 대상으로 적용이 가능하고; 4) 식물로부터 대량 생산이 가능하여 건강기능식품의 새로운 패러다임 선도할 수 있으며; 5) 약리성분을 탑재하여 대장까지 전달할 수 있는 효율적인 약물 전달체로 적용이 가능하다는 장점이 있다.

하지만, 이런 이점에도 불구하고, 조직으로부터 세포밖 소포체를 분리하는데 있어, 상대적으로 제한된 양과 높은 복잡성을 나타내므로, 세포밖 소포체를 통상의 방법으로 정제하는 것이 거의 불가능하다, 따라서 조직으로부터 세포밖 소포체를 분리하기 위해서는 종래 기술과는 차별되는 효율적인 새로운 분리법이 시급히 요구되는 실정이다.

그럼에도 아직 배추속 유래 세포밖 소포체의 생물학적 기능 및 응용은 물론, 이들의 추출 및 정제 방법에 대한 연구 역시 체계적으로 이뤄지지 않았다. 일반적으로 세포밖 소포체 분리에 사용되는 초고속원심분리법의 경우, 불순물 농도가 상대적으로 높고, 강한 원심력에 의해 세포밖 소포체의 물리적 파쇄가 유발될 수 있다. 상용화되어 판매되는 ExoQuick(SBI사) 등의 폴리머 침강법 역시 불순물의 농도가 매우 높으며, PEG(polyethylene glycol)을 사용하기 때문에 이로 인한 오염문제를 갖고 있다. 따라서, 세포밖 소포체의 산업적 활용을 위해서는 이들을 효율적으로 대량 분리할 수 있는 새로운 기술의 개발이 요구된다.

따라서, 본 발명자는 배추속 식물로부터 효과적으로 세포밖 소포체를 제조하고, 이를 이용하여 세포 자멸을 억제하는 효과를 갖는 약학조성물로 응용할 수 있음에 착안하여 본 발명을 완성하기에 이르렀다.

본 명세서 전체에 걸쳐 다수의 논문 및 특허문헌이 참조되고 그 인용이 표시되어 있다. 인용된 논문 및 특허문헌의 개시 내용은 그 전체로서 본 명세서에 참조로 삽입되어 본 발명이 속하는 기술 분야의 수준 및 본 발명의 내용이 보다 명확하게 설명된다.

특허문헌 1. 대한민국 공개특허공보 제10-2018-0095836호

본 발명자들은 배추속 식물로부터 유래한 세포밖 소포체, 구체적으로는 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 효율적인 수득 방법을 개발하기 위하여 예의 연구 노력하였다. 그 결과, 종래에 통상적으로 이용되는 폴리머 침강법 또는 초고속원심분리법에서 벗어나 크기배제 크로마토그래피를 이용하여 분리, 정제를 수행할 경우 불순물 함량을 크게 낮추면서도 소포체에 가해지는 물리적 파쇄도 없으면서 고유의 약리학적 및 약물 전달적 활성을 그대로 유지하는 고순도, 고품질의 배추속 유래 세포밖 소포체를 수득할 수 있음을 발견함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다.

따라서 본 발명의 목적은 배추속 식물 착즙액으로부터 배추속 식물 유래 세포밖 소포체 분리 방법을 제공하는 데 있다.

또한, 본 발명의 목적은 상술한 방법으로 분리된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 포함하는 암, 퇴행성 뇌신경계 질환, 중풍, 면역계 질환 및 염증으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 세포자멸 관련 질병의 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는데 있다.

또한 본 발명의 목적은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 유효성분으로 하는 caspase-3 유도성 세포자멸사 또는 세포괴사 억제용 조성물을 제공하는데 있다.

또한 본 발명의 목적은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 포함하는, 세포자멸 억제용 동물세포 배양 배지 조성물을 제공하는데 있다.

본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다.

본 발명의 일 측면에 따르면, 본 발명은 배추속 식물의 조직 또는 세포를 포함하는 생물학적 시료에 대해 크기 배제 크로마토그래피를 수행하는 단계를 포함하는 배추속 식물 유래 세포밖 소포체 분리 방법을 제공한다.

본 발명자들은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 효율적인 수득 방법을 개발하기 위하여 예의 연구 노력하였다. 그 결과, 종래에 통상적으로 이용되는 폴리머 침강법 또는 초고속원심분리법에서 벗어나 크기배제 크로마토그래피를 이용하여 분리, 정제를 수행할 경우 불순물 함량을 크게 낮추면서도 소포체에 가해지는 물리적 파쇄도 없으면서 고유의 약리학적 및 약물전달적 활성을 그대로 유지하는 고순도, 고품질의 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 수득할 수 있음을 발견하였다.

본 명세서에서 용어 "세포밖 소포체(extracellular vesicle)"는 다양한 세포들로부터 분비되는 막 구조의 작은 소낭을 의미하며, 대략 30-1,000 nm범위의 직경을 가지고, 다낭체와 원형질막의 융합을 통해 세포 밖 환경으로 방출된다.

본 명세서에서 용어 "생물학적 시료(biological sample)"는 생물학적 활성을 유지하는 배추 식물체로부터 채취, 분리하거나, 또는 이로부터 유래한 관심 성분의 유효량을 함유하고 있는 가공되지 않거나 또는 전처리된 시료를 의미한다. 구체적으로는, 본 발명에서 이용되는 생물학적 시료는 배추속 식물 착즙액이다.

본 명세서에서 용어 "배추속 식물(Brassica Species)"은 배추속에 속하는 식물로, 구체적으로 양배추, 적배추, 브로콜리, 콜리플라워, 콜라비, 콜라드 및 브르셀 스프라우트로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 포함할 수 있고, 보다 바람직하게는 양배추 또는 적배추일 수 있다.

본 명세서에서 용어 "배추속 식물 착즙액"은 배추속 식물에 열이나 효소를 가하지 않고 기계적, 물리적인 힘을 가하여 배추속 식물의 내부에 포함된 유용성분을 외부로 유출시켜 얻어진 액상의 유체를 의미하는 것으로, 특별히 한정되지 않으나, 구체적으로 상기 배추속 식물 착즙액은 하기의 방법으로 제조된 것일 수 있다.

상기 배추속 식물 착즙액을 제조하기 위하여, 배추속 식물을 준비한 후, 배추속 식물을 가압하여 착즙액을 제조할 수 있다. 상기 배추속 식물은 가압하기 전에 세척하는 과정을 추가로 진행할 수 있다.

상기 배추속 식물의 세척은 흐르는 물을 이용하여 상기 준비된 배추속 식물을 세척하는 것일 수 있으나, 예를 들어 PBS 또는 탄산수소나트륨이 용해된 정제수를 이용하여 수행될 수도 있다. 상기 탄산수소나트륨은 식품첨가물로 널리 사용되는 것으로 독성이 없기 때문에 배추속 식물 세척과정에 사용할 수 있다.

상기 배추속 식물에 함유되어 있는 영양성분이 용이하게 착즙되도록, 상기 세척단계와 착즙단계 사이에 상기 배추속 식물을 평균 직경이 1 내지 50 mm로 분쇄되는 단계를 추가로 수행할 수 있다.

상기 분쇄된 배추속 식물을 2 내지 3 kgf/㎠의 압력으로 가압하여 착즙함으로써, 상기 배추속 식물의 유용성분이 충분하게 침출된 배추속 식물 착즙액을 제조할 수 있다.

이후, 상기 배추속 식물 착즙액을 여과하여 고형물을 제거하는 단계를 더 포함할 수 있다. 상기 고형물은 1 ㎜ 이상의 평균 직경을 갖는 것일 수 있다.

또한, 상기 고형물이 제거된 배추속 식물 착즙액의 여과물을 원심분리하는 단계를 더 포함할 수 있다. 상기 원심분리 단계는 7,000-9,000 x g로 1차 원심분리 후 이의 상층액을 19,000-21,000 x g로 2차 원심분리 함으로써 수행되는 것일 수 있다. 보다 구체적으로는, 상기 원심분리 단계는 7,500-8,500 x g로 1차 원심분리 후 이의 상층액을 19,500-20,500 x g로 2차 원심분리 함으로써 수행되는 것일 수 있다.

본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 배추속 식물 착즙액에 대해 한외여과를 수행하는 단계를 임의의 순서로 추가적으로 포함할 수 있다.

본 명세서에서 용어 "한외여과"는 비균질 혼합용액을 구성하는 각각의 물질을 압력 또는 농도구배에 의해 반투과성 막을 따라 분리시키는 막-기반분리공정을 의미한다. 한외여과 막은 일정한 컷오프 값을 갖는 기공 크기를 갖는다. 본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 본 발명에서 이용하는 한외여과는 3 내지 100 kDa의 컷오프(cut-off) 값을 가지며, 보다 구체적으로는 5 내지 50 kDa의 컷오프(cut-off) 값을 가지며, 가장 바람직하게는 5 내지 15 kDa의 컷오프(cutoff) 값을 가진다.

본 발명의 방법에 한외여과를 수행하는 단계가 추가적으로 포함될 경우, 이는 크기배제 크로마토그래피 전에 수행될 수도 있으며, 크로마토그래피 완료 후에 수행될 수도 있다.

보다 구체적으로는, 본 발명의 방법은 상기 한외여과를 수행하는 단계와 상기 크기배제 크로마토그래피를 수행하는 단계를 순차적으로 포함한다. 이와 같이 한외여과 후 크기배제 크로마토그래피를 수행할 경우 한외여과를 통한 농축으로 시료의 부피가 감소한 뒤 크기배제 크로마토그래피가 적용되어 보다 효율적인 분리공정이 이루어질 수 있다.

본 명세서에서 용어 "크기배제 크로마토그래피(Size Exclusion Chromatography, SEC)"는 비균질 혼합물을 구성하는 각각의 물질 중 정지상의 비드 포어(bead pore) 직경보다 크기가 작은 물질은 포어에 진입하여 상대적으로 느리게 용출되고, 크기가 큰 물질은 포어에 진입하지 않고 이동상을 따라 빠르게 용출됨으로써, 이로부터 유발되는 각 물질의 크기에 따른 이동속도 차이에 기반하여 물질을 분리하는 크로마토그래피를 의미한다.

본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 본 발명에서 이용하는 크기배제 크로마토그래피는 정지상(stationary phase)의 포어(pore) 평균 직경은 30-75 nm인 것일 수 있다. 바람직하게 상기 정지상의 포어 평균 직경은 65 내지 75 nm인 것일 수 있다.

구체적으로 상기 정지상은 수퍼덱스, 세파크릴, 세파덱스, 세파로오즈, 프락토겔, 토요펄 및 Bio-Gel로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나의 겔 여과 매질일 수 있고, 보다 바람직하게는 Izon science 사로부터 생산된 qEVoriginal(Cat.No: SP1)를 사용하였으나, 이에 제한되지 않는다.

상기 크기 배제 크로마토그래피는 당해 업계의 통상의 방법이라면 특별히 이에 제한되지 않으나, 바람직하게는 하기 단계들을 통해 수행되는 것일 수 있다.

(a) 상기 배추속 식물 착즙액을 로딩하는 단계; 및

(b) 용리액으로 분획물을 수득하는 단계.

배추속 식물 착즙액을 로딩하기 전에, 불순물을 제거하고 정지상과의 평형 상태를 형성하여 효율적인 분리공정을 이루기 위해, 상기 크기 배제 크로마토그래피는 평형 완충액을 통해 평형화된 것일 수 있다.

상기 평형 완충액과 용리액은 pH 6 내지 pH 8의 인산완충액(posphate buffered saline; PBS)일 수 있다.

본 발명의 일 구현예에 따르면 상기 크기 배제 크로마토그래피에 배추속 식물 착즙액을 로딩하고 용리액을 전개시키면 배추속 식물 착즙액 중 세포밖 소포체와 같이 큰 분자가 선택적으로 용출되고 나머지 크기가 작은 물질은 상기 크기 배제 크로마토그래피 내부에 머무르게 되어 크기가 큰 세포밖 소포체를 시료로부터 분리할 수 있다. 일반적으로 세포밖 소포체는 분자의 크기가 1,000 kDa 이상으로 다른 불순물에 비해 크기가 큰 입자에 속하기 때문에 용리액에 의한 용출과정에서 우선적으로 용리액과 함께 용출된다. 용출되는 물질의 분자량은 다공성 정지상의 크기 및 구멍 크기, 컬럼의 길이, 이동상의 유속 등에 따라 상이하며, 동일한 조건에서는 용출되는 분자의 크기가 일정하다.

본 발명의 일 구현예에 따르면 세포밖 소포체 중에서도 바람직하게는 엑소좀(exosome)이며, 엑소좀은 50~150 nm의 크기를 갖는 것으로, 세포밖 소포체 중에서 가장 작은 세포막성 수포이다. 따라서 상기 세포밖 소포체 중에서도 엑소좀의 분리효율을 극대화하기 위해서는 용리된 분획물의 입도를 분석하여 50 내지 150 nm 평균 직경을 갖는 분획물을 선택하여 회수하는 것이 보다 바람직하다.

본 발명의 일실시예에서는 Izon science 사로부터 제조된 qEVoriginal로 채워진 컬럼(70 nm)에 인산완충액(1 X PBS, pH 7.4)을 첨가하여 평형시킨 정지상에, 배추속 식물 착즙액을 로딩하고, 해당 컬럼에 인산완충액(1 X PBS, pH 7.4)을 용리액으로 주입하여 분획물을 0.5 mL씩 회수한 다음, 나노입자추적분석(Nanoparticle tracking analyzer, NTA)로 분석하였다.

본 발명의 다른 측면은 상기 방법으로 분리된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 유효성분으로 포함하는 암, 퇴행성 뇌신경계 질환, 중풍, 면역계 질환 및 염증으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 세포자멸 관련 질병의 예방 또는 치료용 조성물에 관한 것이다.

본 발명의 조성물은 선천적 또는 후천적인 원인으로 인해, 세포에서의 카스파아제-3 활성의 조절이 잘못되어 발생하는 세포자멸 관련 질병의 치료 또는 예방에 유용하게 사용될 수 있다. 본 발명에서는 카스파아제-3을 고발현하는 동물세포주에서 카스파아제-3의 활성을 효과적으로 억제하고 세포 생존율이 증가됨을 확인함으로써, 본 발명의 조성물이 상기 질환에 유용함을 확인하였다.

상기 세포자멸 관련 질병은, 세포자멸(apoptosis) 과정의 조절이 비정상적으로 일어남으로써 발생하는 질환으로, 구체적으로 암, 퇴행성 뇌신경계 질환, 중풍, 면역계 질환, 염증 등이 있다.

본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 상기 세포밖 소포체의 직경은 40 내지 200 nm인 엑소좀일 수 있고, 보다 구체적으로는 50 내지 150 nm의 직경을 가질 수 있다. 상기 엑소좀은 생체유래 나노베지클(nanovesicle)로서, 그 세포막에 있는 MHC가 면역세포들을 회피하도록 돕기 때문에 그 자체로 다른 고분자 또는 무기질 나노입자에 비하여 면역거부 반응이 덜하다. 이에 따라 혈액 속에서도 오랫동안 분해되지 않고 순환하면서 CTC(circulating tumor cell)까지 전달될 수 있다.

또한, 엑소좀은 그 막 표면에 다양한 수용체(receptor)와 단백질들이 존재하기 때문에 엑소좀과 유사한 지질 이중막(bilayer lipid)을 갖는 리포솜(liposome)보다 세포에 더 잘 흡수(uptake)되며, 독성 또한 낮은 것으로 이미 밝혀진 바 있다. 이에 따라, 엑소좀의 전달체로서의 기능은 리포솜과 다른 양상으로 일어나며, 효율에서도 차이가 크다. 또한, 리포솜에는 엑소좀의 세포막에 존재하는 다양한 리셉터 또는 단백질들이 존재하지 않기 때문에 상기한 이점을 가질 수 없다.

본 명세서에서 용어 "예방"은 질환 또는 질병을 보유하고 있다고 진단된 적은 없으나, 이러한 질환 또는 질병에 걸릴 가능성이 있는 대상체에서 질환 또는 질병의 발생을 억제하는 것을 의미한다.

본 명세서에서 용어 "치료"는 (a) 질환, 질병 또는 증상의 발전의 억제; (b) 질환, 질병 또는 증상의 경감; 또는 (c) 질환, 질병 또는 증상을 제거하는 것을 의미한다.

본 발명의 조성물은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 포함하는 유효성분이 암, 퇴행성 뇌신경계 질환, 중풍, 면역계 질환 및 염증으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 세포자멸 관련 질병을 억제하거나, 이를 제거하거나 또는 경감시키는 역할을 한다. 따라서, 본 발명의 조성물은 그 자체로 이들 질환 치료의 조성물이 될 수도 있고, 혹은 다른 약리성분과 함께 투여되어 상기 질환에 대한 치료 보조제로 적용될 수도 있다. 이에, 본 명세서에서 용어 "치료" 또는 "치료제"는 "치료 보조" 또는 "치료 보조제"의 의미를 포함한다.

본 발명에서의 '암'이란 정상적인 세포자멸 균형이 깨지는 경우 세포가 과다 증식하고, 주변 조직으로 침윤할 수 있는 특징을 갖는 질병군을 말한다. 폐암, 후두암, 위암, 대장/직장암, 간암, 담낭암, 췌장암, 유방암, 자궁경부암, 전립선암, 신장암, 피부암 등의 상피세포 등에서 유래하는 암종(carcinoma), 골암, 근육암, 지방암, 섬유세포암 등의 결합조직세포에서 유래하는 육종(sarcoma), 백혈병, 림프종, 다발성골수종 등의 조혈세포에서 유래하는 혈액암, 신경조직에 발생하는 종양 등으로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상일 수 있다.

상기 면역계 질환 또는 염증 질환은 전신성 루푸스, 류마티스관절염, 피부염, 아토피 피부염, 비염, 알레르기성 비염, 알레르기성 결막염, 두드러기, 기관지염 및 알레르기성 천식으로 이루어진 군 중에서 선택되는 어느 하나 이상일 수 있다.

상기 퇴행성 뇌신경계 질환은 치매(Alzheimer's disease), 뇌졸중, 파킨슨병(Parkinson's disease), 헌팅턴병(Huntington's disease), 피크병(Pick's disease), 근위축성 측색 경화증(Amyotrophic lateral sclerosis; ALS), 크로이츠펠트-야콥병(Creutzfeldt-Jakob disease; CJD), 진행성 핵상마비(Progressive supranuclear palsy), 다계통 위축증(Multiple system strophy), 감람핵-뇌교-소뇌 위축증(Olivopontocerebellar atrophy; OPCA), 샤이-드래거 증후군(Shy-Drager syndrome), 본태성 진전증(Essential tremor), 피질-기저핵 퇴행증(Cortico-basal ganlionic degeneration), 미만성 루이 소체 질환(Diffuse Lewy body disease) 및 선조체-흑질 퇴행증 (Striatonigral degeneration)으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상일 수 있다.

본 발명에 따른 조성물은 약제학적 조성물일 수도 있고, 화장료 조성물일 수도 있으며, 식품 조성물로 제조될 수도 있다.

상기 조성물이 약제학적 조성물일 경우, 다양한 경구 또는 비경구 투여 형태로 제형화할 수 있다.

경구 투여용 제형으로는 예를 들면 정제, 환제, 경질, 연질 캅셀제, 액제, 현탁제, 유화제, 시럽제, 과립제 등이 있는데, 이들 제형은 유효성분 이외에 희석제(예: 락토즈, 덱스트로즈, 수크로즈, 만니톨, 솔비톨, 셀룰로즈 및/또는 글리신), 활택제(예: 실리카, 탈크, 스테아르산 및 그의 마그네슘 또는 칼슘염 및/또는 폴리에틸렌 글리콜)를 추가로 포함할 수 있다. 또한, 상기 정제는 마그네슘 알루미늄 실리케이트, 전분 페이스트, 젤라틴, 트라가칸스, 메틸셀룰로즈, 나트륨 카복시메틸셀룰로즈 및/또는 폴리비닐피롤리딘과 같은 결합제를 함유할 수 있으며, 경우에 따라 전분, 한천, 알긴산 또는 그의 나트륨 염과 같은 붕해제 또는 비등 혼합물 및/또는 흡수제, 착색제, 향미제 및 감미제를 함유할 수 있다. 상기 제형은 통상적인 혼합, 과립화 또는 코팅 방법에 의해 제조될 수 있다.

또한, 비경구 투여용 제형의 대표적인 것은 주사용 제제이며, 주사용 제제의 용매로서 물, 링거액, 등장성 생리식염수 또는 현탁액을 들 수 있다. 상기 주사용 제제의 멸균 고정 오일은 용매 또는 현탁 매질로서 사용할 수 있으며 모노-, 디-글리세라이드를 포함하여 어떠한 무자극성 고정오일도 이러한 목적으로 사용될 수 있다. 또한, 상기 주사용 제제는 올레산과 같은 지방산을 사용할 수 있다.

또한, 본 발명에 따른 종양의 예방 또는 치료용 약학조성물물의 투여량은 환자의 연령, 성별, 체중, 질환의 중증도에 따라 달라지나, 본 발명의 약학 조성물은 환자의 체중 1 kg 당 300 mg 이하, 바람직하게는 100 내지 200 mg을 1 일 1 내지 4 회 투여하나 이에 한정되는 것은 아니다.

본 발명의 또 다른 측면은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 유효성분으로 하는 카스파아제-3(caspase-3) 유도성 세포자멸사 또는 세포괴사 억제용 조성물에 관한 것이다. 상기 조성물은 약제학적 조성물일 수도 있고, 화장료 조성물일 수도 있으며, 식품 조성물로 제조될 수도 있다.

본 발명의 조성물은 선천적 또는 후천적인 원인으로 인해, 세포에서의 카스파아제-3 활성의 조절이 잘못되어 발생하는 세포자멸사 또는 세포괴사를 억제할 수 있다. 또는 다양한 요인에 의해 유도된 세포자멸사 또는 세포괴사가 유도된 동물세포에서, 과발현되는 카스파아제-3 활성을 억제하여, 세포자멸사 또는 세포괴사를 억제하는 것일 수 있다. 본 발명에서는 카스파아제-3을 고발현하는 동물세포주, 바람직하게는 피부각질세포에서 카스파아제-3의 활성을 효과적으로 억제하고 세포 생존율을 증가시켰음을 확인함으로써, 본 발명의 조성물이 상기 카스파아제-3(caspase-3) 유도성 세포자멸사 또는 세포괴사 억제에 유용함을 확인하였다.

나아가, 상기 배추속 식물 유래 세포밖 소포체은 무독성이고, 생체친화적이며, 세포 내로의 투과도가 높으며, 세포자멸사 또는 세포괴사 억제에 현저히 우수한 효과를 나타내기 때문에, 약학 분야, 화장료, 식품 등의 분야에 광범위하게 활용될 수 있다.

본 발명의 또 다른 측면은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 포함하는, 세포자멸 억제용 동물세포 배양 배지 조성물에 관한 것이다.

본 명세서에서 용어 "배양"이란 세포를 적당히 인공적으로 조절한 환경조건에서 생육시키는 과정을 의미한다.

또한, 본 발명에서의 세포 배양은 산업적 생물공학에서 확립된 다양한 방법에 의해 사용될 수 있고, 본 발명의 배지 조성물을 사용하여 불연속 및 연속 세포 배양방법, 일예로 관류 및 화학조절 배양장치를 이용할 수 있으며, 반복 유가식 및 반복 회분식이 포함되는 불연속 방법이 가장 바람직한 예일 수 있다.

상기 회분식 세포 배양은 유가식 배양 또는 단순 회분식 배양을 포함하고, 이때, 용어 "유가식 세포 배양"은 세포 및 세포배양 배지가 초기에 배양 용기에 공급되고, 배양 종결 전에 주기적으로 세포 및/또는 생성물을 수확하면서 또는 수확하지 않으면서 배양 공정 동안 추가적인 배양 영양소가 연속적으로 또는 불연속적인 증분으로 배양물에 공급되는 세포 배양을 지칭한다. 용어 "단순 회분식 배양"은 배양 공정을 시작할 때 세포 및 세포 배양 배지가 포함되는 세포 배양을 위한 모든 성분이 배양 용기에 공급되는 절차에 관련된다.

상기 배지 조성물은 체외 배양용 배지 조성물로 사용되는 것이 바람직하며, "체외 배양"이란 체내에서 세포가 성장하는 상태와 구분되는 방법으로 실험실의 인큐베이터(incubator;배양기)에서 체내 환경과 유사한 조건으로 배양하는 일련의 실험실 과정을 의미하는 것으로, 본 발명의 배지 조성물은 이러한 체외배양에 최적화된 배지 조성물이다.

본 발명의 배지 조성물을 적용할 수 있는 동물세포는 체외에서 배양할 수 있는 동물세포라면 특별히 이에 제한되지 않으나, 구체적으로는 포유동물일 수 있다. 상기 포유동물 세포는 포유동물세포 그 자체이거나, 외래 유전자가 삽입된 형질감염 혹은 형질전환된 형태일 수 있다. 예컨대 상기 포유동물세포의 형질감염 혹은 형질전환된 형태란 재조합 단백질 또는 항체 또는 항체 단편을 발현시키기 위해 다양한 재조합 벡터를 삽입한 포유동물세포를 의미한다. 구체적으로 상기 포유동물세포는 피부각질세포(HaCaT)일 수 있다.

본 발명의 배지 조성물은 동물세포의 배양과정에서 선천적 혹은 후천적 요인에 의해 카스파아제-3 활성의 조절 잘못되어 유발되는 세포자멸(apoptosis) 억제활성을 가지는 것을 특징으로 한다.

본 발명에 따라 분리된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체는 세포 내 투과가 잘 이루어지고, 전달된 세포밖 소포체가 세포자멸 억제 효과가 있음을 밝힘과 동시에 카스파아제-3 억제하여 내재성 세포자멸 경로에 대한 저항성을 가지고 있음을 확인한 바, 이는 세포가 배양되는 과정에서 발생하는 세포자멸 억제활성을 가지게 한다. 결국 배양과정에서 발생하는 세포자멸이 유발되어, 세포 생장이 어렵게 되는 문제점을 해결하고, 동물세포의 세포자멸을 억제시킴으로써 발달을 증대시키고 세포 내 활성을 확보하여 좀 더 용이하게 생물학적 산물을 생산할 수 있게 된다.

게다가 상술한 방법을 통해 배추속 식물로부터 고순도 및 고효율로 정제함으로써, 불순물의 함량을 급격히 낮춘 바, 세포 내 안정성이 높다.

본 발명의 특징 및 이점을 요약하면 다음과 같다:

(a) 본 발명은 식물 조직 중에서도 배추속 식물로부터 세포밖 소포체를 분리하는 방법을 제공한다.

(b) 본 발명은 배추속 식물로부터 고유의 치료적 활성 및 약물전달 활성을 갖는 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 고순도, 고품질로 분리, 정제하는 효과적인 방법을 제공한다.

(c) 본 발명의 분리방법으로 제조된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체는 세포 내 투과가 잘 이루어지고, 전달된 세포밖 소포체가 세포자멸 억제 효과가 있음을 밝힘과 동시에 카스파아제-3 억제하여 내재성 세포자멸 경로에 대한 저항성을 가지고 있으므로, 세포자멸 관련 질병의 치료 또는 예방에 유용하게 이용될 수 있다.

도 1은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 제외한 불순물이 포함된 배추속 식물 착즙액을 농축 및 정제한 시료의 모습을 보여주는 그림이다.
도 2는 크기배제 크로마토그래피를 통해 배추속 식물 유래 착즙액을 로딩하는 과정을 보여주는 그림이다.
도 3은 크기배제 크로마토그래피를 통해 회수한 양배추 유래 착즙액의 분획물을 보여주는 그림이다.
도 4는 크기배제 크로마토그래피를 통해 회수한 적배추 유래 착즙액의 분획물을 보여주는 그림이다.
도 5는 크기배제 크로마토그래피를 통해 회수한 양배추 유래 착즙액의 분획물별 정제도이다.
도 6은 폴리머 침강(PEG), 초원심분리(UC), 크기배제크로마토그래피(SEC) 방법에 따라 회수한 양배추 유래 착즙액의 분획물에 대한 크기 분포도, 수율 및 순도를 분석한 결과 그래프이다.
도 7은 크기배제 크로마토그래피를 통해 회수한 적배추 유래 착즙액의 분획물별 정제도이다.
도 8은 폴리머 침강(PEG), 초원심분리(UC), 크기배제크로마토그래피(SEC) 방법에 따라 회수한 적배추 유래 착즙액의 분획물에 대한 크기 분포도, 수율 및 순도를 분석한 결과 그래프이다.
도 9는 크기배제 크로마토그래피를 통해 회수한 양배추 유래 세포밖 소포체를 공초점 현미경으로 촬영한 이미지이다.
도 10은 양배추 유래 세포밖 소포체 또는 적배추 유래 세포밖 소포체 첨가에 따른 세포자멸이 유도된 HaCaT의 생존율을 분석한 그래프이다.
도 11은 양배추 유래 세포밖 소포체 첨가에 따른 세포자멸이 유도된 HaCaT에서의 카스파아제-3 활성을 분석한 그래프이다.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.

실시예

배추속 식물 유래 세포밖 소포체 분리를 위한 착즙

1) 배추속 식물인 적배추, 양배추로부터 세포밖 소포체를 분리하기 위하여 무게를 측정한 후 흐르는 수돗물로 1 차적으로 식물의 농약을 제거하였다. 다음으로 흐르는 초순수 증류수를 이용하여 수돗물과 농약을 2차적으로 제거하였다. 이후 과도를 이용하여 가로 40 mm, 세로 30 mm 이하로 토막을 낸 후 착즙기를 이용하여 즙을 낸 다음 즙 내에서 큰 물질을 제거하기 위하여 면 주머니 가로 1 mm, 세로 1 mm 이하의 덩어리만을 여과하였다.

최종적으로 면 주머니로 걸러진 용액에서 단백질 및 세포벽을 제거하기 위해 8,000 x g로 1시간 동안, 4℃에서 원심분리를 진행 후 상층액만을 다시 20,000 x g에서 1시간 동안 4℃에서 다시 원심분리하였다. 이러한 과정으로 수득한 상층액은 추후 실험을 진행하기 전까지 -80℃에서 보관하였다.

배추속 식물 유래 세포밖 소포체 분리 및 정제 방법

1) 고순도의 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 얻기 위해서는 배추속 식물에 포함된 단백질을 포함한 불순물들을 제거해야 한다. 착즙물을 원심분리한 후에도 상층액에는 세포밖 소포체 이외의 단백질 불순물들이 다수 포함되고 있는데, 초고속원심분리 방법과 폴리머를 기반으로 한 침강방법으로는 이들 불순물 단백질들을 제거하는 데 한계가 있다. 따라서 이러한 세포밖 소포체 이외의 물질을 제거한 후 순도를 높이기 위하여 세포밖 소포체 분리 및 정제 방법을 크기배제 크로마토그래피 방법을 이용하였으며, 효율적 분리 및 정제를 위해 한외여과(ultrafiltration)를 동반하여 분리 효율 및 순도를 높이고자 하였다.

2) Amicon Ultra®-15 10kDa Centrifugal filter (Merck Millipore, Cat. No: UFC901024)에 착즙 용액 13 mL를 넣어주고 5,000 x g로 3시간 동안 4℃에서 원심분리를 진행한 후 얻어진 상층액 0.5 mL를 200nm 시린지 필터에 가하여 Eppendorf 튜브 1.5 mL (SPL, Cat. No: 50015)에 옮겼다(도 1).

3) 실험 클램프 스탠드에 qEVoriginal/70 nm(Izon science, Cat.No: SP1)을 클램프에 고정한 후 qEVoriginal 컬럼에 있던 PBS 용액을 제거한 후 1X PBS (pH7.4) 용액으로 중력으로 10 mL 평형을 진행하였다. 다음으로 이전 단계에서 여과된 배추속 식물 착즙 용액 0.5 mL를 qEVoriginal 컬럼에 주입하고 용액이 모두 크기배제 크로마토그래피 비드로 넘어가게 되면 PBS 용액을 넣어주었다. 이때 크기배제 크로마토그래피가 받는 중력의 힘을 일정하게 유지하기 위하여 PBS가 2 mL이 넘지 않도록 계속하여 주입하였다. 내려오는 용액을 하나의 Eppendorf 튜브 1.5 mL에 0.5 mL씩 담아 결과적으로 총 33개의 튜브를 얻었다(도 1 내지 도 4).

배추속 식물 유래 세포밖 소포체 크기 분포도 및 농도와 순도

1) 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 농도와 순도를 결정하기 위하여 나노입자추적분석(Nanoparticle tracking analyzer, NTA)과 단백질을 정량화하는 BCA(Bicinchoninic acid) 어세이를 이용하였다. 우선 분리한 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 튜브를 각각 PBS로 1:100로 희석시킨 후 NTA를 이용하여 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 농도와 크기 분포도를 측정하였다.

다음으로 크기배제 크로마토그래피를 거친 용액의 단백질 농도를 확인하기 위하여 BCA 어세이를 통해 각 분획의 단백질 농도를 정량화하였다. 단백질의 농도희석을 두 가지로 측정하게 되며 처음으로 희석없이 해당 용액을 바로 찍는 과정(도 4)과 PBS와 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 9:1의 중량비로 희석한 샘플을 측정하여 BSA 표준곡선 내에 들어오는 단백질의 농도를 확인하였다(도 5 및 도 7).

배추속 식물유래 세포밖 소포체의 분리 및 정제 방법에 따른 수율 및 순도의 비교

1) 세포밖 소포체 분리는 현재 주로 초고속원심분리법과 폴리머 침강법에 의해 이루어지고 있다. 하지만 초고속원심분리법의 경우 강한 원심력이 작용하여 물리적인 힘에 세포밖 소포체의 파쇄가 발생할 수 있으며 폴리머 침강법의 경우 세포밖 소포체 이외의 불순물을 다량으로 포함하기 때문에 순도 면에서 바람직하지 않다.

2) 크기배제 크로마토그래피(SEC), 초고속원심분리법(UC), 폴리머 침강법(PEG)은 모두 동일한 양의 양배추 또는 적배추 착즙액 13 mL을 이용하여 배추속 식물유래 세포밖 소포체를 나노입자 추적 분석장치를 이용하여 크기 분포도를 수득하고, BCA 어세이를 통해 단백질 농도를 측정함으로써 수율, 농도 및 순도를 단백질 1 mg 당 세포밖 소포체의 양으로 계산하여 비교를 진행하였다.

폴리머 침강법(PEG)과 초고속원심분리법(UC)의 경우 다양한 크기의 피크들이 관찰됨에 반하여 크기배제크로마토그래피(SEC)에 의해 분리된 세포밖 소포체는 균일한 피크를 보였다. 수율에서는 모든 방법이 통계적으로 유의성 없이 유사한 수준의 수율을 보였으나, 순도의 경우 크기 배제 크로마토그래피를 이용하여 분리한 경우가 다른 방법에 비해 월등히 높았다(도 6 내지 8).

배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 세포 내 투과 확인

상술한 방법을 통해 분리된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체가 인간 등의 세포에 작용하기 위해서는 세포에 투과되어 들어가는 과정이 필요하다. 이에, 본원발명의 방법으로 제조된 배추속 식물 유래 세포밖 소포체 역시, 세포내 투과 특성을 가지는지를 확인하고자 다음과 같이 분석하였다.

우선, 양배추 세포밖 소포체를 염색하는 PKH67 염색약이 0.5%(v/v)와 양배추 세포밖 소포체 1 x 10¹¹ particles/mL를 22℃에서 15분간 반응 시킨 후 한외 여과(Ultrafiltration)을 통해 세포밖 소포체와 붙지 않은 PKH67을 여과하였고 다음으로 PKH67가 붙은 세포밖 소포체를 실험에 이용한다.

다음으로, 4-웰 챔버 슬라이드(4-well chambered coverglass w/non-removable wells)에 10% 소 태아 혈청(FBS)과 1% 페니실린과 스트렙토마이신이 첨가된 DMEM을 사용하여 인간 유래 각질 세포(HaCaT)을 2.5 x 10⁴ cell/cm²로 접종하였다. 48시간 이후에 세포의 배지를 제거한 후, 인산 완충액(PBS)으로 3차례 세척하였다. 모든 빛을 차단한 상태로, 엑소좀이 제거된 10% FBS가 포함된 DMEM 배지에 PKH67이 세포밖 소포체를 균질하게 섞은 후 다음으로 배추속 식물 유래 세포밖 소포체(크기배제 크로마토그래피를 통해 회수한 양배추 식물 유래 세포밖 세포체를 포함하는 분획물)를 첨가하여 6시간 동안 배양하였다.

배양이 완료되면, 인산 완충액(PBS)으로 세포를 2회 세척하고, 2 μM Hoechst 33342와 Opti-MEM을 섞어 웰에 넣어준 다음, 37 ℃에서 15분간 배양하였다. 배지를 모두 제거하고, 인산 완충액(PBS)으로 2회 세척한 후 Opti-MEM을 500 μL 넣고, 공초점 현미경(Confocal microscope)을 이용하여 양배추 유래 세포밖 소포체의 흡수 여부를 관찰하였다(도 9).

도 9에서, 파란색은 세포 핵이고, 녹색은 양배추 유래 세포밖 소포체를 나타낸다. 도 9에 나타난 바와 같이, 양배추 유래 세포밖 소포체가 세포내로 투과되어 세포 내에 위치하는 것을 보여주고 있다. 이를 통해 양배추 유래 세포밖 소포체를 투여할 경우, 세포 내로 용이하게 투과되어 흡수될 수 있음을 확인하였다.

피부각질세포(HaCaT)에 세포자멸 유발 시 세포 생존율 분석

96웰 세포 배양 플레이트(96-well cell culture plate)에 10% FBS과 1% 페니실린과 스트렙토마이신이 첨가된 DMEM을 사용하여 인간각질형성세포 (HaCaT)를 1 x 10⁴ cell/cm²로 세포를 접종하였다. 24시간이 지난 후, 각각의 세포로부터 배지를 제거하고 PBS로 세척하고, 하기와 같이 실험군과 대조군을 제조하였다.

실험군에는 1 x 10¹¹ particles/mL 농도로 양배추 식물 유래 세포밖 소포체 또는 적배추 식물 유래 세포밖 소포체를 넣어 배양하였으며, 대조군에는 세포밖 소포체 첨가 없이 일반 배양 배지를 이용하여 배양하였다. 약 12시간이 지난 후 세포자멸을 유발하는 1 μM의 STS(Staurosporine)를 실험군과 대조군 모두에 처리하였다. 세포의 생존율은 WST-1을 통해 분석하였다. 모든 값은 평균±표준 편차(*p<0.1, **p<0.01 및 ***p<0.001; n = 4)로 표시하였다(도 10).

도 10에 나타난 바와 같이, 양배추 유래 세포밖 소포체 또는 적배추 유래 세포밖 소포체를 넣지 않은 대조군은 생존율이 급격하게 감소함을 확인하였다. 이에 반해 양배추 유래 세포밖 소포체 또는 적배추 유래 세포밖 소포체가 첨가된 경우에는 세포생존율이 60%이상 유지되는 것을 확인할 수 있었다. 이를 통해 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 세포 배양액에 첨가하면, 세포자멸이 유도된 세포의 생존율을 증가시킬 수 있음을 알 수 있다(즉, 세포자멸을 억제할 수 있다).

피부각질세포(HaCaT)에 세포자멸 유발 시 카스파아제 활성 억제 분석

세포자멸의 다운 스트림(downstream) 과정을 확인하기 위해 배추속 식물 유래 세포밖 소포체의 카스파아제-3(caspase-3) 활성에 대한 실험을 진행하였다.

6-웰 세포 배양 플레이트(6-well cell culture plate)에 10% FBS와 1% 페니실린과 스트렙토마이신이 첨가된 DMEM을 사용하여 인간각질형성세포 (HaCaT)를 1 x 10⁴ cell/cm²으로 세포를 접종하였다. 24시간이 지난 후, 각각의 세포로부터 배지를 제거하고 인산완충액(PBS)로 세척하고, 하기와 같이 실험군과 대조군을 제조하였다.

실험군은 1 x 10¹¹ particles/mL 농도로 양배추 유래 세포밖 소포체를 넣어 배양하였으며, 대조군은 양배추 유래 세포밖 소포체 첨가 없이 일반 배양 배지를 이용하여 배양하였다. 약 6시간이 지난 후 세포자멸을 유발하기 위해 위의 실험과 동일한 과정을 거쳐 처리하였다. 카스파아제-3(Caspase-3) 활성을 평가하기 위하여 Ac-DEVD-AFC(N-Acetyl-Asp-Glu-Val-Asp-7-amido-4-Trifluoromethylcoumarin)을 사용하였다. 세포를 수확하고 차가운 인산완충액(PBS)로 두 번 세척한 후, 200 μL 용균 완충액(radioimmunoprecipitation assay; RIPA) (인산완충액(PBS) 990 μL과 프로테아제(protease) 억제제 10 μL를 혼합하여 제조됨)으로 용해시켜 세포 용해물을 제조하였다. 단백질 정량은 BCA(bicinchoninic acid) 분석을 사용하여 측정하였다. 상기 세포 용해물을 희석하고 검정 384-웰 플래이트(black 384-well plate)에 옮긴 후, 동일 부피의 1X 반응 완충액(Ac-DEVD-AFC 기질을 DMSO(dimethyl sulfoxide)에 용해시키고 1X HEPES (1×4-(2-hydroxyethly)-1-piperazineethanesulfonic acid에 첨가하여 제조됨)을 첨가하였다. 37 ℃에서 1시간 동안 배양한 후, 방출 및 여기 파장 400 nm 및 505 nm에서 각각 Varioskan™ Flash Multimode Reader를 사용하여 측정하였다.

도 11에서와 같이, STS 첨가로 세포자멸이 유도된 HaCaT 세포는 세포 내 카스파아제-3(caspase-3)의 활성을 3배까지 현저하게 증가함을 확인하였다. 이에 반해 세포자멸이 유도된 HaCaT 세포에 양배추 유래 세포밖 소포체가 첨가되면 카스파아제-3(caspase-3) 활성이, 초기 HaCaT 세포와 유사한 수준으로 유지되는 것을 확인할 수 있다.

이러한 결과는 양배추 유래 세포밖 소포체가 STS에 의해 유도된 카스파아제-3(caspase-3)의 활성을 현저히 억제한다는 것을 나타낸다. 모든 값은 평균ㅁ표준 편차 ***p<0.001; n = 3)로 표시하였다.

결론

세포자멸(apoptosis)은, 세포가 신호 자극을 겪을 때 일어나는 예정된 세포사를 의미한다. 세포자멸은 핵산의 응축 및 DNA의 붕괴 등을 일으켜 최종적으로는 세포자멸소체를 형성하여 세포를 사멸시킨다. 최근, 허혈성 심장질환에서 유발되는 세포자멸을 억제하기 위해 다양한 화합물을 첨가하는 방법이 제안되어 왔다. 특히, 뇌졸중이나 신경변성 질환 등의 난치성 신경질환에서는 세포자멸 억제 기술이 필요한 실정이지만 첨가 물질의 안전성과 효율성 문제로 인해 적용 사례가 드물다.

본 발명은 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 인체 내에 처리가 가능하게끔 크기배제 크로마토그래피를 통해 고순도, 고효율로 정제하였다. 배추속 식물 유래 세포밖 소포체 첨가에 의해 세포 내 투과가 잘 이루어지고, 전달된 세포밖 소포체가 세포자멸 억제 효과가 있음을 밝혀냈다. 특히, 카스파아제-3(caspase-3)을 억제함으로써 내재성 세포자멸 경로에 대한 저항성을 증대시킴을 확인하였다.

따라서, 배추속 식물 유래 세포밖 소포체 첨가에 의한 세포자멸 억제는 경구투여가 가능하며 식물로부터 대량 생산이 가능하기 때문에 건강기능식품으로 적용이 가능하다. 또한, 약리성분을 탑재할 수 있어 위에 언급한 질병 치료 시 약물 전달체로 활용될 수 있다.

이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 그의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

Claims (15)

1. 배추속 식물의 조직 또는 세포를 포함하는 생물학적 시료에 대해 크기 배제 크로마토그래피를 수행하는 단계; 및
   상기 크기 배제 크로마토그래피로부터 얻은 각 분획물에 입도 분석을 수행하여, 50 내지 150 nm의 평균 직경을 갖는 분획물을 선택하여 회수하는 단계;
   를 포함하는 배추속 식물 유래의 카스파아제-3 유도성 세포자멸사 또는 세포괴사 억제 활성을 갖는 엑소좀 분리 방법.
2. 제1항에 있어서, 상기 생물학적 시료는 배추속 식물 착즙액인 것을 특징으로 하는 방법.
3. 제2항에 있어서, 상기 배추속 식물 착즙액에 대해 한외여과를 수행하는 단계를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
4. 제3항에 있어서, 상기 방법은 상기 한외여과를 수행하는 단계와 상기 크기 배제 크로마토그래피를 수행하는 단계를 순차적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
5. 제3항에 있어서, 상기 한외여과는 5 내지 15 kDa의 컷오프(cut-off) 값을 가지는 것을 특징으로 하는 방법.
6. 제1항에 있어서, 상기 크기 배제 크로마토그래피는 pH 6 내지 pH 8의 인산완충액(PBS)으로 평형화된 것을 특징으로 하는 방법.
7. 제1항에 있어서, 상기 크기 배제 크로마토그래피는 정지상(stationary phase)의 포어(pore) 평균 직경이 30-75 ㎚인 것을 특징으로 하는 방법.
8. 제7항에 있어서, 상기 정지상은 수퍼덱스, 세파크릴, 세파덱스, 세파로오즈, 프락토겔, 토요펄 및 Bio-Gel로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나의 겔 여과 매질인 것을 특징으로 하는 방법.
9. 제1항에 있어서, 상기 크기 배제 크로마토그래피의 용리액은 pH 6 내지 pH 8의 PBS 완충액인 것을 특징으로 하는 방법.
10. 삭제
11. 삭제
12. 삭제
13. 삭제
14. 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 유효성분으로 하는 카스파아제-3 유도성 세포자멸사 또는 세포괴사 억제용 조성물.
15. 배추속 식물 유래 세포밖 소포체를 포함하는, 세포자멸 억제용 동물세포 배양 배지 조성물.

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