KR101839101B1 - B형 간염 바이러스 표면 항원의 에피토프 및 이에 특이적으로 결합하는 b형 간염 바이러스 중화 결합 분자 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 B형 간염 바이러스 표면 항원의 특이적 에피토프와 이에 결합하는 B형 간염 바이러스 중화 결합 분자에 관한 것이다. 본 발명이 제공하는 에피토프는 3차원적 구조를 형성함으로써 생성되며 기존의 백신 또는 HBIg 투여에 대한 회피 돌연변이가 생성되는 a 결정기를 포함하지 않기 때문에, 여기에 결합하는 항체를 포함하는 조성물 또는 상기 에피토프를 포함하는 백신 조성물은 회피 돌연변이에 의한 효능의 저하가 일어날 가능성이 매우 낮다. 따라서 이러한 항체 또는 백신 조성물은 HBV의 예방 및/또는 치료에 매우 유용하게 사용될 수 있다.
Description
본 발명은 B형 간염 바이러스 표면 항원의 에피토프 및 이에 특이적으로 결합하는 B형 간염 바이러스 중화 결합 분자에 관한 것이다.
B형 간염 바이러스(Hepatitis B virus, HBV)는 급성 및 만성 간염을 유발하는 헤파드나바이러스(Hepadnaviridae) 과에 속하는 DNA 바이러스로서, 간경화와 간암의 주요 발병원인이다. HBV는 표준혈청에 대한 B형 간염 바이러스 표면 항원(Hepatitis B virus surface antigen, HBsAg)의 반응 및 HBsAg의 아마노산 서열 차이를 토대로 한 10종의 혈청형(serotype)으로 분류되거나, 유전자 염기서열의 차이에 따른 8종의 유전자형(genotype)으로 분류된다. 2012년 현재 전 세계적으로 2억 4천만 명 가량의 만성 HBV 감염환자가 존재하는 것으로 파악되며, 매년 50만 명 이상의 사람들이 B형 간염에 기인한 질병으로 사망하는 것으로 알려져 있다. 한국 및 중국 성인의 만성 HBV 감염률은 5~8%에 이를 정도로 매우 높으며, 성인 만성 간염 환자의 80%, 간경변증의 65%, 그리고 간세포암종 환자의 70%가 바로 HBV 감염과 연관되어 있다. 만성 B형 간염은 백신의 개발 및 보급으로 예방이 가능해졌음에도 불구하고, 아직까지 만성 간질환의 가장 중요한 원인이며, 간질환에 따른 사회적 비용 지출이 점차 증가되고 있는 실정이다. 따라서 만성 B형 간염을 예방 및 치료할 수 있는 새로운 형태의 항바이러스제 개발이 절실히 요구되고 있다.
만성 B형 간염의 치료용 약물로는 현재 인터페론(interferon, pegninterferon), 라미부딘(lamivudine), 아데포비어(adefovir dipivoxil), 엔테카비어(entecavir), 그리고 테노포비어(tenofovir) 등이 사용되고 있으며, 인터페론을 제외한 경구용 치료제들은 모두 뉴클레오사이드/뉴클레오타이드 (nucleoside/nucleotide) 유사체이다. 이 약물들은 HBV의 역전사 효소(reverse transcriptase)의 활성을 억제함으로써 바이러스의 DNA 복제를 저해하여, 결과적으로 혈청 내 HBV DNA의 양을 감소시키고 ALT 수치를 정상화시키며 간 섬유화도 개선해 주는 효과를 보이고 있다.
그러나 뉴클레오사이드 유사체들은 장기간 사용 시 약제에 대한 내성을 유발하여 약효의 저하를 가져오게 되며, 결과적으로 간염의 악화를 초래한다. 가장 최근에 개발된 테노포비어의 경우 현재까지 내성발생이 보고된 바 없으나, 전 세계적으로 가장 널리 사용되어 온 라미부딘의 경우 5년 후 내성 발병률은 70~80%에 달하는 것으로 알려져 있다. 또한, 이들 경구용 약물들은 HBV의 감염을 직접적으로 저해하지는 못하기 때문에, 산모에서 태아로의 수직 감염 및 간이식 환자에서의 재감염 방지를 위해서는 경구용 치료제와 함께 인간 혈장 유래의 B형 간염 면역글로불린(Hepatitis B Immune globulin, HBIg) 제제가 함께 사용되고 있다.
기존의 HBIg는 B형 간염에 대한 항체를 보유하고 있는 사람의 혈액으로부터 고도의 정제기술을 사용하여 항체를 분리해내고 바이러스 불활화 기술을 사용하여 잠재적인 오염원을 제거하여 제조된다. 그러나, 원료인 혈장 확보가 어려움에 따라 과다한 수입비용을 지출하게 되며 수요에 탄력적으로 대처할 수 없는 문제가 있다. 또한 혈장 유래의 바이러스 제거에 많은 시간과 비용이 소요되지만 여전히 잠재적 감염원이 존재할 가능성을 배제할 수 없으며, 낮은 효력에 기인한 투여의 불편함과 경제적 부담 역시 존재하는 등의 단점이 있다.
더욱이 기존의 B형 간염 백신의 접종을 통해서 형성되는 항체는 대부분이 HBsAg의 아미노산 124-147번 부위인 a 결정기를 인식하는 것으로 알려져 있다. a 결정기가 HBV의 주요 중화 에피토프로서 작용하는 것은 사실이나, 일부 환자에서 발생한 a 결정기 내의 특정 돌연변이들이 B형 간염 백신의 접종을 통해서 형성되는 항체들을 회피할 수 있음이 보고되고 있다. 따라서, 이러한 기존 백신이나 HBIg의 회피 돌연변이에도 대응할 수 있는 새로운 B형 간염의 예방 및 치료용 항체나 백신 개발에 대한 필요성이 점점 대두되고 있다.
이에 상기의 문제점들을 해결하고자, 본 발명자들은 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 아미노산 위치 110, 118, 120 및/또는 147을 포함하는 에피토프를 개발하였고, 이것이 3차원적 구조적인 특성을 가짐을 확인하였다.
본 발명이 해결하고자 하는 과제는 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 에피토프를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 에피토프에 특이적으로 결합하는 B형 간염 바이러스(HBV) 중화 결합 분자를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 결합 분자를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 발현 벡터를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 발현 벡터가 형질 감염되어 HBV 중화 결합 분자를 생산하는 숙주 세포를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 결합 분자를 포함하는 B형 간염의 예방, 치료 또는 진단용 조성물을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 발현 벡터를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 발현 벡터가 형질 전환된 재조합 미생물 또는 바이러스를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 재조합 미생물 또는 바이러스를 배양하는 단계를 포함하는 에피토프를 생산하는 방법을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 에피토프, 또는 이 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 HBV 백신 조성물을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 에피토프, 또는 이 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 HBV 검출용 조성물을 제공하는 것이다.
상기 과제를 해결하고자, 본 발명에서는 HBsAg에 특이적으로 결합하는 인간 항체(PCT/KR2014/004612 참조, 이하 '본 발명 항체')의 에피토프가 HBsAg의 아미노산 위치 110, 118, 120 및/또는 147을 포함함을 확인하였다. 또한, 이 네 개의 아미노산을 포함하는 서열 또는 그 일부가 3차원적 구조를 형성하여 본 발명 항체가 결합할 수 있는 에피토프를 형성함을 확인함으로써 본 발명을 완성하였다.
따라서, 본 발명은 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 아미노산 위치 106 내지 151 중 선택된 3 내지 38 mer의 에피토프를 제공한다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 에피토프는 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 110, 118, 120 및/또는 147 위치의 아미노산을 포함할 수 있다. 상기 위치의 아미노산을 포함하는 에피토프는 그 3차원 구조를 유지하기 위하여 또는 백신 등의 조성물로 이용시 효율을 제고하기 위하여, 담체(carrier)와 결합된 형태로 이용가능하다. 본 발명에 따른 담체는 생체에 적합하며 본 발명에서 목적하는 효과를 거둘 수 있는 것이라면 모두 사용가능한데, 펩타이드, 혈청 알부민, 면역 글로불린, 헤모시아닌 및 다당체 등에서 선택됨이 바람직하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 에피토프는 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 아미노산 위치 106-110, 107-111, 108-112, 109-113, 110-114, 114-118, 115-119, 119-123, 120-124, 143-147, 144-148, 145-149, 146-150, 147-151, 110-118, 118-120, 116-120, 117-121, 118-122, 120-147, 110-120, 118-147 또는 110-147일 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 HBV 유전자형 C(서브타입 adr)의 HBsAg 야생형 전체 아미노산 서열은 서열번호 3으로 표시될 수 있으며, GenBank No. GQ872210.1에서도 서열정보를 확인할 수 있다.
또한 본 발명은 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 아미노산 위치 110, 118 및 120으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상의 아미노산 잔기를 포함하는 에피토프에 특이적으로 결합하는 B형 간염 바이러스(HBV) 중화 결합 분자를 제공한다. 또한, 상기 에피토프는 HBsAg의 아미노산 위치 147을 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 에피토프에 특이적으로 결합하는 B형 간염 바이러스(HBV) 중화 결합 분자는 1X10- 9 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 9X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 8X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 7X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 6X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 5X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 4X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 3X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 2X10-10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 1X10- 10 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 1X10- 11 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다. 또 다른 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 1X10-12 M 미만의 결합친화도를 가질 수 있다.
본 발명의 따른 HBV 중화 결합 분자는 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg) 서브타입 adw, adr, ayw, 및 ayr으로 구성된 군에서 선택되는 어느 하나 이상에 결합하여 B형 간염 바이러스에 중화 활성을 가질 수 있다.
본 발명에 따른 상기 결합 분자는 A, B, C, D, E, F, G 및 H 유전자형(genotype)의 B형 간염 바이러스에 결합하여 중화 활성을 가진다.
또한, 본 발명에 따른 상기 결합 분자는 라미부딘(lamivudine), 아데포비어(adefovir), 클레부딘(clevudine) 또는 엔테카비어(entecavir) 내성 B형 간염 바이러스에 결합하여 중화 활성을 가진다.
본 발명의 일 구체예로서, 상기 결합 분자는 HBsAg의 101번, 112번, 126번, 129번, 133번, 143번, 173번, 175번, 184번, 185번 또는 196번 아미노산 위치의 돌연변이 항원에 결합하여 B형 간염 바이러스에 중화 활성을 가질 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 일 구체예로서, 상기 돌연변이 항원은 Q101R, K112R, T126N, I126S, Q129H, M133H, P143K, L173F, L175S, A184V, I185M 또는 W196L 돌연변이 항원일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 항체 또는 이것의 단편이다. 상기 항체는 Fab 절편, Fv 절편, 디아바디(diabody), 키메라 항체, 인간화 항체 또는 인간 항체일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 일 실시예에서는 HBsAg에 결합하는 완전한 인간 항체를 제공한다. 본 명세서에서 항체는 최대한 넓은 의미로 사용되며, 구체적으로 무손상(intact) 단일클론 항체, 다클론 항체, 2종 이상의 무손상 항체로부터 형성된 다중특이성 항체(예를 들어, 이중특이성 항체), 및 목적하는 생물학적 활성을 나타내는 항체 단편을 포함한다. 항체는 특이적인 항원을 인식하고 결합할 수 있는 면역계에 의하여 생성되는 단백질이다. 그 구조적인 면에서, 항체는 통상적으로 4개의 아미노산 쇄(2개의 중쇄 및 2개의 경쇄)로 이루어진 Y-형상의 단백질을 가진다. 각각의 항체는 주로 가변 영역 및 불변 영역의 2개의 영역을 가진다. Y의 팔의 말단 부분에 위치한 가변 영역은 표적 항원에 결합하고 상호작용한다. 상기 가변 영역은 특정 항원 상의 특이적 결합 부위를 인식하고 결합하는 상보성 결정 영역(CDR)을 포함한다. Y의 꼬리 부분에 위치한 불변 영역은 면역계에 의하여 인식되고 상호작용한다. 표적 항원은 일반적으로 다수의 항체 상의 CDR에 의하여 인식되는, 에피토프라고 하는 다수의 결합 부위를 가지고 있다. 상이한 에피토프에 특이적으로 결합하는 각각의 항체는 상이한 구조를 가진다. 그러므로, 한 항원은 하나 이상의 상응하는 항체를 가질 수 있다.
아울러 본 발명은 상기 항체의 기능적 변이체를 포함한다. 항체들은 변이체들이 B형 간염 바이러스 또는 이것의 표면 항원(HBsAg)의 서브타입에 특이적으로 결합하기 위해 본 발명의 항체와 경쟁할 수 있다면 본 발명의 항체의 기능적 변이체로 간주된다. 기능적 변이체는 1차 구조적 서열이 실질적으로 유사한 유도체를 포함하지만, 이에 제한되는 것은 아니며, 예를 들면, 생체외(in vitro) 또는 생체내(in vivo) 변형, 화학약품 및/또는 생화학 약품을 포함하며, 이들은 본원 발명의 부모 단일클론 항체에서는 발견되지 않는다. 이와 같은 변형으로는 예를 들어 아세틸화, 아실화, 뉴클레오티드 또는 뉴클레오티드 유도체의 공유 결합, 지질 또는 지질 유도체의 공유 결합, 가교, 이황화 결합 형성, 글리코실화, 수산화, 메틸화, 산화, 페길화, 단백질 분해 및 인산화 등이 포함된다. 기능적 변이체는 선택적으로 부모 항체의 아미노산 서열과 비교하여 하나 이상의 아미노산의 치환, 삽입, 결실 또는 그들의 조합을 함유하는 아미노산 서열을 포함하는 항체일 수 있다. 더욱이 기능적 변이체는 아미노 말단 또는 카르복시 말단 중 하나 또는 모두에서 아미노산 서열의 절단체(truncated form)를 포함할 수 있다. 본 발명의 기능적 변이체는 본 발명의 부모 항체와 비교하여 동일하거나 다르거나, 더 높거나 낮은 결합 친화력을 가질 수 있지만, 여전히 B형 간염 바이러스 또는 이것의 표면 항원(HBsAg)의 서브타입에 결합할 수 있다. 일 예로, 골격구조, 초가변(Hypervariable) 영역, 특히 CDR3 영역을 포함하나 이에 한정되는 것은 아닌 가변 영역의 아미노산 서열이 변형될 수 있다. 일반적으로 경쇄 또는 중쇄 영역은 3개의 CDR 영역을 포함하는, 3개의 초가변 영역 및 더욱 보존된 영역, 즉 골격 영역(FR)을 포함한다. 초가변 영역은 CDR로부터의 아미노산 잔기와 초가변 루프로부터의 아미노산 잔기를 포함한다. 본 발명의 범위에 속하는 기능적 변이체는 본 명세서의 부모 항체와 약 50%~99%, 약 60%~99%, 약 80%~99%, 약 90%~99%, 약 95%~99%, 또는 약 97%~99% 아미노산 서열 동질성을 가질 수 있다. 비교될 아미노산 서열을 최적으로 배열하고 유사하거나 또는 동일한 아미노산 잔기를 정의하기 위해 컴퓨터 알고리즘 중 당업자에게 알려진 Gap 또는 Bestfit를 사용할 수 있다. 기능적 변이체는 부모 항체 또는 그것의 일부를 PCR 방법, 올리고머 뉴클레오티드를 이용한 돌연변이 생성 및 부분 돌연변이 생성을 포함하는 공지의 일반 분자생물학적 방법에 의해 변화시키거나 유기합성 방법으로 얻을 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은 상기 결합 분자를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 제공한다. 일 예로, 본 발명은 상기 항-HBsAg 단일클론 항체를 암호화하는 단리된 핵산 분자를 포함한다.
또한, 본 발명은 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 발현 벡터를 제공한다. 상기 발현 벡터로는 셀트리온 고유의 발현 벡터인 MarEx 벡터 및 상업적으로 널리 사용되는 pCDNA 벡터, F, R1, RP1, Col, pBR322, ToL, Ti 벡터; 코스미드; 람다, 람도이드(lambdoid), M13, Mu, p1 P22, Qμ, T-even, T2, T3, T7 등의 파아지; 식물 바이러스로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나에서 선택된 발현 벡터를 이용할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 당업자에게 발현 벡터로 알려진 모든 발현 벡터는 본 발명에 사용 가능하며, 발현 벡터를 선택할 때에는 목적으로 하는 숙주 세포의 성질에 따른다. 숙주세포로의 벡터 도입시 인산칼슘 트랜스펙션, 바이러스 감염, DEAE-덱스트란 조절 트랜스펙션, 리포펙타민 트랜스펙션 또는 전기천공법에 의해 수행될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며 당업자는 사용하는 발현 벡터 및 숙주 세포에 알맞은 도입 방법을 선택하여 이용할 수 있다. 발현 벡터는 하나 이상의 선별 마커를 함유할 수 있으나 이에 한정되지 않으며, 선별 마커를 포함하지 않은 벡터를 이용하여 생산물 생산 여부에 따라 선별이 가능하다. 선별 마커의 선택은 목적하는 숙주 세포에 의해 선별되며, 이는 이미 당업자에게 알려진 방법을 이용하므로 본 발명은 이에 제한을 두지 않는다. 또한, 본 발명의 핵산 분자를 정제를 용이하게 하기 위하여 태그 서열을 발현 벡터 상에 삽입하여 융합시킬 수 있다. 상기 태그로는 헥사-히스티딘 태그, 헤마글루티닌 태그, myc 태그 또는 flag 태그를 포함할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며 당업자에게 알려진 정제를 용이하게 하는 태그는 모두 본 발명에서 이용 가능하다.
또한, 본 발명의 다른 구체예로서, 본 발명은 상기 발현 벡터가 형질 감염되어 B형 간염 바이러스에 중화 활성을 가지는 결합 분자를 생산하는 숙주 세포에 관한 것이다. 본 발명에 있어서, 상기 숙주 세포는 포유동물, 식물, 곤충, 균류 또는 세포성 기원의 세포를 포함할 수 있지만 이에 한정되지 않는다. 상기 포유동물 세포로 CHO 세포, F2N 세포, CSO 세포, BHK 세포, 바우스(Bowes) 흑색종 세포, HeLa 세포, 911 세포, AT1080 세포, A549 세포, HEK 293 세포 또는 HEK293T 세포 등을 사용할 수 있으나, 이에 한정되지 않으며, 당업자에게 알려진 포유동물 숙주세포로 사용 가능한 세포는 모두 이용 가능하다.
또한, 본 발명은 상기 결합 분자를 포함하는 B형 간염의 예방, 치료 또는 진단용 조성물을 제공한다. 본 발명의 조성물은 상기 결합분자와 함께 인터페론, 항-HBV 단일클론 항체, 항-HBV 폴리클로날 항체, 뉴클레오시드 유사체, DNA 폴리머라제 저해제, siRNA 제제 또는 치료백신을 항바이러스 약물로서 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 결합 분자를 포함하는 조성물은, 각각 통상의 방법에 따라 멸균 주사용액, 동결건조(lyophilized) 제형, 사전 충전식 주사(pre-filled syringe) 용액제, 경구형 제형, 외용제 또는 좌제 등의 형태로 제형화할 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명의 다른 구체예로서, 본 발명은 B형 간염 바이러스에 감염된 대상에 상기 조성물을 치료학적으로 유효한 양으로 투여하는 단계를 포함하는 B형 간염 치료 방법에 관한 것이다. 본 발명의 치료 방법에 있어서, 당업자에게 알려진 치료제를 함께 투여할 수 있다. 본 발명의 치료 방법에 있어서, 투여 방법은 경구 및 비경구로 나뉠 수 있으며, 일 예로 투여 경로는 정맥 내일 수 있으나 이에 한정되지 않는다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 치료 방법은 항-바이러스 약물을 투여하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 상기 항-바이러스 약물은 인터페론, 뉴클레오시드/뉴클레오티드 유사체, 항-HBV 모노클로날 항체, 항-HBV 폴리클로날 항체, DNA 폴리머라제 저해제, siRNA 제재 또는 치료 백신일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다. 상기 뉴클레오시드/뉴클레오티드 유사체는 라미부딘(lamivudine), 엔터카비어(entecavir), 클레부딘(clevudine) 또는 아데포비어(adefovir dipivoxil)일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명의 다른 구체예로서, 본 발명은 대상에 상기 조성물을 치료학적으로 유효한 양으로 투여하는 단계를 포함하는 B형 간염 예방 방법에 관한 것이다. 본 발명의 예방 방법에 있어서, 당업자에게 알려진 예방제를 함께 투여할 수 있다. 본 발명의 예방 방법에 있어서, 투여 방법은 경구 및 비경구로 나뉠 수 있으며, 일 예로 투여 경로는 정맥 내일 수 있으나 이에 한정되지 않는다.
본 발명의 조성물을 인간을 포함하는 포유동물에게 투여함으로써 HBV 감염 및 HBV 감염에 의해 유발되는 질병을 예방 또는 치료할 수 있다. 이때, 상기 결합분자(예, 항체)의 투여량은 처리되는 대상, 질병 또는 상태의 심각도, 투여의 속도 및 처방 의사의 판단에 따른다. 유효성분으로서 상기 결합 분자는 포유동물에 대해 하루 0.001 내지 10 mg/kg(체중), 또는 0.005 내지 1 mg/kg(체중)의 양으로 1일 1회 또는 분할하여 비경구적 경로를 통해 투여될 수 있다. 경우에 따라, 상기 언급된 범위보다 적은 투여량이 보다 적합할 수 있고, 해로운 부작용을 일으키지 않으면서도 보다 많은 양의 사용될 수도 있으며, 보다 많은 투여량의 경우는 하루에 걸쳐 수회의 적은 분량으로 분배될 수도 있다.
또한, 본 발명의 다른 구체예로서, 본 발명은 i) 샘플과 상기 조성물을 접촉시키는 단계; 및 ii) 상기 조성물과 샘플의 반응을 검출하는 단계를 포함하는 환자의 B형 간염 바이러스 감염 여부 진단 방법에 관한 것이다. 본 발명의 진단 방법에 있어서, 본 발명의 결합 분자(예, 단일클론 항체)는 진단 검출을 위하여 필요에 따라 표지 물질을 접합시킬 수 있으며 이는 당업자에게 이미 공지된 사항이다.
본 발명의 진단 방법에 있어서, 상기 샘플은 대상의 가래, 침, 혈액, 땀, 폐 세포, 폐 조직의 점액, 호흡기 조직 및 타액으로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나일 수 있으나, 이에 한정되지 않으며 당업자에게 알려진 통상적인 방법으로 샘플 준비가 가능하다.
또한, 본 발명의 다른 구체예로서, 본 발명은 i) 샘플과 상기 조성물을 접촉시키는 단계; 및 ii) 상기 조성물과 샘플의 반응을 검출하는 단계를 포함하는 환자의 B형 간염 바이러스 감염 여부 진단을 위해 정보를 제공하는 방법에 관한 것이다.
또한, 본 발명의 다른 구체예로서, 본 발명은 i) 상기 조성물; 및 ii) 용기를 포함하는 B형 간염 바이러스 진단용 키트에 관한 것이다. 본 발명의 진단용 키트에 있어서, 상기 2)의 용기에는 고체 담체가 포함된다. 본 발명의 결합분자는 고체 담체에 부착될 수 있고, 이와 같은 고체 담체로는 다공성 또는 비다공성, 평면 또는 비평면일 수 있다.
또한, 본 발명의 다른 구체예로서, 본 발명은 환자로부터 유래한 샘플과 상기 조성물을 접촉시키는 단계를 포함하는 B형 간염 바이러스의 존재 여부를 검출하는 방법에 관한 것이다.
또한, 본 발명은 상기 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 제공한다. 본 발명에서 제공되는 상기 아미노산 위치를 포함하는 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드는 그 자체로 유전자 백신 형태로 이용가능하다. 이때, 상기 폴리뉴클레오티드는 전달체 없이 그 자체로 이용가능할 수도 있으며, 바이러스성 또는 비바이러스성 전달체에 담지되어 체내로 전달될 수 있다. 바이러스성 또는 비바이러스성 전달체는 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상적으로 이용가능하다고 알려진 것이면 어떤 것이라도 이용가능하다. 구체적으로 바이러스성 전달체는 아데노바이러스(adenovirus), 아데노-연관 바이러스(adeno-associated virus), 렌티바이러스(lentivirus), 레트로바이러스(letrovirus) 등이 가능하며, 비바이러스성 벡터로는 양이온성 폴리머, 비이온성 폴리머, 리포좀, 지질, 인지질, 친수성 폴리머, 소수성 폴리머 및 이들 중에서 선택된 하나 이상의 복합체 등이 이용가능하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은 상기 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 발현 벡터를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 발현 벡터가 형질 전환된 재조합 미생물 또는 바이러스를 제공한다. 일 구체예로, 상기 재조합 미생물 또는 바이러스는 재조합 대장균, 재조합 효모, 또는 재조합 박테리오 파지일 수 있다.
본 발명의 일 구체예로서, 본 발명은 HBsAg의 아미노산 위치 110, 118, 120 및/또는 147을 포함하는 에피토프를 미생물 또는 바이러스 표면에 발현하는 방법을 제공한다. 이때 유도하는 프로모터 또는 신호 단백질을 코딩하는 서열을 포함함을 특징으로 하는 재조합 벡터 및 상기 재조합 벡터를 포함하는 다양한 미생물 또는 바이러스가 사용될 수 있으며, 특히 적합한 미생물 또는 바이러스는 재조합 대장균, 재조합 효모 및 재조합 박테리오 파지 등이 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 상기 미생물 또는 바이러스 표면에 상기 아미노산 위치를 포함하는 에피토프를 미생물 또는 바이러스 표면에 발현시키기 위해서는 본 발명이 속하는 기술분야에 잘 알려진 디스플레이(display) 기술이 이용될 수 있으며, 특히 미생물 세포 또는 바이러스 표면에 발현되도록 유도하는 프로모터 또는 신호 단백질을 인코딩하는 서열에 상기 아미노산 위치를 포함하는 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열을 결합시켜 발현하거나, 원래 표면에 발현되는 단백질을 인코딩하는 유전자 부위의 일부를 결손시키고 이에 상기 아미노산 위치를 포함하는 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열을 삽입하는 방법 등이 이용가능하지만 이에 한정되는 것은 아니다. 이러한 방법으로 미생물 또는 바이러스 표면에 발현된 상기 아미노산 위치를 포함하는 에피토프는 그 자체로 분리, 정제되어 본 발명에 따른 특정한 용도로 사용할 수 있으며, 표면에 발현된 상태로 상기 아미노산 위치를 포함하는 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체를 선별하여 수득하는 용도로도 이용가능하다.
또한, 본 발명은 상기 재조합 미생물 또는 바이러스를 배양하는 단계를 포함하는 에피토프를 생산하는 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 에피토프, 또는 이 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 HBV 백신 조성물을 제공한다. 이 HBV 백신 조성물은 약학적 허용가능한 면역보조제(adjuvant)를 추가로 포함할 수 있다. 면역보조제로는 체내에 주입시 항체 형성을 증진시키는 역할을 하여 본 발명에서의 목적 달성이 가능한 것이라면 어떤 것이라도 사용가능하며, 알루미늄염(Al(OH)3, ALPO4), 스쿠알렌(squalene), 소르비탄 (sorbitane), 폴리소르베이트 80(polysorbate 80), CpG, 리포좀, 콜레스테롤, MPL(monophosphoryl lipid A), GLA(glucopyranosyl lipid A)을 사용할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은 상기 에피토프, 또는 이 에피토프를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 HBV 검출용 조성물을 제공한다.
본 발명이 제공하는 B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 에피토프는 기존의 백신 또는 HBIg 투여에 대한 회피 돌연변이가 생성되는 a 결정기 내의 주요 잔기들을 포함하지 않기 때문에, 여기에 결합하는 항체를 포함하는 조성물 또는 상기 에피토프를 포함하는 백신 조성물은 회피 돌연변이에 의한 효능의 저하가 일어날 가능성이 매우 낮다. 따라서 이러한 항체 또는 백신 조성물은 HBV의 예방 및/또는 치료에 매우 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 본 발명 항체의 결합부위를 특정하기 위하여, 야생형 HBsAg(226 a.a)을 아미노산 서열 1~100(Region 1), 101~160 (Region 2), 161~226(Region 3) 세 부위로 나누어 각각의 부위를 결손시킨 돌연변이 구조를 나타낸 것이다.
도 2는 파지(phage)를 이용한 ELISA로 야생형 HBsAg과 상기 Region 1, 2, 3 각각이 결손된 3종의 돌연변이 HBsAg에 대한 본 발명 항체의 결합력을 확인한 실험 결과이다.
도 3은 본 발명 항체의 에피토프 규명을 위하여 15개 아미노산이 순차적으로 결손된 4종의 돌연변이 HBsAg의 구조를 나타낸 것이다.
도 4는 파지(phage)를 이용한 ELISA로 상기 15개 아미노산이 순차적으로 결손된 4종의 돌연변이 HBsAg에 대한 본 발명 항체의 결합력을 확인한 실험 결과이다.
도 5는 HBsAg 모델 상에 나타낸 에피토프와 이황화 결합들의 위치이다.
도 6a 및 6b는 본 발명 항체 에피토프의 특성 규명을 위하여 Western blot 분석을 수행한 결과이다.
도 7은 본 발명의 일 실시예에 따라 본 발명 항체 1, 2의 a 결정기의 다양한 돌연변이 항원에 대한 반응성을 ELISA를 이용하여 확인한 결과이다.
도 8a 내지 8d는 본 발명의 일 실시예에 따라 본 발명 항체 1, 2의 B형 간염 바이러스 4가지 유전자형 A, B, C, D에 대한 시험관 내 중화 실험 결과로서, real-time PCR 방법을 이용하여 세포 내의 바이러스 양을 증식하고 있는 HBV의 DNA 양으로 측정한 결과이다.
도 9a 내지 9d는 본 발명의 일 실시예에 따라 본 발명 항체 1, 2의 B형 간염 바이러스 4가지 유전자형 A, B, C, D에 대한 시험관 내 중화 실험 결과로서, chemiluminescent immunoassay(CLIA) 방법을 이용하여 증식되어 세포 외로 배출된 바이러스 양을 HBsAg양으로 측정한 결과이다.
도 10은 본 발명 항체 1, 2의 15개 HBV 표면 항원 혈청 샘플(B형 간염 바이러스 7가지 유전자형 A, B, C, D, E, F, H의 환자 유래)에 대한 결합 활성을 sandwich ELISA로 확인한 결과이다.
도 11은 본 발명 항체 1, 2의 약제(라미부딘, 아데포비어, 클레부딘, 엔테카비어) 내성 바이러스에 대한 결합 활성을 sandwich ELISA로 확인한 결과이다.
도 2는 파지(phage)를 이용한 ELISA로 야생형 HBsAg과 상기 Region 1, 2, 3 각각이 결손된 3종의 돌연변이 HBsAg에 대한 본 발명 항체의 결합력을 확인한 실험 결과이다.
도 3은 본 발명 항체의 에피토프 규명을 위하여 15개 아미노산이 순차적으로 결손된 4종의 돌연변이 HBsAg의 구조를 나타낸 것이다.
도 4는 파지(phage)를 이용한 ELISA로 상기 15개 아미노산이 순차적으로 결손된 4종의 돌연변이 HBsAg에 대한 본 발명 항체의 결합력을 확인한 실험 결과이다.
도 5는 HBsAg 모델 상에 나타낸 에피토프와 이황화 결합들의 위치이다.
도 6a 및 6b는 본 발명 항체 에피토프의 특성 규명을 위하여 Western blot 분석을 수행한 결과이다.
도 7은 본 발명의 일 실시예에 따라 본 발명 항체 1, 2의 a 결정기의 다양한 돌연변이 항원에 대한 반응성을 ELISA를 이용하여 확인한 결과이다.
도 8a 내지 8d는 본 발명의 일 실시예에 따라 본 발명 항체 1, 2의 B형 간염 바이러스 4가지 유전자형 A, B, C, D에 대한 시험관 내 중화 실험 결과로서, real-time PCR 방법을 이용하여 세포 내의 바이러스 양을 증식하고 있는 HBV의 DNA 양으로 측정한 결과이다.
도 9a 내지 9d는 본 발명의 일 실시예에 따라 본 발명 항체 1, 2의 B형 간염 바이러스 4가지 유전자형 A, B, C, D에 대한 시험관 내 중화 실험 결과로서, chemiluminescent immunoassay(CLIA) 방법을 이용하여 증식되어 세포 외로 배출된 바이러스 양을 HBsAg양으로 측정한 결과이다.
도 10은 본 발명 항체 1, 2의 15개 HBV 표면 항원 혈청 샘플(B형 간염 바이러스 7가지 유전자형 A, B, C, D, E, F, H의 환자 유래)에 대한 결합 활성을 sandwich ELISA로 확인한 결과이다.
도 11은 본 발명 항체 1, 2의 약제(라미부딘, 아데포비어, 클레부딘, 엔테카비어) 내성 바이러스에 대한 결합 활성을 sandwich ELISA로 확인한 결과이다.
실시예
이하 본 발명을 실시예를 통해 상세히 설명한다. 그러나 하기 실시예들은 본 발명의 내용을 예시하는 것일 뿐 발명의 범위가 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다. 본 발명에서 인용된 문헌은 본 발명의 명세서에 참조로서 통합된다.
실시예 1: 결손 돌연변이 항원을 이용한 본 발명 항체의 결합 부위 특정
본 발명 항체의 HBsAg 상의 결합 부위를 확인하기 위하여, HBsAg의 야생형 및 각종 결손 돌연변이를 제조하여 이에 대한 결합능력을 파지(Phage)를 이용한 enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA)로 조사하였다.
이때 실험은 두 단계로 진행하였는데, 먼저 HBsAg(226 a.a)을 아미노산 서열 1~100, 101~160, 161~226까지 세 부위로 나누어서 각각의 부위를 결손 시킨 돌연변이와 야생형의 발현 벡터를 제조하여(도 1 참조) 파지 표면에 각각의 단백질을 발현시킨 후 본 발명 항체에 대한 결합력을 측정하였다.
실시예 1-1. 야생형 HBsAg 및 3종의 돌연변이 HBsAg 발현 벡터 제조
야생형 HBsAg 및 이를 세 부분으로 나눈 결손 돌연변이 단백질을 파지 표면에 발현시키기 위하여 파지의 발현벡터를 이용하여 클로닝을 수행하였다. 자세한 실험방법은 다음과 같다. HBsAg 야생형과 부위별 결손 돌연변이를 클로닝 하기 위해, HBV 유전자형 C의 HBsAg 유전자 염기서열을 포함하고 있는 HBV 벡터(건국대학교 의학전문대학원 약리학교실)를 주형으로 하여 중합효소연쇄반응(PCR)으로 각각에 대한 유전자를 증폭해 내었다. 여기에 제한효소 Sfi I을 처리한 후, 동일한 제한효소로 처리된 파지 발현벡터에 각각 삽입하였다. 제작된 플라스미드는 QIAprep Spin Miniprep Kit (QIAGEN, Germany, Cat# 27106) 를 이용하여 추출되었고, 추출된 DNA를 이용하여 염기서열 분석을 통해 최종적으로 항체의 염기서열을 확인하였다. 완성된 각 클론의 명칭 및 HBsAg 부위는 표 1과 같다.
클론 명칭 | 클론 설명 | HBsAg 포함 부위 (아미노산) |
HBsAg full | 야생형 | 1~226 |
Region 2 + 3 | 아미노산 1~100 결손 | 101~226 |
Region 1 + 3 | 아미노산 101~160 결손 | 1~100 & 161~226 |
Region 1 + 2 | 아미노산 161~226 결손 | 1~160 |
본 실시예에서 상기 HBV 유전자형 C(서브타입 adr)의 HBsAg 야생형 전체 아미노산 서열은 서열번호 3으로 표시되며, GenBank No. GQ872210.1에서도 서열정보를 확인할 수 있다.
실시예
1-2. 야생형
HBsAg
및 3종의 돌연변이
HBsAg와
본 발명 항체의 결합력 확인 실험
클로닝된 HBsAg 전체 혹은 일부에 대한 결합 실험을 수행하기 위하여 먼저 발현용 대장균 (ER2738, Lucigen, USA, Cat# 60522-2)에 일렉트로포레이션(electroporation)을 통하여 벡터들을 삽입한 뒤, 항생제 (ampicillin) 내성이 있는 대장균들을 선택적으로 다음날 키우기 시작했다. 약 10시간 정도 키운 뒤, 박테리오 파지 (bacteriophage)를 감염시키고 감염된 대장균을 선택적으로 키우기 위해 다른 종류의 항생제 (kanamycin)을 사용하였다. 다음날 박테리오 파지를 추출하기 위해 우선 대장균을 원심분리기로 분리한 뒤, 상층액에 polyethylene glycol (PEG)을 처리하여 30분간 얼음에 놔두고 다시 원심분리기로 박테리오 파지를 분리하였다. 분리된 박테리오 파지를 녹인 뒤, 상층액을 필터링하여 HBsAg 전체 혹은 일부를 표면에 가지고 있는 순수한 박테리오 파지를 추출하였다.
박테리오 파지 표면에 노출된 야생형 및 돌연변이 HBsAg와 본 발명 항체와의 결합력을 정량적으로 평가하기 위하여 ELISA기법을 이용하였다. 먼저 anti-human Fc 항체(Jackson Immunoresearch, USA, Cat# 109-006-098)를 코팅 버퍼(Sigma, USA, Cat# c3041)와 섞고 96 well plate에 하루 간 4도에서 코팅시킨 뒤, 본 발명 항체를 거기에 결합시켰다. 그 후 추출된 박테리오 파지를 본 발명 항체에 결합시키고, HRP 효소가 달려 있는 박테리오 파지 M13 단백질 항체(GE healthcare, USA, 27-9421-01)를 사용한 뒤 2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid) (ABTS, KPL, USA, Cat# 50-62-00)를 이용하여 실제 본 발명 항체에 결합한 야생형 및 돌연변이 HBsAg를 가지고 있는 박테리오 파지의 양을 측정하였다. 이때, HBsAg을 표면에 발현하고 있는 각 실험군의 모든 박테리오 파지의 양을 측정하기 위해 anti-HA 항체(Genescript, USA, Cat# A00168-100)를 96 well plate에 하루 간 4도에서 코팅시킨 뒤, 추출된 박테리오 파지를 항체에 결합시키고 동일한 방식으로 측정하였다.
그 결과, 아미노산 101부터 160번까지가 결손된 HBsAg을 표면에 발현하고 있는 Region 1 + 3 박테리오 파지 샘플에서만 특이적으로 본 발명 항체와의 낮은 결합력이 관찰되었다(도 2 참조). 이러한 사실은 본 발명 항체의 주요 결합부위가 Region 2 부위에 포함되어 있음을 의미한다.
실시예 2: 연속 결손 돌연변이 항원을 이용한 본 발명 항체의 에피토프 특정
실시예 1에서 확인한 본 발명 항체의 주요 결합부위를 바탕으로 에피토프 부위를 특정하기 위하여, Region 2의 시작 아미노산인 101번부터 15개 아미노산을 순차적으로 잘라나가는 연속 결손(serial deletion) 돌연변이를 제조한 후 박테리오 파지 표면에 노출시켜 ELISA로 본 발명 항체에 대한 결합력을 확인하였다.
실시예 2-1. 4종의 돌연변이 HBsAg 발현 벡터 제조
Region 2 + 3 클론을 기준으로 삼아 아미노산 15개씩 결손 돌연변이를 제조하였다. 완성된 각 클론의 명칭 및 HBsAg 부위는 표 2와 같다(도 3 참조). 자세한 클로닝 과정은 실시예 1-1과 중복되므로 생략한다.
클론 명칭 | 클론 설명 | HBsAg 포함 부위(아미노산) |
Region 2+3 | 아미노산 1~100 결손 | 101~226 |
Region 2+3 Del 1 | 아미노산 1~115 결손 | 116~226 |
Region 2+3 Del 2 | 아미노산 1~130 결손 | 131~226 |
Region 2+3 Del 3 | 아미노산 1~145 결손 | 146~226 |
Region 2+3 Del 4 | 아미노산 1~160 결손 | 161~226 |
실시예 2-2. 4종의 돌연변이 HBsAg와 본 발명 항체의 결합력 확인 실험
실시예 1-2와 동일한 방법으로 4종의 연속 결손 돌연변이가 표면에 노출되어 있는 박테리오 파지를 추출하여 ELISA를 수행하였다.
그 결과, Region 2+3 del 1에서 본 발명 항체에 대한 결합력이 확연하게 떨어지는 것을 확인하였는데, 이것은 본 발명 항체의 주요 항원결정기(에피토프)는 아미노산 101부터 115까지의 부위에 존재한다는 것을 의미한다(도 4 참조).
실시예
3. 단일 아미노산 돌연변이 항원을 이용한 본 발명 항체의
에피토프
규명
본 발명 항체의 에피토프를 더욱 정확하게 규명하기 위하여, 미국의 인테그랄 몰레큘라(Integral Molecular)사의 샷건 돌연변이법(shotgun mutagenesis, J Am Chem Soc. 2009; 131(20): 6952~6954 등 참조)을 이용하여 HBsAg(adr subtype) 내에 무작위 돌연변이(random mutagenesis)를 도입시켜 각 돌연변이 항원에 대한 본 발명 항체의 결합능력을 측정하였다. 실험에 사용된 돌연변이 항원의 라이브러리의 특성은 표 3과 같다. 제작된 라이브러리 각각의 클론은 384-well 플레이트에 배양된 HEK-293T 세포에서 발현되었다.
라이브러리 전체 클론 수 | 456 |
돌연변이 도입 된 HBsAg 잔기 수 (전체 226개) | 226 (100%) |
하나의 잔기에서 돌연변이 도입된 클론 수 | 367 |
두 개의 잔기에서 돌연변이 도입된 클론 수 | 78 |
세 개 이상의 잔기에서 돌연변이 도입된 클론 수 | 11 |
실시예 3-1: 항체의 에피토프 확인
돌연변이 항원에 대한 본 발명 항체의 결합능은 면역형광 FACS 분석법으로 3회 반복하여 측정되었으며, 야생형 HBsAg에 대한 반응성을 기준으로 삼아 표준화(normalization)가 수행되었다. 또한, HBsAg에 대한 생쥐 단클론 항체인 orb43805 를 대조 항체로 사용한 결합능 결과는 실험 결과의 신뢰도 확인 및 에피토프 선정에 대한 기준 설정에 사용되었다. 즉, 대조 항체인 orb43805에 대한 결합 반응성이 야생형 HBsAg에 대한 결합 반응성 대비 55% 이상(>55% WT)이면서, 동시에 본 발명 항체에 대한 결합 반응성이 야생형 대비 15% 미만(<15% WT)인 클론에 존재하는 돌연변이 잔기를 본 발명 항체의 결합에 필수적인 핵심 잔기(critical residue)로 선별하였다.
실험 결과, 총 4개의 돌연변이 항원으로부터 본 발명 항체에 대한 핵심 잔기가 도출되었고, 이에 따라 본 발명 항체의 에피토프에는 HBsAg의 아미노산 110, 118, 120 및 147번 위치가 포함되어 있음이 확인되었다. 구체적인 실험 결과는 표 4와 같다.
돌연변이 | 결합 반응성 (% WT) | |
본 발명 항체 | orb43805 | |
L110P | 7.9 | 75.7 |
T118A | 8.3 | 56.3 |
P120L | 5.7 | 61.4 |
C147R | 9 | 98.6 |
이 중, 아미노산 110번 위치는 상기 실시예 2의 실험을 통해서 특정된 결합 부위에도 포함되기 때문에 본 발명 항체에 대한 핵심적인 에피토프라고 결론 내릴 수 있다. 118, 120 및 147번 위치는 실시예 2의 실험 결과로 특정된 결합 부위 내에 없지만, 결손 실험의 경우 다수의 아미노산이 제거됨에 따라 구조적인 변화가 있을 가능성이 있어 일부 에피토프를 규명하지 못할 가능성이 크다.
상세하게 살펴보면, HBsAg은 C107-C138, C139-C147 등과 같은 이황화 결합(disulfide bond)에 의해 3차원적인 구조를 유지하고 있는데, 실시예 2의 결손 돌연변이로 이러한 결합이 손상되면 원래 구조가 와해되어 항체 결합에 영향을 주는 것을 확인할 수 있다. 즉, 본 실시예에서 단일 돌연변이 실험을 통하여 이전 실시예 2의 결손 실험에서 찾지 못했던 에피토프 잔기를 규명하였다(도 5 참조). 다만, 147번 위치의 경우 HBsAg의 3차원 구조 유지에 중요한 이황화 결합을 형성하는 잔기이기 때문에, 110, 118 및 120번 부위의 구조 에피토프가 정상적으로 형성될 수 있도록 도와주는 역할로 본 발명의 항체와의 결합에 참여할 수도 있다.
실시예 4: 본 발명 항체 에피토프의 특성 규명
실시예 1, 2 및 3을 통해 밝혀진 결합 부위가 구조 에피토프를 형성하는지 확인하기 위하여 Western blot을 수행하였다. 이때, 단백질의 변성 조건인 Sodium dodecyl sulfate-Polyacrylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE) 젤과 비변성 조건인 Native-PAGE 젤을 모두 사용하여 HBsAg의 구조에 따른 본 발명 항체와의 결합력 차이를 규명하였다. 특히, 단백질 변성 조건 내에서도 환원제(reducing agent)의 사용 유무에 따라 HBsAg의 3차 구조 형성에 중요한 이황화 결합(disulfide bond)을 제거하여 완전히 선형화(linearization) 시킨 경우와 그렇지 않은 경우로 나누어서 구조 에피토프 형성 유무를 면밀히 검토하였다.
4-1. Native-PAGE를 이용한 Western blot 분석
본 발명 항체가 자연적으로 형성된 HBsAg의 구조 에피토프를 인식하는지 여부를 평가하기 위하여 SDS가 첨가되어 있지 않은 NativePAGE 젤을 사용하여 Western blot을 수행하였다. 먼저 HBsAg가 들어가 있는 용액에 NativePAGETM Sample Buffer(Invitrogen, USA, Cat# BN2003)와 NativePAGETM 5% G-250 Sample Additive(Invitrogen, USA, Cat# BN2004)를 섞은 뒤, NativePAGETM Novex® 3-12% Bis-Tris Protein Gel(Invitrogen, USA, Cat# BN1003BOX)에 로딩하였다. 2시간 가량의 젤 러닝 후, NuPAGE® Transfer Buffer(Invitrogen, USA, Cat# NP0006)를 이용하여 젤에 있는 단백질을 PVDF membrane(Invitrogen, USA, Cat# LC2002)으로 트랜스퍼(transfer) 하였다. 1시간 동안 5% 스킴 밀크(skim milk)가 포함된 Phosphate buffered saline(PBS)-Tween20 버퍼로 membrane 블로킹을 수행한 후, 3% 스킴 밀크가 포함된 PBS-Tween20 버퍼에 1차 항체를 섞어서 membrane에 밤샘 냉장 처리하였다. 이때, 본 발명 항체에 대한 양성 대조군으로서 World Health Organization(WHO)의 표준품(WHO International Standard for anti-HBs immunoglobulin, human(code: 07/164))을 사용하였고, 음성 대조군으로서는 human epidermal growth receptor2(HER2)에 대한 인간화 항체인 항-HER2 항체를 사용하였다. PBS-Tween20 버퍼로 membrane을 충분히 워시(wash)한 후, 2차 항체로서 Horseradish Peroxidase(HRP)가 달려있는 anti-human Fc(Thermo Scientific, USA, Cat# 31413)를 3% 스킴 밀크가 보함된 PBS-Tween20 버퍼에 섞은 뒤 1시간 동안 처리하였다. PBS-Tween20 버퍼로 충분히 워시한 다음, enhanced chemiluminescent(ECL) 기질을 처리한 후 ChemiDoc(Bio-Rad, USA) 기기를 이용하여 HBsAg과 테스트된 각 항체들간의 결합 여부를 관찰하였다.
실험 결과, 자연적인 3차 구조를 유지한 HBsAg는 본 발명 항체와 매우 높은 결합력을 보여주었다(도 6a 참조). 이 결합의 특이성은 양성 대조군인 WHO 표준품과 음성 대조군인 항-HER2 항체와의 실험 결과로 확인되었다. WHO 표준품은 사람 혈액으로부터 정제한 다클론 항체로서 여기에는 HBsAg의 선형 및 구조 에피토프를 인식하는 항체가 모두 포함되어 있기 때문에 이 실험에서 결합이 확인되었고, 비특이적인 항체인 항-HER2 항체는 결합하지 않은 것이다.
한편, HBsAg의 분자량은 23kd 내외로 알려져 있지만 이번 실험에서 항체와 결합된 HBsAg의 분자량은 매우 큰 것으로 나타났는데, native HBsAg은 자발적으로 조립(assembly)되어 특정 형태(22nm의 subviral particle)를 형성하는 것이 잘 알려져 있기 때문에 자연스러운 현상으로 결론 내릴 수 있다(Ira Berkower et al., J Virol., Mar 2011; 85(5): 2439-2448).
4-2. SDS-PAGE를 이용한 Western blot 분석
본 발명 항체에 대한 에피토프의 구조적 특성을 더 면밀히 분석하기 위하여 SDS-PAGE 젤 및 환원제를 이용하여 Western blot을 수행하였다. 전반적인 실험의 과정은 실시예 4-1과 동일하며 간략히 나타내면 다음과 같다.
우선, HBsAg 용액을 SDS-PAGE sample buffer와 섞은 후 95 ℃에서 5분간 반응시킨 다음 4-20% Mini-PROTEAN TGX Precast gel에 로딩하여 gel running을 수행하였다. 이때, 로딩 샘플은 두 종류로 준비하였는데, 한쪽은 환원제(NuPAGE Sample Reducing Agent(10x), LifeTechnologies, USA)를 첨가하여 단백질의 완전한 변성을 유도한 것이고, 다른 한쪽은 환원제가 들어가지 않아 HBsAg의 이황화 결합이 유지되어 불완전한 변성이 이루어진 것이다. Running 후 HBsAg을 nitrocellulose(NC) membrane에 트랜스퍼시켰고, 블로킹 후 1차 항체로 밤샘 냉장 처리하였다. 1차 항체로는 본 발명 항체, WHO 표준품, HBIg(Hepabig, 녹십자, 한국), 항-HER2 항체를 사용하였다. 이어지는 과정은 위의 과정과 동일하기 때문에 생략한다.
실험의 결과, 본 발명 항체가 이황화 결합까지 제거되어 완전히 선형화 되어버린 HBsAg에는 전혀 결합하지 않고, 부분적 변성만이 일어난 HBsAg에는 잘 결합할 수 있음이 확인되었다. 양성 대조군으로 사용된 WHO 표준품과 HBIg의 경우 실시예 4-1에서 설명한 바와 같이 다클론 항체이기 때문에 선형 에피토프를 인식하는 항체를 포함하고 있어서 reducing condition에서 완전히 선형화 된 HBsAg에도 잘 결합하는 것으로 나타났다. 항-HER2 항체의 경우 HBsAg의 구조에 상관없이 전혀 결합하지 않았다. HBsAg의 3차 구조에 있어서 단백질 내부적으로 혹은 단백질들 사이에 형성되는 이황화 결합이 중요하게 작용함은 널리 알려진 사실이다(Mangold CM et al., Arch Virol., 1997;142(11):2257-67).
따라서, 본 발명 항체의 결합에는 이황화 결합에 의한 HBsAg의 3차 구조 유지가 필수적임을 알 수 있으며, 결국 본 발명 항체는 HBsAg의 구조 에피토프(conformational epitope)를 인식한다고 결론을 내릴 수 있다.
실시예
5:
a
결정기의
다양한 돌연변이
항원에 대한 본 발명 항체의
결합 활성 조사
a 결정기 상의 4 가지 돌연변이 항원에 대한 본 발명 항체의 결합 활성을 확인하고자 ELISA를 수행하였다. 이 항원들은 각각 126, 129, 133, 143번 아미노산 위치에서 변이를 갖고 있는 것들로서, 실제로 만성 B형 간염 환자에서 보고된 바 있는 Hepatitis B Immune globulin(HBIg) 또는 백신에 대한 회피 돌연변이에서 발견된 것일 뿐만 아니라 진단에 있어서도 표면 항원의 측정이 제대로 되지 않는 등의 문제를 일으키는 것들이다(Horvat et al., Labmedicine, vol. 42(8): 488-496, 2011). 이 항원들의 재조합 단백질은 상기한 ProspecBio사로부터 구입하였다.
도 7은 a 결정기 돌연변이 항원에 따른 본 발명 항체 1, 2 각의 반응성을 나타낸 것으로, 그 결과는 반응성의 유무에 따라 양성(+) 및 음성(-)으로 구분하여 표 5로 정리하였다.
HBsAg | 본 발명 항체 1 | 본 발명 항체 2 |
adw T126N | + | + |
adw Q129H | + | + |
adw M133H | + | + |
adw T143K | + | + |
실험 결과, 본 발명 항체 1, 2는 다양한 a 결정기 돌연변이 HBsAg에 대하여 결합능을 보유함을 확인하였다. 이는 본 발명 항체가 HBsAg의 110, 118, 120 및/또는 147번 위치의 에피토프를 인식하므로, 높은 변이율을 나타내는 a 결정기(아미노산 124-147)의 영향으로부터 자유로울 수 있음을 알 수 있다.
또한 147번 아미노산의 경우 구조 형성에 중요한 잔기로서, 이 잔기의 돌연변이는 감염성에 심각한 영향을 준다고 알려져 있기 때문에 실제 돌연변이 발생율이 매우 낮을 것으로 예상된다.
따라서 110, 118, 120 및/또는 147번 위치의 에피토프를 포함하는 백신 조성물 또는 상기 에피토프에 결합하는 항체는 회피 돌연변이에 의한 효능 저하가 일어날 가능성이 낮고, HBV 예방 또는 치료에 유용하게 사용될 수 있다.
실시예 6: B형 간염 바이러스에 대한 시험관내 중화 효력 검증
다양한 유전자형의 B형 간염 바이러스에 대한 본 발명 항체의 중화력을 검증하기 위하여 시험관내 중화 실험(in vitro neutralization assay)을 수행하였다.
HBV에 대한 시험관내 중화 실험은 인간 간세포에 바이러스를 감염시킬 때 각 항체의 처리 조건에 따라서 얼마나 감염이 저해되는가를 바이러스 증식이 가장 활발한 시점에서 세포 내와 세포 외의 바이러스 양을 측정함으로써 항체의 중화력을 평가하는 방법이다. 세포 내의 바이러스 양은 증식하고 있는 HBV의 DNA양으로 측정하였고, 증식되어 세포 외로 배출된 바이러스 양은 배지 내의 HBV DNA양과 HBsAg양으로 측정하였다. 이때 HBV DNA는 TaqMan probe를 이용한 realtime-PCR 방법으로, HBsAg은 chemoluminescent immunoassay(CLIA) 방법으로 정량하였다.
6-1. 1차 시험관내 중화 실험
B형 간염 바이러스의 감염에 필요한 인간 간세포는 바이러스 접종 하루 전날 인간화된 간조직을 갖고 있는 키메릭 마우스(uPA/SCID mouse with humanized liver)로부터 두 단계의 콜라게네이즈 퍼퓨전(collagenase perfusion) 방법을 통하여 준비되었다. 분리된 간세포는 제1형 콜라겐이 도포되어 있는 24-웰 플레이트에 웰당 4x105개씩 깔아주었고, 이때 배지로는 10% FBS(Atlas Biologicals, USA, F0500A), 1X 페니실린/스트렙토마이신(pecinillin/streptomycin; Gibco, USA, 15140)과 20 mM 헤페스(HEPES; Gibco, USA, 15630)가 포함된 DMEM(Gibco, USA, 11965)이 각 웰당 500 ㎕씩 사용되었다. 준비된 간세포는 37℃의 5% CO2 습윤(humidified) 세포배양기에서 24시간 배양되었다.
바이러스 감염은 인간화된 간조직을 갖고 있는 키메릭 마우스에서 생산된 A(Genebank accession number: AB246345.1), B(Genebank accession number: AB246341), C(Genebank accession number: AB246338.1), D(Genebank accession number: AB246347) 4 가지 유전자형(genotype)의 HBV를 사용하여 이루어졌으며, 본 발명 항체와 혼합된 상태로 웰당 2x106개 바이러스의 농도로 세포에 처리되었다. 자세한 과정은 다음과 같다.
A. 바이러스 접종 혼합물의 준비
dHCGM 배지(DMEM+10% FBS, NaHCO3 44mM, L-proline 15 ug/㎖, insulin 0.25 ug/㎖, dexamethasone 50nM, EGF 5 ng/㎖, Asc-2p 0.1 mM, DMSO 2%)를 이용하여 최종 100 ㎕가 되도록 바이러스와 각 항체를 섞어 상온에서 1시간 동안 반응시켰다. 이 때 바이러스는 2x106개가 되도록 하였고, 본 발명 항체는 10, 1, 0.1, 0.01 ug/㎖의 4 가지 농도가 되도록 희석하였다.
B. 바이러스 접종
125 ㎕의 dHCGM 배지에 25 ㎕의 40% PEG(Sigma, USA, P1458)를 섞은 후, A에서 준비한 바이러스/항체 혼합물을 넣어줌으로써 최종적으로 250 ㎕의 접종 혼합물을 준비하였다. 준비된 세포로부터 배지를 제거한 후 접종 혼합물을 넣어주었고, 그 후 24시간 동안 배양하였다.
C. 배지 교환 및 배양, 분석 샘플의 준비
바이러스의 접종 후 간세포는 총 12일 동안 배양되었으며, 1일, 2일, 7일째에 세포의 washing 및 배지의 교환이 이루어졌다. 기존의 배양액을 제거한 다음 500 ㎕의 DMEM+10% FBS로 워싱을 수행하였고, 동일한 양의 dHCGM 배지를 새로 넣어주었다. 그리고 7일째 배지 교환의 경우, 기존의 배양액은 세포로부터 새로 생산되어 배출된 세포 외 HBsAg과 HBV DNA 정량을 위해서 각각 300 ㎕와 30 ㎕씩 모아 두었고 분석 시점까지 -20℃에 보관되었다.
12일의 배양기간이 끝난 후에는 세포와 배양액 모두가 세포 내/외의 바이러스 정량 분석에 사용되었다. 배양액은 기존과 동일한 방식으로 HBsAg 측정용과 HBV DNA 측정용으로 나눠서 채취되었으며, 세포는 각 웰을 500 ㎕의 DMEM+10% FBS로 1회 세척한 후 500 ㎕의 SMITEST(Medical & Biological Laboratories Co., Ltd.) solution을 넣어서 용해시키는 방식으로 채취되었다. HBV DNA의 추출은 제조사(Medical & Biological Laboratories Co., Ltd.)의 프로토콜에 따라서 이루어졌다.
D. 샘플 분석
HBV DNA 정량은 TaqMan probe, TaqMan PCR Core Reagents(Life Technologies, USA), 그리고 ABI Prism 7500 sequence detector system(Applied Biosystems, USA)을 이용한 realtime-PCR 방법으로 수행되었다. HBsAg 정량은 CLIA 방법을 사용한 자동화 시스템인 ARCHITECT(Abbott, USA)로 이루어졌다.
Primer/Probe | 서열 | 서열번호 |
Forward primer | CACATCAGGATTCCTAGGACC | 4 |
Reverse primer | AGGTTGGTGAGTGATTGGAG | 5 |
TaqMan probe | CAGAGTCTAGACTCGTGGTGGACTTC (Dye: FAM for 5', TAMRA for 3') |
6 |
Program | Cycle |
50℃ 2min | 1 |
95℃ 10min | 1 |
95℃ 20sec → 60℃ 1min | 53 |
Threshold | 0.1 |
본 발명 항체 1, 2에 대한 실험 결과는 도 8a 내지 8d, 9a 내지 9d에서와 같이 각 측정 항목에 따라 바이러스의 유전자형(genotype)별로 구분하여 나타내었다.
우선 각 항체의 처리 농도에 따른 세포 내 HBV DNA양을 비교 분석해 보면, 본 발명 항체 1, 2가 유전자형 C로 구분되는 HBsAg의 adr 서브타입에 대한 결합력을 기준으로 선별된 것들이기 때문에 유전자형 C에 대해서는 모두 강한 중화력을 가진 것을 확인할 수 있었다. 양성대조용으로 사용된 HBIg가 음성대조용으로 사용된 항-HER2 항체에 비해서 400배 이상의 HBV DNA양 감소를 보여준 상황에서, 그 처리량의 1/10인 본 발명 항체 2의 1 ug/㎖ 처리 샘플에서도 동일한 수준의 바이러스 DNA 감소를 보여주었다. 본 발명 항체 1의 경우는 0.1 ug/㎖의 낮은 농도 처리에서도 100배에 이르는 HBV DNA 감소를 보여줌으로써 비교적 높은 수준의 중화력을 유지하는 것으로 나타났다. 또한 본 발명 항체 1, 2는 특히 A, B 유전자형에 대해서는 양성대조군인 HBIg보다 최고 중화력에서 두 배 이상 앞서는 월등한 효력을 나타내었고, D 유전자형에 대해서는 중화효력이 1 ug/㎖ (본 발명 항체 2) 또는 0.1 ug/㎖ (본 발명 항체 1)의 낮은 농도에서도 높게 유지되었다(도 8a 내지 8d).
상기한 본 발명 항체 1, 2의 A, B, C, D 4가지 유전자형에 대한 중화 효력의 특징은 배양액에서 측정한 세포 외 HBsAg의 정량 결과에도 매우 유사하게 반영되어 있는 것으로 밝혀졌다(도 9a 내지 9d).
이상의 결과를 종합하자면, A, B, C, D 4가지 유전자형의 HBV에 대하여 시험관내 중화 효력 검증을 실시하였고, 그 결과 본 발명 항체 1, 2가 사용된 모든 바이러스에 대하여 높은 수준의 중화력을 지닌 것으로 확인되었다.
실시예
7: 다양한 만성 B형 간염 환자 유래 유전자형 바이러스의 표면
항원에 대한 결합 특성
조사
본 발명 항체 1, 2가 실제로 전세계적으로 유행하는 다양한 유전자형의 바이러스에 대해서 결합하여 중화효력을 나타낼 수 있는지를 확인하고자, 환자 혈청 유래의 다양한 유전자형 바이러스의 표면 항원으로 이루어져 있는 World Health Organization(WHO)의 reference panel(1st WHO International Reference Panel for HBV Genotypes for HBsAg Assays, PEI code 6100/09)을 사용하여 sandwich ELISA를 수행하였다. 해당 표준품의 상세 정보는 표 8과 같으며, 실험 방법은 하기와 같다.
두 항체를 항-인간 IgG Fcγ(gamma) 항체(Jackson ImmunoResearch, U.S.A, 109-006-098)가 코팅된 96-웰 마이크로타이터 플레이트(Nunc, Denmark, 449824)의 각 웰에 2 ug/㎖의 농도로 100㎕씩 분주하여 흡착시켰다. 워싱 후, 상기 플레이트를 3% 소혈청 알부민(bovine serum albumin, BSA)이 함유된 인산 완충용액(Teknova, USA, D5120)으로 처리하여 블로킹하였다. 다시 워싱한 후, HBsAg genotype panel인 15개의 혈청 시료를 100㎕씩 분주하여 37℃에서 90분간 반응(incubation)시켰다. 이때, 각 혈청 시료는 450/620 nm에서 흡광도 0.8~1.2 정도를 갖도록 1% BSA가 함유된 인산 완충용액(Teknova, USA, D5120)으로 적절히 희석하였다. 항체와 반응하여 붙어 있는 HBsAg를 감지하기 위하여 과산화효소가 표지된 토끼의 항-HBV 표면 항원 항체(Thermo Scientific, U.S.A., PA1-73087)를 37℃에서 60분간 처리하였다. 발색 및 반응 정지, 그리고 흡광도 측정은 실시예 5에서와 동일한 방법을 사용하였다. 두 항체의 각 유전자형 HBV 표면 항원에 대한 반응성은 엑셀(Microsoft, U.S.A.)을 이용하여 그래프로 분석하였다(도 10).
분석 결과, 본 발명 항체 1, 2 모두 15개 HBsAg 샘플에 잘 결합하는 것을 확인하였다. 전술한 바와 같이, 이 표면 항원 샘플들은 실제로 환자 혈액으로부터 제조된 혈청들이며, HBV의 전체 8개 유전자형 중 G형을 제외한 A부터 H형까지 7개 유전자형을 커버하고 있다. 또한, 여러 종류의 아유전자형이 존재하는 A, B, C, D, F형의 경우 각 유전자형별로 우세하게 퍼져있는 아유전자형 및 서브타입(혈청형) 샘플이 2~3개씩 포함되어 있는데, 이것은 실험에 사용된 WHO의 HBV 유전자형 패널이 실질적으로 전 세계에서 유행하는 대부분의 HBV 유전자형을 대변한다는 의미이다. 패널에는 유전자형 G가 빠져있으나, G의 경우는 현재까지 아유전자형이 보고된 바 없고 서브타입(혈청형)으로는 adw2로 분류가 되기 때문에 패널에 포함되어 있는 5개의 adw2 샘플에 대한 실험 결과로 G형에 대한 본 발명 항체 1, 2의 결합 활성을 미루어 짐작 가능하다.
따라서, 모든 15개 샘플에 본 발명 항체 1, 2가 우수한 결합 활성을 보여준 것은 두 항체가 전 세계적으로 유행하고 있는 모든 유전자형의 HBV에 결합할 수 있고 그에 따른 중화력을 나타낼 수 있음을 의미한다.
Sample # | Origin | Genotype | sub-genotype | Subtype |
1 | South Africa | A | A1 | adw2 |
2 | Brazil | A1 | adw2 | |
3 | Germany | A2 | adw2 | |
4 | Japan | B | B1 | adw2 |
5 | Japan | B2 | adw2 | |
6 | Japan | C | C2 | adr |
7 | Japan | C2 | adr | |
8 | Russia | C2 | adr | |
9 | Germany | D | D1 | ayw2 |
10 | Russia | D2 | ayw3 | |
11 | South Africa | D3 | ayw2 | |
12 | West Africa | E | N/A | ayw4 |
13 | Brazil | F | F2 | adw4 |
14 | Brazil | F2 | adw4 | |
15 | Germany | H | N/A | adw4 |
실시예 8: 다양한 약제 내성 바이러스에 대한 결합 특성 조사
만성 B형 간염 환자들에게 널리 사용되는 HBV 중합효소의 억제제인 라미부딘(lamivudine, LMV), 아데포비어(adefovir, ADV), 클레부딘(clevudine, CLV), 엔테카비어(entecavir, ETV)에 대한 내성 돌연변이와 본 발명 항체 1, 2 사이의 결합 특성을 상기 실시예 7에서 사용한 방법과 동일한 sandwich ELISA법을 사용하여 확인하였다. 실험에 사용된 야생형 바이러스를 비롯하여 모든 내성 돌연변이 바이러스는 해당 약물 치료에 대한 내성이 발생한 환자의 혈액으로부터 얻어낸 HBV DNA를 사용하여 건국대학교 의학전문대학원 약리학교실에서 클로닝된 것들로서, Huh7 세포주 혹은 HepG2 세포주를 사용한 형질도입 실험을 통하여 약제 내성이 실험적으로도 확인된 균주들이다(Ahn et al., Journal of Virology, 88(12): 6805-6818, 2014). 모든 바이러스는 유전자형 C형이며, 각 바이러스의 특징은 표 9와 같다.
이와 같이 준비된 각각의 HBV 발현벡터를 T75 플라스크(BD BioScience, 353136)에 키운 Huh7 세포주에 Lipofectamine2000(Life technologies, 11698019)을 이용하여 형질도입하였고, 3일 동안 배양하여 바이러스를 생산하였다. 생산된 바이러스는 Centricon(Millipore, U.S.A.)을 사용하여 농축하였고, 각 샘플의 바이러스 양은 Monolisa HBsAg Ultra(BioRad, 72346) ELISA kit를 사용하여 HBsAg양으로 비교한 후 서로 비슷한 값을 갖도록 적절하게 희석하여 실험에 사용하였다.
실험 결과, 본 발명 항체 1, 2 모두 라미부딘(LMV), 아데포비어(ADV), 클레부딘(CLV), 엔테카비어(ETV) 내성 바이러스에 야생형 바이러스와 동일한 수준으로 결합 활성을 갖는 것으로 나타났다(도 11 참조). 여기서 ADV 내성 바이러스에 대한 결합 활성이 상대적으로 조금 낮은 것처럼 보이나, 이것은 해당 샘플의 생산량 자체가 다른 샘플들에 비해서 약간 낮은 것에 기인하는 것으로 판단된다.
이와 같은 사실은 본 발명 항체 1, 2가 실험에 사용된 각 약제 내성 바이러스 한 종류에 대해서뿐만 아니라, 해당 약제에 대해서 발생하는 대부분의 내성 바이러스에 대해서 결합 활성 및 중화 효능을 가질 수 있음을 의미한다. 왜냐하면, HBV에 약제 내성을 가져오는 변이는 표 9에서 확인할 수 있는 것처럼 HBV 폴리머라제의 reverse transcriptase(RT) 도메인의 특정 아미노산 변이와 관련이 있으며, 이러한 변이는 약제 별로 매우 특이적으로 발생하기 때문이다. 이러한 특이적인 폴리머라제의 변이는 유전자를 공유하는 HBV의 특성상 HBsAg의 특이적 변이를 동반하기도 하는데, 가령 폴리머라제의 rtM204I 변이는 HBsAg의 W196L 변이를, rtA181V 변이는 HBsAg의 L173F 변이를 가져오게 된다. 본 발명 항체 1, 2는 약제 내성 변이에 동반되는 이들 표면 항원의 변이에 상관없이 잘 결합함을 확인하였다.
또한, 이 실험에서 사용된 각 내성 바이러스들은 위에서 언급한 내성 특이적인 표면 항원의 변이에 더하여 비특이적으로 발생한 많은 표면 항원의 변이를 갖고 있다(표 9 참조). 이 실험의 결과는 본 발명 항체 1, 2가 HBsAg의 Q101R, K112R, I126S, L175S, A184V, I185M 위치에 변이가 있는 바이러스에 결합 및 중화 활성을 가질 수 있음을 나타낸다.
Strain | HBV polymerase의 돌연변이 위치 (RT domain) |
HBsAg의 돌연변이 위치 |
Wild type (genotype C) | N/A | N/A |
라미부딘(LMV) 내성 바이러스 | L80I, M204I | W196L |
아데포비어(ADV) 내성 바이러스 | A181V | I126S, L173F, L175S |
클레부딘(CLV) 내성 바이러스 | M204I | Q101R, I126S, A184V, W196L |
엔테카비어(ETV) 내성 바이러스 | L180M, M204V | Q101R, K112R, I185M |
실시예 9: 항원-항체의 결합친화도 측정
본 발명 항체의 항원-항체 결합친화도를 측정하기 위하여, 표면 플라스몬 공명(Surface Plasmon Resonance, 이하 SPR) 검정을 이용하였다. 구체적으로, 재조합 HBsAg(adr subtype, ProspecBio)과 본 발명 항체의 결합친화도는 25℃에서 분석 완충액 HBS-EP(10 mM HEPES [pH 7.4], 150 mM NaCl, 3 mM EDTA 및 0.005% 계면활성제 P20)을 사용하는 Biacore T200(GE Healthcare) 장비로 표면 플라스몬 공명 분석에 의해 결정되었다. 10 mM 아세트산나트륨(Sodium Acetate, pH 5.0) 중에 희석된 HBsAg 단백질 50 ㎍/ml를 제조사의 지침 및 절차에 따라 아민 커플링 키트(Amine coupling kit)를 사용하여 CM5 연구용 바이오센서 칩에 약 500 RU만큼 직접적으로 고정시켰다. 바이오센서 표면에서 반응하지 않은 부분을 에탄올아민(ethanolamine)으로 차단하였다. 반응 분석을 위해 Biacore T200 콘트롤 소프트웨어, Biacore T200 이벨루에이션 소프트웨어를 사용하였다. 본 발명 항체는 HBS-EP 완충액에 희석하였다. 검정 과정에서, 모든 측정은 고정된 HBsAg이 없는 바이오센서 표면을 대조군으로 사용하였다. 결합 및 분리 속도 상수 Ka(M-1s-1) 및 Kd(s-1)은 30 ㎕/분의 유속에서 결정하였다. 속도 상수는 3배의 연속희석으로서 2.46 - 200 nM 범위의 항체 농도에서 반응 결합 측정을 실시하고 완충액을 대조군으로 사용함으로써 획득하였다. 이어서, 항체와 표적 항원 사이의 반응에 대한 평형 해리 상수 KD(M)를 반응 속도 상수로부터 다음의 등식에 의해 계산하였다: KD = Kd/Ka. 결합은 시간과 반응 속도 상수의 함수를 계산하여 기록한다.
실험의 결과는 표 10과 같으며, 본 발명 항체의 HBsAg에 대한 높은 결합 친화도를 확인하였다.
샘플 | ka1(1/Ms) | kd1(1/s) | KD | AVR KD |
본 발명 항체 |
9.04E+04 | 6.33E-05 | 7.00E-10 | 7.45E-10 |
8.12E+04 | 6.42E-05 | 7.90E-10 |
<110> Celltrion Inc.
<120> Epitopes of Hepatitis B virus surface antigen and a binding
molecule able to neutralize Hepatitis B virus specifically
binding to epitopes thereof
<130> CPD2014031KR
<160> 6
<170> KopatentIn 1.71
<210> 1
<211> 15
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Epitope of HBsAg
<400> 1
Gln Gly Met Leu Pro Val Cys Pro Leu Leu Pro Gly Thr Ser Thr
1 5 10 15
<210> 2
<211> 15
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Epitope of HBsAg
<400> 2
Phe Leu Trp Glu Trp Ala Ser Val Arg Phe Ser Trp Leu Ser Leu
1 5 10 15
<210> 3
<211> 226
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> HBsAg
<400> 3
Met Glu Ser Thr Thr Ser Gly Phe Leu Gly Pro Leu Leu Val Leu Gln
1 5 10 15
Ala Gly Phe Phe Leu Leu Thr Arg Ile Leu Thr Ile Pro Gln Ser Leu
20 25 30
Asp Ser Trp Trp Thr Ser Leu Asn Phe Leu Gly Gly Ala Pro Thr Cys
35 40 45
Pro Gly Gln Asn Ser Gln Ser Pro Thr Ser Asn His Ser Pro Thr Ser
50 55 60
Cys Pro Pro Ile Cys Pro Gly Tyr Arg Trp Met Cys Leu Arg Arg Phe
65 70 75 80
Ile Ile Phe Leu Phe Ile Leu Leu Leu Cys Leu Ile Phe Leu Leu Val
85 90 95
Leu Leu Asp Tyr Gln Gly Met Leu Pro Val Cys Pro Leu Leu Pro Gly
100 105 110
Thr Ser Thr Thr Ser Thr Gly Pro Cys Lys Thr Cys Thr Ile Pro Ala
115 120 125
Gln Gly Thr Ser Met Phe Pro Ser Cys Cys Cys Thr Lys Pro Ser Asp
130 135 140
Gly Asn Cys Thr Cys Ile Pro Ile Pro Ser Ser Trp Ala Phe Ala Arg
145 150 155 160
Phe Leu Trp Glu Trp Ala Ser Val Arg Phe Ser Trp Leu Ser Leu Leu
165 170 175
Val Pro Phe Val Gln Trp Phe Ala Gly Leu Ser Pro Thr Val Trp Leu
180 185 190
Ser Val Ile Trp Met Met Trp Tyr Trp Gly Pro Ser Leu Tyr Asn Ile
195 200 205
Leu Ser Pro Phe Leu Pro Leu Leu Pro Ile Phe Phe Cys Leu Trp Val
210 215 220
Tyr Ile
225
<210> 4
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Forward primer of realtime-PCR for HBV DNA quantitation
<400> 4
cacatcagga ttcctaggac c 21
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Reverse primer of realtime-PCR for HBV DNA quantitation
<400> 5
aggttggtga gtgattggag 20
<210> 6
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> TaqMan probe of realtime-PCR for HBV DNA quantitation
<400> 6
cagagtctag actcgtggtg gacttc 26
Claims (15)
- 삭제
- 삭제
- 삭제
- B형 간염 바이러스 표면 항원(HBsAg)의 아미노산 위치 106 내지 151 서열 내의 4 내지 38 mer이고, 110, 118, 120 및 147 아미노산 잔기를 포함하는 구조 에피토프(conformational epitope)에 특이적으로 결합하는 B형 간염 바이러스(HBV) 중화 결합 분자.
- 삭제
- 제4항에 있어서, 상기 결합 분자는 1X10-9 M 미만의 결합 친화도를 가짐을 특징으로 하는 결합 분자.
- 제4항에 있어서, 상기 결합 분자는 항체 또는 그 단편임을 특징으로 하는 결합 분자.
- 제7항에 있어서, 상기 항체는 인간 단일클론항체임을 특징으로 하는 결합 분자.
- 제4항의 결합분자를 암호화하는 폴리뉴클레오티드.
- 제9항의 폴리뉴클레오티드를 포함하는 발현 벡터.
- 제10항의 발현 벡터가 형질 전환된 숙주 세포.
- 제11항의 숙주 세포를 배양하는 단계를 포함하는 결합 분자를 생산하는 방법.
- 삭제
- 삭제
- 삭제
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